专利名称：用半胱氨酸合成酶基因制备富含丝氨酸的蛋白质的方法
技术领域：
本发明涉及富含丝氨酸的蛋白质的制备方法，其包括培养含半胱氨酸合成酶(cysK)基因和编码异种蛋白基因的细菌。更具体而言，本发明涉及一种制备富含丝氨酸的蛋白质的方法，其包括培养既含富含丝氨酸的异种蛋白基因又含半胱氨酸合成酶(cysK)基因的细菌，并从中分离富含丝氨酸的异种蛋白。
背景技术：
E.coli是合成和制备异种蛋白的常用菌株，通过重组技术该菌株被用于生产蛋白质，诸如干扰素，白介素2，集落刺激因子，生长激素，胰岛素样生长因子和人血清白蛋白的制备中。为了能在E.coli中有效得制备异种蛋白，需要有表达异种蛋白的质粒载体，适宜的培养条件，抑制所制得的异种蛋白降解的条件及类似条件，目前已经开发出了多种满足这些必要条件的系统(system)(Weickert et al.，Curr.Opin.Biotechnol.，7494-9,1996)。
然而，还存在一个问题，当使用目前常规的方法时，很难提高制备异种蛋白的产率，这是因为诱导表达后需要大量的时间。为了克服这一问题已付出了很多努力，但仍没有见到令人满意的结果的报导。
因此需要继续开发一种能够得到高产率的，由E.coli制备异种蛋白的方法。
鉴于此，本发明人通过研究开发了一种能够得到高产率的，由E.coli制备异种蛋白的方法。我们发现在E.coli中制备富含丝氨酸的异种蛋白时，通过使编码富含丝氨酸的异种蛋白基因和来源于细菌的半胱氨酸合成酶(cysK)基因共表达，能够使制备富含丝氨酸的异种蛋白的产率得以提高，从而完成本发明。
发明内容
本发明的目的是提供一种制备异种蛋白的方法，包括培养一种既含cysK基因又含编码异种蛋白基因的细菌。
本发明的另一个目的是提供一种用包含编码异种蛋白基因的重组载体和包含cysK基因的重组载体同时进行转化的细菌，和一种用既含cysK基因又含编码异种蛋白基因的重组载体进行转化的细菌。
本发明的再一目的是提供一种制备异种蛋白的方法，其是通过用cysK基因或包含cysK基因的重组载体进行转化微生物来制备的。
根据本发明，上述目的及其它目的可以通过提供一种制备异种蛋白的方法得以实现，该方法包括培养一种包含cysK基因和编码异种蛋白基因的细菌。
根据本发明，细菌可以用一种包含cysK基因和编码异种蛋白基因的载体进行转化。任选地，细菌还可以通过包含cysK基因的载体和包含编码异种蛋白基因的载体进行转化。
本发明的另一个方案在于提供一种包含cysK基因和编码异种蛋白基因的重组载体。本发明的又一个方案在于提供一种细菌，该细菌用包含cysK基因的载体和包含编码异种蛋白基因的载体进行转化。
本发明的再一个方案在于提供cysK基因或包含cysK基因的重组载体在被转化的微生物中制备异种蛋白的方法中的应用。
根据本发明，cysK基因是从E.coli中得到，异种蛋白选自富含丝氨酸的蛋白质。
富含丝氨酸的蛋白质包括肥胖蛋白(leptin)、IL-12P40(白细胞介素12 β链)，但不受限于此。
在此，对本发明进行详细描述。
首先，对本发明使用的术语进行如下定义。
本发明所用的术语“富含特定氨基酸的蛋白质”指的是一种蛋白质，它包含一种超过E.coli中平均氨基酸组成的特定氨基酸(Koonin et al.，inEscherichia coli and SalmonellaCellular and Molecular Biology(eds.Neidhardt，F.C.et al.)American Society for Microbiology，Washington，DC，2203-17，1996)。所用术语“富含丝氨酸的蛋白质”定义为蛋白质中的丝氨酸在氨基酸成分中的含量为10％或更多，且在蛋白质中的含量至少排名第二。
根据目前了解的事实，如果通过DNA重组技术在E.coli中生产富含丝氨酸的蛋白质如肥胖蛋白，制备肥胖蛋白的方法涉及高浓度培养转化的E.coli，肥胖蛋白表达的诱导，肥胖蛋白的表达，转化的E.coli的分离和E.coli中肥胖蛋白的提取。制备肥胖蛋白时，从诱导表达起至达到最大的含量需要超过8个小时。本发明通过二维电泳确认了需要如此长的时间表达是因为，当产生肥胖蛋白的E.coli以高浓度培养时抑制了E.coli中的丝氨酸家族氨基酸的生物合成途径(图1)。
本发明的发明人发现通过编码促进丝氨酸家族氨基酸合成的半胱氨酸合成酶基因和富含丝氨酸的蛋白质基因的共表达，与只表达一种富含丝氨酸的蛋白质基因相比，可使制备富含丝氨酸蛋白质的时间缩短，并由此导致产率的增加。
通过以下实施例对本发明进行详细描述。然而，对于本领技术人员而言，显然，这些实施例只是用于举例说明，本发明并不受限于此。
结合如下附图进行详细描述能够充分理解本发明进一步的目的和优点图1是显示用重组E.coli诱导肥胖蛋白表达之前和之后的细胞中GlyA和CysK蛋白质的表达水平的曲线图。
图2是pAC104CysK质粒的基因图。
图3是pEDIL-12p40质粒的基因图。
图4a是在培养能产生肥胖蛋白的E.coli BL21(DE3)(pEDOb5)时，随着培养时间的不同，细胞密度、干细胞重量和异种蛋白数量发生变化的曲线图。
图4b是在培养能产生肥胖蛋白与共表达cysK基因的重组E.coliBL21(DE3)(pEDOb5)(pAC104CysK)时，随着培养时间的不同，细胞密度、干细胞重量和异种蛋白数量发生变化的曲线图。
图5a是显示E.coli蛋白中的氨基酸组成的曲线图。
图5b是显示肥胖蛋白中的氨基酸组成的曲线图。
图5c是显示G-CSF中的氨基酸组成的曲线图。
图5d是显示IL-12p40中的氨基酸组成的曲线图。
图6a是在培养能产生IL-12p40的重组E.coli BL21(DE3)(pEDIL-12p40)时，随着培养时间的不同，细胞密度、干细胞重量和异种蛋白数量发生变化的曲线图。
图6b是在培养能产生IL-12p40与共表达cysK基因的重组E.coliBL21(DE3)(pEDIL-12p40)(pAC104CysK)时，随着培养时间的不同，细胞密度、干细胞重量和异种蛋白数量发生变化的曲线图。
具体实施例方式
实施例1利用二维电泳测定肥胖蛋白生产菌的生理性变化根据已知方法，采用二维电泳比较E.coli BL21(DE3)(pEDOb5)中的人源肥胖蛋白过量产生之前和之后的蛋白质水平的变化(Hochstrasseret al.，Anal.Biochem.，173424-5，1988；Han et al.，J.Bacteriol.，183301-8,2001)即在E.coliBL21(DE3)(pEDOb5)预培养之后，诱导肥胖蛋白的表达并在高浓度下进行培养。取出诱导表达之前和之后的培养肉汤。每一种培养肉汤在4℃，以6000rpm转速下离心5分钟，得到的沉淀物用500μl的低盐缓冲液(KCl 3mM，KH2PO41.5mM，NaCl 68mM，NaH2PO49mM)清洗。然后，将产物悬浮在200μl的TE缓冲液中(Tris-HCl 10mM，EDTA 1mM)。悬浮液用声波降解器进行声波降解，并在4℃时，以12000rpm转速下离心10分钟。弃去上清液，真空干燥固体并在-20℃下储存，作为随后的测试样品备用。
将200μg准备好的样品溶解在340μl调节后的IEF溶液中(尿素9M，CHAPS 0.5％(w/v)，DTT 10mM，Bio-lyte pH3-10 0.2％(w/v)，溴苯酚兰0.001％(w/v))，得到一个17cm的电泳带(ReadyStripTMIPG Strips PH3-10，Bio-Rad Laboratories Inc.，USA)。在20C下，水化该电泳带达12小时，进行等电聚焦。然后，将电泳带浸入平衡的缓冲液I(尿素6M，SDS 2％(w/v)，Tris-HCl(pH8.8)0.375M，甘油20％(V/V)，DTT 130mM)中震摇15分钟，然后浸入平衡的缓冲液II(尿素6M，SDS 2％(w/v)，Tris-HCl(pH8.8)0.375M，甘油20％(V/V)，碘化乙酰胺135mM，溴苯酚兰3.5M)中震摇15分钟。将电泳带放置在SDS凝胶上按分子量进行分离。
将二维凝胶用银染色试剂盒染色(AmershamBiosciences，Uppsala，Sweden)，用扫描仪扫描(GS710 Calibrated Imaging Densitometer，Bio-RadLaboratories Inc.，USA)，用Melanie II软件(Bio-Rad Laboratories Inc.，USA)对蛋白质进行定量分析。将需要的蛋白质从二维凝胶中选择性分出以进行蛋白质分析，清洗并真空干燥，然后在37℃下与胰蛋白酶反应8个小时或更长。用MALDI-TOF MS(基质辅助镭射解吸附/离子化飞行时间质谱仪)(VoyagerTMBiospectrometry，Perseptive Biosystems Inc.，USA)测定由胰蛋白酶切的肽分子量。将肥胖蛋白表达之前的蛋白质水平与肥胖蛋白中最大含量的蛋白水平进行比较。
结果显示，在肥胖蛋白基因表达后基本所有的氨基酸的合成都被抑制了。更具体而言，涉及合成丝氨酸家族氨基酸(CysK，GlyA)的酶水平由于肥胖蛋白的过量产生而大量的减少，其中，GlyA减少了2.5倍，CysK减少了2.3倍(图1)。丝氨酸家族氨基酸的生物合成由于肥胖蛋白的过量产生而被严重地抑制了，因此，为了使产生肥胖蛋白，这种富含丝氨酸的蛋白质的菌株中与丝氨酸家族氨基酸生物合成的减少相关的代谢得以促进，导入了编码cysK蛋白的cysK基因，其是该途径中的关键酶。
实施例2导入cysK基因的重组质粒的制备表达CysK蛋白的重组质粒pAC104CysK的制备如下首先，以E.coliBL21(DE3)染色体为模板进行聚合酶链反应(PCR)，引物15’-gcgaattcatgagtaagatttttgaagataa-3’(SEQ ID NO1)和引物25’-gcgaattctatatactgttgcaattctttctc-3’(SEQ ID NO2)。在95℃下，进行第一次变性达5分钟；第二次变性在95℃达50秒，在55℃时退火1分钟，在72℃延伸1分钟30秒，重复30个循环；最后在72℃延伸5分钟。这样就得到了由限制性内切酶EcoRI酶切的cysK基因，将得到的片段插入具有gntT104启动子的质粒p10499A(Park et al.，FEMS Microbiol.Lett.，214217-22，2002)中，其被相同的限制性内切酶消化，从而形成质粒p104CysK。然后，质粒被限制性内切酶EcoRV和ScaI酶切，并被克隆到用限制性内切酶EcoRV消化的质粒pACYC184中。产物被转移至E.coli XL1-蓝中以制备重组的质粒pAC104CysK(图2)。
实施例3导入IL-12p40基因的重组质粒的制备按如下方法制备重组质粒pEDIL-12p40，以表达IL-12p40(白细胞介素12β链)蛋白。用包含人白细胞介素β链基因的质粒pUC18/p40为模板，及引物35’-ggctagcattaatgatatgggaactgaagaaagat-3’(SEQ ID NO3)和引物45’gccggatccttattaactgcagggcacaga-3’(SEQ ID NO4)通过实施例2相同的方法进行PCR，得到IL-12p40基因。该基因用限制性内切酶AdeI和BamHI消化。将得到的片段嵌入肥胖蛋白表达载体中(Jeong and Lee，Appl.Environ.Microbiol.，653027-32,1999)以构成pEDIL-12p40，其中该载体已被限制性内切酶NdeI和BamHI消化(图3)。
实施例4通过cysK的共表达系统制备人肥胖蛋白将实施例2制备的重组质粒pAC104Cysk和常规的肥胖蛋白表达质粒pEDOb5(Jeong and Lee，Appl.Environ.Microbiol.65，3027-32，1999)同时转化至细菌E.coli BL21(DE3)中来制备E.coli BL21(DE3)(pEDOb5)(pAC104Cysk)。培养重组的E.coli以制备肥胖蛋白。用只有常规的肥胖蛋白表达质粒pEDOb5转化的E.coli BL21(DE3)(pEDOb5)作为对照，并使其在相同的条件下进行培养而产生肥胖蛋白。
将每一个被转化的E.coli菌株接种至10mL的R/2介质中(KH2PO46.75g/L，(NH4)2HPO42g/L，柠檬酸0.85g/L，痕量金属溶液(HCl 5M，FeSO4·7H2O 10g/L，CaCl22g/L，ZnSO4·7H2O 2.2g/L，MnSO4·5H2O 0.54g/L，CuSO4·5H2O 1g/L，(NH4)Mo7O24·4H2O 0.1g/L，Na2B4O7·10H2O 0.02g/L)，5mL/L，MgSO4·7H2O 0.7g/L)，其含有10g/L的葡萄糖，在37℃下培养过夜，转移至200mL的含有10g/L葡萄糖的R/2介质中，在37℃下培养8小时。然后，将200mL的已在R/2介质中培养的重组E.coli接种到1.8L的含10g/L葡萄糖的R/2介质中，在培养箱中于37℃和pH6.88的条件下进行培养，培养箱备有包含700g/L的葡萄糖和20g/L的MgSO4·7H2O的溶液。储备液根据pH的变化而供给。例如，当介质的pH值为6.88或更高，储备液被自动调节并以10mL/分钟的速度充入，以致发酵箱中葡萄糖的浓度为0.7g/L。空气和纯净氧气可被自动调节和供给，以保持介质中溶解的氧气(DO)占40％。在600nm下用分光光度仪测定培养肉汤的光学密度(O.D.)为30时，加入1mM的IPTG(异丙基-β-硫代半乳糖苷)以诱导肥胖蛋白的表达。在所有的培养物中，用100mg/L的氨卡青霉素和30mg/L的氯霉素稳定质粒。
在诱导肥胖蛋白表达之后，每小时取出培养肉汤。每等份都被稀释至光学密度(O.D.)为5，并在4℃，以6000rpm转速离心5分钟，得到沉淀。将沉积物悬浮在200μl的TE缓冲液中(Tris-HCl 10mM，EDTA 1mM)并按照已知方法进行12％的SDS-PAGE分析(图4a和图4b)。图4a是在培养对照组时，随着培养时间的不同，细胞密度、干细胞重量和异种蛋白数量发生变化的曲线图。图4b是在培养能产生肥胖蛋白的重组E.coli BL21(DE3)(pEDOb5)(pAC104CysK)时，随着培养时间的不同，细胞密度、干细胞重量和异种蛋白数量发生变化的曲线图，其中(■)表示细胞光学密度，(○)表示干细胞重量，(▲)表示产生的肥胖蛋白数量。如图4a所示，当肥胖蛋白表达质粒被单独表达时，肥胖蛋白的表达从诱导开始的8个小时后达到最大值。此时产率达到0.457g/L·小时。另一方面，如图4b所示，当肥胖蛋白表达质粒与pAC104CysK一起被共表达时，肥胖蛋白的表达从诱导起的2个小时后达到最大值。此时，产率达到1.56g/L·小时。
因此可证明，与常规的方法相比，根据本发明采用cysK基因共表达生产富含丝氨酸的蛋白的方法能将肥胖蛋白的产率提高3.4倍。
实施例5通过cysK-共表达系统制备富含丝氨酸的蛋白质根据报导，亮氨酸和丙氨酸是普遍存在于E.coli蛋白质中的普通成分(亮氨酸10.5％，丙氨酸9.6％)，丝氨酸平均为5.6％(图5a，图5b，图5c和图5d)。图5a至图5d的曲线图表示目前所知的蛋白质中氨基酸的组成比率，其中，图5a显示了E.coli蛋白质中氨基酸的组成比率，图5b显示了肥胖蛋白中氨基酸的组成比率，图5c显示了G-CSF中氨基酸的组成比率，图5d显示了IL-12p40中氨基酸的组成比率。
如图5b所示，肥胖蛋白这种典型的富含丝氨酸的蛋白质包含异常多的丝氨酸，其中丝氨酸的组成比率为11.6％。如图5c所示，另一个已知的蛋白质hG-CSF(人类粒细胞集落刺激因子)包含19％的主要成分亮氨酸和12％的丙氨酸，其与E.coli中的蛋白质相类似，尽管它的丝氨酸的含量为8.2％。如图5d所示，另一个蛋白质IL-12p40，也是一种已知的富含丝氨酸的蛋白质，其含11.1％的丝氨酸。
为了确认实施例4的结果是否能被应用于所有富含丝氨酸的蛋白质制备中，本发明人将hG-CSF和富含丝氨酸的蛋白质IL-12p40以相同的方法制备(Jeong and Lee，Protein Expr.Purif.，23311-8,2001)。
对于hG-CSF，结果不同于实施例4，因为蛋白质没有cysK基因的共表达，在短时间内(3个小时)蛋白质的产生达到了高峰。然而，IL-12p40表现出了类似于由cysK基因共表达的肥胖蛋白产率增加的效果(图6a和图6b)。
图6a是在培养能产生IL-12p40的重组E.coli，BL21(DE3)(pEDIL-12p40)时，随着培养时间的不同，细胞密度、干细胞重量和异种蛋白数量发生变化的曲线图。图6b是在培养能产生IL-12p40和共表达cysK基因的重组e.coliBL21(DE3)(pEDIL-12p40)(pAC104CysK)时，随着培养时间的不同，细胞密度、干细胞重量和异种蛋白数量发生变化的曲线图，其中(■)表示细胞光学密度，(○)表示干细胞重量，(▲)表示制备的白细胞介素12 β链的数量。如图6a所示，当采用实施例4的方法制备IL-12p40，而不是采用实施例3中制备pEDIL-12p40的方法时，从诱导时起的7个小时后IL-12p40的表达达到了高峰。此时产率为0.090g/L·小时。另一个方面，如图6b所示，当IL-12p40依据实施例4的方法制备，而不是采用实施例2中制备pAC104CysK和实施例3中制备pEDIL-12p40的方法，从诱导起的2个小时后表达达到高峰，此时的最大产率为0.349g/L·小时。
因此，根据本发明由cysK基因的共表达制备富含丝氨酸的蛋白质的方法能够提高IL-12p40的产率，其与常规方法相比提高了大约3.9倍。
如上所述，本发明的具体部分给予了详细的解释。然而，对于本领域技术人员而言，这些具体描述只是本发明的优选实施例，本发明并不受限于此。例如，作为过度表达半胱氨酸合成酶的方法，将cysK基因导入一种异种蛋白表达载体中或融合至宿主细胞的染色体中，可以使cysK基因的表达数量达到相同效果。
正如详细描述与证明的，本发明提供了制备异种蛋白的方法，其包括培养含有cysK基因和编码异种蛋白基因的细菌。更具体而言，本发明提供了一种制备富含丝氨酸的异种蛋白的方法，包括培养一种用含有富含丝氨酸的异种蛋白基因的一种表达载体和包含cysK基因的一种表达载体转化的细菌，或一种用既含cysK基因又含编码富含丝氨酸的异种蛋白基因的表达载体转化的细菌，以及从中分离异种蛋白。
根据本发明，当采用重组的E.coli制备富含丝氨酸的异种蛋白，可大大地缩短制备最大量的蛋白所需的时间。因此，本发明有望被广泛采用以增加富含丝氨酸的异种蛋白的产率。
SEQUENCE LISTING<110>韩国科学技术院<120>用半胱氨酸合成酶基因制备富含丝氨酸的蛋白质的方法<130>PI034728C<150>KR10-2003-0008689<151>2003-02-12<160>4<170>KopatentIn 1.71<210>1<211>31<212>DNA<213>Artificial Sequence<220>
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权利要求
1.一种制备异种蛋白的方法，其包括在培养介质中培养含有半胱氨酸合成酶(cysK)基因和编码异种蛋白基因的细菌，由此产生异种蛋白，并收集异种蛋白的步骤。
2.根据权利要求1的方法，其中，细菌是一种用既含cysK基因又含编码异种蛋白基因的载体转化的细菌。
3.根据权利要求1所述的方法，其中，细菌是用一种含cysK基因的载体和一种含编码异种蛋白的基因的载体转化的细菌。
4.根据权利要求1所述的方法，其中，cysK基因来源于E.coli。
5.根据权利要求1所述的方法，其中，异种蛋白是富含丝氨酸的蛋白。
6.根据权利要求5所述的方法，其中，富含丝氨酸的蛋白是肥胖蛋白或IL-12p40。
7.一种重组载体，其既含cysK基因又含编码异种蛋白的基因。
8.一种用权利要求7中的重组载体转化的细菌。
9.一种用含cysK基因的载体和含编码异种蛋白基因的载体转化的细菌。
10.根据权利要求7的重组载体，其选自如图2所示的质粒pAC104CysK，或如图3所示的质粒EDIL-12p40。
11.根据权利要求2所述的方法，其中，cysK基因来源于E.coli。
12.根据权利要求3所述的方法，其中，cysK基因来源于E.coli。
13.根据权利要求2所述的方法，其中，异种蛋白是富含丝氨酸的蛋白。
14.根据权利要求3所述的方法，其中，异种蛋白是富含丝氨酸的蛋白。
全文摘要
本发明涉及一种制备异种蛋白的方法，其包括培养既含有半胱氨酸合成酶(cysK)基因，又含编码异种蛋白基因的细菌。本发明包含培养用含cysK基因的表达载体和含编码异种蛋白基因的表达载体转化的细菌，或一种用既含cysK基因又含编码异种蛋白的基因的表达载体转化的细菌，并从其中分离异种蛋白的步骤。本发明有望被广泛应用于提高富含丝氨酸的异种蛋白的制备产率。
文档编号C12P21/02GK1521264SQ0315877
公开日2004年8月18日 申请日期2003年9月24日 优先权日2003年2月12日
发明者李相烨, 韩美正 申请人:韩国科学技术院