脂肪组织衍生的基质干细胞在治疗瘘中的用途的制作方法

专利名称：脂肪组织衍生的基质干细胞在治疗瘘中的用途的制作方法
脂肪组织衍生的基质干细胞在治疗瘘中的用途 相关申请参考本申请是2005年2月25日提交的美国专利申请11/065,461的部 分继续申请以及2005年2月14日提交的美国专利申请11/056,241的 部分继续申请，在此将这些申请的内容整体通过参考明确并入本文。发明背景一般而言，瘘是正常情况下不连接的器官或脉管之间的异常连接 或通道。瘘可以发生在身体的多个部位。例如，痿的种类，以它们在 身体中发生的区域命名，包括肛门直肠痿或肛瘘或粪瘘(直肠或其它肛 门直肠部位与皮肤表面之间)、动静脉瘘或A-V瘘(动脉和静脉之间)、 胆瘘(胆管和皮肤表面之间，通常由胆嚢手术造成)、子宫颈瘘(子宫颈 中的异常开口)、鼻脑脊液瘘(颅内腔和鼻旁窦之间)、肠肠瘘(肠的两个 部位之间)、肠皮瘘(肠和皮肤表面之间，即从十二指肠或空肠或回肠 起)、肠阴道瘘(肠和阴道之间)、胃瘘(胃和皮肤表面之间)、子宫腹膜 瘘(子宫和腹膜腔之间)、外淋巴瘘(中耳和内耳之间的膜之间的裂口 )、 肺动静脉瘘(肺的动脉和静脉之间，导致血液分流)、直肠阴道瘘(直肠 和阴道之间)、脐瘘(脐和肠之间)、气管食管瘘(呼吸和饲管之间)以及 膀胱阴道瘘(膀胱和阴道之间)。瘘的病因包括创伤、内科治疗的并发 症和疾病。瘘的治疗随病因和瘘的程度而变，但是一般涉及外科手术。多种 手术方法被经常使用，最经常的是瘘道切开术、放置泄液线(穿过瘘的 通道的绳索用于保持其开放而引流)、或直肠内瓣方法(其中健康组织 被拉过来置于瘘的内侧以使粪便或其它物质不会再感染该通道)。对于 肛门直肠瘘的手术并非没有副作用，包括复发、再感染和失禁。诸如克罗恩病和溃疡性结肠炎的炎性肠病为肛门直肠瘘、肠肠瘘、 肠皮肤瘘的主要病因。在克罗恩病中所报道的痿发生率为17%至50%。对克罗恩病患者中瘘的治疗仍代表了极有挑战性的问题，因为很多这 类瘘对可用的疗法没有反应。这类瘘以及它们的复发是非常让人痛苦 的并发症，它们显著地降低了受累患者的生活质量。内科疗法的最新改进(例如用Infliximab⑧治疗)和专业的手术处理已经减少了对复杂手 术的需要。然而，许多患者未被治愈。痿治愈失败可能是由于受克罗 恩病影响的组织的非最佳质量。实际上，克罗恩瘘为一些最坏的可能 条件下的伤口愈合提供了模式系统。瘘的另 一主因是诸如由强奸或由分娩期间持续损伤引起的对阴道 和膀胱和/或直肠的创伤，导致直肠阴道瘘和膀胱阴道瘘。在发展中国 家每年大约有100,000妇女在梗阻性分娩期间遭受这类瘘(也称为产科 瘘)。梗阻性分娩期间，婴儿的头对母亲骨盆的压力切断了对该区域脆 弱组织的血液供应。死组织脱落，该妇女留下膀胱阴道瘘，有时还有 直肠阴道瘘。这种孔导致永久性的尿和/或粪便失禁。联合国人口基金 会(UNFPA)估计产科瘘受害者的全球人数超过两百万。这个计算结果 可能是显著的低估。首次手术修补的成功率在88%至93%，但随后的 尝试的成功率会降低。因此，大比例的妇女具有不能通过手术修复的 产科瘘。亟需瘘的新疗法。发明内容除了其它方面以外，本发明提供新的含有脂肪组织衍生的基质干 细胞的组合物。本文描述的含有脂肪组织衍生的基质干细胞的组合物 具有独特的表型，并表现出比以前描述的脂肪组织衍生的基质干细胞 组合物更好的表型同质性，因此使得它们比以前描述的组合物更适合 用于治疗瘘和伤口 。含有脂肪组织衍生的基质干细胞的组合物可以与 溶液或其它物质一起配制，以用作药物或医疗用具，例如缝线或粘合 剂。此外，还提供采用脂肪组织衍生的基质干细胞治疗瘘和伤口的新 方法以及用于实施该方法的试剂盒。本发明的这些实施方案、其它实施方案以及它们的特点和特征将 会由于以下的说明、附图和权利要求而显而易见。附图简要说明图l显示了由实施例1的方法分离的细胞通过免疫荧光染色的表征结果。免疫阳性细胞的频率表示如下-，小于5%; +/-， 6-15%; +, 16-50%; ++，51-85%;以及+++, 86陽100%。 P，传代次数。图2显示了脂肪组织衍生的基质干细胞的间接免疫荧光表征。来 自患者#001的细胞在植入no.6后传代6细胞。蓝色表示DAPI染色的 核。(A)CD90;(B)c-Kit;(C)波形蛋白。图3总结了采用本发明的一些方法和组合物获得的临床结果。F， 女性；M,男性；NI,未植入；NA，未分析。图4显示了脂抽吸物衍生的细胞在不同FBS浓度(0.5、2.5和10%， 如所指明的)时的生长曲线。人滑液成纤维细胞在5%或10。/。FBS存在 下培养。以595nm处的吸光度显示细胞数目士SD。数据来自三个重复 孔的有代表性试验。图5显示在靠近缝合的内开口处注射细胞后直肠粘膜中的泡。图6显示注射细胞之前(A)和8周后(B)瘘的照片。图7A显示了荧光免疫细胞计量的直方图，其对应于从参与本项 研究的患者的吸脂样品分离的细胞在传代6次时获得的表面标志物谱 (CD3、 CD9、 CDIO、 CDllb、 CD13、 CD14、 CD15、 CD16、 CD18、 CD19、 CD28、 CD29、 CD31、 CD34、 CD36、 CD38、 CD44、 CD45、 CD49a、 CD49b、 CD49c、 CD49d、 CD49e和CD49f)。图7B显示了荧光免疫细胞计量的直方图，其对应于从参与本项 研究的患者的吸脂样品分离的细胞在传代6次时获得的表面标志物镨 (CD50、 CD51、 CD54、 CD55、 CD56、 CD58、 CD59、 CD61、 CD62E、 CD62L、 CD62P、 CD90、 CD95、 CD102、 CD104、 CD105、 CD106、 CD133、 CD166、 glicoforina、 02微球蛋白、HLAI、 HLAII和NGFR)。发明详细说明 1.定义用在本文时，以下的术语和短语应具有以下指出的意义。除非另有说明，在此使用的所有科技术语都与本发明所属领域普通技术人员 所通常理解的意义相同。冠词"a"和"an"指该冠词语法对象的一个或多个(即至少一个)。 举例而言，"an element"指一个或多个元件。"脂肪组织"指任何脂肪组织。脂肪组织可以是衍生自皮下、网 膜/内脏、乳房、生殖腺或其它脂肪组织部位的棕色或者白色脂肪组织。 优选地，该脂肪组织为皮下白色脂肪组织。这类细胞可以包含原代细 胞培养物或永生细胞系。该脂肪组织可以来自任何具有脂肪组织的器 官。优选地，该脂肪组织是哺乳动物脂肪组织，最优选的脂肪组织是 人脂肪组织。方便的脂肪组织源来自吸脂手术，但是脂肪组织源或分 离脂肪组织的方法对本发明并不关4建。如果基质细胞为向个体自体移 植所需，则脂肪组织分离自该个体。"脂肪组织衍生的基质干细胞"指源自脂肪组织的间充质干细胞。术语"粘合剂"指将表面联合或结合在一起的任何物质，例如胶。术语"细胞组合物"指细胞制剂，该制剂除了细胞之外还可以包 括非细胞组分，例如细胞培养基，如蛋白、氨基酸、核酸、核苦酸、 辅酶、抗氧化剂、金属等等。此外该细胞组合物可具有不影响该细胞 组分生长或存活力的组分，但是它们用于将细胞以特定形式提供，例 如，作为聚合物基质用于包嚢或药物制剂。术语"培养(culture)"指培养基中的细胞、生物体、多细胞实体或 组织的任何生长。术语"培养(culturing)"指实现这种生长的任何方法， 可以包括多个步骤。术语"进一步培养(furtherculturing)"指培养细胞、 生物体、多细胞实体或组织至某个生长阶段，然后用另一培养方法使 所述细胞、生物体、多细胞实体或组织达到另一生长阶段。"细胞培 养，，指细胞在体外生长。在这种培养中，细胞增殖，但是它们本身不 组织成组织。"组织培养，，指组织的维持或生长，例如原始器官或成 体器官的体外外植体，以便保持其结构和功能。"单层培养，，指这样 的培养细胞在适合的培养基中增殖，但主要是相互附着并附着到基 底。此外，"悬浮培养"指细胞增殖但悬浮在合适培养基中的培养。类似地，"连续流动培养"指在新鲜培养基的连续流中培养细胞或外 植体以维持细胞生长，例如存活力。术语"条件培养基，，指在与培养 细胞接触一段时间以便培养基被改变而包括某些由所述细胞产生并分 泌到培养物中的旁分泌和/或自分泌因子后得到的上清液，例如不含培 养细胞/组织。"会合培养"指所有细胞都接触因而培养容器的整个表 面都被覆盖的细胞培养，其意味着细胞已经达到了它们的最大密度， 但是会合不一定指分裂停滞或群体在体积上不会增加。术语"培养基(culture medium)"或"培养基(medium)"在本领域 中是普遍接受的， 一般指用于培养活细胞的任何物质或制剂。当结合 细胞培养使用时，术语"培养基"包括围绕细胞的环境组分。培养基 可以是固体、液体、气体或多相和物质的混合物。培养基包括液体生 长培养基以及不支持细胞生长的液体培养基。培养基还包括凝胶状培 养基，如琼脂、琼脂糖、明胶和胶原基质。示例性的气体培养基包括 生长在培养亚或其它固体或半固体支持物上的细胞暴露在其中的气 相。术语"培养基"还指打算用在细胞培养中的物质，即使其还没有 和细胞接触。换言之，为细菌培养制备的富营养液是培养基。类似地，为"粉末培养基"。"确定成分培养基"指由化学上明确(通常纯化的) 成分组成的培养基。"确定成分培养基"不含有未充分表征的生物提 取物，例如酵母提取物和牛肉汁。"丰富培养基"包括被设计用来支 持特定物种的大多数或所有活体形式的生长的培养基。丰富培养基经 常包括复杂的生物提取物。"适合于高密度培养物的生长的培养基"为 任何在其它条件(例如温度和氧转移率)允许的情况下使得细胞培养物 OD600达到3或以上的培养基。术语"基础培养基"指促进不需要任 何特殊营养补充的多种微生物的生长的培养基。大多数基础培养基通 常包括四个基本的化学组氨基酸、碳水化合物、无机盐和维生素。 基础培养基通常用作更复杂培养基的基础，向其中加入补充物，例如 血清、緩沖剂、生长因子、脂质等等。基础培养基的例子包括但不限 于Eagles基本培养基、基本必需i咅养基(Minimum Essential Medium)、 Dulbecco改良的Eagle培养基、Medium 199、 Nutrient Mixtures Ham'sF-10 and Ham's F-12、 Mc Coy's 5A、 Dulbecco's MEM/F-I 2、 RPMI 1640 和Iscove改良的Dulbecco培养基(IMDM)。术语"包含(comprise)"和"包含(comprising)"在开》文式包4舌的意 义上使用，意味着其它的元素可以被包括进来。术语"分化"指表达标志物的细胞的形成，这些标志物已知与更 特化的和更接近成为不能进一 步分裂或分化的终末分化细胞有关。例 如，在胰脏方面，可在含有升高比例的/3上皮细胞的岛样细胞簇的产 生中看到分化，其产生更大量的胰岛素。术语"进一步"或"更"分 化指与从其培养而来的细胞相比，更特化和更接近成为不能进一步分 裂或分化的终末分化细胞的细胞。术语"最终分化"指已经成为不能 进一步分裂或分化的终末分化细胞的细胞。术语"瘘"指任何异常的通道或连通或连接，通常是两内脏器官 之间或从内脏器官到身体表面。痿的实例包括但不限于肛门直肠痿或 肛瘘或粪瘘、动静脉瘘或A-V瘘、胆瘘、子宫颈瘘、鼻脑脊液瘘、肠 肠瘘、肠皮瘘、肠阴道瘘、胃瘘、子宫腹膜瘘外淋巴、肺动静脉瘘、 直肠阴道瘘、脐瘘、气管食管瘘以及膀胱阴道瘘。术语"包括"用在本文中是指"包括但不限于"。"包括"和"包 括但不限于"可互换使用。"标志物"指这样的生物分子，其存在、浓度、活性或磷酸化状 态可以被;险测并用于鉴定细胞表型。"贴片(patch)"指用来覆盖或保护创伤或其它伤口的敷料或覆盖物。待用本发明方法治疗的"患者"、"个体"或"宿主，，可以指人 或非人动物。用在本文的短语"药物上可接受的"指那些化合物、材料、组合 物和/或剂型，在合理的医学判断范围内，它们适合用于与人和动物的 组织接触，而没有过度的毒性、刺激、过敏反应或其它问题或并发症， 与合理的利益/风险比相称。用在本文时，短语"药物可接受的载体"指药物可接受的材料、 组合物或介质，例如液体或固体填充剂、稀释剂、赋形剂或溶剂包嚢材料，涉及将题述化合物从身体的一个器官或部分携带至或输送至身 体的另一器官或部分。每种载体就与制剂的其它成分相容而言必须是 "可接受的"并且对患者无害。术语"表型"指可观测到的细胞特征， 例如大小、形态、蛋白表达等。术语"祖细胞"指有能力产生比其分化程度更高的后代的细胞。 例如，该术语可以指未分化的细胞或未分化至最终分化程度的细胞， 其能够增殖并产生更多能够产生大量母细胞的祖细胞，母细胞能够接 着产生分化的或可分化的子代细胞。在优选的实施方案中，术语祖细 胞指一般化的母细胞，其后代(子代)通过分化(例如通过获得完全个体 特征)通常向多个方向特化，如同在胚细胞和组织的逐步多样化中所发 生的。细胞分化是复杂的过程，通常通过许多次细胞分裂发生。分化 的细胞可能衍生自多能细胞，该多能细胞自身衍生自多能细胞，等等。 尽管这些多能细胞的每一种都可能被认为是干细胞，但是每一种可以 产生的细胞类型可以有相当大的变化。
一些分化的细胞也具有产生具 有更大发育潜力的细胞的能力。这种能力可以是天然的，或者在用多 种因子处理后人工诱导。就此定义而言，干细胞也可以是祖细胞以及 更接近终末分化细胞的前体。"增殖"指细胞数量的增加。"增殖(proliferating)"和"增殖 (proliferation)"指细胞经历有丝分裂。用在本文时，术语"溶液"包括药物可接受的载体或稀释剂，在 其中本发明的细胞保持存活力。就脂肪组织衍生的干细胞群而言，术语"基本上纯的，，指相对于 组成全部细胞群的脂肪组织衍生的基质干细胞来说，脂肪组织衍生的 干细胞群为至少约75%、优选至少约85%、更优选至少约90%、最优 选至少约95%纯。换言之，术语"基本上纯的"指这样的本发明的脂 肪组织衍生的基质干细胞群，其在随后的培养和扩增之前的最初的未 扩增和分离群中含有少于约20%、更优选少于约10%、最优选少于约 5%的谱系定型细胞。用在本文时，"支持物"指可以用作脂肪组织衍生的基质干细胞 的生长基础或基质的任何装置或材料。术语"缝线"指能用于缝合伤口的线、纤维或其它扎紧材料。 用在本文时，"治疗"指修复瘘或伤口以及防止瘘或伤口的恶化 或复发。"治疗剂(therapeutic agent)"或"治疗剂(therapeutic)"指能够对 宿主具有期望的生物学效果的试剂。化疗剂和遗传毒剂为治疗剂的实 例，它们普遍已知为化学来源而非生物来源，或者分别通过特定的作 用机制产生治疗效果。生物来源的治疗剂的实例包括生长因子、激素 和细胞因子。现有技术中已知多治疗剂，且可以通过它们的效果而 被鉴定。某些治疗剂能够调节细胞增殖和分化。实例包括化疗核苷酸、 药物、激素、非特异性(非抗体)蛋白、寡核苷酸(如结合靶核酸序列(例 如mRNA序列)的反义寡核苷酸)、肽以及模拟肽。"伤口"是物理手段引起的对组织的损伤或损害，导致组织的正 常连续性的中断。2.新的含有脂肪组织衍生的基质干细胞的组合物一方面，本发明涉及含有脂肪组织衍生的基质干细胞的组合物，其具有某些特征，例如特定表型。例如，本发明细胞组合物中该脂肪组织衍生的基质干细胞可以通过细胞表面标志物表达、大小、葡萄糖消耗、乳酸盐产生和细胞产量/存活力来表征。本发明的另一方面关注含有脂肪组织衍生的基质干细胞的组合物，其包括作为细胞组分的具有特定表型的脂肪组织衍生的基质干细胞或其后代的基本上纯的制剂。本发明的含有脂肪组织衍生的基质干细胞的组合物不仅包括基本上纯的祖细胞群，还可以包括细胞培养组分，例如包括氨基酸、金属、辅酶因子以及其它小基质细胞群的培养基，例如，该小基质细胞群中 的一些可以通过本发明细胞的随后分化而产生。此外，其它的非细胞组分可包括在特定环境下使得细胞组分适合于支持物的那些物质，例 如植入，例如连续培养，或者使得细胞组分适合于用作生物材料或药 物组合物的那些物质。在某些实施方案中，含有脂肪组织衍生的基质干细胞的组合物通 过部分4中和例证中描述的培养方法来产生。在一个实施方案中，提供了含有脂肪组织衍生的基质干细胞的组合物，其中至少约50%、至少约60%、至少约70%、至少约80%、至 少约85%、至少约90%、至少约95%、或优选至少约96%、 97%、 98% 或99。/。的干细胞表达CD9、 CDIO、 CD 13、 CD29、 CD44、 CD49A、 CD51、 CD54、 CD55、 CD58、 CD59、 CD90和/或CD105标志物。在 含有脂肪组织衍生的基质干细胞的组合物的某些实施方案中，少于约 15%、约10%、约5%以及优选约4%、 3%、 2%或1%的干细胞表达 CD34CDllb、 CD14、 CD15、 CD16、 CD31、 CD34、 CD45、 CD49f、 CD102、 C画4、 CD106和/或CD133标志物。在另一实施方案中，提供了含有脂肪组织衍生的基质干细胞的组 合物，其中至少约50%、至少约60%、至少约70%、至少约80%、至 少约85%、至少约90%、至少约95%、或优选至少约96%、 97%、 98% 或99。/。的干细胞表达c-Kit、波形蛋白和/或CD90标志物。在含有脂肪 组织衍生的基质干细胞的组合物的某些实施方案中，少于约15%、约 10%、约5%以及优选约4%、 3%、 2%或1%的干细胞表达CD34、因 子VIII、 a肌动蛋白、结蛋白(desmin)、 S-100和/或角蛋白标志物。还 提供表达c-Kit、波形蛋白和CD90标志物但不表达CD34、因子VIII、 a肌动蛋白、结蛋白、S-100和角蛋白标志物的脂肪组织衍生的基质干 细胞群。通过表面标志物对细胞群的表型表征可以通过对细胞的单独染色 (流式细胞术)或通过对该细胞群的原位组织学切割来进行，根据标准 方法进行。通过抗体来确定表面标志物的表达i普，免疫表型表征，可 以是采用标记的抗体直接的，或采用针对细胞标志物的初级特异抗体 的第二标记抗体间接的，由此实现信号放大。另一方面，存在或不存 在对抗体的结合可以通过不同方法来确定，包括但不限于免疫荧光显 微技术和放射显影。类似地，有可能通过流式细胞术对抗体结合水平 进行监测，其中流式细胞术是使得荧光染料的水平与存在于细胞表面 特异结合标记抗体的抗原的量相关的技术。细胞群上一系列表面标志 物的差异表达提供了鉴定和分离所述群的方法。在某些实施方案中，含有脂肪组织衍生的基质干细胞的组合物为脂肪组织衍生的基质干细胞在各种溶液或材料中的悬浮液，例如用作 药物或生物材料，如下文进一步详述的。在一个实施方案中，该细胞 组合物包含题述脂肪组织衍生的基质干细胞的林格氏溶液悬浮液和HAS。在另一实施方案中，该细胞组合物包含题述脂肪组织衍生的基 质干细胞在例如聚合物、胶、凝胶等材料中的悬浮液。这类悬浮液例 如可以通过从培养基沉淀出题述脂肪组织衍生的基质干细胞并将它们 在合适的溶液或材料中重悬浮而制得。例如可以通过离心、过滤、超 滤等将细胞沉淀和/或交换出培养基。题述脂肪组织衍生的基质干细胞在包含题述脂肪组织衍生的基质 干细胞的组合物中的浓度可以是至少约5 x 1(^细胞/mL、至少约10 x 106细胞/mL、至少约20 x 106细胞/mL、至少约30 x 106细胞/mL或至 少约40x 1()6细胞/mL。相应地，本发明的另 一方面涉及题述脂肪组织衍生的基质干细胞 的子代，例如从脂肪组织衍生的基质干细胞衍生的那些细胞。这些子 代可包括脂肪组织衍生的基质干细胞的后代以及镨系定型细胞，其中 谱系定型细胞通过在将题述脂肪组织衍生的基质干细胞从外植体分离 后诱导其分化产生，例如体外诱导。在某些实施方案中，在亲本群传 代约2代、约3代、约4代、约5代、约6代、约7代、约8代、约 9代、或约IO代后获得子代细胞。但是，子代细胞可以在从亲本群传 代任何次后获得。在某些实施方案中，本发明的含有脂肪组织衍生的基质干细胞的 组合物将作为药物组合物的一部分提供，例如无菌、不存在不想要的 病毒、细菌和其它病原体以及无热原的制剂。即，对于向人给药，该 题述组合物应该满足无菌、无热原以及一般的安全和纯度标准，如 FDA生物标准部门所要求的。在某些实施方案中，这类含有脂肪组织衍生的基质干细胞的组合 物可用于移植进动物，优选哺乳动物，并更优选人。所述细胞可优选 相对于移植宿主而言是自体的，但也可为同种异体的或异种的。由于 在获得足够的自体干细胞方面有困难，来自同种异体供者的脂肪组织 衍生的基质干细胞组成了用于治疗用途的有价值的另 一干细胞源。现有技术中已知骨髓基质干细胞和脂肪组织衍生基质细胞在体外不会引 起同种异体淋巴细胞的应答，因此，来自供者的同种异体脂肪组织衍生的基质干细胞理论上可用于任何患者，不考虑MHC不相容。在本文有详细说明的将含有脂肪组织衍生的基质干细胞的组合物向个体，尤其是人类个体，给药的方法包括将细胞注射或植入个体中 的靶部位，细胞可被插入递送装置中，该装置通过注射或植入有助于 将细胞引入该个体。这类递送装置包括用于将细胞和液体注射进接受 个体体内的管，如导管。在优选的实施方案中，所述管还具有针头， 例如注射器，通过其可将含有脂肪组织衍生的基质干细胞的组合物在 期望部位引入个体。含有脂肪组织衍生的基质干细胞的组合物可以不 同形式被插入到这种递送装置，如注射器中。例如，当容纳在这种递 送装置中时，含有脂肪组织衍生的基质干细胞的组合物包括悬浮在溶 液或包埋在支持基质中的脂肪组织衍生的基质干细胞的组合物。药物可接受的载体和稀释剂包括盐水、緩沖水溶液、溶剂和/或分 散介质。这些载体和稀释剂的使用是现有技术中已知的。该溶液优选 是无菌的且流动性达到易于注射。优选地，所述溶液在制备和储存条 件下是稳定的，并通过使用例如对羟基苯甲酸酯类、氯丁醇、苯酚、 抗坏血酸、硫柳汞等来防止微生物如细菌和真菌的污染作用。是本发 明的脂肪组织衍生的基质干细胞组合物的溶液可通过将本文描述的脂 肪组织衍生的基质干细胞并入药物可接受的载体或稀释剂以及，如果 需要的话，以上列举的其它成分中，随后过滤灭菌而制备。可用作药物可接受载体的材料和溶液的一些实例包括(l)糖，如 乳糖、葡萄糖和蔗糖；(2)淀粉，如玉米淀粉和马铃薯淀粉；(3)纤维素 及其衍生物，如羧曱基纤维素钠、乙基纤维素和醋酸纤维素；(4)西 黄蓍胶粉；。)麦芽；(6)明胶；C0滑石；(8)赋形剂，如可可脂和栓剂 蜡；(9)油类，如花生油、棉籽油、红花油、芝麻油、橄榄油、玉米油 和大豆油；(IO)二醇类，例如丙二醇；(ll)多元醇，如甘油、山梨醇、 甘露醇和聚乙二醇；(12)酯类，如油酸乙酯和月桂酸乙酯；(13)琼脂； (14)緩冲剂，例如氢氧化镁和氢氧化铝；(15)褐藻酸；(16)无热原水； (17)等张盐水；(18)林格溶液；(19)乙醇；(20)pH緩冲溶液；(21)聚酯、聚碳酸脂和/或聚酐；以及(22)其它在药物制剂中采用的无毒的可配伍 物质。在某些实施方案中，含有脂肪组织衍生的基质干细胞的组合物还 包含粘合剂。在某些实施方案中，该粘合剂为基于纤维蛋白的粘合剂， 例如纤维蛋白凝胶或纤维蛋白胶或基于纤维蛋白的聚合物或粘合剂， 或其它组织粘合剂或手术胶，例如氰基丙烯酸酯、胶原、凝血酶和聚 乙二醇。其它可用的材料包括但不限于藻酸4丐，琼脂糖，I、 II、 IV型 或其它亚型胶原，聚乳酸/聚乙醇酸、透明质酸衍生物或其它材料(Perka C. et al. (2000) J. Biomed. Mater. Res. 49:305-311; Sechriest VF. et al. (2000) J. Biomed. Mater. Res. 49:534-541; Chu CR et al. C1995) J. Biomed. Mater. Res. 29:1147-1154; Hendrickson DA et al. (1994) Orthop. Res. 12:485-497)。在其它实施方案中，所述粘合剂为液体绷带，其中 该方法的含有脂肪组织衍生的基质干细胞的组合物与液体绷带材料混 合。"液体绷带"为包含化合物如聚合材料的溶液，其被喷雾器或刷 子涂到伤口上，然后通过蒸发除去溶剂以在伤口上提供保护性膜。本文还提供用于制备含有脂肪组织衍生的基质干细胞的组合物的 方法，该组合物包含用于》务复瘘或伤口的化合物或材料。在一个实施 方案中，制备这类材料的方法包括将题述细胞组合物的脂肪组织衍生 的基质干细胞与该材料一起悬浮。在一个实施方案中，脂肪组织衍生 的基质干细胞从培养基被沉淀出并被重悬浮在纤维蛋白胶或凝胶中。 纤维蛋白胶和凝胶和其它基于纤维蛋白的聚合物和粘合剂在现有技术 中是公知的，并可购得。例如，可购得的纤维蛋白胶试剂盒为Tissucol Duo 2.0，其它的可购得的纤维蛋白密封剂包括Crossea倾、TISSEEL VH Fibrin Sealant⑧等。本发明含有脂肪组织衍生的基质干细胞的组合物也可以用于包被 支持物，如医学装置。例如，该支持物可以为缝线、线、半月板修复 装置、铆钉、大头钉、吻合器、螺丝钉、骨板、骨板系统、外科网、 贴片(例如修复贴片、心血管贴片或心包贴片)、悬带、矫形针、粘合 屏障(adhesionbarrier)、支架、引导的组织修复/再生装置、关节软骨修 复装置、神经导管、腱修复装置、房中隔缺损修复装置、膨胀或填充剂、血管瓣、骨髓支架、半月板再生装置、韧带和腱移植物、眼细胞 植入物、脊柱融合笼、皮肤替代物、硬脊膜替代物、骨移植物替代物、骨桩(bone dowel)、伤口辅料、胶、聚合物或止血钳。可在其中并入或嵌入含有脂肪组织衍生的基质干细胞的组合物或 可在其上包被含有脂肪组织衍生的基质干细胞的组合物的支持物包括 基质(matrice)，其为接受者相容的并被降解成对接受者无害的产物。 天然和/或合成生物可降解基质为这类基质的实例。天然生物可降解的 基质包括血浆凝块和胶原基质，该血浆凝块例如来自哺乳动物。合成 的可生物降解基质包括合成聚合物，例如聚酐、聚酯和聚乳酸。合成 聚合物的其它实例和将细胞并入或嵌入这些基质的方法是现有技术中 已知的。参见，例如美国专利4,298,002和美国专利5,308，701。这些 基质在体内为脆弱细胞提供支持和保护。所述支持物可用本领域技术人员已知的任何方式以细胞包被，例 如通过浸泡、喷雾、涂抹、印刻等。在一个实施方案中，所述支持物为缝线、吻合器、可吸收线、不 可吸收线、天然线、合成线、单丝线或多丝线(也称为编织物)。制备 包被有脂肪组织衍生的基质干细胞的缝线和其它用于封闭伤口的支持 物的优选方法公开在2005年2月14日递交的美国专利申请11/056,241 "缝合用生物材料，，中，将其整体通过参考并入本文。本文公开的含 有脂肪组织衍生的基质干细胞的组合物代表了新的可用于美国专利申 请11/056,241公开的方法的組合物。此外，在任何含有脂肪组织衍生的基质干细胞的组合物中，至少 一种治疗剂可以纟皮并入该组合物。例如，组合物可以含有止痛剂来协 助治疗瘘或伤口部位的炎症或疼痛，或者含有抗感染剂来防止用该组 合物治疗部位的感染。镇痛剂，如非甾体类抗炎药、阿片激动剂和水杨酸盐；抗感染剂，如 驱虫剂、抗厌氧菌剂、抗生素、氨基糖苷类抗生素、抗真菌抗生素、 头孢菌素抗生素、大环内酯类抗生素、多种^-内酰胺类抗生素、青霉 素抗生素、喹诺酮抗生素、氨苯磺胺抗生素、四环素抗生素、抗分枝杆菌剂、抗结核抗分枝杆菌剂、抗原生动物剂、抗疾抗原生动物剂、 抗病毒剂、抗逆转录病毒剂、杀芥螨剂、抗炎剂、皮质类固醇抗炎剂、 止痒剂/局部麻醉剂、局部抗感染剂、抗真菌局部抗感染剂、抗病毒局部抗感染剂；电解质和肾脏试剂，如酸化剂、碱化剂、利尿剂、碳酸 酐酶抑制剂利尿剂、髓袢利尿剂、渗透压性利尿剂、保钾利尿剂、p塞 嗪类利尿剂、电解质替代物和排尿酸剂；酶，例如胰酶和血栓溶解酶； 胃肠剂，例如止泻药、止吐药、胃肠抗炎剂、水杨酸盐胃肠抗炎剂、 抗酸抗溃疡剂、胃酸泵抑制剂抗溃疡剂、胃粘膜抗溃疡剂、H2阻断剂 抗溃疡剂、胆石溶解剂、消化剂、催吐药、緩泻药、多库酯钠胶嚢剂 (stool softener)以及促运动剂；全身麻醉剂，例如吸入麻醉剂、面代吸 入麻醉剂、静脉内麻醉剂、巴比妥酸盐静脉内麻醉剂、苯并二氮卓类 静脉内麻醉剂、以及阿片激动剂静脉内麻醉剂；激素和激素调节剂， 如堕胎药、肾上腺药、皮质类固醇肾上腺药、雄激素、抗雄激素；免 疫生物学剂，如免疫球蛋白、免疫抑制剂、类毒素和疫苗；局部麻醉 剂，例如酰胺局部麻醉剂和酯局部麻醉剂；肌骨骼剂，如抗通风抗盐 剂、皮质类固醇抗炎剂、金化合物抗炎剂、免疫抑制抗炎剂、非甾体 类抗炎药(NSAID)、水杨酸盐抗炎剂、矿物；维生素，例如维生素A、 维生素B、维生素C、维生素D、维生素E和维生素K。以上类别中优选的有用治疗剂种类包括(l)通用镇痛剂，例如利 多卡因或其衍生物，以及非甾体抗炎药物(NSAIDs)镇痛药，包括双氯 芬酸、布洛芬、酮基布洛芬和萘普生；(2)阿片激动剂麻醉剂，例如可 待因、芬太尼、氢吗啡酮和吗啡；(3)水杨酸盐镇痛剂，例如阿司匹林 (ASA)(肠溶衣包被ASA); (4)H广阻断剂抗组胺剂，例如克立马丁和特 非那定；(5)抗感染剂，例如莫匹罗星；(6)抗厌氧菌抗感染剂，例如氯 霉素和林大霉素；(7)抗真菌抗生素抗感染剂，例如两性霉素b、克霉 唑、氟康唑和酮康唑；(8)大环内酯类抗生素抗感染剂，如阿齐红霉素 和乙琥红霉素；(9)多种iS-内酰胺类抗生素抗感染剂，例如氨曲南和亚 胺培南；(10)青霉素抗生素抗感染剂，例如萘夫西林、苯唑西林、青 霉素G和青霉素V; (11)喹诺酮抗生素抗感染剂，例如环丙沙星和氟 哌酸；(12)四环素抗生素抗感染剂，如脱氧土霉素、米诺环素和四环素；(13)抗结核抗分枝杆菌抗感染剂，如异烟肼(INH)和利福平；(14) 抗原生动物抗感染剂，例如阿托伐醌和氨苯-风；(15)抗疾抗原生动物 抗感染剂，例如氯喹和乙胺嘧啶；(16)抗逆转录病毒抗抗感染剂，例 如利托那韦和齐多夫定；(17)抗病毒抗感染剂，例如阿昔洛维、更昔 洛韦、干扰素a和金刚乙胺；(18)抗真菌局部抗感染剂，如两性霉素B， 克霉唑、咪康唑和制霉素；(19)抗病毒局部抗感染剂，例如阿昔洛维； (20)电解质和肾脏试剂，例如乳果糖；(21)髓袢利尿剂，例如利尿磺胺； (22)保钾利尿剂，例如三氨蝶呤；(23)噻嗪类利尿剂，例如氢氯噻"秦 (HCTZ); (24)排尿酸剂，例如丙磺舒；(25)酶，例如RNA酶和DNA 酶；(26)止吐药，例如丙氯拉嗪；(27)水杨酸盐胃肠抗炎剂，例如柳氮 磺吡啶；(28)胃酸泵抑制剂抗溃疡剂，例如奥美拉唑；(29)112-阻断剂 抗溃疡剂，例如西米替丁、法莫替丁、尼扎替丁和雷尼替丁； (30)消 化剂，例如胰脂酶；(31)促运动剂，例如乙琥红霉素；(32)酯局部麻醉 剂，例如苯佐卡因和普鲁卡因；(33)肌骨骼皮质类固醇抗炎剂，例如 倍氯米松、倍他米松、可的松、地塞米松、氢化可的松和泼尼松；(34) 肌骨骼抗炎免疫抑制剂，例如硫唑嘌呤、环磷酰胺和氨曱喋呤；(35) 肌骨骼非甾体抗炎药物(NSAIDs)，例如双氯芬酸、布洛芬、酮基布洛 芬、酮咯酸(ketorlac)和曱氧萘丙酸；(36)矿物，例如铁、钓和镁；(37) 维生素B化合物，例如氰钴维他命(维生素B^)和烟酸(维生素B3); (38) 维生素C化合物，例如抗坏血酸；以及(39)维生素D化合物，例如4丐 三醇。在某些实施方案中，所述治疗剂可以是生长因子或其它影响细胞 分化和/或增殖的分子。诱导最终分化状态的生长因子在现有技术中是 公知的，可以选自已经被证实诱导最终分化状态的任何这种因子。用 在本文描述的方法中的生长因子在一些实施方案中可以是天然产生的 生长因子的变体或片段。例如，可以通过进行保守氨基酸改变产生变 体，并在上述功能测定之一或其它现有技术中已知的功能测定中测试 得到的变体。保守氨基酸置换指具有类似侧链的残基的可互换性。例 如，具有脂肪族侧链的一组氨基酸为甘氨酸、丙氨酸、缬氨酸、亮氨 酸和异亮氨酸；具有脂肪族羟基侧链的一组氨基酸为丝氨酸和苏氨酸；具有含酰胺侧链的一组氨基酸为天冬酰胺和谷氨酰胺；具有芳香族侧 链的一组氨基酸为苯丙氨酸、酪氨酸和色氨酸；具有碱性侧链的一组 氨基酸为赖氨酸、精氨酸和组氨酸；以及具有含硫侧链的一组氨基酸 为半胱氨酸和曱硫氨酸。优选的保守氨基酸置换组为缬氨酸-亮氨酸 -异亮氨酸、苯丙氨酸-酪氨酸、赖氨酸-精氨酸、丙氨酸-缬氨酸和天冬 酰胺-谷氨酰胺。本领域技术人员应理解的是，多肽生长因子的变体或片段可以采 用常规技术产生，例如诱变，包括产生离散的点突变或者通过截短。 例如，突变可产生变体，与其来源多肽生长因子的生物活性相比，该 变体保留了基本上相同的生物活性或仅仅部分生物活性。3.制备新的含有脂肪组织衍生的基质干细胞的组合物的方法还提供制备包含在上述含有脂肪组织衍生的基质干细胞的组合物 中的脂肪组织衍生的基质干细胞的方法。在一个实施方案中，方法包 括(a)从个体收集脂肪组织；(b)通过酶消化获得细胞悬浮液；(c)沉淀 细胞悬浮液并在培养基中重悬浮细胞；(d)培养细胞至少约10天；以 及(g)至少传代两次扩张细胞。优选地，脂肪组织衍生的基质干细胞分离自个体脂肪组织，该个 体是最终的含有脂肪组织衍生的基质干细胞的组合物要被引入的个 体。但是，基质干细胞也可以分离自与该个体相同或不同种的任何生 物体。任何具有脂肪组织的生物体均可以是潜在候选者。优选地，该 生物体为哺乳动物，更优选地，该生物体为人。在某些实施方案中，所述细胞被培养至少约15天、至少约20天、 至少约25天或至少约30天。优选将细胞在培养中扩张更长时间以改 善细胞群中细胞表型的同质性。在某些实施方案中，所述细胞在培养中扩张传代至少三次或"传 代至少三次，，。在另一实施方案中，细胞传代至少四次、至少五次、 至少六次、至少七次、至少八次、至少九次或至少十次。优选地，细 胞传代超过三次以改善细胞群中细胞表型的同质性。实际上，细胞可 以在培养中无限扩展，只要细胞表型的同质性被改善以及分化能力被保持。细胞可以通过现有技术中任何已知用于培养干细胞的技术来培养。对各种培养技术的讨论以及它们的扩大可以在Freshney, R丄, Cw/^/re o/^lw/ma/ Ce〃s:爿JVfawwa/ 。/5(XS7'c r(gc/jm々we(动4勿纟田月包培养基 本技术手册)，々/ 五A"o"， Wiley-Liss 2000中找到。在某些实施方案中， 细胞通过单层培养来培养。在一个实施方案中，细胞如下文实施例1 所述进行培养和传代。可以使用任何能够在组织培养中支持基质细胞的培养基。支持成 纤维细胞生长的培养基制剂包括但不限于Dulbecco改良的Eagle'培养 基(DMEM)、 a改良的基本必需培养基(.alpha.MEM)、以及Roswell Park Memorial Institute Media 1640 (RPMI Media 1640)等。通常，向上述培 养基中加入0至20。/。胎牛血清(FBS)或1-20%马血清以支持基质细胞和 /或软骨细胞的生长。但是，如果FBS中基质细胞和软骨细胞所必需的 生长因子、细胞因子和激素被鉴定出来并以合适的浓度提供在培养基 中，则也可使用确定成分培养基。可在本发明方法中使用的培养基可 以含有一种或多种感兴趣的化合物，包括但不限于用于基质细胞的抗 生素促有丝分裂或分化的化合物。所述细胞培养在31摄氏度和37摄 氏度之间的加湿孵育箱中。二氧化碳含量维持在2%至10%，氧含量 在1%至22%,细胞可以被保留在这种环境中多至4周。可补充到培养基中的抗生素包括但不限于青霉素和链霉素。在化 学上成分确定培养基中青霉素的浓度为约10单位/ml至约200单位 /ml。在化学上成分确定培养基中链霉素的浓度为约10/xg/ml至约200 Mg/ml。采用质粒、病毒或其它载体策略，脂肪组织衍生的基质干细胞可 以被目的核酸稳定或瞬时转染或转导。目的核酸包括但不限于这样的 核酸，其编码的基因产物增加例如肠壁或阴道壁的待修复组织类型中 存在的细胞外基质成分的产生。可用通过氯化铯带或其它方式纯化的病毒载体(腺病毒、逆转录病 毒、腺相关病毒或其它载体)以10:1至2000:1的感染复数(病毒单位 细胞)将携带调节基因的病毒载体转导进基质干细胞。细胞在无血清或含血清培养基中、在不存在或存在诸如聚乙烯亚胺或Lipofectamine.TM的阳离子去垢剂时暴露于病毒1-24小时(Byk T. et al. (1998) Human Gene Therapy 9:2493-2502; Sommer B. et al. (1999) Calcif. Tissue Int. 64:45-49)。/DNA复合物,例如描述在美国专利5,578,475; 5,627,175; 5，705，308; 5,744,335; 5,976,567; 6,020,202;和6,051,429中的那些。适合的试剂 包括lipofectamine,聚阳离子脂2,3-二油酰氧基-N-[2(精胺羧基酰胺) 乙基]-N，N-二曱基-l-丙铵三氟乙酸盐(DOSPA)(化学文摘登记名 N-[2-(2，5-双[(3-氨基丙基)氨基]-l-oxpentyU氨基)乙基]-N,N-二曱基 -2,3-双(9-十八烯基氧基)-1-丙铵三氟乙酸盐)与中性脂二油酰磷脂酰乙 醇胺(DOPE)以3:1 (w/w)的比例在膜过滤水中的脂质体制剂。实例为 制剂Lipofectamine 2000TM (可从Gibco/Life Technologies得到，# 11668019)。其它的试剂包括FuGENETM 6转染试剂(非脂质体形式 的脂类和其它化合物在80%乙醇中的混合物，可从Roche Diagnostics Corp.得到，弁1814443);和LipoTAXITM转染试剂(来自Invitrogen Corp.的脂质制剂，#204110)。转化干细胞可通过电穿孔进行，例如 M. L. Roach and J. D. McNeish (2002) Methods in Mol. Biol. 185: 1中所 描述的。用于产生带有稳定遗传改变的干细胞的适合的病毒载体系统 可以基于腺病毒和逆转录病毒，并且可以采用可购得的病毒组件制备。 将带有调节基因的质粒载体转染进基质干细胞中可通过采用磷酸 4丐DNA沉淀或阳离子去垢剂方法(Lipofectamine.TM., DOTAP)被引入 单层培养细胞或者通过直接将质粒DNA载体并入生物相容性聚合物 而被引入三维培养细胞中(Bonadio J. et al. (1999) Nat. Med. 5:753-759)。为了示踪和检测这些基因编码的功能蛋白，病毒或质粒DNA载 体将含有容易检测的标志物基因，例如绿色荧光蛋白或/3半乳糖苷酶， 这二者都可通过组织化学手段示踪。4.治疗瘘和伤口的方法本发明的另 一 方面涉及采用脂肪组织衍生的基质干细胞治疗瘘和 伤口的新方法。在优选的实施方案中，脂肪组织衍生的基质干细胞源 自待治疗个体的脂肪组织。在其它优选的实施方案中，脂肪组织衍生 的基质干细胞构成本文所述的含有脂肪组织衍生的基质干细胞的组合 物。但是，脂肪组织衍生的基质干细胞的其它制剂可以用于本文所述方法，例如描述在美国专利6,777,231和6,555,374以及2005年2月 25日递交的美国专利申请11/065,461 "Identification and Isolation of Multipotent Cells From Non-Osteochondral Mesenchymal Tissue(从非骨 软骨间充质组织鉴定和分离多能干细胞)"中的那些。在一个实施方案中，在个体中治疗瘘的方法包括(a)用缝线封闭 内孔和(b)向封闭缝合的内孔递送至少约10x 106、至少约20xl06、至 少约30x 106或至少约40x 106脂肪组织衍生的基质干细胞，例如处于 本发明含有脂肪组织衍生的基质干细胞的组合物中。在某些实施方案 中，例如其中第一次递送的细胞不足，该方法还可以包括(c)向封闭 缝合的内孔递送第二剂至少约20x 106、至少约30xl06、或至少约40 x 106脂肪组织衍生的基质干细胞，例如处于本发明含有脂肪组织衍生 的基质干细胞的组合物中。在另一实施方案中，用在该方法中的含有脂肪组织衍生的基质干 细^^的组合物中至少约50%、至少约60%、至少约70%、至少约80%、 至少约85%、至少约90%、至少约95%或优选至少约96%、 97%、 98% 或99Q/o的干细胞表达CD9、 CD10、 CD13、 CD29、 CD44、 CD49A、 CD51、 CD54、 CD55、 CD58、 CD59、 CD90和/或CD105标志物。在另一实施方案中，用在该方法中的含有脂肪组织衍生的基质干 细胞的组合物中至少约50%、至少约60%、至少约70%、至少约80%、 至少约85%、至少约90%、至少约95%或优选至少约96%、 97%、 98% 或99%的干细胞表达c-Kit、波形蛋白和/或CD90标志物。将本发明的细胞向个体尤其是人类个体给药的常用方法， 一些方 法在本文有详细"i兌明，包括将细胞注射或植入个体靶部位，本发明的 细胞可被插入递送装置，该装置通过注射或植入有助于将细胞引入该 个体。这类递送装置包括用于将细胞和液体注射进接受个体体内的管，如导管。在优选的实施方案中，所述管还具有针头，例如注射器，通 过其本发明的细胞可在期望部位被引入个体。本发明的细胞可以不同 形式被插入这种递送装置，如注射器中。例如，当容纳在这种递送装 置中时，所述细胞被悬浮在溶液或包埋在支持基质中。药物可接受的 载体和稀释剂包括盐水、緩冲水溶液、溶剂和/或分散介质。这些载体和稀释剂的使用是现有技术中已知的。该溶液优选是无菌的且流动性 达到易于注射。优选地，所述溶液在制备和储存条件下是稳定的，并 通过使用例如对羟基苯曱酸酯类、氯丁醇、苯酚、抗坏血酸、硫柳汞 等来防止微生物如细菌和真菌的污染作用。本发明的溶液可通过将本 文描述的祖细胞并入药物可接受的载体或稀释剂以及，如果需要的话， 以上列举的其它成分中，随后过滤灭菌而制备。在其它实施方案中，治疗个体中瘘的方法包括(a)用包含例如来 自本发明含有脂肪组织衍生的基质干细胞的组合物的脂肪组织衍生的 基质干细胞的缝线封闭内孔。这类被含有题述脂肪组织衍生的基质干 细胞的组合物中的细胞包被的缝线在2005年2月14日递交的美国专 利申请11/056,241中有详细描述，将其通过参考并入本文。在一些实施方案中所述方法还可以包括(d)深入刮除至少一个瘘 道和(e)用材料填充所述瘘道。在某些实施方案中，所述方法还可以包 括向所述材料递送至少约10 x 106脂肪组织衍生的基质千细胞，例如 来自题述细胞组合物。优选地，所述材料为基于纤维蛋白的聚合物或 粘合剂，例如纤维蛋白胶或凝胶。在某些实施方案中，至少约10xl06 脂肪组织衍生的基质千细胞已经被包裹在所述材料中，例如使得该材 料包含含有脂肪组织衍生的基质干细胞的组合物。在另一实施方案中，治疗个体中瘘的方法包括(i) 深入刮除至少一个瘘道(ii) 用缝线封闭刮除瘘道的内孔(iii) 向所述封闭缝合的内孔递送至少约10x106、至少约20xl06、 至少约30xl06、或至少约40x 1()S脂肪组织书f生的基质千细胞，例如 处于本发明含有脂肪组织衍生的基质干细胞的组合物中。在某些实施方案中，例如，其中第一次递送的细胞不足，该方法还包括(iv)向所述封闭缝合的内孔递送第二剂至少约20x 106、至少约30 x 106、或至少约40 x 106脂肪组织衍生的基质干细胞，例如处于本发 明含有脂肪组织衍生的基质干细胞的组合物中。步骤(i)优选通过深入刮除所有的待治疗瘘道来进行，例如，刮除 针被引入瘘道，并通过刮除瘘道壁而产生诱导出血以获得天然纤维蛋 白，其将填充该瘘道。本发明人最近的临床研究提示通过这种刮除方 法产生的天然纤维蛋白相对于使用人工纤维蛋白密封剂是优选的，因 而在本发明方法的优选实施方案中待治疗瘘道不会填充这种材料。步骤(iv)优选通过沿瘘道注射进瘘道壁局部递送细胞，例如含有脂 肪组织衍生的基质干细胞的组合物来进行。例如，沿3cm的瘘道两次 注射一千万细胞。本发明的方法可被用于治疗任何瘘，包括但不限于肛门直肠瘘或 肛瘘或粪瘘、动静脉瘘或A-V瘘、胆瘘、子宫颈瘘、鼻脑脊液瘘、肠 肠瘘、肠皮瘘、肠阴道瘘、胃瘘、子宫腹膜瘘外淋巴、肺动静脉瘘、 直肠阴道瘘、脐瘘、气管食管瘘以及膀胱阴道瘘。优选地，所述方法 可用于治疗肠瘘，例如连接肠与其自身或另一器官的瘘，例如直肠阴 道瘘、肠肠瘘、肠皮瘘和肠阴道瘘。在另一优选的实施方案中，所述 方法可用于治疗阴道或子宫瘘，例如连接阴道或子宫与其自身或另一 器官的瘘，例如子宫颈瘘、直肠阴道瘘、肠阴道瘘和膀胱阴道瘘。可以通过现有技术中任何已知的方法如切口、导管等接近瘘，用 于手术修复。在另一实施方案中，治疗患者中伤口的方法包括(a)用缝线封闭 伤口和(b)向封闭缝合的伤口递送至少约10x 106、至少约20xl06、至 少约30 x 106或至少约40 x 106脂肪组织衍生的基质干细胞，例如处于 含有脂肪组织衍生的基质干细胞的组合物中。在某些实施方案中，例 如其中第一次递送的细胞不足，该方法还可以包括(c)向封闭缝合的 伤口递送第二剂至少约20 x 106细胞、至少约30xl06、或至少约40x 106脂肪组织衍生的基质干细胞，例如处于含有脂肪组织衍生的基质干 细胞的组合物中。在其它实施方案中，伤口可以用本发明的含有脂肪组织衍生的基质干细胞的组合物填充，例如， 一剂包裹在材料中的至少约10 x 106脂肪组织衍生的基质干细胞，例如使得所述材料包含该 细胞组合物，其中所述材料例如为粘合剂或胶。在其它实施方案中， 治疗个体伤口的方法包括(a)用包含例如来自题述含有脂肪组织衍生 的基质干细胞的组合物的脂肪组织衍生的基质干细胞的缝线封闭伤 口 。这类被来自题述含有脂肪组织衍生的基质干细胞的组合物中的细 胞包被的缝线在2005年2月14日递交的美国专利申请11/056,241中 有详细描述，将其通过参考并入本文。上述方法还可以包括向待治疗个体给予治疗剂，例如全身性地或 在缝合部位的局部。在某些实施方案中，脂肪组织衍生的基质干细胞 被配制在含有脂肪组织衍生的基质干细胞的组合物中，该组合物含有 如上所述的治疗剂。在其它实施方案中，治疗剂被单独给药，例如与 所述方法同时，在进行所述方法之前，或在进行所述方法之后。在一 些实施方案中，在对个体进行所述方法之前、之间和之后向所述个体 给予治疗剂。示例性治疗剂在上文有述。在优选的实施方案中，向所 述个体给予用于治疗克罗恩病的治疗剂。示例性的克罗恩病治疗剂为 抗炎剂，例如包含马沙拉。秦(mesalamine)的试剂，免疫抑制剂，如6-巯基噪呤和石危唑噤呤；生物试剂，如英夫利昔单抗(Remicade⑧)、抗生 素和止泻药例如地芬诺酯、氯苯哌酰胺和可待因。在使用同种异体干细胞的实施方案中，可能需要支持性治疗。例 如，根据现有技术中已知的方法，可能会在治疗之前、之中和/或之后 给予免疫抑制剂以防止GVHD。在给药之前，还可以根据现有技术中免疫反应。任何治疗剂的计量都将随患者的症状、年龄和体重，待治疗或预 防的病症的性质和严重性，给药途径，以及试剂的形式而变化。任何 题述制剂都可以以单次剂量或以多次剂量给药。治疗剂的剂量可通过 本领域技术人员已知的或本文所说明的技术容易地确定。此外，可以 给予多种治疗剂的混合物或者在分开的组合物中给予多种治疗剂。治疗剂可以口服给药、胃肠外给药、通过吸入喷雾、局部地、经直肠、经鼻、含服、经阴道或经植入储库给药。用在本文时，术语胃 肠外包括皮下、静脉内、肌内、关节内、滑膜内、胸骨内、鞘膜内、 损伤内以及颅内注射或输注技术。任何特定治疗剂的对给定患者产生最有效治疗的精确给药时间和 量将取决于特定化合物的活性、药物动力学和生物利用度，患者的生 理条件(包括年龄、性别、疾病类型和阶段、总体健康状况、对给定剂 量和药物类型的应答情况)、给药途径等等。这里提供的指导可以用于 优化治疗，例如，确定给药的最佳时间和/或量，其仅需要由监测个体 并调整剂量和/或时间构成的常规试验。在个体治疗期间，患者的健康可以通过在24小时中的预定时间测 量一个或多个相关指标来监测。可以根据这种监测的结果优化治疗， 包括补充物、量、给药时间以及制剂。可以通过测量相同参数对患者 进行定期再评估来确定改善程度，第一次这种再评估常常在从治疗开 始的第四周结束时进行，随后的再评估在治疗期间每四至八周进行， 随后每三月进行一次。治疗可以持续几个月或甚至几年，最少一月是 对人进行治疗的典型长度。可以基于这些再评估进行对治疗剂的给药 量的调整以及可能的对给药时间的调整。治疗可以以少于化合物最佳剂量的较小剂量开始。之后，通过小 增量增加剂量，直至获得最佳的治疗效果。几种治疗剂的组合使用可以减少任何单个组分所需的剂量，因为 不同组分的作用起始和持续时间可以是互补的。在这种联合治疗中， 不同活性试剂可以一起递送或分开递送并在一天中同时或在不同时间 递送。题述化合物的毒性和疗效可以通过标准药物方法在细胞培养物或 试验动物中确定，例如确定LDso和ED5。。显示大治疗指lt的组合物 是优选的。尽管可以使用显示毒副作用的化合物，但是应注意设计将 治疗剂靶向期望位点的递送系统以减少副作用。从细胞培养测定和动物试验获得的数据可以用于形成人用剂量的 范围。任何治疗剂或其中任何组分的剂量优选位于包括ED5o的循环浓 度的范围内，几乎没有或没有毒性。在此范围内剂量可以随釆用的剂型和所用的给药途径而变化。对于本发明的治疗剂，治疗有效剂量可 以最初从细胞培养测定评估。可以在动物模型中形成剂量以实现包括ICso(即，实现对症状的最大抑制的 一半的测试化合物浓度)的循环血浆 浓度范围，如在细胞培养中所确定的。这些信息可以用于更精确地确 定人体内的有用剂量。例如，可以通过高效液相色镨测量血浆中的水平。5.试剂盒在其它实施方案中，本发明关注试剂盒，其包括含有脂肪组织衍 生的基质干细胞的组合物和任选地关于其使用的说明书。包括本发明 药物组合物和生物材料的试剂盒也位于本发明范围内。试剂盒组分可 以包装为用于手动或部分或全部自动实施前述方法。这类试剂盒可以 具有多种用途，例如包括治疗、修复、制备生物材料和其它应用。例证本发明已经被概要说明，并将通过参考以下实施例更容易被理解， 包括这些实施例仅用于解释本发明的某些方面和实施方案，无意限制 本发明。实施例1:从脂抽吸物制备具有改善的同质性的干细胞在局部麻醉和全身镇静情况下，通过吸脂作用获得脂肪组织。将 空的钝尖插管经小切口(直径小于0.5 cm)导入皮下空间。轻轻抽吸， 插管在脂肪组织腹壁区室移动以便机械破碎脂肪组织。将盐水溶液和 血管收缩剂肾上腺素注射进脂肪组织区室以使血液丧失减至最低。依 此方式，从每个待治疗患者获得80至100ml粗脂抽吸物。将粗脂抽吸物用无菌磷酸盐緩冲盐水(PBS; Gibco BRL， Paisley, Scotland, UK)充分洗涤以除去血细胞、盐水和局部麻醉剂。在37。C下 用II型胶原酶(0.075%; Gibco BRL)溶液在平衡盐溶液(5 mg/ml; Sigma， St. Louis, USA)中消化细胞外基质30分钟，以释放细胞组分。然后， 通过加入等体积的含有10。/。胎牛血清(FBS; Gibco BRL)的Dulbecco改良Eagle培养基(DMEM; Gibco BRL)使胶原酶失活。以250 x g离心细 胞悬浮液10分钟。将细胞重悬在0.16 M NH4C1中，让其在室温(RT) 下静置IO分钟以溶解红细胞。混合物以250 xg离心，并将细胞重悬 在加有10% FBS和1。/。氨千青霉素/链霉素混合物(Gibco， BRL)的 DMEM中，随后以10-30 x 103细胞/cm2的浓度接种在100-mm组织培 养皿中。将细胞在37。C、 5%(:02下培养24小时。接着，将培养皿用PBS 洗涤以除去非粘附细胞和细胞碎片。将细胞在相同培养基和相同条件 下维持培养，直至它们达到大约80%汇合，其中每3至4天更换一次 培养基。然后将细胞用胰蛋白酶-EDTA (Gibco BRL)以1:3的稀释度 传代，这对应大约5-6x 103细胞/ 112的细胞密度。对于移植，我们使 用传代1和3次之间的细胞，其中已经传代两次以上的细胞是优选的， 以便分离高同质性的细胞群。采用传代1至9次的细胞进行细胞表征。实施例2,对来自脂抽吸物的、具有改善的同质性的干细胞的表征为了通过免疫荧光染色表征细胞，将细胞以低密度接种在24孔板 中玻璃盖玻片上加有10% FBS的DMEM中。对于免疫组化研究，以 PBS洗涤细胞并在-20。C在丙酮中固定10分钟。对于a肌动蛋白的染 色，将细胞在室温下在4%多聚曱醛中固定10分钟。用含有4%山羊 血清和0.1% TritonX-100的PBS封闭后，将细胞在4°C与所指明稀释 度的针对以下细胞标志物的第一抗体孵育过夜[(i)ce肌动蛋白；Dako, Glostrup， Denmark; 1/50; (ii)波形蛋白；Sigma, St. Louis, USA; 1/200; (iii) CD 90; CYMBUS, Biotechnology LTD, Chandlers Ford， Hants, UK; 1/50; (iv)因子VIII; Dako; 1/100; (v) CD 34; Chemicon， CA， USA; 1/100; (vi) c-Kit; Chemicon; 1/100; (vii)结蛋白；Dako; 1/100; (viii)细胞 角蛋白；Dako; 1/100 and (ix) S-100; Dako; 1/50]。然后用适当的异辟u氰 酸荧光素(FITC)偶联的或四曱基若丹明异硫氰酸盐酸盐(TRITC)偶联 的第二抗体(Sigma;l/50)在室温下孵育细胞45分钟。对于阴性对照， 我们省略了第一抗体。细胞核用4',6-二脒基-2-苯基吲哚(DAPI)复染。 然后将细月包包埋进Mobiglow (MoBiTec, Gottingen, Germany)并用落射荧光显微镜Eclipse TE300 (Nikon, Tokyo, Japan)观察。在每种情况下， 我们确定了不同视野中免疫阳性细胞的数量并将它们与染色的细胞核 ft目进行比4交。随才几选择的一见野通过Spotl相才几(Diagnostic Instruments Inc., Tampa, FL, USA)输出到计算机(Macintosh G3; Apple Computer Ink" Cupertino, Ca， USA)。人动月永平滑肌细胞、人脐静月永内皮细月包 (HUVEC)和人滑液成纤维细胞被用作各种抗体免疫染色的阳性对照。在传第1代，高比例(90-95%)的脂肪衍生基质干细胞表达波形蛋 白， 一种间充质细胞骨架细胞的标志物(

图1)。波形蛋白的表达维持在 相同水平，直至并包括传第9代。但是其它标志物的水平随时间下降。 例如，传第l代中在17。/。LPA衍生细胞中发现的a肌动蛋白在传第7 代中未再发现。内皮细胞的标志物血管性血友病因子(因子VIII)和也 在内皮细胞表面发现的CD34仅在传第1代至传第3代被检测到(分别 为7%和12%的免疫阳性细胞)。相反，细胞增殖标志物c-Kit(CD 117) 的表达随时间增加，从传第4代起有99%的免疫阳性细胞(图2)。起初 在约80%的LPA衍生细胞中表达的成纤维细胞标志物CD90从第6次 传代起在99%的细胞中发现(图3)。任何时间在任何LPA衍生细胞中 都没有观察到神经外胚层标志物S100或外胚层标志物角蛋白的表达。 当传代次数增加时观察到的标志物变化表明所获得的细胞制剂的同质 寸生i曽力口。为了对细胞生长进行定量，将细胞以5 x 103细胞/ 112的浓度接种 在24孔板中。在细胞附着到基底后(3小时)，用补充了 1%抗生素和 0.5%、 2%、 5%或10% FBS的DMEM更换培养基。作为测试每批血 清的阳性对照，也培养人滑液成纤维细胞并确定它们的生长速率。每 两天更换一次培养基。以24小时的间隔，将细胞用1%戊二醛固定并 确定每孔的细胞数目，通过在结晶紫核染色后监测595 nm处的吸光度 来进行。构建了标准曲线来建立每孔细胞数量和595 nm处的吸光度的 关系(r、0.99)。从所有7个脂抽吸物(LPAs)成功分离并培养了有存活力的脂肪组 织衍生基质细胞。这些细胞在培养中生长并以7至10天的间隔传代。 在一些情况下，细胞^皮冷藏保存，在植入前融化。脂肪组织衍生的基质干细胞(ADSC)的生长速率取决于血清浓度，在5%和10。/。FBS之间 增殖最大(图4)。在这些血清浓度下的平均细胞群倍增时间是37.6士0.6 小时，这与相同条件下培养的人滑液成纤维细胞的细胞群倍增时间无 显著差异(35.6士1.4小时；p>0.05; t检验;结果来自三个独立实验)。为了以更加标准化和较少主观性的方式分析细胞，使细胞也接受 荧光激活细胞分选(FACS)分析。通常，流式细胞分析允许通过抗体才全 测表面抗原，这些抗体直接(共价地)或者间接地(第二荧光标记抗体) 连接到荧光标记。另一方面，上述免疫组化分析需要透化细胞并随后 用抗体染色。因此，后者需要依据靶蛋白和抗体的单独优化方法。此 外，由于细胞膜的透化，不可能区分内部(非膜结合的)和细胞外标志 蛋白。即，采用免疫组化分析，可能知道蛋白标志物是否被表达，但 是不可能区分是在细胞表面还是在细胞内表达。用在免疫细胞计量中的检测表面抗原的方法是标准化的，仅需要 适当的阴性对照。此外，FACS分析使得能够评估阳性细胞(表达表面 抗原的细胞)百分比和表达水平(一个细胞上有很少或许多表面抗原)。 釆用免疫组化时这些评估仅是主观性的，并随不同实验变化，但这不 发生在FACS分析中。所述细胞的这类免疫表型表征可以在新鲜分离的细胞上进行，以 及在培养一段时间后进行，例如在培养的第7天、培养4周后和培养 3个月后。在不同时间进行细胞标志物的分析使得能够评估培养期间 表型的同质性。在2005年2月25日递交的美国专利申请11/065,461 中详细地描述了这种分析的实例和数据，证实在0至3个月的培养期 间从得自3个健康供者的样品中获得的表型，通过参考将其并入本文。通过上述方法分离后，在功能上对来自一个患者的脂肪组织衍生 的基质干细胞就一 系列表面标志物的存在/不存在进行了表征。为此， 通过流式细胞术监测了以下表面标志物的表达整合素CDllb， CD18, CD29, CD49a, CD49b, CD49d, CD49e, CD49f， CD51，CD61， CD 104。造血标志物CD3， CD9, CD10, CD13, CD16， CD14, CD19, CD28, CD34, CD38， CD45， CD90, CD133, glicoforine。生长因子受体CD105，NGFR。细胞外基质受体CD15， CD31, CD44, CD50， CD54， CD62E, CD62L， CD62P, CD102, CD106, CD146, CD166。其它CD36， CD55, CD56， CD58, CD59, CD95， HLA-I， HLA-II， j82-微球蛋白。通过胰蛋白酶的温和消化收集待表征的细胞、用PBS洗涤并在 4°C用针对每一个待分析表面标志物的荧光素(FITC)或藻红蛋白(PE) 标记的抗体标记物孵育30分钟。洗涤细胞标志物并立即釆用Epics-XL 细胞计数器(Coulter)进行分析。作为对照，使用以FITC或PE标记的 对应同种型的非特异抗体染色的细胞。从对表面标志物表达i普的分析(图7A/7B),用于确定哪些标志物定 义了细胞群并能够使其相对于其它细胞类型被鉴别和区分的标准如 下1. 抛弃实验中在样品间或在培养期间随时间变化的标志物，该实 验为在2005年2月25日递交的美国专利申请11/065,461中用健康供 者的脂肪组织衍生的基质干细胞进行的实验。2. 选择作为它们生物学相关性函数的标志物，抛弃表征特定细胞 类型的标志物(例如，CD3是淋巴细胞的专有标志物)。采用这个标准，多能干细胞群^皮表征为CD9+， CD10+, CD13+, CD29+， CD44+， CD49A+， CD51+， CD54+, CD55+, CD58+， CD59+， CD90+和CD105+阳性；并缺乏CDllb, CD14， CD15， CD16, CD31, CD34, CD45, CD49f, CD102, CD104, CD106和CD133的表达。实施例3:包含纤維蛋白胶的干细胞制剂用于治疗瘘对于临床用途，如上制备的细胞可以在传代3次或更少次数后使 用(图3),但是如上所述优选在传代两次或更多次后使用，以便提供具 有更高同质性的细胞制剂。用于临床用途的细胞培养物在37。C下胰蛋 白酶消化3分钟。通过加入加有FBS的DMEM终止胰蛋白酶消化， 并将悬浮液以110 x g离心5分钟。在PBS中洗涤细胞，将悬浮液以 150 x g再离心5分钟。细胞以3至30 x106细胞/ml重悬于1至2 ml的林格乳酸盐溶液，并置于适合的注射器中。可以任选地向林格乳酸盐溶液中加入人血清白蛋白(HSA)。在某些情况下，在合并纤维蛋白胶试剂盒(Tissuco1⑧Duo 2.0; Baxter, Madrid, Spain)的两组分之前，将一半的细胞重悬浮于该试剂盒 的凝血酶组分中，目的是改善瘘道的密闭。使用纤维蛋白胶填充瘘道 口在现有技术中是已知的；但是其作为瘘的单独治疗不是有效的。向 本文所述的含有脂肪组织衍生的基质干细胞的组合物中添加纤维蛋白 胶是用于将细胞保留在局部，并且我们观察到细胞在纤维蛋白胶和凝 胶中生长良好。实施例4:改善的手术方法以采用来自脂抽吸物的干细胞制剂修复瘘 我们进行了釆用上述脂肪组织基质干细胞组合物治疗克罗恩瘘的 I期临床试验，其设计用来测试自体干细胞移植的可行性和安全性。该 方案在2002年4月12日得到La Paz Hospital的临床试验和伦理委员 会的批准，并形成了详细的知情同意表用于患者签字。在整个临床试 验期间伦理委员会一直被告知研究进度。方法根据以下选择标准选择患者年龄超过18岁；在试验前至少5 年诊断出克罗恩病；存在一个或多个复杂克罗恩瘘(肠皮瘘、上括约肌 瘘和/或直肠阴道瘘)，其已经对内科治疗无反应并且被常规手术不成 功的治疗至少两次；同意参加，签署知情同意表。淘汰标准如下没 有达到选择标准；精神残疾；太瘦；对局部麻醉过每文；之前诊断出癌 症；以及AIDS。5名患者(编号001-005)参加了这项研究。三名男性和两名女性， 平均年龄是35.1 ±2.4岁(范围31.2至37.5岁)。进行了 9次细胞植入 直肠阴道瘘中三次；肠皮瘘中5次(一个患者四个不同的瘘)；上括约 肌肛周痿中l次。所有的肠皮瘘具有低流动，少于每天50cc，并处于 腹壁中(表l)。没有患者在该过程中同时用完全胃肠外营养、Remicaid 或奥曲肽治疗。由于在第一次吸脂后，没有干细胞在冷藏保存中存活，患者001和002需要两次吸脂过程。由于培养细胞的细菌污染， 一名患者被排除在外。我们用第三次 传代或更早的自体脂肪组织衍生的基质干细胞(ADSC)接种四个患者 中的9个瘘。8个接种的瘘每周观察，持续至少8周。在第8周结束 时，在6个瘘中，外部开口被上皮细胞覆盖，因此这些瘘被认为治愈 (75%)。在另两个瘘中，外部开口仅不完全封闭，排出的液流减少(没 有治愈；25%)。在随访期结束时(至少6个月，不超过两年)，没有在任 何患者中观察到副作用。对于肠皮瘘，所有的瘘道都被深入刮除。对于直肠阴道瘘，我们 采用了阴道途径，分离后阴道壁。缺口被完全分开并用3/0可吸收缝 线封闭直肠开口。直肠粘膜已经被克罗恩病破坏，极其脆弱。对于缸 周瘘，主瘘道被取出核心，直肠孔用3/0可吸收缝线通过硬化粘膜封 闭。对于肠皮瘘，我们利用针将细胞注射进瘘道壁。对于直肠阴道瘘 和肛周瘘，我们将细胞注射进直肠粘膜，接近缝合的内部开口。所有 情况下，注射后我们都观察到注射区域上的液体填充泡(图5)。注射的 细胞数量为3至30 x106，这取决于培养细胞的生长情况(图3)。从制备接种物开始到注射结束的时间在所有情况下都少于90分 钟。对于肠皮瘘，用纤维蛋白胶填充瘘道，然后缝合皮肤。对于直肠 阴道瘘，构建了前徙阴道瓣。当检查到副瘘道时，也用纤维蛋白胶填 充。手术后没有使用绷带。在该过程结束12小时后开始液体摄入，固 体食物在随后的6小时后摄入。手术后的1至3天，解散患者，在门 -珍部定时随访。获得两个组织病理学样品。 一个样品(患者号002)从肠皮瘘(植入 #2后7个月和植入#3后IO天)的区域获得。另一个样品(患者号001) 在第一次植入后l年，(植入#1)，在与植入#6有关的手术过程期间从 直肠阴道壁获得。将样品包埋进石蜡，切片，用苏木精和伊红染色， 并评估。手术后每周定期随访，持续8周。当外部开口的总体上皮形成在8周后是明显的时，则认为患者治愈，与之前的观察相独立。8周后， 每月随访，持续至少6个月但不超过两年。结果这项研究包括5名患者，进行了 7次吸脂(图3)。在植入过程中将 患者003号从这项试验中排除，因为发现培养的脂提取物细胞被革兰 氏阳性细菌污染。细菌被鉴定为OeAoWa jcflw"/weo/j;"ca。将患者002 的肠皮瘘从研究中排除，因为对导致极性脓毒症的新膀胱肠瘘进行了 紧急腹部手术。剖腹术需要切除植入区域。因而，这种情况下我们无 法坚持最小8周的随访安排。用传代3次或更少次的ADSC接种四名患者的9个瘘(图3)。 8个 瘘被认为适合保留在这项研究中，并随访至少8周(图3)。在6个瘘中， 在第8周时外部开口已形成上皮，这些瘘被认为治愈(75%)(图6)。另 两个在外部开口仅有不完全封闭，排出流量减小，如患者所报告的 (25%;没有治愈;图3)。注射的细胞数量或培养时间和过程的成功没有 直接关系。患者性别或年龄与治愈也没有直接关系。我们已经进行的 随后研究表明最初的20乂106细胞的剂量是合适的。我们已经确定在第 一剂失败时可以使用第二剂40xl0"田胞。优选更大量的细胞，因为我 们已经观察到更大量的细胞在组织修复方面有更好的疗效。手术和植入过程在所有9个治疗的瘘中没有其它技术困难。在研 究的任何病例中都没有观察到直接副反应(例如，过敏反应、变应性反 应)。在手术后的7个月(肠皮瘘)和1年(直肠阴道瘘)时获得两个组织病 理学样品。在完整系列的组织病理学切片中没有检测到细胞学转化。讨论在以前的报道中，我们描述了对患有复发直肠阴道瘘的年轻妇女 的成功的基于细胞的治疗，其中该复发直肠阴道瘘已经对内科疗法无 反应。因此，我们设计了当前的I期临床试验来评估这种自体脂肪组 织基质干细胞移植(在起始方案中有改进)用于治疗无应答克罗恩瘘的可行性和安全性，以及测试脂肪组织基质干细胞与纤维蛋白胶的联合 使用。我们选择脂肪组织作为干细胞源是因为它们的生肌分化能力和瘘 对肌肉移植反应良好的事实。此外，吸脂作用的脂肪可大量获得，并 且可在对患者具有最小副作用的情况下收集。其它小组曾用骨髓衍生 的干细胞，但是这些情况下，需要细胞动员过程，其对一些患者可能 是危险的，例如对患有心肌梗塞的患者。在我们的研究中，所有的吸 脂过程都产生了临床上有用数量的具干细胞特征的细胞。我们根据预定程序对我们的患者进行随访，我们观察到8个过程 中的6个完全治愈。值得注意的是，克罗恩病对瘘的手术方法提供了 最差条件，这是由于这些患者中组织脆弱以及与治愈有关的诸多问题。 我们的患者被选择是因为他们已经对内科治疗和至少两次之前的手术 过程无应答，但是我们的治疗看起来相当有效。然而，在任何给定患 者中克罗恩病的新发作可能仍会产生新瘘，它们需要采用来自该患者 的冷藏保存自体细胞再次治疗。ADSC移植治疗成功背后的生物学机制是未知的。干细胞可能分 化为结締组织、肌肉组织或瘢痕组织。或者，干细胞分泌的生长因子 可能促进了伤口愈合。我们在组织病理学检查的瘘中看到典型的瘢痕 组织，但是我们没有办法区分移植的和局部的结締组织细胞。采用我 们的疗法在75%的病例中观察到完全痊愈。参考文献除非另有说明，本发明的实施将采用细胞生物学、细胞培养、分 子生物学、转基因生物学、微生物学、重组DNA和免疫学中的常规 技术，它们由本领域技术人员所掌握。这些技术在文献中有充分说明。 参见，例如，Molecular Cloning A Laboratory Manual (分子克隆实 -险 室手册)，2nd Ed., ed. by Sambrook， Fritsch and Maniatis (Cold Spring Harbor Laboratory Press: 1989); DNA Cloning (DNA克隆)，Volumes I and II (D. N. Glover ed.， 1985); Oligonucleotide Synthesis (寡核香酸合 成)(M. J. Gait ed" 1984); Mullis et al. U.S. Patent No: 4,683,195; NucleicAcid Hybridization (核酸杂交)(B, D. Hames & S. J. Higgins eds. 1984); Transcription And Translation (转录和翁3译)(B. D. Hames & S, J. Higgins eds. 1984); Culture Of Animal Cells (动物细胞培养)(R. I. Freshney, Alan R. Liss， Inc., 1987); Immobilized Cells And Enzymes (固 定的细胞和酶)(IRL Press, 1986); B. Perbal, A Practical Guide To Molecular Cloning (分子克隆的实践指南)(1984);论文，Methods In Enzymology (酶学方法)(Academic Press, Inc., N.Y.); Gene Transfer Vectors For Mammalian Cells (基因传递用于哺乳动物细胞的载体)(J. H. Miller and M. P. Calos eds" 1987， Cold Spring Harbor Laboratory); Methods In Enzymology (酶学方法)，Vols. 154 and 155 (Wu et al. eds.)， Immunochemical Methods In Cell And Molecular Biology (细胞和分子 生物学中的免疫化学方法)(Mayer and Walker, eds" Academic Press, London, 1987); Handbook Of Experimental Immunology (实-验免疫学手 册)，Volumes I-IV (D. M. Weir and C. C. Blackwell, eds" 1986); Manipulating the Mouse Embryo (小鼠胚胎才喿作)，(Cold Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor, N. Y.， 1986)。本文提到的所有出版物和专利，包括以下列出的文献，都将其整 体通过参考并入本文，如同明确地和分别地指明将每一单独的出版物 或专利通过参考并入。出现矛盾时，本申请，包括本文中的任何定义， 将起支配作用。1. American Gastroenterological Association Medical Position Statement: Perianal Crohn's Disease(美国胃肠病学会医学立场声明胆 周克罗恩病).Ga^rae"&ra/ogy (2003) 125:1503-1507.2. Levy C， Tremaine WJ. /"y 謂附Scwe/Ife (2002) 8(2): 106-11.3. Pennincke F, D'Hoore A, Filez L. GaWroewtero/ (2001) 64(2):223- 226.4. Rius J， Nessim A, Nogueras JJ， Wexner SD./ (2000) 166(3):218-222.5. Mizuno H， Zuk PA, Zhu M, Lorenz HP, Benhaim P, Hedrick MH.Plastic Reconstr Surg (2002) 109(1): 199-209.6. Zuk PA， Zhu M, Mizuno H， et al. 7!s層(2001) 7(2): 211-228.7. Garcia-Olmo D， Garcia-Arranz M， Gomez-Garcia L et al, /"f / Co/,"a/Z)/;y (2003) 18: 451-454.8. Abkowitz JL. *w ￡wg〃M^/ (2002) 346(10): 770-772.9. Matsubara H. ZawcW (2004) 363:746-747.10. Cowan CM, Shi YY， Aalami 00, et al.胸5她c/mo/. 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权利要求
1.含有脂肪组织衍生的基质干细胞的组合物，其中所述组合物包含的所述脂肪组织衍生的基质干细胞的至少约50％表达CD9、CD10、CD13、CD29、CD44、CD49A、CD51、CD54、CD55、CD58、CD59、CD90和CD105标志物。
2. 如权利要求1所述的含有脂肪组织衍生的基质干细胞的组合 物，其中所述组合物包含的所述脂肪组织衍生的基质干细胞的至少约 85。/。表达CD9、 CDIO、 CD13、 CD29、 CD44、 CD49A、 CD51、 CD54、 CD55、 CD58、 CD59、 CD90和CD105标志物。
3. 如权利要求2所述的含有脂肪组织衍生的基质干细胞的组合 物，其中所述组合物包含的所述脂肪组织衍生的基质干细胞的至少约 95。/o表达CD9、 CDIO、 CD13、 CD29、 CD44、 CD49A、 CD51、 CD54、 CD55、 CD58、 CD59、 CD90和CD105标志物。
4. 如权利要求3所述的含有脂肪组织衍生的基质干细胞的组合 物，其中所述组合物包含的所述脂肪组织衍生的基质干细胞的至少约 99。/。表达CD9、 CDIO、 CD13、 CD29、 CD44、 CD49A、 CD51、 CD54、 CD55、 CD58、 CD59、 CD90和CD105标志物。
5. 如权利要求4所述的含有脂肪组织衍生的基质干细胞的组合 物，其中所述组合物包含的所述脂肪组织衍生的基质干细胞的少于约 50/o表达CD34、 CDllb、 CD14、 CD15、 CD16、 CD31、 CD34、 CD45、 CD49f、 CD102、 CD104、 CD106和/或CD133标志物。
6. 如权利要求1所述的含有脂肪组织衍生的基质干细胞的组合 物，其还包含林才各溶液和HSA。
7. 如权利要求6所述的含有脂肪组织衍生的基质干细胞的组合 物，其中所述组合物包含的所述脂肪组织衍生的基质干细胞的浓度为 至少约10x 1()6细月包/mL。
8. 如权利要求7所述的含有脂肪组织衍生的基质干细胞的组合 物，其中所述组合物包含的所述脂肪组织衍生的基质干细胞的浓度为 至少约20 x 1()6细胞/mL。
9. 如权利要求1所述的含有脂肪组织衍生的基质干细胞的组合 物，其还包含粘合剂。
10. 如权利要求9所述的含有脂肪组织衍生的基质干细胞的组合 物，其中所述粘合剂为纤维蛋白胶或凝胶。
11. 包含权利要求1的含有脂肪组织衍生的基质干细胞的组合物 的支持物。
12. 如权利要求11所述的支持物，其中所述支持物为缝线。
13. 如权利要求11所述的支持物，其中所述支持物为贴片。
14. 制备权利要求1的含有脂肪组织衍生的基质干细胞的组合物 的方法，包括(a)从个体收集脂肪组织；(b)通过酶促消化获得细胞悬 浮液；(c)沉淀所述细胞悬浮液并在培养基中重悬所述脂肪组织衍生的 基质干细胞；(d)培养所述脂肪组织衍生的基质干细胞至少约10天； 以及(g)使所述脂肪组织衍生的基质干细胞传代至少两次。
15.如权利要求14所述的方法，其中所述脂肪组织衍生的基质 干细胞被培养至少20天。
16. 如权利要求14所述的方法，包括将所述脂肪组织衍生的基质 干细胞传代至少三次。
17. 制备用于瘘修复的粘合剂的方法，包括用基于纤维蛋白的聚 合物悬浮权利要求1的含有脂肪组织衍生的基质干细胞的组合物。
18. 治疗个体中瘘的方法，包括(a)用缝线封闭内孔和(b)向所述 封闭缝合的内孔递送至少约10x 106脂肪组织衍生的基质干细胞。
19. 如权利要求18所述的方法，其中所述脂肪组织衍生的基质干 细胞包括在权利要求1的含有脂肪组织衍生的基质干细胞的组合物 中。
20. 如权利要求18所述的方法，还包括(d)深入刮除至少一个瘘 道；(e)用粘合剂填充所述瘘道。
21. 如权利要求20所述的方法，还包括(f)向所述粘合剂递送至 少约10 x 106脂肪组织衍生的基质干细胞。
22. 如权利要求20所述的方法，其中所述粘合剂为纤维蛋白胶或 凝胶。
23. 如权利要求21所述的方法，其中所述粘合剂还包含权利要求 1的含有脂肪组织衍生的基质干细胞的组合物。
24. 如权利要求18所述的方法，其中所述方法还包括(c)递送第 二剂至少约20x 106脂肪组织衍生的基质干细胞。
25. 如权利要求18所述的方法，其中所述方法包括递送至少约20 x 106脂肪组织衍生的基质干细胞。
26. 如权利要求25所述的方法，其中所述方法还包括(c)递送第 二剂至少约40x 106脂肪组织衍生的基质干细胞。
27. 如权利要求18所述的方法，其中所述脂肪组织衍生的基质干 细胞源自所述个体的脂肪组织。
28. 如权利要求18所述的方法，其中所述瘘为肛门直肠瘘、肠肠 瘘、肠皮瘘、直肠阴道瘘或膀胱阴道瘘。
29. 如权利要求18所述的方法，其还包括向所述个体给予治疗剂。
30. 如权利要求29所述的方法，其中所述治疗剂被局部给药至所 述封闭缝合的内孔。
31. 如权利要求30所述的方法，其中所述治疗剂被全身给药至所 述个体。
32. 治疗个体中伤口的方法，包括(a)用缝线封闭所述伤口和(b) 向所述封闭缝合的伤口递送至少约10 x 106脂肪组织衍生的基质干细胞。
33. 如权利要求23所述的方法，其中所述脂肪组织衍生的基质干 细胞包含在权利要求1的细胞组合物中。
34. 脂肪组织衍生的基质干细胞，其表达c-Kit、波形蛋白和CD90 标志物，不表达CD34、因子VIII、 ce肌动蛋白、结蛋白、S-100和角蛋白标志物。
35. 脂肪组织衍生的基质干细胞，其表达CD9、 CDIO、 CD13、CD29、 CD44、 CD49A、 CD51、 CD54、 CD55、 CD58、 CD59、 C画 和CD105标志物，不表达CD34、 CDllb、 CD14、 CD15、 CD16、 CD31、 CD34、 CD45、 CD49f、 CD102、 CD104、 CD106和/或CD133标志物。
36. 脂肪组织衍生的基质干细胞在制备用于治疗个体中瘘的药物 组合物中的用途。
37. 如权利要求36所述的用途，其中所述脂肪组织衍生的基质干 细胞源自所述待治疗个体的脂肪组织。
38. 如权利要求36所述的用途，其中所述脂肪组织衍生的基质干 细胞包括包含在权利要求1至10、 34或35中任一权利要求定义的含 有脂肪组织衍生的基质干细胞的组合物中。
39. 如权利要求36所述的用途，其中所述药物组合物包含至少约 10 x 106脂肪组织衍生的基质干细胞。
40. 如权利要求36所述的用途，其中在用缝线封闭瘘道内孔后将 所述药物组合物作为第 一剂被递送至所述封闭的内孔。
41. 如权利要求36所述的用途，其中在用缝线封闭瘘道内孔后将 所述药物组合物作为第一剂被递送至所述瘘道壁的一个或多个部位。
42. 如权利要求40或41所述的用途，其中所述药物组合物包含 至少约10x 106脂肪组织衍生的基质干细胞。
43. 如权利要求40或41所述的用途，其中在所述第一剂所述药 物组合物之后，向所述封闭缝合的内孔或瘘道壁的 一个或多个部位递 送第二剂所述药物组合物。
44. 如权利要求43所述的用途，其中所述第二剂所述药物组合物 包含至少约20x 106脂肪组织衍生的基质干细胞。
45. 如权利要求36所述的用途，其中所述脂肪组织衍生的基质干 细胞被包含在缝线中。
46. 如权利要求36所述的用途，其中所述脂肪组织衍生的基质干 细胞净皮递送至用于填充瘘道的材料。
47. 如权利要求46所述的用途，其中所述材料为基于纤维蛋白的 聚合物或粘合剂，例如纤维蛋白胶或凝胶。
48. 如权利要求36所述的用途，其中所述瘘为肛门直肠瘘、肛瘘、 粪瘘、动静脉瘘、胆瘘、子宫颈瘘、鼻脑脊液瘘、肠肠瘘、肠皮瘘、 肠阴道瘘、胃瘘、子宫腹膜瘘外淋巴、肺动静脉瘘、直肠阴道瘘、脐 瘘、气管食管瘘或膀胱阴道瘘。
49. 如权利要求48所述的用途，其中所述瘘为肛门直肠瘘、肠直 肠瘘、肠皮瘘、直肠阴道瘘或膀胱阴道瘘。
50. 如权利要求36所述的用途，其中所述药物组合物与治疗剂被 联合给药至所述治疗中的个体。
51. 如权利要求50所述的用途，其中所述治疗剂被全身给药或在 缝合部位局部给药。
52. 如权利要求51所述的用途，其中所述药物组合物包含所述治疗剂。
53. 如权利要求50所述的用途，其中所述治疗剂相对于所述包含所述脂肪组织衍生的基质干细胞的药物组合物被分开给药。
54.如权利要求50所述的用途，其中所述治疗剂为抗炎剂、免疫 抑制剂、生物试剂、抗生素或止泻剂。
55.治疗个体中瘘的方法，包括以下步骤(i) 深入刮除至少一个瘘道(ii) 用缝线封闭经刮除的瘘道的内孔(iii) 向所述封闭缝合的内孔递送至少约10x 106脂肪组织衍生的 基质千细胞。
全文摘要
本发明提供采用脂肪组织衍生的基质干细胞治疗瘘的新方法和组合物。
文档编号A61K35/36GK101263224SQ200680030622
公开日2008年9月10日 申请日期2006年5月16日 优先权日2005年6月24日
发明者曼努埃尔安赫尔·冈萨雷斯德拉培尼亚, 罗萨阿尼娅·加西亚卡斯特罗, 达米安·加西亚奥尔莫, 马里亚诺·加西亚阿兰斯, 马里亚赫马·费尔南德兹米格尔 申请人:塞勒里克斯有限公司;马德里自治大学