专利名称：一种重组蛋白a的制备方法
技术领域：
本发明属于生物技术领域，具体的说，涉及一种新的重组蛋白A的制备方法。
背景技术：
葡萄球菌蛋白A (Staphylococal Protein A, SPA)是一种从金黄色葡萄球菌细胞壁分离的蛋白质。1940年，Vevwey发现在某些金黄色葡萄球菌中，含有一种物质，在双向扩散试验中，能与正常人血清形成沉淀。jensen(1959)也发现了类似现象，将其命名为A抗原。1963年Lofkvist等分离了 A抗原，并证明它是一种蛋白质，且与糖有区别； Grov (1960)将其命名为葡萄球菌蛋白A，简称SPA蛋白A (ProteinA)。编码SPA的基因于1983年被克隆并在大肠杆菌中表达(Duggleby，C. J and Jones, SA :cloning and expression of the Staphylococcus aureus protein A gene in Escherichia coli. Nucl Acids Res. 11(1983)3065-3076 ；Lofdahl, S. , Guss, B. , et al ；Gene for Staphylococcal protein A. Proc. Natl. Acid. Sci. USA 80(1983)697-701)。对 SPA 结构和功能的研究发现， SPA分子包含A、B、C、D、E五个同源结构域，每个结构域都有能与IgG自主结合的能力。SPA 基因有1600bp。由于葡萄球菌蛋白A上有5个结构域可以与IgG的Fc区结合，具有与大多数哺乳动物IgG的Fc段结合的能力。作为一种亲和配基，蛋白A被固定在琼脂糖上面，它上面的5 个结构域就可以与IgG的Fc自由结合，一分子固定的蛋白A可以与两分子的IgG结合，重组蛋白A其C端有一个胱氨酸，结合IgG的能力更强。重组蛋白A被广泛应用于单克隆抗体或多克隆抗体的分离纯化和检测。在使用含有ProteinA的亲和层析技术时，存在亲和力低、纯化效率低等问题，因此在使用该亲和层析技术时，需要一种改进的ProteinA，来实现更高的亲和力，提高纯化的效果。
发明内容
本发明需要解决的技术问题是提供一种新的重组蛋白A的制备方法。本发明的技术方案如下本发明提供的重组蛋白A的氨基酸序列如SEQ ID No. 1所示，本发明提供的制备方法如下将含有编码重组蛋白A的基因的重组表达载体的大肠杆菌重组株进行培养发酵使其高效表达重组蛋白A，再收集菌体，经分离纯化得到重组蛋白A产品。根据本发明的一个优选实施例，所述重组蛋白A的核苷酸序列如SEQ IDN0. 2所示。根据本发明的一个优选实施例，所述含有编码重组蛋白A的基因的重组表达载体含有SEQ ID N0. 2所示的核苷酸序列以及与该序列操作性相连的表达调控序列，优选的，该重组表达载体是pET32a-P。根据本发明的一个优选实施例，所述重组菌株为大肠杆菌重组菌株，优选的，该大肠杆菌为大肠杆菌BL21/DE3。根据本发明的一个优选实施例，本发明提供的方法包括以下步骤1)构建含有所述重组蛋白A基因的表达载体；2)将步骤1)的表达载体转入大肠杆菌；3)培养步骤2)所得到的菌株，诱导表达重组蛋白A ；和4)分离纯化得到所述重组蛋白A。本发明上述能表达重组蛋白A的大肠杆菌菌株优先为由含有重组蛋白A基因的表达载体pET32a-P转化大肠杆菌BL21/DE3得到的菌株，命名为BL21/pET32a。本发明生产的重组蛋白A表达于大肠杆菌胞周质中，有利于表达产物的分离纯化。利用本发明表达生产重组蛋白A，具有表达效率高，表达量大(占细菌可溶性蛋白总量的60-80% )，表达时间短(仅3-5小时)，易于纯化等优点。本发明采用大肠杆菌表达系统生产重组蛋白A，还具有生产周期短(1天)，生产成本低的特点，有利于基因工程重组蛋白A的产业化应用。本发明的重组蛋白A基因的表达产物重组蛋白A用于与各种不同的层析介质载体如琼脂糖凝胶、葡聚糖、纤维素、带羟基的高分子聚合物、硅胶等偶联成为亲和层析介质用于抗体的分离纯化。本发明生产的重组蛋白A具有蛋白结合特异性强，亲和力高，纯化效率大大改善的优点，与市售的ProteinA Sepharose 4Fast Flow相比，其动态吸附载量明显提高。
图1是本发明构建的重组表达载体pET32a_P，是在载体pET32a中连入proteinA基因。图2 菌体的SDS-PAGE凝胶电泳结果，其中泳道1和5是marker ；泳道2是空载体；泳道3是经诱导的BL21/pET32a的碎菌后的上清；泳道4是经诱导的BL21/pET32a的碎菌后的沉淀。图3 重组蛋白A琼脂糖凝胶5S CP从小鼠腹水中分离纯化IgG2aSDS_PAGE电泳结果泳道1为标准蛋白Marker，泳道2为腹水，泳道3为本发明的重组蛋白A琼脂糖凝胶 5S CP亲和介质的洗脱峰。图4 重组蛋白A葡聚糖凝胶从小鼠腹水中分离纯化IgG2aSDS_PAGE电泳结果泳道1为标准蛋白Marker，泳道2为腹水，泳道3为本发明的重组蛋白A葡聚糖凝胶亲和介质所装的柱子的洗脱峰。泳道3中，上、下两条带分别是IgG2a的重链和轻链。
具体实施例方式实施例1、重组蛋白A基因单体的合成通过化学合成的方法，设计合成重组蛋白A基因一个重复片段的序列，其序列包括长度为168bp，前端加入与表达载体相连的NcoI酶切位点，6个His (用于亲和层析，与镍柱结合，减少纯化步骤)和EK酶切位点，以及用于连入多个重复片段的AccI酶切位点。另外，还包括终止密码子TAA，及克隆用BamH I限制性内切酶接头共9bp。还须通过化学合成的方法，设计合成重组蛋白A基因一个重复片段的序列，其序列包括长度为168bp，两端为AccI酶切位点，用于构建含有多个重复片段的序列。实施例2、含一个重组蛋白A基因单体的pET32a载体的构建用限制型内切酶NcoI和BamH I将上述重组蛋白A基因单体切下，与经NcoI及 BamHI酶切的载体pET32a连接，转化大肠杆菌，筛选具有氨苄青霉素抗性的转化子，经质粒提取，酶切鉴定后证明重组蛋白A基因单体已克隆至pET32a中。实施例3、含有重组蛋白A基因的pET32a_P载体的构建将上述含一个重组蛋白A基因单体的pET32a载体及重组蛋白A基因单体以AccI 酶切，回收相应片段后连接，转化大肠杆菌，筛选具有氨苄青霉素抗性的转化子，经质粒提取，酶切筛选获得含有3个蛋白A基因单体的重组蛋白A的pET32a-P载体。实施例4、表达重组蛋白A的大肠杆菌菌株BL21/pET32a的构建用CaC12法将pET32a_P转化BL21/DE3，在含有氨苄青霉素的LB平板上筛选转化子，经质粒检测和酶切分析获得含有pET32a的重组转化子BL21/pET32a。实施例5、利用大肠杆菌工程菌BL21/pET32a生产重组蛋白A1)菌种的培养发酵挑取大肠杆菌工程菌BL21/pET32a，接种于LB培养基中，接种量1 2% V/V，于 30°C培养过夜，次日在无菌条件下将上述培养好的种子培养基按1 10-1 5接种于发酵培养基上，30°C发酵至0. D600达到0. 4 0. 8，升温至42°C诱导，3 5小时后离心收菌；取少量细胞加2X上样缓冲液，按标准做SDS-PAGE凝胶电泳，结果如说明书附图 2，经诱导的BL21/pET32a的碎菌后的上清在20kD的位置出现一条新的蛋白带(见图2泳道3)，转化PET32空载体的BL21/DE3菌和经诱导的BL21/pET32a的碎菌后的沉淀中不出现此带(见图2泳道2和4)，证明重组蛋自A已在BL21/pET32a中诱导可溶表达。2)表达的重组蛋白A的纯化将上述收集菌体用NaCl十磷酸盐缓冲液(pH7. 0-8. 0)悬浮，超声破碎，4°C离心， 收集上清，得粗提液。经SDS-PAGE电泳检测表明，用本法提取表达于大肠杆菌胞周质的重组蛋白A效果很好，粗提后大部分重组蛋白A被粗提，残存于菌体的量极微将粗提液进行Sephacryl 5200分子筛纯化，收集特征峰(第二洗脱峰)即为纯化的重组蛋白A，其纯度可达90%以上。实施例6、ELISA方法检测重组蛋白A与抗体结合活性的试验1)包被在96孔板中每孔包被重组蛋白A样品100ul，37°C，Ih ；2)封闭每孔以 IOOul 的的 BSA 封闭，37°C，lh ；3)加一抗每孔加入约IOOug人IgG抗体，37°C，Ih ；4)加二抗每孔加入约100 μ 1 1 1000辣根过氧化物酶标记抗体，37°C，Ih ；5)显色。经ELISA检测表明本发明提取的重组蛋白A与人IgG抗体结合活性强，每孔包被 4. 5ng重组蛋白A即可获得明显的检测信号，结果显示本发明提供的重组蛋白A可用于抗体的检测。实施例7、重组蛋白A琼脂糖凝胶5S CP的制备1、用环氧氯丙烷、氢氧化钠与琼脂糖(5%的交联琼脂糖凝胶)在水介质中进行反应，在30-60°C的温度下反应2-3小时，反应完后用蒸馏水清洗至中性后抽干；2、将上述产物与本发明的重组蛋白A在5_25°C温度下反应15_20小时，反应完后清洗再抽干，即得到重组蛋白A琼脂糖凝胶5S CP重组蛋白A琼脂糖凝胶5S CP具有以下特性1)特点基团脱落少，结合特异性强；2)配基密度 6mg重组蛋白A/ml ；3)吸附载量3 30mg 鼠 IgG2a/ml ；4)亲和介质的颗粒大小30-180 μ m ；5)最大流速250cm/h6)pH 范围2-11;7)保存温度4_8°C ；8)保存液体20%乙醇。如果待分离纯化的抗体与亲和层析介质间的吸附力比较弱，则可适当提高吸附缓冲液的PH值和盐浓度，即可获得较好的分离效果。实施例8、重组蛋白A琼脂糖凝胶5S CP从小鼠腹水中分离纯化IgG2a1、重组蛋白A琼脂糖凝胶5S CP装柱，1. 6 X 20cm，柱床体积为IOml ；2、用缓冲液A(20mM磷酸盐缓冲液，pH7. 4，即pH7. 4的PBS溶液。配制0. 2M NaH2P0419ml，0. 2M Na2HP048lml,NaCl 9g 加水至 1000ml)平衡 5-10 个床体积，流速为 Iml/ min ；3、将2ml小鼠腹水用缓冲液A稀释到20ml，0.45ym滤膜过滤，上样。流速为lml/ min ；4、用缓冲液A再洗5-10个床体积，流速为lml/min ；5、用缓冲液B (20mM柠檬酸缓冲液，ρΗ4· 0。配制柠檬酸2. Ig加水950ml，用5Μ NaOH调至pH 4. 0，加水至1000ml)洗脱，流速为lml/min，收集洗脱峰；6、用纯水流洗10个柱床体积，再用20%的乙醇流洗10个柱床体积，流速为2ml/ min，柱子置于4-8°C环境中保存；7、将分离纯化的IgG2a与对照品同时进行SDS-PAGE电泳分析；(柱子每使用几次后应该用以缓冲液C(0. 5M醋酸缓冲液，pH3. 0。配制0. 5M醋酸溶液用固体NaOH调至pH 3.0)流洗1次，以便将吸附更牢的蛋白去除)结果SDS-PAGE电泳分析结果见图3，泳道1为标准蛋白Marker，泳道2为腹水，泳道3 为本发明的重组蛋白A琼脂糖凝胶5S CP亲和介质所装的柱子的洗脱峰。泳道3中，上、下两条带分别是IgG2a的重链和轻链。试验结果表明了本发明的重组蛋白A琼脂糖凝胶5S CP亲和层析介质一步就可以得到纯度大于95%的IgG2a。实施例9、重组蛋白A葡聚糖凝胶的制备1、用环氧氯丙烷、氢氧化钠与葡聚糖凝胶在水介质中进行反应，在30-60°C的温度下反应2-3小时，反应完后用蒸馏水清洗至中性后抽干；2、将上述产物与本发明的重组蛋白A在5_25°C温度下反应15_20小时，反应完后清洗再抽干，即得到重组蛋白A葡聚糖凝胶。
重组蛋白A葡聚糖凝胶具有以下特性1)特点基团脱落少，结合特异性强；2)配基密度 6mg重组蛋白A/ml ；3)吸附载量3 30mg 鼠 IgG2a/ml ；4)亲和介质的颗粒大小20_130 μ m ；5)最大流速200cm/h6)pH 范围2-11;7)保存温度4_8°C ；8)保存液体20%乙醇。如果待分离纯化的抗体与亲和层析介质间的吸附力比较弱，则可适当提高吸附缓冲液的PH值和盐浓度，即可获得较好的分离效果。实施例10、重组蛋白A葡聚糖凝胶从小鼠腹水中分离纯化IgG2a1、重组蛋白A葡聚糖凝胶装柱，1. 6 X 20cm，柱床体积为IOml ；2、用缓冲液A(20mM磷酸盐缓冲液，pH7. 4，即pH7. 4的PBS溶液。配制0. 2M NaH2P0419ml，0. 2M Na2HP048lml,NaCl 9g 加水至 1000ml)平衡 5-10 个床体积，流速为 Iml/ min ；3、将2ml小鼠腹水用缓冲液A稀释到20ml，0.45ym滤膜过滤，上样。流速为lml/ min ；4、用缓冲液A再洗5-10个床体积，流速为lml/min ；5、用缓冲液B (20mM柠檬酸缓冲液，ρΗ4· 0。配制柠檬酸2. Ig加水950ml，用5Μ NaOH调至pH 4. 0，加水至1000ml)洗脱，流速为lml/min，收集洗脱峰；6、用纯水流洗10个柱床体积，再用20%的乙醇流洗10个柱床体积，流速为2ml/ min，柱子置于4-8°C环境中保存；7、将分离纯化的IgG2a与对照品同时进行SDS-PAGE电泳分析；(柱子每使用几次后应该用以缓冲液C(0. 5M醋酸缓冲液，pH3. 0。配制0. 5M醋酸溶液用固体NaOH调至pH 3.0)流洗1次，以便将吸附更牢的蛋白去除)结果SDS-PAGE电泳分析结果见图4，泳道1为标准蛋白Marker，泳道2为腹水，泳道3 为本发明的重组蛋白A葡聚糖凝胶亲和介质所装的柱子的洗脱峰。泳道3中，上、下两条带分别是IgG2a的重链和轻链，试验结果表明了本发明的重组蛋白A葡聚糖凝胶亲和层析介质一步就可以得到纯度大于95%的IgG2a。实施例11、重组蛋白A琼脂糖凝胶、葡聚糖凝胶及市售ProteinA Sepharose 4FastFl0W对人IgGl动态吸附载量的测定比较1、用缓冲液A(20mM磷酸盐缓冲液，pH7. 4，即pH7. 4的PBS溶液。配制0. 2M NaH2P0419ml，0. 2M Na2HP048lml, NaCl 9g 加水至 1000ml)平衡 5-10 个床体积，流速为 lml/ min ；2、已知浓度人IgGl (按中国发明专利01132225. X中公开的实施例得到)上样，流速为lml/min，至10%穿透时停止；3、根据样品浓度、上样体积及柱体积计算出10%穿透时各凝胶的动态吸附载量。
根据结果(见表1)可以判断，本专利提供的重组蛋白A琼脂糖凝胶及重组蛋白A 葡聚糖凝胶对人IgGl的动态吸附载量均高于市售ProteinA Sepharose 4Fast Flow0表1、各凝胶IgGl动态吸附载量比较
权利要求
1.一种重组蛋白A的制备方法，其特征在于，所述重组蛋白A的氨基酸序列如SEQ ID No. 1所示，所述方法为将含有编码重组蛋白A的基因的重组表达载体的重组菌株进行培养发酵使其高效表达重组蛋白A，再收集菌体，经分离纯化得到重组蛋白A产品。
2.如权利要求1所述的方法，其特征在于，所述重组蛋白A的核苷酸序列如SEQID NO. 2所示。
3.如权利要求1所述的方法，其特征在于，所述含有编码重组蛋白A的基因的重组表达载体含有SEQ ID NO. 2所示的核苷酸序列以及与该序列操作性相连的表达调控序列。
4.如权利要求3所述的方法，其特征在于，所述重组表达载体是pET32a-P。
5.如权利要求1所述的方法，其特征在于，所述重组菌株为大肠杆菌重组菌株。
6.如权利要求5所述的方法，其特征在于，所述大肠杆菌为大肠杆菌BL21/DE3。
7.如权利要求1所述的方法，其特征在于，所述重组菌株被含有编码重组蛋白A的基因的重组表达载体转化获得。
8.如权利要求1-7中任一项所述的方法，其特征在于，所述方法包括以下步骤1)构建含有所述重组蛋白A基因的表达载体；2)将步骤1)的表达载体转入大肠杆菌；3)培养步骤2)所得到的菌株，诱导表达重组蛋白A；和4)分离纯化得到所述重组蛋白A。
全文摘要
本发明提供了一种具有SEQ ID NO1所示的氨基酸序列的重组蛋白A的制备方法。使用本发明提供的方法制备获得的重组蛋白A可用于抗体检测、分离、纯化，并能与层析介质载体组成亲和层析介质。使用本发明提供的方法生产的重组蛋白A具有蛋白结合特异性强，亲和力高，纯化效率大大改善的优点，与市售的ProteinA Sepharose 4Fast Flow相比，其动态吸附载量明显提高。
文档编号C12R1/19GK102329840SQ20101022538
公开日2012年1月25日 申请日期2010年7月13日 优先权日2010年7月13日
发明者王皓, 胡辉, 谈珉 申请人:上海抗体药物国家工程研究中心有限公司