一种去除污水中cod的微生物菌剂及其制备方法与应用
【专利摘要】本发明公开了一种去除污水中COD的微生物菌剂、制备方法和应用，巨大芽孢杆菌Bacilus megaterium ACCC 01032、枯草芽孢杆菌Bacilus subtilis CICC 23585、类芽孢杆菌属Paenibacilus.SP CICC 10358、巴斯德毕赤酵母Pichia pastoris ACCC 21021、黄曲霉Aspergilus flavus CGMCC3.2823。本发明可在生物处理段有效去除污水中的COD，去除率可达到95％左右；并且在系统启动初期或是运行出现不稳的情况具有卓越的抗冲击性能。本品不含致病菌，不含重金属和有毒害化学物质，实体产品无毒无刺激性。
【专利说明】
一种去除污水中COD的微生物菌剂及其制备方法与应用
技术领域
[0001] 本发明属于环保工程中污水生物处理技术领域，具体涉及一种去除污水中C0D的 微生物菌剂，以及该微生物菌剂在有效去除污水中氨氮的应用。
【背景技术】
[0002] 我国是一个水资源短缺的国家。随着工业发展、城镇化提速以及人口数量的膨胀， 水污染情况不断加剧，水资源已面临着越来越严峻的挑战。污水的生物法处理作为一种经 济有效的水处理方式已经在工业污水、生活污水、江河湖泊的治理上得到广泛应用。生物法 污水处理是利用微生物代谢去除水中的污染物，将其最终变为H 20、N2、C02等;与物化法相比 消除或者降低了二次污染。
[0003]微生物菌群作为生物法污水处理的核心，其技术关键是:筛选、培养、驯化出能快 速高效去除污染物的菌群。
[0004] 微生物菌剂中的增效菌种是通过从微生物菌种保藏中心得到。再经过特定的培养 基活化，按照不同比例将各菌种复合配制成去除氨氮的微生物菌剂。污水处理系统利用自 然污泥培养驯化时间长，并且处理效率不稳定，抗冲击能力差。添加微生物菌剂能有效缩短 驯化时间、提高出水质量和系统稳定性，综合提升污水处理系统对污染物的去除能力;并且 对于运行状态差或者将要崩溃的系统，通过添加微生物菌剂能快速使系统恢复到正常运行 状态，甚至可以达到出水提标排放。
【发明内容】
[0005] 本部分的目的在于概述本发明的实施例的一些方面以及简要介绍一些较佳实施 例。在本部分以及本申请的说明书摘要和发明名称中可能会做些简化或省略以避免使本部 分、说明书摘要和发明名称的目的模糊，而这种简化或省略不能用于限制本发明的范围。
[0006] 鉴于上述和/或现有污水处理中存在的问题，提出了本发明。
[0007] 因此，本发明其中的一个目的是解决现有技术中的不足，提供一种能够有效去除 污水中氨氮的微生物菌剂。
[0008] 为解决上述技术问题，本发明提供了如下技术方案:一种去除污水中C0D的微生物 菌剂，其以单个纯菌株培养到对数末期的菌液体积比计，包括，巨大芽孢杆菌25~35%、枯 草芽孢杆菌27~32%、类芽孢杆菌属30~32%、巴斯德毕赤酵母3~6%、黄曲霉3~6%。
[0009] 作为本发明所述去除污水中C0D的微生物菌剂的一种优选方案，其中：所述去除污 水中C0D的微生物菌剂，以单个纯菌活化到对数末期的菌液体积比(V/V)计，包括，巨大芽孢 杆菌32%、枯草芽孢杆菌32%、类芽孢杆菌属28%、巴斯德毕赤酵母5%、黄曲霉3%。
[0010] 本发明其中的另一个目的是提供一种能够有效去除污水中氨氮的微生物菌剂的 制备方法。
[0011] 为解决上述技术问题，本发明提供了如下技术方案:一种去除污水中C0D的微生物 菌剂的制备方法，其是将各菌种接入到液体种子活化培养基进行活化，再以1~3%的接种 量接入到扩增培养基进行一级培养，然后将一级培养所得菌液以1~3 %的接种量接入到另 外的扩增培养基进行二级培养，将二级培养所得菌液按比例混合混匀制成微生物菌剂。
[0012] 作为本发明所述去除污水中C0D的微生物菌剂的制备方法的一种优选方案，其中： 所述各菌种包括巨大芽孢杆菌、枯草芽孢杆菌、类芽孢杆菌属、巴斯德毕赤酵母或黄曲霉中 的一种或几种。
[0013] 作为本发明所述去除污水中C0D的微生物菌剂的制备方法的一种优选方案，其中： 所述活化包括，将巨大芽孢杆菌、枯草芽孢杆菌、类芽孢杆菌属在35~38°C条件下培养10~ 14小时；将巴斯德毕赤酵母在28~32°C条件下培养22~24小时；将黄曲霉在26~30°C条件 下培养33~36小时。
[0014] 作为本发明所述去除污水中C0D的微生物菌剂的制备方法的一种优选方案，其中： 所述液体种子活化培养基，其中，活化巨大芽孢杆菌、枯草芽孢杆菌、类芽孢杆菌属的培养 基成分以质量百分比计，包括，0.8~1.2%蛋白胨，0.8~1.2%氯化钠，0.4~0.6 %酵母膏， 0.5~1.5 %NaOH且调pH到6.5~7.5,并将培养基在115°C条件下灭菌20分钟;活化巴斯德毕 赤酵母的培养基成分以质量百分比计，包括，酵母膏0.8~1.2%，蛋白胨1.5~2.5%，鹿糖1 ~3%，并将培养基在115Γ条件下灭菌20分钟;活化黄曲霉的培养基成分以质量百分比计， 包括，18~22%马铃薯浸出液，葡萄糖1.8~2.2%，并将培养基在115°C条件下灭菌20分钟。
[0015] 作为本发明所述去除污水中C0D的微生物菌剂的制备方法的一种优选方案，其中： 所述一级培养包括，将巨大芽孢杆菌、枯草芽孢杆菌、类芽孢杆菌属在35~38°C、200~ 240rpm下培养10~14小时；将巴斯德毕赤酵母在28~32°C、180~220rpm下培养16~20小 时；将黄曲霉在26~30 °C、130~170rpm下培养33~36小时。
[0016] 作为本发明所述去除污水中C0D的微生物菌剂的制备方法的一种优选方案，其中： 所述二级培养包括，将巨大芽孢杆菌、枯草芽孢杆菌、类芽孢杆菌属的一级培养所得菌液在 35~38°C，200~240rpm下培养9~11小时;将巴斯德毕赤酵母的一级培养所得菌液在28~ 32°(：，180~220印111下培养14~16小时 ；将黄曲霉的一级培养所得菌液在26~30°(：，130~ 170rpm下培养23~25小时。
[0017] 作为本发明所述去除污水中C0D的微生物菌剂的制备方法的一种优选方案，其中： 所述扩增培养基，其中，巨大芽孢杆菌、枯草芽孢杆菌、类芽孢杆菌属的扩增培养基成分以 质量百分比计，包括，0.8~1.2%糖蜜，0.4~0.6%酵母膏，0.8~1.2%氯化钠，且调pH到 6.5~7.5，并将培养基在115°C条件下灭菌20分钟；巴斯德毕赤酵母的扩增培养基成分以质 量百分比计，包括，1.8~2.2%糖蜜，0.8~1.2%酵母膏，并将培养基在115°C条件下灭菌20 分钟；黄曲霉的扩增培养基成分以质量百分比计，包括，2.5~3.5%糖蜜，0.08~0.12% 1( 2冊〇4,0.15~0.25%他勵3，并将培养基在115°(：条件下灭菌20分钟。
[0018] 本发明还提供了一种能够有效去除污水中氨氮的微生物菌剂的应用。
[0019] 为解决上述技术问题，本发明提供了如下技术方案：一种利用微生物菌剂去除污 水中C0D的方法，其包括，以一个周期为四周，每周添加5天计，其中，第一周和第二周的第1 天、第2天，将去除污水中C0D的微生物菌剂按照菌剂和污水体积比3~5:1000添加;第一周 和第二周的第3天，将去除污水中C0D的微生物菌剂按照菌剂和污水体积比2~4:1000添加； 第一周和第二周的第4天、第5天，将去除污水中C0D的微生物菌剂按照菌剂和污水体积比1 ~2:1000添加;第三周和第四周的第1天至第5天，将去除污水中C0D的微生物菌剂按照菌剂 和污水体积比1~3:1000添加。
[0020] 本发明可在生物处理段有效去除污水中的氨氮，去除率可达到95%左右；并且在 系统启动初期或是运行出现不稳的情况具有卓越的抗冲击性能。本品不含致病菌，不含重 金属和有毒害化学物质，实体产品无毒无刺激性。实际应用不会对环境造成二次污染，不会 额外造成水体负担，属于环境友好亲和型微生物菌剂产品。并且该产品，储运和投放简便高 效。
【附图说明】
[0021] 为了更清楚地说明本发明实施例的技术方案，下面将对实施例描述中所需要使用 的附图作简单地介绍，显而易见地，下面描述中的附图仅仅是本发明的一些实施例，对于本 领域普通技术人员来讲，在不付出创造性劳动性的前提下，还可以根据这些附图获得其它 的附图。其中：
[0022] 图1为SBR模拟工艺设计图。
[0023]图2为A/0模拟系统工艺设计图。
【具体实施方式】
[0024] 为使本发明的上述目的、特征和优点能够更加明显易懂，下面结合具体实施例对 本发明的【具体实施方式】做详细的说明。
[0025] 在下面的描述中阐述了很多具体细节以便于充分理解本发明，但是本发明还可以 采用其他不同于在此描述的其它方式来实施，本领域技术人员可以在不违背本发明内涵的 情况下做类似推广，因此本发明不受下面公开的具体实施例的限制。
[0026] 其次，此处所称的"一个实施例"或"实施例"是指可包含于本发明至少一个实现方 式中的特定特征、结构或特性。在本说明书中不同地方出现的"在一个实施例中"并非均指 同一个实施例，也不是单独的或选择性的与其他实施例互相排斥的实施例。
[0027] 本发明首先提供了一种污水处理中有效去除C0D的微生物菌剂。该菌剂包括巨大 芽抱杆菌Bacilus megaterium ACCC 01032、枯草芽抱杆菌Bacilus subtilis CICC 23585、类芽抱杆菌属Paenibacilus.SP CICC 10358、巴斯德毕赤酵母Pichia pastoris ACCC 21021、黄曲霉Aspergilus flavus CGMCC3.2823。本发明设定该菌剂编号:COD-01。
[0028] 菌剂⑶D-01具有的特征：各菌种及其比例：巨大芽孢杆菌Bacilus megaterium ACCC 01032,32% ;枯草芽孢杆菌Bacilus subtilis CICC 23585,32% ;类芽孢杆菌属 Paenibacilus.SP CICC 10358,28% ;巴斯德毕赤酵母Pichia pastoris ACCC 21021,5% ; 黄曲霉Aspergilus flavus CGMCC3.2823,3%。
[0029] 其中，菌剂中各菌种的比例指的是单个纯菌种培养到对数末期的菌液体积比。该 菌剂是经过以下步骤制备的：
[0030] (1)-70°C冰箱中取出甘油冻管保藏的各菌种，在经紫外灭菌的超净工作台中融 解，移液枪无菌吸取lml接入已灭菌的10ml液体种子活化培养基中，进行活化。
[0031] (2)本菌剂制备步骤（1)中所用液体活化培养基包括三种。分别为活化菌种巨大芽 抱杆菌Bacilus megaterium ACCC 01032、枯草芽抱杆菌Bacilus subtilis CICC 23585、 类芽孢杆菌属Paenibacilus.SP CICC 10358的培养基，其组成：1%蛋白胨；1%氯化钠， 0.5%酵母膏；1 %NaOH调pH到7.0,115 °C灭菌20分钟。活化巴斯德毕赤酵母Pi chia pastoris ACCC 21021的培养基，其组成:酵母膏1%，蛋白胨2%，葡萄糖2%，115°C灭菌20 分钟。活化黄曲霉Aspergilus flavus CGMCC3.2823的培养基，其组成:20%马铃薯浸出液， 葡萄糖2%，115°C灭菌20分钟。
[0032] (3)接入液体活化培养基之后，巨大芽孢杆菌Bacilus megaterium ACCC01032、枯 草芽抱杆菌Bacilus subtilis CICC 23585、类芽抱杆菌属Paenibacilus.SP CICC 10358 在37°C条件下培养12小时；巴斯德毕赤酵母Pichia pastoris ACCC21021在30°C条件下培 养24小时;黄曲霉Aspergilus flavus CGMCC3.2823在28°C条件下培养36小时。
[0033] (4)无菌条件下吸取(3)中活化好的液体培养物lml，接入50mL液体扩增培养基中， 培养液体种子。巨大芽抱杆菌Bacilus megaterium ACCC 01032、枯草芽抱杆菌Bacilus subtilis CICC 23585、类芽孢杆菌属Paenibacilus.SP CICC10358在37°C条件下，220rpm 下培养12小时左右；巴斯德毕赤酵母Pichia pastoris ACCC 21021在30°C条件下，200rpm 下培养18小时左右；黄曲霉Aspergilus flavus CGMCC3.2823在28°C，150rpm下培养36小 时。
[0034] (5)步骤（4)中经一级培养所制得的一级种子液有三种：培养巨大芽孢杆菌 Bacilus megaterium ACCC 01032、枯草芽抱杆菌Bacilus subtilis CICC 23585、类芽抱 杆菌属Paenibacilus.SP CICC 1035821937的培养基，其组成为：1%糖蜜，0.5%酵母膏， 1 %氯化钠，调PH 7.0。培养巴斯德毕赤酵母Pichia pastoris ACCC 21021的培养基，其组 成为：2%糖蜜，1%酵母膏，自然pH。培养黄曲霉Aspergilus flavus CGMCC3.2823的培养 基，其组成为：3%糖蜜，(hl%K2HP〇4,0.2%NaN〇3。
[0035] (6)将步骤(4)中培养好的种子液以2%的接种量接入步骤(5)中的新鲜扩增培养 基中。按照步骤(4)中的培养条件培养巨大芽孢杆菌Bacilus megaterium ACCC 01032、枯 草芽抱杆菌Bacilus subtilis CICC 23585、类芽抱杆菌属Paenibacilus.SP CICC 10358 10小时；培养巴斯德毕赤酵母Pichia pastoris ACCC 21021 15小时左右；培养黄曲霉 Aspergilus flavus CGMCC3.2823 24小时。
[0036] (7)将步骤(6)二级培养所制得二级种子液按照巨大芽孢杆菌32%、枯草芽孢杆菌 32%、类芽孢杆菌属28%、巴斯德毕赤酵母5%、黄曲霉3%。混合，即做成微生物混合菌剂， 本菌剂活菌浓度>10 8CFU/mL，室温下能稳定保存6个月，按此比例混合，本菌剂能发挥最佳 效果的条件(但不仅仅局限于此条件），同时本菌剂能适应各种生化处理系统。最佳应用条 件温度：20~45°(：$!1 :6~8.5。
[0037]将做好的菌剂按下表的添加方式添加到小型模拟SBR( sequencing batch reactor activated sludge process)和A/0(Anoxic/0xic)污水处理系统。
[0039] 小型SBR模拟装置设计参数如下：
[0040] (1)有效池容:201^;
[0041 ] (2)进水 C0D 约 1500mg/L;氨氮约 60mg/L;
[0042] (3)污泥负荷率0.5;
[0043] (4)MLSS约2880mg/L;
[0044] (5)温度 20 ~40°C;
[0045] (6)排水比m = 2/5;
[0046] (7)每个周期12小时，曝气10小时，沉淀2小时。
[0047] SBR模拟工艺见图1。SBR系统在一个装置中完成进水、曝气、沉淀、排水阶段。从1进 料进气，从2排气，从3出料，靠曝气将液体充分混合，曝气开始时候投入高效微生物菌剂。 [0048] A/0系统设计如下：
[0049] (1)进水池设计池容 20L，流量 40L/d; A池 10L，HRT = 6h; 0池 20L，HRT = 12h;沉淀池 20L〇
[0050] (2)进水 COD 1500mg/L 左右;氨氮约 60mg/L;
[0051 ] (3)按COD = 1500mg/L 计算A 池和 0 池的MLSS。计算得 0 池 MLSS = 6000mg/L; A 池 MLSS = 3000mg/L〇
[0052] (4)污泥回流比：回流速度为进水速度的2倍。
[0053] (5)温度2〇~40Γ左右。
[0054] (6)A 池 D0 = 0.2 ~0.5mg/L 左右;0 池 D0 = 2 ~4mg/L。
[0055] A/0模拟系统工艺见图2。该系统分为:进水池 (A)、缺氧池 (B)、好氧池 (C)、沉淀池 (D)，在空间上分割开。与典型的A/0系统相比，不设混合液回流系统，节省能耗。分别在B池 和C池中投入厌氧和好氧的高效微生物菌剂。
[0056] 实施例1:
[0057] 采用本发明对实验室模拟工业废水（调pH约7.5;主要成分有糖蜜、酵母膏、葡萄 糖、可溶性淀粉、无机盐等等)的C0D进行去除。将菌剂按照预定的周期添加到SBR工艺中，在 35°C的条件下运行系统。对于将要崩溃的SBR系统(进水⑶D约1300mg/L，出水⑶D约300mg/ L，去除率约76.9%)，通过一个月的菌剂添加，按照预定的参数运行系统系统维持稳定后， 在进水COD约1300mg/L情况下。通过菌剂添加，出水COD降到49.5mg/L，去处理率达到96%。 [0058] 实施例2:
[0059] 采用本发明对实验室模拟工业废水（同实施例1)的C0D进行去除。将菌剂按照预定 的周期添加到的A/0工艺中，在35°C的条件下运行系统。对于运行不太好的A/0系统（进水 C0D约1300mg/L，出水C0D约250mg/L，去除率约80.7% )按照预定的参数运行系统，通过一个 月的菌剂添加，系统维持稳定后，在进水C0D约1300mg/L情况下。通过菌剂添加，出水降到约 35mg/L，去处理率达到97 · 2 %。
[0060] 实施例3:
[0061]采用本发明对江南大学纺织服装学院印染废水(预调pH为6.5~8.5;主要成分:染 料、表面活性剂、聚乙烯醇，同时添加适量的糖蜜、酵母膏、葡萄糖、无机盐来满足微生物必 要的营养物质）的C0D进行去除。将菌剂按照预定的周期添加到A/0工艺中，在35°C的条件下 运行系统。对于运行不太好的A/0系统(进水C0D约1400mg/L，出水C0D约500mg/L，去除率约 64.3%)按照预定的参数运行系统，通过一个月的菌剂添加，系统维持稳定后，在进水C0D约 1400mg/L情况下。通过菌剂添加，出水降到约91mg/L，去处理率约达到93.5%。
[0062] 实施例4:
[0063] 采用本发明对江南大学纺织服装学院印染废水（同实施例3)的C0D进行去除。将菌 剂按照预定的周期添加到SBR工艺中，在35°C的条件下运行系统。对于将要崩溃的SBR系统 (进水C0D约1400mg/L，出水C0D约500mg/L，去除率约64.3 % )，通过一个月的菌剂添加，按照 预定的参数运行系统系统维持稳定后，在进水C0D约1400mg/L情况下。通过菌剂添加，出水 C0D降到100mg/L以下，去处理率超过92.8 %。
[0064] 实施例5:其他菌种比例下的菌剂在应用中对C0D的去除效果实施例：
[0065] 采用本发明对江南大学纺织服装学院印染废水（同实施例3)的C0D进行去除。将菌 剂比例改为巨大芽抱杆菌Bacilus megaterium ACCC 01032,30%;枯草芽抱杆菌1^(3；[1118 subtilis CICC 23585,20% ;类芽孢杆菌属Paenibacilus.SP CICC 10358,30% ;巴斯德毕 赤酵母卩：[。]11&卩&81:〇1^8 4〇〇0 21021，15%;黄曲霉八8卩6找;[1118；1^1&￥11806]\^〇3.2823， 5%。按照预定的周期添加到SBR工艺中，在35°C的条件下运行系统。对于将要崩溃的SBR系 统(进水C0D约1400mg/L，出水C0D约500mg/L，去除率约64.3 % )，通过一个月的菌剂添加，按 照预定的参数运行系统系统维持稳定后，在进水C0D约1400mg/L情况下。通过菌剂添加，出 水C0D维持在约180mg/L，去处理率约87.1 %。
[0066] 实施例6:
[0067]采用本发明对江南大学纺织服装学院印染废水（同实施例3)的C0D进行去除。将菌 剂比例改为巨大芽抱杆菌Bacilus megaterium ACCC 01032,20%;枯草芽抱杆菌1^(3；[1118 subtilis CICC 23585,20% ;类芽孢杆菌属Paenibacilus.SP CICC 10358,30% ;巴斯德毕 赤酵母Pichia pastoris ACCC 21021，20%;黄曲霉Aspergilus flavus CGMCC3.2823， 10%。按照预定的周期添加至ljA/0工艺中，在35°C的条件下运行系统。对于将要崩溃的A/Ο系 统(进水C0D约1400mg/L，出水C0D约500mg/L，去除率约64.3 % )，通过一个月的菌剂添加，按 照预定的参数运行系统系统维持稳定后，在进水C0D约1400mg/L情况下。通过菌剂添加，出 水C0D维持在约230mg/L以下，去处理率超过83.6 %。
[0068]由此可见，本发明该去除COD的微生物增效菌剂主要含有以下几种菌：巨大芽孢杆 菌Bacilus megaterium ACCC 01032、枯草芽抱杆菌Bacilus subtilis CICC 23585、类芽 抱杆菌属Paenibacilus.SP CICC 10358、巴斯德毕赤酵母Pichia pastoris ACCC 21021、 黄曲霉Aspergilus flavus CGMCC3.2823。该发明菌剂形式是微生物菌悬液，制备方法包括 对各类菌种进行保藏、活化、扩大培养，获得处于最佳生长期的菌悬液，将各菌菌悬液按比 例混合，即得到液体菌剂。
[0069]本发明可在生物处理段有效去除污水中的C0D，去除率可达到95%左右;并且在系 统启动初期或是运行出现不稳的情况具有卓越的抗冲击性能。本品不含致病菌，不含重金 属和有毒害化学物质，实体产品无毒无刺激性。实际应用不会对环境造成二次污染，不会额 外造成水体负担，属于环境友好亲和型微生物菌剂产品。并且该产品，储运和投放简便高 效。
[0070]上述说明已经充分揭示了本发明的【具体实施方式】。需要指出的是，熟悉该领域的 技术人员对本发明的【具体实施方式】所做的任何改动均不脱离本发明的权利要求书的范围。 相应地，本发明的权利要求的范围也并不仅仅局限于前述【具体实施方式】。
【主权项】
1. 一种去除污水中COD的微生物菌剂，其特征在于：以单个纯菌株培养到对数末期的菌 液体积比计，包括，巨大芽孢杆菌25~35%、枯草芽孢杆菌27~32%、类芽孢杆菌属30~ 32%、巴斯德毕赤酵母3~6%、黄曲霉3~6%。2. 根据权利要求1所述的去除污水中COD的微生物菌剂，其特征在于:所述去除污水中 COD的微生物菌剂，以单个纯菌活化到对数末期的菌液体积比计，包括，巨大芽孢杆菌32 %、 枯草芽孢杆菌32%、类芽孢杆菌属28%、巴斯德毕赤酵母5%、黄曲霉3%。3. -种制备如权利要求1或2所述去除污水中COD的微生物菌剂的方法，其特征在于:将 各菌种接入到液体种子活化培养基进行活化，再以1~3 %的接种量接入到扩增培养基进行 一级培养，然后将一级培养所得菌液以1~3%的接种量接入到另外的扩增培养基进行二级 培养，将二级培养所得菌液按比例混合混匀制成微生物菌剂。4. 根据权利要求3所述去除污水中COD的微生物菌剂的制备方法，其特征在于:所述活 化包括，将巨大芽孢杆菌、枯草芽孢杆菌、类芽孢杆菌属在35~38°C条件下培养10~14小 时；将巴斯德毕赤酵母在28~32°C条件下培养22~24小时;将黄曲霉在26~30°C条件下培 养33~36小时。5. 根据权利要求3或4所述去除污水中COD的微生物菌剂的制备方法，其特征在于:所述 液体种子活化培养基，其中，活化巨大芽孢杆菌、枯草芽孢杆菌、类芽孢杆菌属的培养基成 分以质量百分比计，包括，0.8~1.2%蛋白胨，0.8~1.2%氯化钠，0.4~0.6%酵母膏，0.5 ~1.5%NaOH且调pH到6.5~7.5，并将培养基在115°C条件下灭菌20分钟；活化巴斯德毕赤 酵母的培养基成分以质量百分比计，包括，酵母膏0.8~1.2%，蛋白胨1.5~2.5%，鹿糖1~ 3%，并将培养基在115°C条件下灭菌20分钟;活化黄曲霉的培养基成分以质量百分比计，包 括，18~22%马铃薯浸出液，葡萄糖1.8~2.2%，并将培养基在115°C条件下灭菌20分钟。6. 根据权利要求3或4所述去除污水中COD的微生物菌剂的制备方法，其特征在于:所述 一级培养包括，将巨大芽孢杆菌、枯草芽孢杆菌、类芽孢杆菌属在35~38°C、200~240rpm下 培养10~14小时；将巴斯德毕赤酵母在28~32°C、180~220rpm下培养16~20小时；将黄曲 霉在26~30°C、130~170rpm下培养33~36小时。7. 根据权利要求3或4所述去除污水中COD的微生物菌剂的制备方法，其特征在于:所述 二级培养包括，将巨大芽孢杆菌、枯草芽孢杆菌、类芽孢杆菌属的一级培养所得菌液在35~ 38°(：，200~240印111下培养9~11小时 ;将巴斯德毕赤酵母的一级培养所得菌液在28~32°(：， 180~220rpm下培养14~16小时；将黄曲霉的一级培养所得菌液在26~30°C，130~170rpm 下培养23~25小时。8. 根据权利要求3或4所述去除污水中COD的微生物菌剂的制备方法，其特征在于:所述 扩增培养基，其中，巨大芽孢杆菌、枯草芽孢杆菌、类芽孢杆菌属的扩增培养基成分以质量 百分比计，包括，0.8~1.2%糖蜜，0.4~0.6%酵母膏，0.8~1.2%氯化钠，且调pH到6.5~ 7.5,并将培养基在115Γ条件下灭菌20分钟；巴斯德毕赤酵母的扩增培养基成分以质量百 分比计，包括，1.8~2.2 %糖蜜，0.8~1.2 %酵母膏，并将培养基在115 °C条件下灭菌20分 钟；黄曲霉的扩增培养基成分以质量百分比计，包括，2.5~3.5%糖蜜，0.08~0.12% 1( 2冊〇4,0.15~0.25%他勵3，并将培养基在115°(：条件下灭菌20分钟。9. 一种利用如权利要求1或2所述的微生物菌剂去除污水中COD的方法，其特征在于:包 括，以一个周期为四周，每周添加5天计，其中， 第一周和第二周的第1天、第2天，将去除污水中COD的微生物菌剂按照菌剂和污水体积 比3~5:1000添加； 第一周和第二周的第3天，将去除污水中COD的微生物菌剂按照菌剂和污水体积比2~ 4:1000 添加； 第一周和第二周的第4天、第5天，将去除污水中COD的微生物菌剂按照菌剂和污水体积 比1~2:1000添加； 第三周和第四周的第1天至第5天，将去除污水中COD的微生物菌剂按照菌剂和污水体 积比1~3:1000添加。
【文档编号】C12N1/14GK105950512SQ201610389709
【公开日】2016年9月21日
【申请日】2016年6月3日
【发明人】夏海锋, 李子武, 朱胜杰
【申请人】江南大学