树突状细胞来源的免疫抑制性受体,其编码序列及用途的制作方法

文档序号:418543阅读:266来源:国知局
专利名称:树突状细胞来源的免疫抑制性受体,其编码序列及用途的制作方法
技术领域
本发明属于生物技术和医学领域,具体地说,本发明涉及新的编码免疫抑制性受体分子DIgR2多肽的多核苷酸,以及此多核苷酸编码的多肽。本发明还涉及此多核苷酸和多肽的用途和制备。具体地说,本发明的多肽是一种新的与抑制树突状细胞(DC)成熟过程中MHCII类分子和共刺激分子CD80(B7-1)的表达有关的免疫抑制性受体。
背景技术
在造血和免疫细胞中发现的免疫抑制性受体(inhibitory immunoreceptor)是近年来免疫学领域的一个热点课题。免疫抑制性受体的结构特点是含有一个或多个免疫受体酪氨酸相关的抑制性基序(immunoreceptor tyrosine-basedinhibitory motifs,ITIM)。ITIM是由6个氨基酸组成的保守序列(S/I/L/VxYxxL/V,X代表任一氨基酸)。当免疫抑制受体与刺激受体偶联时,ITIM发生酪氨酸磷酸化,然后与蛋白酪氨酸磷酸酶SHP或/和肌醇磷酸酶SHIP的SH2结合,产生细胞活化的负调节效应。其编码基因多属于免疫球蛋白基因家族和C型凝集素家族。
免疫球蛋白超家族(immunoglobulin superfamily,IgSF)是一类与Ig结构相似、编码基因同源的蛋白分子,主要以膜蛋白形式存在于各种造血细胞、上皮细胞、免疫细胞、血管内皮细胞和神经细胞的表面,在免疫应答中具有接受刺激、传递信息、激活细胞等功能。IgSF基因的缺陷与突变可导致免疫功能紊乱,引发免疫相关性疾病。近年来在这一家族中发现了多种抑制性受体,如IgG低亲和力受体、自然杀伤细胞抑制性受体(killer inhibitory receptor,KIR)、Ig样转录产物(ITL-1、2、3)等,已证明具有重要的免疫学功能。如KIR与配体结合后可启动抑制性信号,可抑制NK细胞毒作用、ADCC和分泌细胞因子,使NK丧失杀伤活性;低亲和力IgG Fc受体FcRγIIB能抑制由BCR引起的Ca2+流和B细胞增殖,缺乏FcRγIIB的小鼠容易产生自身免疫性疾病,表明了这个受体在保证免疫平衡中起重要作用;PD-1作为抑制性受体与外周免疫耐受有关,PD-1缺失的C57BL/6小鼠容易诱发狼疮样肾小球肾炎和关节炎。由此可见,一个免疫抑制受体新成员的发现和功能确证,不仅具有重要的理论探索意义,还具有广阔的临床应用前景,该方面研究已成为当前免疫学领域的热门课题。
鉴于免疫球蛋白样受体的重要功能,本领域迫切需要开发新的免疫球蛋白样受体。

发明内容
本发明的目的是提供一种新型树突状细胞来源的免疫球蛋白样受体DIgR2蛋白以及其片段、类似物和衍生物。
本发明的另一目的是提供编码这些多肽的多核苷酸。
本发明的另一目的是提供生产这些多肽的方法以及该多肽和编码序列的用途。
在本发明的第一方面,提供新颖的分离出的DIgR2多肽,它包含具有SEQID NO2氨基酸序列的多肽、或其保守性变异多肽、或其活性片段、或其活性衍生物。较佳地,该多肽选自下组(a)具有SEQ ID NO2中1-330位或22-330位氨基酸序列的多肽;(b)将SEQ ID NO2氨基酸序列经过一个或多个氨基酸残基的取代、缺失或添加而形成的,且具有负调控免疫应答的功能的由(a)衍生的多肽。
在本发明的第二方面,提供编码分离的这些多肽的多核苷酸,该多核苷酸包含一核苷酸序列,该核苷酸序列与选自下组的一种核苷酸序列有至少70%相同性(a)编码上述小鼠DIgR2的多核苷酸;和(b)与多核苷酸(a)互补的多核苷酸。较佳地,该多核苷酸编码具有SEQ ID NO2中1-330位或22-330位所示氨基酸序列的多肽。更佳地,该多核苷酸的序列是选自下组的一种(a)具有SEQID NO1中64-1056位的序列;(b)具有SEQ ID NO1中1-1076位的序列;(c)具有SEQ ID NO1中127-1056位的序列。
在本发明的第三方面,提供了含有上述多核苷酸的载体,以及被该载体转化或转导的宿主细胞或者被上述多核苷酸直接转化或转导的宿主细胞。
在本发明的第四方面,提供了制备DIgR2多肽的方法,该方法包含(a)在表达条件下,培养上述被转化或转导的宿主细胞;(b)从培养物中分离出具有DIgR2多肽。
在本发明的第五方面,提供了与上述的小鼠DIgR2多肽特异性结合的抗体。还提供了可用于检测的核酸分子,它含有上述的多核苷酸中连续的10-1076个核苷酸。
在本发明的第六方面,提供了模拟、促进、拮抗小鼠DIgR2多肽活性的化合物,以及抑制小鼠DIgR2多肽的表达的化合物。还提供了筛选和/或制备这些化合物的方法。较佳地,该化合物是小鼠DIgR2多肽的编码序列或其片段的反义序列。
在本发明的第七方面,提供了检测样品中是否存在DIgR2蛋白的方法,它包括将样品与DIgR2蛋白的特异性抗体接触,观察是否形成抗体复合物,形成了抗体复合物就表示样品中存在DIgR2蛋白。
在本发明的第八方面,提供了一种检测与小鼠DIgR2多肽异常表达相关的疾病或疾病易感性的方法,该方法包括检测编码所述多肽的核酸序列中是否存在突变。
在本发明的第九方面,提供了本发明多肽和编码序列的用途。例如本发明多肽可被用于筛选促进小鼠DIgR2多肽活性的激动剂,或者筛选抑制小鼠DIgR2多肽活性的拮抗剂、或者被用于肽指纹图谱鉴定。本发明的小鼠DIgR2蛋白的编码序列或其片段,可被作为引物用于PCR扩增反应,或者作为探针用于杂交反应,或者用于制造基因芯片或微阵列。
在本发明的第十方面,提供了一种药物组合物,它含有安全有效量的本发明的小鼠DIgR2多肽或其激动剂、拮抗剂以及药学上可接受的载体。这些药物组合物可治疗肿瘤、炎症、神经系统和心血管病等病症。
本发明的其它方面由于本文的技术的公开,对本领域的技术人员而言是显而易见的。


图1显示了本发明的小鼠DIgR2蛋白的Kyte-doolitte疏水性分析的疏水性曲线图。
图2显示了本发明的小鼠DIgR2 RT-PCR表达分析结果,提示DIgR2具有广泛表达。其中A.新鲜分离的小鼠细胞的RT-PCR(1)中性粒细胞,(2)单核细胞,(3)T淋巴细胞,(4)B淋巴细胞。B.部分肿瘤细胞系的RT-PCR(1)EL4,(2).CTLL-2,(3)E.G7,(4)A20,(5)J774,(6)Raw,(7)FBL-3,(8)Yac-1,(9)B16,(10)P815,(11)CT20,(12)WEHI164。
图3显示了本发明的小鼠DIgR2的Northern印迹杂交结果,提示DIgR2是一种广泛分布的分子。
图4显示了抗DIgR2多抗阻断后小鼠DC表型的FACS分析结果。
图5显示了抗DIgR2多抗处理DC后的混合淋巴细胞反应结果。
具体实施例方式
树突状细胞(Dendritic cells,DC)的功能特点是能激发初始型T细胞(naive Tcells)免疫反应,是目前所发现的最重要的抗原提呈细胞(antigen presenting cells,APC),以抗原致敏的DC体内回输能诱导出抗原特异性免疫应答反应。
本发明人经过深入而广泛的研究,从小鼠骨髓来源的DC中克隆得到DIgR2全长序列;分析显示DIgR2是一免疫球蛋白超家族中的I型跨膜糖蛋白。Western检测显示DIgR2在体内是一糖基化蛋白,分子量约60kDa,以单体形式存在;同时通过基因转染真核细胞,间接免疫荧光检测确定DIgR2为一细胞膜蛋白。此外,利用免疫共沉淀证实DIgR2胞内段的ITIM具有结合SHP-1的潜在能力,提示DIgR2是一个新型抑制性受体。分别用抗体阻断和Fc融合蛋白竞争性阻断实验初步证明DIgR2对于DC的成熟过程中MHCII类分子I-Ab和共刺激分子CD80(B7-1)的表达起抑制作用,从而抑制DC刺激T细胞增殖的能力,具有对于免疫应答起负性调控作用。在此基础上完成了本发明。
在本发明中,术语“DIgR2蛋白”、“DIgR2多肽”、“树突状细胞来源的免疫球蛋白样受体”、“免疫球蛋白样受体DIgR2”或“免疫抑制性受体DigR2”可互换使用,都指具有树突状细胞来源的免疫球蛋白样受体DIgR2氨基酸序列(SEQ ID NO2)的蛋白或多肽。
如本文所用,“分离的”是指物质从其原始环境中分离出来(如果是天然的物质,原始环境即是天然环境)。如活体细胞内的天然状态下的多聚核苷酸和多肽是没有分离纯化的,但同样的多聚核苷酸或多肽如从天然状态中同存在的其他物质中分开,则为分离纯化的。
如本文所用,“分离的DIgR2蛋白或多肽”是指DIgR2多肽基本上不含天然与其相关的其它蛋白、脂类、糖类或其它物质。本领域的技术人员能用标准的蛋白质纯化技术纯化DIgR2蛋白。基本上纯的多肽在非还原聚丙烯酰胺凝胶上能产生单一的主带。
本发明的多肽可以是重组多肽、天然多肽、合成多肽,优选重组多肽。本发明的多肽可以是天然纯化的产物,或是化学合成的产物,或使用重组技术从原核或真核宿主(例如,细菌、酵母、高等植物、昆虫和哺乳动物细胞)中产生。根据重组生产方案所用的宿主,本发明的多肽可以是糖基化的,或可以是非糖基化的。本发明的多肽还可包括或不包括起始的甲硫氨酸残基。
本发明还包括小鼠DIgR2蛋白的片段、衍生物和类似物。如本文所用,术语“片段”、“衍生物”和“类似物”是指基本上保持本发明的天然小鼠DIgR2蛋白相同的生物学功能或活性的多肽。本发明的多肽片段、衍生物或类似物可以是(i)有一个或多个保守或非保守性氨基酸残基(优选保守性氨基酸残基)被取代的多肽,而这样的取代的氨基酸残基可以是也可以不是由遗传密码编码的,或(ii)在一个或多个氨基酸残基中具有取代基团的多肽,或(iii)成熟多肽与另一个化合物(比如延长多肽半衰期的化合物,例如聚乙二醇)融合所形成的多肽,或(iv)附加的氨基酸序列融合到此多肽序列而形成的多肽(如前导序列或分泌序列或用来纯化此多肽的序列或蛋白原序列,或与抗原IgG片段的形成的融合蛋白)。根据本文的教导,这些片段、衍生物和类似物属于本领域熟练技术人员公知的范围。
在本发明中,术语“小鼠DIgR2多肽”指具有小鼠DIgR2蛋白活性的SEQ IDNO.2序列的多肽。该术语还包括具有与小鼠DIgR2蛋白相同功能的、SEQ ID NO.2序列的变异形式。这些变异形式包括(但并不限于)若干个(通常为1-50个,较佳地1-30个,更佳地1-20个,最佳地1-10个)氨基酸的缺失、插入和/或取代,以及在C末端和/或N末端添加一个或数个(通常为20个以内,较佳地为10个以内,更佳地为5个以内)氨基酸。例如,在本领域中,用性能相近或相似的氨基酸进行取代时,通常不会改变蛋白质的功能。又比如,在C末端和/或N末端添加一个或数个氨基酸通常也不会改变蛋白质的功能。该术语还包括小鼠DIgR2蛋白的活性片段和活性衍生物。
该多肽的变异形式包括同源序列、保守性变异体、等位变异体、天然突变体、诱导突变体、在高或低的严紧度条件下能与小鼠DIgR2 DNA杂交的DNA所编码的蛋白、以及利用抗小鼠DIgR2多肽的抗血清获得的多肽或蛋白。本发明还提供了其他多肽,如包含小鼠DIgR2多肽或其片段的融合蛋白。除了几乎全长的多肽外,本发明还包括了小鼠DIgR2多肽的可溶性片段。通常,该片段具有小鼠DIgR2多肽序列的至少约10个连续氨基酸,通常至少约30个连续氨基酸,较佳地至少约50个连续氨基酸,更佳地至少约80个连续氨基酸,最佳地至少约100个连续氨基酸。
发明还提供小鼠DIgR2蛋白或多肽的类似物。这些类似物与天然小鼠DIgR2多肽的差别可以是氨基酸序列上的差异,也可以是不影响序列的修饰形式上的差异,或者兼而有之。这些多肽包括天然或诱导的遗传变异体。诱导变异体可以通过各种技术得到,如通过辐射或暴露于诱变剂而产生随机诱变,还可通过定点诱变法或其他已知分子生物学的技术。类似物还包括具有不同于天然L-氨基酸的残基(如D-氨基酸)的类似物,以及具有非天然存在的或合成的氨基酸(如β、γ-氨基酸)的类似物。应理解,本发明的多肽并不限于上述例举的代表性的多肽。
修饰(通常不改变一级结构)形式包括体内或体外的多肽的化学衍生形式如乙酰化或羧基化。修饰还包括糖基化,如那些在多肽的合成和加工中或进一步加工步骤中进行糖基化修饰而产生的多肽。这种修饰可以通过将多肽暴露于进行糖基化的酶(如哺乳动物的糖基化酶或去糖基化酶)而完成。修饰形式还包括具有磷酸化氨基酸残基(如磷酸酪氨酸,磷酸丝氨酸,磷酸苏氨酸)的序列。还包括被修饰从而提高了其抗蛋白水解性能或优化了溶解性能的多肽。
在本发明中,“小鼠DIgR2蛋白保守性变异多肽”指与SEQ ID NO2的氨基酸序列相比,有至多10个,较佳地至多8个,更佳地至多5个,最佳地至多3个氨基酸被性质相似或相近的氨基酸所替换而形成多肽。这些保守性变异多肽最好根据表1进行氨基酸替换而产生。
表1


本发明的多核苷酸可以是DNA形式或RNA形式。DNA形式包括cDNA、基因组DNA或人工合成的DNA。DNA可以是单链的或是双链的。DNA可以是编码链或非编码链。编码成熟多肽的编码区序列可以与SEQ ID NO1所示的编码区序列相同或者是简并的变异体。如本文所用,“简并的变异体”在本发明中是指编码具有SEQ ID NO2的蛋白质,但与SEQ ID NO1所示的编码区序列有差别的核酸序列。
编码SEQ ID NO2的成熟多肽的多核苷酸包括只编码成熟多肽的编码序列;成熟多肽的编码序列和各种附加编码序列;成熟多肽的编码序列(和任选的附加编码序列)以及非编码序列。
术语“编码多肽的多核苷酸”可以是包括编码此多肽的多核苷酸,也可以是还包括附加编码和/或非编码序列的多核苷酸。
本发明还涉及上述多核苷酸的变异体,其编码与本发明有相同的氨基酸序列的多肽或多肽的片段、类似物和衍生物。此多核苷酸的变异体可以是天然发生的等位变异体或非天然发生的变异体。这些核苷酸变异体包括取代变异体、缺失变异体和插入变异体。如本领域所知的,等位变异体是一个多核苷酸的替换形式,它可能是一个或多个核苷酸的取代、缺失或插入,但不会从实质上改变其编码的多肽的功能。
本发明还涉及与上述的序列杂交且两个序列之间具有至少50%,较佳地至少70%,更佳地至少80%相同性的多核苷酸。本发明特别涉及在严格条件下与本发明所述多核苷酸可杂交的多核苷酸。在本发明中,“严格条件”是指(1)在较低离子强度和较高温度下的杂交和洗脱,如0.2×SSC,0.1%SDS,60℃;或(2)杂交时加有变性剂,如50%(v/v)甲酰胺,0.1%小牛血清/0.1%Ficoll,42℃等;或(3)仅在两条序列之间的相同性至少在90%以上,更好是95%以上时才发生杂交。并且,可杂交的多核苷酸编码的多肽与SEQ ID NO2所示的成熟多肽有相同的生物学功能和活性。
本发明还涉及与上述的序列杂交的核酸片段。如本文所用,“核酸片段”的长度至少含15个核苷酸,较好是至少30个核苷酸,更好是至少50个核苷酸,最好是至少100个核苷酸以上。核酸片段可用于核酸的扩增技术(如PCR)以确定和/或分离编码DIgR2蛋白的多聚核苷酸。
本发明的小鼠DIgR2核苷酸全长序列或其片段通常可以用PCR扩增法、重组法或人工合成的方法获得。对于PCR扩增法,可根据本发明所公开的有关核苷酸序列,尤其是开放阅读框序列来设计引物,并用市售的cDNA库或按本领域技术人员已知的常规方法所制备的cDNA库作为模板,扩增而得有关序列。当序列较长时,常常需要进行两次或多次PCR扩增,然后再将各次扩增出的片段按正确次序拼接在一起。
一旦获得了有关的序列,就可以用重组法来大批量地获得有关序列。这通常是将其克隆入载体,再转入细胞,然后通过常规方法从增殖后的宿主细胞中分离得到有关序列。
此外,还可用人工合成的方法来合成有关序列,尤其是片段长度较短时。通常,通过先合成多个小片段,然后再进行连接可获得序列很长的片段。
目前,已经可以完全通过化学合成来得到编码本发明蛋白(或其片段,或其衍生物)的DNA序列。然后可将该DNA序列引入本领域中已知的各种现有的DNA分子(或如载体)和细胞中。此外,还可通过化学合成将突变引入本发明蛋白序列中。
应用PCR技术扩增DNA/RNA的方法(Saiki,et al.Science1985;2301350-1354)被优选用于获得本发明的基因。特别是很难从文库中得到全长的cDNA时,可优选使用RACE法(RACE-cDNA末端快速扩增法),用于PCR的引物可根据本文所公开的本发明的序列信息适当地选择,并可用常规方法合成。可用常规方法如通过凝胶电泳分离和纯化扩增的DNA/RNA片段。
本发明也涉及包含本发明的多核苷酸的载体,以及用本发明的载体或DIgR2蛋白编码序列经基因工程产生的宿主细胞,以及经重组技术产生本发明所述多肽的方法。
通过常规的重组DNA技术(Science,1984;2241431),可利用本发明的多聚核苷酸序列可用来表达或生产重组的DIgR2多肽。一般来说有以下步骤(1).用本发明的编码小鼠DIgR2多肽的多核苷酸(或变异体),或用含有该多核苷酸的重组表达载体转化或转导合适的宿主细胞;
(2).在合适的培养基中培养的宿主细胞;(3).从培养基或细胞中分离、纯化蛋白质。
本发明中,小鼠DIgR2多核苷酸序列可插入到重组表达载体中。术语“重组表达载体”指本领域熟知的细菌质粒、噬菌体、酵母质粒、植物细胞病毒、哺乳动物细胞病毒如腺病毒、逆转录病毒或其他载体。在本发明中适用的载体包括但不限于在细菌中表达的基于T7的表达载体(Rosenberg,et al.Gene,1987,56125);在哺乳动物细胞中表达的pMSXND表达载体(Lee and Nathans,J Bio Chem.2633521,1988)和在昆虫细胞中表达的来源于杆状病毒的载体。总之,只要能在宿主体内复制和稳定,任何质粒和载体都可以用。表达载体的一个重要特征是通常含有复制起点、启动子、标记基因和翻译控制元件。
本领域的技术人员熟知的方法能用于构建含小鼠DIgR2编码DNA序列和合适的转录/翻译控制信号的表达载体。这些方法包括体外重组DNA技术、DNA合成技术、体内重组技术等(Sambroook,et al.Molecular Cloning,a LaboratoryManual,cold Spring Harbor Laboratory.New York,1989)。所述的DNA序列可有效连接到表达载体中的适当启动子上,以指导mRNA合成。这些启动子的代表性例子有大肠杆菌的lac或trp启动子;λ噬菌体PL启动子;真核启动子包括CMV立即早期启动子、HSV胸苷激酶启动子、早期和晚期SV40启动子、反转录病毒的LTRs和其他一些已知的可控制基因在原核或真核细胞或其病毒中表达的启动子。表达载体还包括翻译起始用的核糖体结合位点和转录终止子。
此外,表达载体优选地包含一个或多个选择性标记基因,以提供用于选择转化的宿主细胞的表型性状,如真核细胞培养用的二氢叶酸还原酶、新霉素抗性以及绿色荧光蛋白(GFP),或用于大肠杆菌的四环素或氨苄青霉素抗性。
包含上述的适当DNA序列以及适当启动子或者控制序列的载体,可以用于转化适当的宿主细胞,以使其能够表达蛋白质。
宿主细胞可以是原核细胞,如细菌细胞;或是低等真核细胞,如酵母细胞;或是高等真核细胞,如哺乳动物细胞。代表性例子有大肠杆菌,链霉菌属;鼠伤寒沙门氏菌的细菌细胞;真菌细胞如酵母;植物细胞;果蝇S2或Sf9的昆虫细胞;CHO、COS、293细胞、或Bowes黑素瘤细胞的动物细胞等。
本发明的多核苷酸在高等真核细胞中表达时,如果在载体中插入增强子序列时将会使转录得到增强。增强子是DNA的顺式作用因子,通常大约有10到300个碱基对,作用于启动子以增强基因的转录。可举的例子包括在复制起始点晚期一侧的100到270个碱基对的SV40增强子、在复制起始点晚期一侧的多瘤增强子以及腺病毒增强子等。
本领域一般技术人员都清楚如何选择适当的载体、启动子、增强子和宿主细胞。
用重组DNA转化宿主细胞可用本领域技术人员熟知的常规技术进行。当宿主为原核生物如大肠杆菌时,能吸收DNA的感受态细胞可在指数生长期后收获,用CaCl2法处理,所用的步骤在本领域众所周知。另一种方法是使用MgCl2。如果需要,转化也可用电穿孔的方法进行。当宿主是真核生物,可选用如下的DNA转染方法磷酸钙共沉淀法,常规机械方法如显微注射、电穿孔、脂质体包装等。
获得的转化子可以用常规方法培养,表达本发明的基因所编码的多肽。根据所用的宿主细胞,培养中所用的培养基可选自各种常规培养基。在适于宿主细胞生长的条件下进行培养。当宿主细胞生长到适当的细胞密度后,用合适的方法(如温度转换或化学诱导)诱导选择的启动子,将细胞再培养一段时间。
在上面的方法中的重组多肽可在细胞内、或在细胞膜上表达、或分泌到细胞外。如果需要,可利用其物理的、化学的和其它特性通过各种分离方法分离和纯化重组的蛋白。这些方法是本领域技术人员所熟知的。这些方法的例子包括但并不限于常规的复性处理、用蛋白沉淀剂处理(盐析方法)、离心、渗透破菌、超处理、超离心、分子筛层析(凝胶过滤)、吸附层析、离子交换层析、高效液相层析(HPLC)和其它各种液相层析技术及这些方法的结合。
重组的小鼠DIgR2蛋白或多肽有多方面的用途。这些用途包括(但不限于)直接做为药物治疗DIgR2蛋白功能低下或丧失所致的疾病(如负调控免疫应答),和用于筛选促进或对抗DIgR2蛋白功能的抗体、多肽或其它配体。用表达的重组小鼠DIgR2蛋白筛选多肽库可用于寻找有治疗价值的能抑制或刺激小鼠DIgR2蛋白功能的多肽分子。
另一方面,本发明还包括对小鼠DIgR2 DNA或是其片段编码的多肽具有特异性的多克隆抗体和单克隆抗体,尤其是单克隆抗体。这里,“特异性”是指抗体能结合于小鼠DIgR2基因产物或片段。较佳地,指那些能与小鼠DIgR2基因产物或片段结合但不识别和结合于其它非相关抗原分子的抗体。本发明中抗体包括那些能够结合并抑制小鼠DIgR2蛋白的分子,也包括那些并不影响小鼠DIgR2蛋白功能的抗体。本发明还包括那些能与修饰或未经修饰形式的小鼠DIgR2基因产物结合的抗体。
本发明不仅包括完整的单克隆或多克隆抗体,而且还包括具有免疫活性的抗体片段,如Fab’或(Fab)2片段;抗体重链;抗体轻链;遗传工程改造的单链Fv分子(Ladner等人,美国专利No.4,946,778);或嵌合抗体,如具有鼠抗体结合特异性但仍保留来自人的抗体部分的抗体。
本发明的抗体可以通过本领域内技术人员已知的各种技术进行制备。例如,纯化的小鼠DIgR2基因产物或者其具有抗原性的片段,可被施用于动物以诱导多克隆抗体的产生。与之相似的,表达小鼠DIgR2蛋白或其具有抗原性的片段的细胞可用来免疫动物来生产抗体。本发明的抗体也可以是单克隆抗体。此类单克隆抗体可以利用杂交瘤技术来制备(见Kohler等人,Nature256;495,1975;Kohler等人,Eur.J.Immunol.6511,1976;Kohler等人,Eur.J.Immunol.6292,1976;Hammerling等人,In Monoclonal Antibodiesand T Cell Hybridomas,Elsevier,N.Y.,1981)。本发明的抗体包括能阻断小鼠DIgR2蛋白功能的抗体以及不影响小鼠DIgR2蛋白功能的抗体。本发明的各类抗体可以利用小鼠DIgR2基因产物的片段或功能区,通过常规免疫技术获得。这些片段或功能区可以利用重组方法制备或利用多肽合成仪合成。与小鼠DIgR2基因产物的未修饰形式结合的抗体可以用原核细胞(例如E.Coli)中生产的基因产物来免疫动物而产生;与翻译后修饰形式结合的抗体(如糖基化或磷酸化的蛋白或多肽),可以用真核细胞(例如酵母或昆虫细胞)中产生的基因产物来免疫动物而获得。
抗小鼠DIgR2蛋白的抗体可用于免疫组织化学技术中,检测活检标本中的小鼠DIgR2蛋白。此外,与小鼠DIgR2蛋白结合的单克隆抗体也可用放射性同位素标记,注入体内可跟踪其位置和分布。
本发明中的抗体可用于治疗或预防与小鼠DIgR2蛋白相关的疾病。给予适当剂量的抗体可以刺激或阻断小鼠DIgR2蛋白的产生或活性。
抗体也可用于设计成针对体内某一特殊部位的免疫毒素。如小鼠DIgR2蛋白高亲和性的单克隆抗体可与细菌或植物毒素(如白喉毒素,蓖麻蛋白,红豆碱等)共价结合。一种通常的方法是用巯基交联剂如SPDP,攻击抗体的氨基,通过二硫键的交换,将毒素结合于抗体上,这种杂交抗体可用于杀灭小鼠DIgR2蛋白阳性的细胞。
多克隆抗体的生产可用小鼠DIgR2蛋白或多肽免疫动物,如家兔,小鼠,大鼠等。多种佐剂可用于增强免疫反应,包括但不限于弗氏佐剂等。
利用本发明蛋白,通过各种常规筛选方法,可筛选出与DIgR2蛋白发生相互作用的物质,如配体、抑制剂、激动剂或拮抗剂等。
本发明蛋白及其抗体、抑制剂、激动剂、拮抗剂或受体等,当在治疗上进行施用(给药)时,可提供不同的效果。通常,可将这些物质配制于无毒的、惰性的和药学上可接受的水性载体介质中,其中pH通常约为5-8,较佳地pH约为6-8,尽管pH值可随被配制物质的性质以及待治疗的病症而有所变化。配制好的药物组合物可以通过常规途径进行给药,其中包括(但并不限于)肌内、腹膜内、静脉内、皮下、皮内、或局部给药。
本发明的多肽可直接用于疾病治疗,例如,用于肿瘤、炎症,神经系统和心血管病方面的治疗。
本发明还提供了一种药物组合物,它含有安全有效量的本发明DIgR2多肽或其激动剂、拮抗剂以及药学上可接受的载体或赋形剂。这类载体包括(但并不限于)盐水、缓冲液、葡萄糖、水、甘油、乙醇、及其组合。药物制剂应与给药方式相匹配。本发明的药物组合物可以被制成针剂形式,例如用生理盐水或含有葡萄糖和其他辅剂的水溶液通过常规方法进行制备。诸如片剂和胶囊之类的药物组合物,可通过常规方法进行制备。药物组合物如针剂、溶液、片剂和胶囊宜在无菌条件下制造。活性成分的给药量是治疗有效量,例如每天约1微克/千克体重-约5毫克/千克体重。此外,本发明的多肽还可与其他治疗剂一起使用。
使用药物组合物时,是将安全有效量的DIgR2蛋白或其拮抗剂、激动剂施用于哺乳动物,其中该安全有效量通常至少约10微克/千克体重,而且在大多数情况下不超过约8毫克/千克体重,较佳地该剂量是约10微克/千克体重-约1毫克/千克体重。当然,具体剂量还应考虑给药途径、病人健康状况等因素,这些都是熟练医师技能范围之内的。
能与小鼠DIgR2蛋白结合的多肽分子可通过筛选由各种可能组合的氨基酸结合于固相物组成的随机多肽库而获得。筛选时,必须对小鼠DIgR2蛋白分子进行标记。
本发明还涉及定量和定位检测小鼠DIgR2蛋白水平的诊断试验方法。这些试验是本领域所熟知的,且包括FISH测定和放射免疫测定。试验中所检测的小鼠DIgR2蛋白水平,可以用作解释小鼠DIgR2蛋白在各种疾病中的重要性和用于诊断DIgR2蛋白起作用的疾病。
一种检测检测样品中是否存在DIgR2蛋白的方法是利用DIgR2蛋白的特异性抗体进行检测,它包括将样品与DIgR2蛋白特异性抗体接触;观察是否形成抗体复合物,形成了抗体复合物就表示样品中存在DIgR2蛋白。
DIgR2蛋白的多聚核苷酸可用于DIgR2蛋白相关疾病的诊断和治疗。在诊断方面,DIgR2蛋白的多聚核苷酸可用于检测DIgR2蛋白的表达与否或在疾病状态下DIgR2蛋白的异常表达。如DIgR2DNA序列可用于对活检标本的杂交以判断DIgR2蛋白的表达异常。杂交技术包括Southern印迹法,Northern印迹法、原位杂交等。这些技术方法都是公开的成熟技术,相关的试剂盒都可从商业途径得到。本发明的多核苷酸的一部分或全部可作为探针固定在微阵列(microarray)或DNA芯片(又称为“基因芯片”)上,用于分析组织中基因的差异表达分析和基因诊断。用DIgR2蛋白特异的引物进行RNA-聚合酶链反应(RT-PCR)体外扩增也可检测DIgR2蛋白的转录产物。
检测DIgR2基因的突变也可用于诊断DIgR2蛋白相关的疾病。DIgR2蛋白突变的形式包括与正常野生型DIgR2 DNA序列相比的点突变、易位、缺失、重组和其它任何异常等。可用已有的技术如Southern印迹法、DNA序列分析、PCR和原位杂交检测突变。另外,突变有可能影响蛋白的表达,因此用Northern印迹法、Western印迹法可间接判断基因有无突变。
本发明的序列对染色体鉴定也是有价值的。简而言之,根据本发明DIgR2蛋白的cDNA制备PCR引物(优选15-35bp),可以将序列定位于染色体上。然后,将这些引物用于PCR筛选含各条人染色体的体细胞杂合细胞。只有那些含有相应于引物的人基因的杂合细胞会产生扩增的片段。
一旦序列被定位到准确的染色体位置,此序列在染色体上的物理位置就可以与基因图数据相关联。这些数据可见于例如,V.Mckusick,MendelianInheritance in Man(可通过与Johns Hopkins University Welch Medical Library联机获得)。然后可通过连锁分析,确定基因与业已定位到染色体区域上的疾病之间的关系。
在本发明的一个实例中,提供了一种分离的多核苷酸,它编码具有SEQ IDNO2所示氨基酸序列的多肽。本发明的多核苷酸是从小鼠骨髓来源的树突状细胞cDNA中分离出的。其序列如SEQ ID NO1所示,它包含的多核苷酸序列全长为1076个碱基,其开放读框位于64-1056位,编码全长为330个氨基酸的小鼠DIgR2蛋白(SEQ ID NO2)。
该序列利用ANTHEPROT和ExPASy分析软件进行分析显示,从第188位氨基酸到207位氨基酸是一个完整的跨膜区段,N端有19个氨基酸信号肽,提示该蛋白是一个I型跨膜分子;在细胞外区段,含有一个免疫球蛋白V区;在细胞内区段,有LCYADL和VSYAAL结构,它符合V/L/IxYxxL/V这一免疫受体中酪氨酸相关的抑制型基序ITIM;根据这一分子的结构特征,认为其为免疫球蛋白超家族中新的抑制性受体。因为本发明人以往曾命名一个与CMRF-35A同源的分子为DIgR1(Luo K,et.al.DIgR1,a novel membrane receptorof the immunoglobulin gene superfamily,is preferentially expressed by antigen-presenting cells.Biochem Biophys Res Commun.2001;287(1)35-41),所以命名这一与CMRF-35H同源的新分子为DIgR2。
Northern、RT-PCR分析提示DIgR2广泛表达在正常组织中,但表达丰度较低,除在单核巨噬细胞系未检测到表达信号外,在各种造血细胞系和部分肿瘤细胞系均有不同程度的表达。
原核表达DIgR2蛋白后制备、纯化了抗DIgR2的多克隆抗体。Western检测显示DIgR2在体内是一糖基化蛋白,分子量约60kDa,以单体形式存在;同时通过基因转染真核细胞,间接免疫荧光检测确定DIgR2为一细胞膜蛋白。
此外,利用免疫共沉淀证实DIgR2胞内段的ITIM具有结合SHP-1的潜在能力,提示DIgR2是一个新型抑制性受体。分别用抗体阻断和Fc融合蛋白竞争性阻断实验初步证明DIgR2对于DC的成熟过程中MHCII类分子I-Ab和共刺激分子CD80(B7-1)的表达起抑制作用,从而抑制DC刺激T细胞增殖的能力,最终有可能对于免疫应答起负性调控作用。
本发明的研究提示,DIgR2可能与其他免疫抑制性受体一样,通过其胞内区的ITIM基序传导调节信号,调控多种生理和病理活动,具潜在的抗自身免疫性疾病、抗肿瘤,抗炎症作用。因此,DIgR2蛋白或其相关的拮抗剂、激动剂等可为治疗自身免疫性疾病、肿瘤、炎症、神经系统和心血管病等疾病提供新的免疫诊断和靶向治疗途径,因而具有巨大的应用前景。
下面结合具体实施例,进一步阐述本发明。应理解,这些实施例仅用于说明本发明而不用于限制本发明的范围。下列实施例中未注明具体条件的实验方法,通常按照常规条件如Sambrook等人,分子克隆实验室手册(New YorkColdSpring Harbor Laboratory Press,1989)中所述的条件,或按照制造厂商所建议的条件。
实施例1小鼠DIgR2 cDNA的克隆用Trizol试剂(Invitrogen公司)提取小鼠树突状细胞总RNA,经逆转录形成cDNA后,用上游引物5′-GGAATTCTGTTCTCGCTGGCAGGCTC-3′(SEQ IDNO3)和下游引物5′-GCTCTAGAAGCCGCCTTCAGAGA CCAAGATT-3′(SEQID NO4)进行PCR扩增。扩增参数为94℃30秒、57℃30秒、72℃45秒,30个循环后PCR产物行2%琼脂糖凝胶电泳初步确认。以EcoRI/XbaI酶切后,插入pGEM-3Z载体,用双脱氧法测定随机挑选克隆的5′末端的序列。将测定的cDNA序列与已有的公共DNA序列数据库进行比较,结果发现此DNA序列为新的全长cDNA。计算机分析表明,全长cDNA是一个新的cDNA序列(如SEQID NO1所示),编码一个新的蛋白质(如SEQ ID NO2所示)。此蛋白质被命名为小鼠免疫抑制性受体DIgR2(DC-derived Ig-like receptor 2,DIgR2),其编码基因命名为鼠免疫抑制性受体DIgR2基因。
小鼠免疫抑制性受体DIgR2全长cDNA为1076bp,包括63bp的5′端非编码区和20bp的3′端非编码区,编码含330个氨基酸的多肽,理论上计算未糖基化的成熟分子的分子量约为36.3kD。小鼠免疫抑制性受体DIgR2蛋白的N端包含21个氨基酸的分泌信号肽,在79位和86位存在2个N-糖基化位点,跨膜区位于188-206位。
MHLSLLVPFL FWITGCCTAE DPVTGPEEVS GQEQGSLTVQ CRYTSGWKDY 50KKYWCQGVPQ RSCKTLVETD ASEQLVKK R VSIRD QRDF I FAVTMVDLR 100MSDAGIYWCG ITKGGLDPMF KVTVNIGPVP TMPPITSTTT IFTVTTTVKE 150TSMFPTLTSY YSDDGHGGGD SGGGEDGVGD GFLDLNV AWRM VRRQKKAAGP PSEQAQSLEG DLCYADLSLK QPRTSPGSSW 250KKGSSMSSSG KDHQEEVEYV TMALFPREEV SYAALTLAGL GQEPTYGNTG 300CPITHVPRTG LEEETTEYSS IRRPLPAAMP330(SEQ ID NO2,其中方框中残基为N-糖基化位点;单线区为信号肽;双线区为跨膜区)该序列利用ANTHEPROT和ExPASy分析软件进行分析显示,从第188位氨基酸到207位氨基酸是一个完整的跨膜区段,N端有19个氨基酸信号肽,提示该蛋白是一个I型跨膜分子(图1);在细胞外区段,含有一个免疫球蛋白V区;在细胞内区段,有LCYADL和VSYAAL结构,它符合V/L/IxYxxL/V这一免疫受体中酪氨酸相关的抑制型基序ITIM。
BLAST分析表明其与已知基因不同,同源性比较表明DIgR2与人CMRF-35H有28%相似性;其胞外段与人CMRF-35A有38%相似性,与小鼠的DIgR1有34%相似性,与鼠pIgR V1区有34%相似性,V4区有36%相似性。DIgR2与小鼠DIgR1在胞外段有34%的相似性,但在胞内段差异较大。
实施例2用RT-PCR方法进行小鼠DIgR2的细胞表达分析用Trizol试剂提取处于对数生长期相应细胞系、小鼠外周血单核细胞及经LPS刺激不同时间的小鼠外周血单核细胞来源的树突状细胞总RNA,取5μg细胞总RNA与1μg Oligo-dT12-18混合,进行反转录。反转录体系为20μl,反应结束后加80μl ddH2O进行稀释。PCR扩增DIgR2所用的引物如下有义引物5′-GGAATTCTGTTCTCGCTGGCAGGCTC-3′(SEQ ID NO3),反义引物5′-GCTCTAGAAGCCGCC TTCAGAGACCAAGATT-3′(SEQ ID NO4),同时以β-actin作为阳性对照。PCR反应体积为50μl,其中含反转录模板10μl、0.5mM引物、0.2mM dNTP和1U rTaq DNA聚合酶(Takara公司),扩增参数为95℃15秒、57℃30秒、72℃45秒,28个循环后PCR产物行2%琼脂糖凝胶电泳初步确认。DNA序列分析结果表明该PCR产物的编码DNA序列与SEQ ID NO1所示的19-1076完全相同。
结果如图2所示。RT-PCR分析提示DIgR2具有广泛表达,但表达丰度较低,除在单核巨噬细胞系未检测到表达信号外,在各种造血细胞系和部分肿瘤细胞系均有不同程度的表达(图2)。
实施例3小鼠DIgR2的Northern印迹分析按如下常规方法进行Northern印迹待检滤膜置于10ml经68℃预热的杂交液,在杂交炉(Bellco)中于68℃预杂交30分钟;将标记好的cDNA探针于95~100℃变性2~5分钟,置冰上迅速冷却后加入杂交液(cDNA探针终浓度为2~10ng/ml或1~2×106cpm/ml),充分混匀,于68℃杂交2小时。杂交结束后,滤膜用2×SSC、0.05%SDS室温淋洗数次,继振荡冲洗30~40分钟,其间更换洗液数次。随后用0.1×SSC、0.1%SDS于50℃振荡冲洗20~40分钟。最后滤膜用塑料保鲜膜包裹,于-70℃曝光X线胶片24~48小时。
Northern印迹杂交结果显示DIgR2 mRNA存在1.4kb和3.0kb的转录本,在心、脑、脾脏、肝脏、肺脏、骨骼肌、肾脏、睾丸等许多正常组织中有不同程度表达,这表明DIgR2蛋白是一种特定表达的蛋白(图3)。
实施例4小鼠DIgR2重组表达在该实施例中,以实施例1中的全长质粒DNA为模板,用序列如下的5′和3′端的PCR寡核苷酸引物进行扩增,获得小鼠DIgR2 DNA作为插入片段。
PCR反应中使用的5′端寡核苷酸引物序列为5′-GGATCCATAGTCACAGGTCC-3′(SEQ ID NO5)该引物含有BamH I限制性内切酶的酶切位点,在该酶切位点之后是小鼠DIgR2的部分编码序列;3′端引物序列为5′-GAATTCGGAGCACACTGAGATCCAG-3′(SEQ ID NO6)该引物含有EcoR I限制性内切酶的酶切位点和小鼠DIgR2的部分编码序列。
将获得的PCR产物纯化后经BamH I/EcoR I酶切再与质粒pGEM-3ZF按常规方法重组并转化至感受态大肠杆菌BL21,挑取阳性克隆鉴定后纯化并测序(ABI公司的377型测序仪,BigDye Terminator试剂盒,PE公司)。将正确序列的小鼠DIgR2 cDNA BamH I/EcoR I酶切片段克隆至表达载体pGEX-2T(Pharmacia公司),形成形成载体pGEX-2T-小鼠DIgR2,然后转化大肠杆菌BL21。经测序证实,已插入了所设计的DIgR2编码序列。
挑表达DIgR2的阳性BL21克隆接种于100ml 2×YTA培养基中,37℃300rpm振荡培养12-15hr,1∶10稀释于预热的2×YTA培养基继续振荡培养1.5hr,加100mM IPTG至0.1mM后30℃诱导2-6hr,5,000g 4℃离心10min去上清,置冰上用50ml 1×PBS(0.14M NaCl,2.7mM KCl,10.1mM Na2HPO4,1.8mMKH2PO4,pH7.3)重悬,超声(B.Braun Labsonic U)破碎后再加入20%Triton X-100至1%轻摇30min,然后12,000g 4℃离心10min,上清用0.8μm滤膜过滤后,过1ml 50%谷胱甘肽Sepharose 4B层析柱,1×PBS充分洗涤后,加入500ul谷胱甘肽洗脱缓冲液(10mM谷胱甘肽,50mM Tris-HCl,pH8.0)室温静置30分钟后收集洗脱液,重复洗脱2-3次,得到小鼠DIgR2蛋白。
用Edams水解法进行N-端氨基酸序列分析,结果N-端10个氨基酸与SEQ IDNO2所示的N-端10个氨基酸残基完全相同。
实施例5抗小鼠DIgR2抗体的产生将实施例4中获得的重组蛋白小鼠DIgR2用来免疫新西兰兔以产生抗体,具体方法如下。重组分子用层析法进行分离后备用。也可用SDS-PAGE凝胶电泳法进行分离,将电泳条带从凝胶中切下,并用等体积的完全Freund′s佐剂(Sigma公司)乳化。用50-100μg/0.2ml乳化过的蛋白,对小鼠进行腹膜内注射。14天后,用非完全Freund′s佐剂(Sigma公司)乳化的同样抗原,对小鼠以50-100μg/0.2ml的剂量进行腹膜内注射以加强免疫。每隔14天进行一次加强免疫,至少进行三次。获得的抗血清的特异反应活性用它在体外沉淀小鼠DIgR2基因翻译产物的能力加以评估。结果发现,抗体可特异性地与本发明蛋白发生结合。
实施例6抗DIgR2多克隆抗体处理DC后对DC表型影响的FACS分析将实施例5中得到的多抗以50μg/ml(以正常兔IgG作为对照)处理新鲜分离的小鼠骨髓细胞,抗体孵育的温度为37℃,时间为2小时,结束后以PBS洗3遍,经多抗处理的小鼠骨髓细胞在有2ng/ml IL-4(Sigma公司)和10ng/mlGM-CSF(Sigma公司)的培养基中培养,8天后收集DC并用FACS检测DC的表面MHC类分子和共刺激分子的表达。
结果表明,与对照组比较,MHC-II类分子I-Ad和共刺激分子CD80(B7-1)的表达明显提高;CD86(B7-2)有升高的趋势,而CD11c和CD54表达量没有变化(图4)。
实施例7混合淋巴细胞反应(MLR)同实施例6处理DC,得到的DC经3000rads的60Co照射后,以不同比例(1∶10,1∶100,1∶1000)与同种异型T细胞在96孔板中进行混合淋巴细胞反应,每孔T细胞数为2×105/100μl,总体积为200μl,共培养4天,在培养结束前18小时每孔加入1μCi3H-TdR(Amersham公司)。结束后以多头细胞收集仪收集至玻璃纤维膜上,用β计数仪检测3H掺入值。
结果表明,与对照比较,经过抗DIgR2多克隆抗体处理过的DC对T细胞增殖的刺激能力显著增强,表明经过DIgR2多抗阻断过的DC的抗原提呈功能增强,从而证明DIgR2对DC的抗原提呈功能起负调控作用(图5)。
在本发明提及的所有文献都在本申请中引用作为参考,就如同每一篇文献被单独引用作为参考那样。此外应理解,在阅读了本发明的上述讲授内容之后,本领域技术人员可以对本发明作各种改动或修改,这些等价形式同样落于本申请所附权利要求书所限定的范围。
序列表<110>浙江大学免疫学研究所<120>树突状细胞来源的免疫抑制性受体,其编码序列及用途<130>031801<160>6<170>PatentIn version 3.1<210>1<211>1076<212>DNA<213>智人(Homo sapiens)<220>
<221>CDS<222>(64)..(1053)<223>
<400>1aggagtggag catgtagcct gttctcgctg gcaggctcca ccaaggtgac ccggtgtgag60aag atg cat ttg tca ttg ctg gtc ccc ttt ctc ttc tgg atc aca ggc 108Met His Leu Ser Leu Leu Val Pro Phe Leu Phe Trp Ile Thr Gly1 5 10 15tgc tgc acg gct gag gat cca gtc aca ggt cca gag gag gtg agc ggt 156Cys Cys Thr Ala Glu Asp Pro Val Thr Gly Pro Glu Glu Val Ser Gly20 25 30cag gag cag ggc tcc ttg aca gtg cag tgc cga tat acc tca ggc tgg 204Gln Glu Gln Gly Ser Leu Thr Val Gln Cys Arg Tyr Thr Ser Gly Trp35 40 45aag gat tac aag aag tac tgg tgc caa gga gtt cct cag aga tca tgt 252Lys Asp Tyr Lys Lys Tyr Trp Cys Gln Gly Val Pro Gln Arg Ser Cys50 55 60aag act ctt gtt gaa acc gat gca tca gag cag ctg gtg aag aag aac 300Lys Thr Leu Val Glu Thr Asp Ala Ser Glu Gln Leu Val Lys Lys Asn65 70 75cgt gtg tcc atc agg gac aac cag aga gac ttc atc ttc gca gtg acc 348Arg Val Ser Ile Arg Asp Asn Gln Arg Asp Phe Ile Phe Ala Val Thr80 85 90 95
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<221>misc_feature<222>(1)..(28)<223>引物<400>6gaattcggag cacactgaga tccag 2权利要求
1.一种分离的DIgR2多肽,其特征在于,它包含具有SEQ ID NO2氨基酸序列的多肽、或其保守性变异多肽、或其活性片段、或其活性衍生物。
2.如权利要求1所述的多肽,其特征在于,该多肽选自下组(a)具有SEQ ID NO2中1-330位或22-330位氨基酸序列的多肽;(b)将SEQ ID NO2氨基酸序列经过一个或多个氨基酸残基的取代、缺失或添加而形成的,且具有负调控免疫应答的功能的由(a)衍生的多肽。
3.一种分离的多核苷酸,其特征在于,它包含一核苷酸序列,该核苷酸序列与选自下组的一种核苷酸序列有至少70%相同性(a)编码如权利要求1和2所述多肽的多核苷酸;(b)与多核苷酸(a)互补的多核苷酸。
4.如权利要求3所述的多核苷酸,其特征在于,该多核苷酸编码具有SEQ IDNO2中1-330位或22-330位所示氨基酸序列的多肽。
5.如权利要求3所述的多核苷酸,其特征在于,该多核苷酸的序列选自下组的一种(a)具有SEQ ID NO1中64-1056位的序列;(b)具有SEQ ID NO1中1-1076位的序列;(c)具有SEQ ID NO1中127-1056位的序列。
6.一种载体,其特征在于,它含有权利要求3所述的多核苷酸。
7.一种遗传工程化的宿主细胞,其特征在于,它含有权利要求6所述的载体。
8.一种DIgR2多肽的制备方法,其特征在于,该方法包含(a)在表达条件下,培养权利要求7所述的宿主细胞;(b)从培养物中分离出DIgR2多肽。
9.一种能与权利要求1所述的小鼠DIgR2多肽特异性结合的抗体。
10.一种药物组合物,其特征在于,它含有安全有效量的权利要求1所述的多肽以及药学上可接受的载体。
全文摘要
本发明涉及了一种新型免疫抑制性受体DIgR2(DC-derived Ig-like receptor2,DIgR2)。本发明提供编码此蛋白分子的多核苷酸和经重组技术产生这种蛋白分子的方法。本发明还公开了编码这种新型免疫抑制性受体DIgR2分子的多核苷酸的用途。本发明证实了DIgR2对于免疫应答起负性调控作用。本发明还公开了抗此蛋白分子用于疾病的诊断及治疗的策略,特别是可用于癌症的诊断和治疗。
文档编号C12N15/12GK1566149SQ0312956
公开日2005年1月19日 申请日期2003年6月27日 优先权日2003年6月27日
发明者罗坤, 夏大静, 李楠, 曹雪涛 申请人:浙江大学免疫学研究所
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