富含谷氨酰胺的玉米种子蛋白质和启动子的制作方法

专利名称：：富含谷氨酰胺的玉米种子蛋白质和启动子的制作方法
技术领域：
：本发明大体上涉及从玉蜀黍(Zeamays)中分离出的核酸。更具体地，本发明涉及编码玉蜀黍的谷类种子储存蛋白的谷醇溶蛋白家族成员的核苷酸序列，以及涉及所述谷醇溶蛋白家族成员的启动子的核苷酸序列。本发明也提供了在转基因植物中使用所述核酸分子的方法。缩写表2，4-D-2，4-二氯苯氧乙酸AMV-苜蓿花叶病毒β-ME-β-巯基乙醇BiP-人免疫球蛋白重链结合多肽bp-碱基对CAB-叶绿素a/b结合CaMV-花椰菜花叶病毒CDPK-玉米钙依赖性蛋白激酶cM-厘摩CMV-巨细胞病毒DEAE-二乙基氨乙基DHFR-二氢叶酸还原酶DTT-二硫苏糖醇EDTA-乙二胺四乙酸ELISA-酶联免疫吸附检测法EMCV-脑炎心肌炎病毒EPSP-5-烯醇-丙酮酰莽草酸-3-磷酸(5-enol-pyruvylshikimate-3-phosphate)ER-内质网EST-表达序列标记GUS-β-葡糖苷酸酶HEPES-N-(2-羟乙基)哌嗪-N′-(2-甲磺酸)HSPs-高积分序列对HSV-tk-单纯疱疹病毒胸苷激酶kb-千碱基kcat-催化常数kDa-千道尔顿km-米氏常数MCMV-玉米萎黄病斑点病毒MDMV-玉米矮花叶病毒MTL-金属硫蛋白样ORF-开放阅读框PAGE-聚丙烯酰胺凝胶电泳PEG-聚乙二醇PEPC-磷酸烯醇羧化酶pgk-磷酸甘油酸激酶Protox-原卟啉原氧化酶psi-磅/平方英寸RFLPs-限制性片段长度多态性RUBISCO-核酮糖-1，5-二磷酸羧化酶/氧合酶SDS-十二烷基硫酸钠SDS-PAGE-十二烷基硫酸钠聚丙烯酰胺凝胶电泳SSC-标准盐枸橼酸SSPE-标准盐-磷酸-EDTATEV-烟草蚀纹病毒Tm-热熔点TMTD-二硫四甲基秋兰姆TMV-烟草花叶病毒氨基酸缩写、密码子和功能等价密码子氨基酸3字母1字母密码子丙氨酸AlaAGCA；GCC；GCG；GCU精氨酸ArgRAGA；AGG；CGA；CGC；CGG；CGU天冬酰胺AsnNAAC；AAU天冬氨酸AspDGAC；GAU半胱氨酸CysCUGC；UGU谷氨酸GluEGAA；GAG谷氨酰胺GlnQCAA；CAG甘氨酸GlyGGGA；GGC；GGG；GGU组氨酸HisHCAC；CAU异亮氨酸IleIAUA；AUC；AUU亮氨酸LeuLUUA；UUG；CUA；CUC；CUG；CUU赖氨酸LysKAAA；AAG甲硫氨酸MetMAUG苯丙氨酸PheFUUC；UUU脯氨酸ProPCCA；CCC；CCG；CCU丝氨酸SerSACG；AGU；UCA；UCC；UCG；UCU苏氨酸ThrTACA；ACC；ACG；ACU色氨酸TrpWUGG酪氨酸TyrYUAC；UAU缬氨酸ValVGUA；GUC；GUG；GUU
背景技术：
农作物性状的功能基因组学的一个目的是鉴定相关的农作物性状基因，例如能给农作物植物提供有用的农学性状的基因。这些农学性状包括，但不限定于，增加产量(不论是数量或质量方面的产量)、增加养分摄取和代谢效率、增加或变更用于食品、饲料、纤维、或加工的植物组织中的营养组分、增加用于农业或工业加工的实用性、增强对植物疾病的抗性、增强对不良环境条件的耐受性(不良环境条件包括但不限定于干旱、过冷、过热、或土壤盐分过量或极酸或极碱的环境)、植物构造或发育的变更(发育时相的变化)。通过转基因或非转基因方法对这些所鉴定的性状基因的配置(deployment)可以大大地提高农作物植物在农业方面的益处。对于人类和动物的消费量而言，谷类植物是植物中最为重要的农作物植物。在水稻、玉米、小麦、大麦、黑麦、燕麦和其他农业上重要的单子叶植物(包括蜀黍)中都观察到了基因组同线性(大染色体片段内的基因序列的保守性)(见例如Kellogg，1998；Songetal.，2001，在此将其引用)，这有助于依据单个谷类基因的序列从不同的谷类物种中绘制并分离出定向进化同源基因。在谷类物种中，水稻具有最小的基因组(约420Mb)，最近它已经成为了公共的和私人的基因组和EST测序工作的重点，见Goffetal.，2002。对在谷类植物发育中具有重要作用的基因的鉴定是目前农业工作者的工作重点。其他的信息也可以来源于对各种重要植物的基因组的分析。例如，对控制基因表达的调节元件的鉴定也可以造成控制植物基因组在特殊组织中表达相关多肽的能力。具体地，某些植物正成为被选定用于大规模生产商业上重要的蛋白(例如酶)的生物体。这个策略具有的优点是胚乳细胞在种子发育过程中合成了大量的玉米醇溶蛋白家族的储存蛋白的事实，所述储存蛋白存积在称作蛋白体的结构内，所述蛋白体源自于内质网。这些蛋白体与在谷类植物的湿磨中所产生的谷蛋白(gluten)部分共分镏(cofractionate)。因此存在着生成大量的与谷蛋白相关形式的重组酶的可能，或者存在着在从谷蛋白相关的或固定的状态中释放出重组酶活性之后，生成大量的更加纯化形式的重组酶的可能。所需的是用于在植物细胞中表达异源核苷酸序列的新方法和试剂。为了满足这些需要，在一些实施方式中，本发明提供了用于在植物细胞中直接表达异源核苷酸序列的启动子序列。也提供了利用所述启动子在植物细胞中表达异源核苷酸序列的方法。本发明针对这些与在转基因植物中表达核苷酸序列相关的问题以及其他问题。
发明内容本
发明内容给出了本发明的一些实施方式，以及在多种情况中，给出了这些实施方式的变异和变更。本
发明内容只是很多的和不同的实施方式的示例。所提及的给定实施方式的一个或多个代表性的特点同样也是示例的。这样一个实施方式通常可以具有或不具有所提及的特点；同样，这些特点也可以被施用于本发明的其他实施方式中。为了避免过多的重复，本
发明内容没有罗列或提示这些特点的所有可能的组合。本发明提供了用于在植物中表达核苷酸序列的方法。在一些实施方式中，方法包括(a)将核苷酸序列可操纵地连接于包括SEQIDNO6的启动子，以产生表达盒；和(b)生成包括表达盒的转基因植物，由此在植物中表达所述核苷酸。在一些实施方式中，所述生成包括用表达盒转化植物细胞并从所转化的植物细胞中再生出植物。在一些实施方式中，所述生成包括将核苷酸序列同源重组到处于包括SEQIDNO6的启动子控制下的内源性基因座内。在一些实施方式中，通过包括表达盒的载体的生物弹射击法转化(Biolistictransformation)而进行所述转化。在一些实施方式中，载体是二元土壤杆菌表达载体。在一些实施方式中，核苷酸序列表达多肽，所述多肽选自由糖酶、纤维素酶、半纤维素酶、果胶酶、异构酶、裂合酶、蛋白酶、热休克蛋白、伴侣蛋白、植酸酶、杀虫蛋白、抗微生物蛋白、α-淀粉酶、葡萄糖淀粉酶、葡聚糖酶、葡糖苷酶、木聚糖酶、阿魏酸酯酶、半乳糖苷酶、果胶酶和凝乳酶构成的组。本发明也提供了用于在植物中表达核苷酸序列的方法。在一些实施方式中，方法包括(a)将核苷酸序列可操纵地连接于包括SEQIDNO1的启动子，以产生表达盒；和(b)生成包括表达盒的转基因植物，由此在植物中表达所述核苷酸。在一些实施方式中，所述生成包括用表达盒转化植物细胞并从所转化的植物细胞中再生出植物。在一些实施方式中，通过包括表达盒的载体的生物弹射击法转化而进行所述转化。在一些实施方式中，载体是二元土壤杆菌表达载体。本发明也提供了用于在植物中产生异源多肽的方法。在一些实施方式中，方法包括(a)生成包括与SEQIDNO6可操纵地连接的编码异源多肽的核苷酸的植物细胞；和(b)在植物细胞内表达编码异源多肽的核苷酸序列，其中在植物细胞内产生异源多肽。在一些实施方式中，所述生成包括用包括编码异源多肽的核苷酸序列的表达盒转化植物细胞。在一些实施方式中，所述生成包括将核苷酸序列同源重组到处于包括SEQIDNO6的启动子控制下的内源性基因座内，由此核苷酸序列成为与SEQIDNO6可操纵地连接。在一些实施方式中，通过包括表达盒的载体的生物弹射击法转化而进行所述转化。在一些实施方式中，载体是二元土壤杆菌表达载体。在一些实施方式中，本方法还包括从植物细胞中再生出植物。在一些实施方式中，本发明还包括从植物中分离所述多肽。在一些实施方式中，多肽位于植物细胞的内质网的蛋白体内。本发明的方法和组合物可以被用于在植物细胞中产生相关的异源多肽。在一些实施方式中，核苷酸序列编码多肽，所述多肽选自由糖酶、纤维素酶、半纤维素酶、果胶酶、异构酶、裂合酶、蛋白酶、热休克蛋白、伴侣蛋白、植酸酶、杀虫蛋白、抗微生物蛋白、α-淀粉酶、葡萄糖淀粉酶、葡聚糖酶、葡糖苷酶、木聚糖酶、阿魏酸酯酶、半乳糖苷酶、果胶酶和凝乳酶所构成的组。本发明也提供了用于将感兴趣的蛋白质导向植物细胞内的结构的方法，所述结构选自由内质网(ER)和质外体(apoplast)构成的组。在一些实施方式中，方法包括(a)将编码玉蜀黍Q蛋白的信号序列的核酸分子与编码感兴趣的蛋白质的核苷酸序列框内融合，其中编码玉蜀黍Q蛋白的信号序列的核酸分子以及编码感兴趣的蛋白质的核苷酸序列可操纵地连接于启动子，以产生植物表达构建体；和(b)用植物表达构建体转化植物细胞，由此将感兴趣的蛋白质导向所述结构。本发明也提供了用于生产营养价值增高的植物种子的方法。在一些实施方式中，方法包括(a)用包括编码SEQIDNO2的核苷酸序列、或其片段或衍生物的表达载体转化植物细胞；(b)从转化植物细胞中再生出植物；和(c)从再生植物中分离出种子，其中生成了营养价值增高的种子。在一些实施方式中，当与相同物种的未转化植物的种子比较时，营养价值增高选自由增加必需氨基酸的水平、氨基酸平衡改善、和氨基酸可消化性提高所构成的组。本发明也提供了用于将感兴趣的蛋白质导向植物内的蛋白体的方法。在一些实施方式中，方法包括(a)将编码SEQIDNO2的核苷酸序列、或其片段或衍生物的核酸分子与编码感兴趣的蛋白质的核苷酸序列框内融合，其中编码SEQIDNO2的核苷酸序列、或其片段或衍生物的核酸分子和编码感兴趣的蛋白质的核苷酸序列与启动子可操纵地连接，以产生植物表达构建体，其中相关蛋白导向植物内的蛋白体。本发明也提供了包括所述核酸分子和表达盒的分离的核酸分子、表达盒、重组载体、细胞、和转基因植物。在一些实施方式中，核酸分子和表达盒包括SEQIDNO1，在一些实施方式中，核酸和表达盒包括SEQIDNO6。在一些实施方式中，在种子内表达所述表达盒，并且所述表达盒所编码的多肽位于所述种子细胞的内质网的蛋白体内。本发明的方法和组合物可以施用于任一植物物种。在一些实施方式中，植物是单子叶植物。在一些实施方式中，单子叶植物选自由水稻、玉米、小麦、大麦、燕麦、黑麦(Rye)、粟、蜀黍、小黑麦(Triticale)、黑麦(Secale)、单粒小麦、斯佩尔特小麦、双粒小麦、Teff、Milo、亚麻、格兰马草(Grammagrass)、摩擦禾和假蜀黍所构成的组。在一些实施方式中，植物选自由水稻、小麦、大麦、黑麦、玉米、马铃薯、Canola、大豆、向日葵、胡萝卜、红薯、甜菜、黄豆、碗豆、菊苣、莴苣、卷心菜、花椰菜、绿花椰菜、芜青、萝卜、菠菜、芦笋、洋葱、大蒜、茄子、胡椒、芹菜、南瓜、西葫芦、黄瓜、苹果、梨、Quince、甜瓜、李子、樱桃、桃、油桃、杏、草莓、葡萄、红莓、黑莓、波萝、鳄梨、木瓜、芒果、香蕉、大豆、烟草、番茄、蜀黍和甘蔗构成的组。在一些实施方式中，植物是玉米。在本发明的一些实施方式中，在组织中表达所述表达盒，所述组织选自由表皮(epidermis)、根、维管组织、分生组织、形成层、皮层、木髓、叶、花、种子、及其组合所构成的组。在一些实施方式中，在种子中表达所述表达盒，并且核苷酸序列所编码的多肽位于所述种子细胞的内质网的蛋白体内。因此，本发明的一个目的是提供用于在植物中表达异源序列的试剂和方法。用本发明可以全部或部分地实现这个目的和其他目的。上面已经陈述了本发明的目的，本发明全部或部分地针对该目的，随着继续描述本说明书，结合下面最佳描述的，其他的目的将变得显而易见。图1描述了利用纯化Nov9x植酸酶的抗血清对粉提取物的Western印迹分析。印迹上的第1列描述了标准分子量(标记于左侧)的位置。A188是非转基因的玉米种子的提取物。Nov9x植酸酶(预计分子量为47kDa)被鉴定为迁移到55kDa标准物区的显著条带。在阴性对照的玉米(即A188)的粉提取物中没有检测到Nov9x植酸酶。图2描述了对从非转基因玉米的胚乳粉(endo.)或胚芽糊(embryo)中提取到的蛋白的SDS-PAGE分析。在将提取物加热到80℃20分钟之前(-)或之后(+)，将样品进行跑胶。图3是描述测定转基因玉米的种子粉中的α-半乳糖苷酶活性的条线图，所述转基因玉米种子含有包括与α-半乳糖苷酶相融合的Q蛋白氨基酸序列的融合蛋白。活性被表达为每克单一种子粉的α-半乳糖苷酶单位。图4是描述测定转基因玉米种子粉中的α-半乳糖苷酶活性的条线图，所述转基因玉米种子含有包括与α-半乳糖苷酶相融合的Q蛋白信号序列的融合蛋白。活性被表达为每克单一种子粉的α-半乳糖苷酶单位。序列表说明SEQIDNO1是Q蛋白基因的开放阅读框的核苷酸序列。SEQIDNO2是SEQIDNO1编码的氨基酸序列。SEQIDNO3是来自Q蛋白cDNA的核苷酸序列，其被用于基因组步移实验以便鉴定出Q蛋白基因的启动子(SEQIDNO6)。SEQIDNO4和5是在基因组步移试验中所采用的两种Q蛋白的特异引物的核苷酸序列。SEQIDNO6是来自Q蛋白基因的核苷酸序列，其能指导可操纵地连接的核苷酸序列的表达。SEQIDNO7是从玉米胚乳分离到的丰富的27kDa部分的N末端氨基酸序列，其与28kDa玉米谷蛋白-2(glutelin-2)(γ-玉米醇溶蛋白；GENBANK编号P04706)的氨基末端相匹配。SEQIDNO8是从玉米胚乳分离到的丰富的55kDa部分的N末端氨基酸序列。SEQIDNO9是源自猿猴病毒5(SV5)的副粘液病毒的P和V蛋白的V5表位标记的氨基酸序列。SEQIDNO10是五肽表位标记的氨基酸序列。SEQISNO11是重组Nov9x植酸酶所具有的C末端的六肽。SEQIDNO12是植酸酶表达盒的基因产物的氨基酸序列。SEQIDNO13是已经添加了5’HindIII和3’BamHI识别序列的玉蜀黍γ-玉米醇溶蛋白启动子的核苷酸序列。SEQIDNO14是pNOV4061的核苷酸序列，它是一种在γ玉米醇溶蛋白启动子的控制下编码具有γ玉米醇溶蛋白信号序列的Nov9x植酸酶的表达构建体。SEQIDNO15是pNOV2117的核苷酸序列，它是一种在玉米泛素启动子的控制下编码大肠杆菌manA磷酸甘露糖异构酶的土壤杆菌二元载体。SEQIDNO16是pNOV4325的核苷酸序列，它是一种由9个核苷酸的连接物所分开的编码γ-玉米醇溶蛋白-galA的中间质粒。SEQIDNO17是pNOV4349的核苷酸序列，它是一种依据其中已经插入Q蛋白编码序列的Pnov2117的土壤杆菌二元载体。SEQIDNO18是pNOV4328的核苷酸序列，它是在γ-玉米醇溶蛋白启动子的转录控制下编码γ-玉米醇溶蛋白信号序列的中间质粒。具体实施例方式现在，在此后通过引用所伴随的实施例将更充分地描述本发明，其中显示了本发明的代表性的实施方式。但是，本发明可以具体地表现为不同的形式，不应当将其认作为限定于对在此所示的实施方式。通过提供这些实施方式使得本说明书是十分充分的和完全的，并且将本发明的范围充分地传递给本领域的熟练人员。通过引用将在此所引用的所有文献、专利申请书、专利和其他参考文献的全部内容并入本申请。I.概述鉴定出一种55kDa玉米蛋白(称作Q蛋白)，其显示是属于谷类种子储存蛋白的谷醇溶蛋白家族。在存在二硫苏糖醇(DTT)时，从胚乳粉中释放出蛋白，它在这些提取物中是在γ-玉米醇溶蛋白之后的第二丰富的蛋白，其中γ-玉米醇溶蛋白本身就构成了约15％的胚乳蛋白。从GENBANK数据库中找到编码一部分蛋白的表达序列标记(EST)序列。利用源自EST序列的寡核苷酸引物，扩增两种重叠的cDNA克隆。组合克隆编码包括预期的19个残基的信号肽的308个残基的多肽链。成熟蛋白的推导序列是289个氨基酸长，并包括104个Gln和13个Glu。Gln和Glu残基的组合百分比是40％，比其他玉米醇溶蛋白所报道的组合百分比高出两倍多。预期序列也包括5个Lys，在除δ-玉米醇溶蛋白外的所有其他玉米醇溶蛋白中都完全缺乏这种氨基酸，δ-玉米醇溶蛋白恰好是含有该氨基酸的玉米醇溶蛋白。γ-玉米醇溶蛋白蓄积在蛋白体的周围，55kDaQ蛋白和γ-玉米醇溶蛋白的共分镏说明两种蛋白都蓄积在这个区域内。先前的工作针对于增加玉米醇溶蛋白中的Lys含量，以便提高营养，其包括往α-玉米醇溶蛋白内插入1-2个Lys残基(Wallaceetal.，1988)以及往γ-玉米醇溶蛋白内插入最多10个Lys残基(Torrentetal.，1987)。当在利用非洲蟾蜍卵母细胞或玉米胚乳的临时表达载体中合成修饰玉米醇溶蛋白时，所述修饰玉米醇溶蛋白蓄积在与蛋白体类似的结构内。但是，α-玉米醇溶蛋白和γ-玉米醇溶蛋白都缺少Lys并且只含有1-4个酸性氨基酸，它们同样可以被用于中和带正电荷的残基。相反地，55kDaQ蛋白的推导序列总共含有16个酸性残基。55kDa蛋白中所具有的5个Lys以及其位于或邻近蛋白体表面上的表观定位都提示它的天然构象可以耐受附加的Lys残基的取代。II.定义除非有不同的定义，在此所用的所有技术术语和科学术语都具有与本发明所属领域的一般人员通常所理解的意义相同的意义。为了清楚地阐述本说明书，下面给出了特定的定义。按照已长时间存在的专利法规约定，术语“一种”、“一个”、和“所述”在此指的是“一或多个(种)”，包括权利要求书在内同样如此。因此，词组“一个(种)细胞”和“所述细胞”指的是一或多个细胞(种)，除非在上下文中有清楚的不同的定义。术语“关联于”和“可操纵地连接于”在此指的是两种核苷酸序列是物理上或功能上相关联的。例如，启动子或调节DNA序列被认为是“关联于”编码RNA或多肽的DNA序列，只要这两个序列是可操纵地连接或定位使得调节DNA序列将影响编码或结构DNA序列的表达水平。术语“嵌合体”在此指的是包括源自不同多肽或处于非天然存在的彼此相对的位置上的结构域或其他特征的多肽。名词“嵌合构建体”在此指的是重组核酸分子，其中启动子或调节核苷酸序列被可操纵地连接于或关联于编码mRNA的核苷酸序列或表达多肽的核苷酸序列，使得调节核苷酸序列能调节所关联的核苷酸序列的转录或表达。嵌合构建体的调节核苷酸序列没有被正常地可操纵地连接于所关联的在自然界中可发现的核苷酸序列。术语“编码序列”和“开放阅读框(ORF)”在此可互换使用，指的是转录成RNA例如mRNA、rRNA、tRNA、snRNA、有义RNA、或反义RNA的核苷酸序列。在一些实施方式中，RNA在体内或体外翻译产生了多肽。在一些实施方式中，玉米Q蛋白的ORF包括SEQIDNO1。术语“互补的”在此指的是两种包括反向平行核苷酸序列的核苷酸序列，反向平行核苷酸序列能在反向平行核苷酸序列的互补碱基残基之间形成氢键后彼此相互配对。本领域已知的是，当都从5’到3’的方向看序列时，两种互补链的核苷酸序列是彼此反向互补的。本领域也已知的是，两种在给定的条件组下能彼此杂交的序列不必必须是100％完全互补的。术语“完全互补的”和“100％互补的”指的是其中互补区是100％Watson-Crick碱基配对的序列，即在互补区内不存在错配。但是，常常对于被克隆到克隆载体内的重组分子(例如cDNA)的情况而言，某些分子可以在5’或3’端具有非互补的悬突部分，它们是克隆事件所造成的结果。在这样一种情况中，要明白100％或完全互补性的区域不包括任一单独地被添加到重组分子中(通常在末端)的序列，所述添加是克隆事件的结果或有助于克隆事件。这些序列是例如多位点接头序列、具有限制性内切酶识别位点的连接物等等。当术语“结构域”和“特征”用于说明多肽或氨基酸序列时，其在此指的是具有特殊生物学功能的氨基酸序列的亚序列。具有特殊生物学功能的结构域和特征包括但不限定于信号序列、配体结合域、核酸结合区、催化区、底物结合区、和多肽-多肽相互作用区。同样，当在此被用于说明核苷酸序列时，“结构域”或“特征”是编码多肽的结构域或特征的核苷酸序列的亚序列。术语“表达盒”在此指的是能指导在合适的宿主细胞内表达特殊核苷酸序列的核酸分子，包括与相关核苷酸序列可操纵地连接的启动子，以及所述相关核苷酸序列可操纵地连接于终止信号。这通常也包括核苷酸序列的正确翻译所需的序列。编码区通常编码相关多肽，但是也能在有义或反义的方向上编码相关的功能RNA例如反义RNA或非翻译RNA。包括相关核苷酸序列的表达盒可以是嵌合表达盒，意思是至少其中一种组分对于至少一种其他的组分是异源的。表达盒也可以是一种天然存在的表达盒，已经获得了可用于异源表达的重组形式的表达盒。但是，通常表达盒的至少一种组分对于宿主是异源的；例如表达盒的特殊DNA序列天然地不存在于宿主细胞内，其是通过转化事件而被引入到宿主细胞或宿主细胞的亲代细胞内。表达盒中的核苷酸序列的表达可以处于启动子(例如，Q蛋白启动子SEQIDNO6)的控制之下。在一些实施方式中，仅仅当宿主细胞暴露于一些特殊的外来刺激时，启动子才引发转录。对于多细胞生物体例如植物而言，启动子也可以特异于特殊组织、器官、或发育阶段(例如植物种子)的启动子。术语“片段”在此指的是包括另一个序列的亚组的序列。当用于核酸或氨基酸序列时，可以互换使用术语“片段”和“亚序列”。核苷酸序列的片段可以是任一数目的核苷酸，它比在另一个核苷酸序列中所发现的核苷酸数目更少，因此其包括但不限定于外显子或内含子、启动子、增强子、复制起点、5’或3’非翻译区、编码区、和多肽结合区的序列。要明白片段或亚序列也可以包括比核苷酸序列的全部序列更少的序列，例如外显子或内含子、启动子、增强子等的一部分。同样，氨基酸序列的片段或亚序列可以是任一数目的残基，其比在天然存在的多肽中所发现的残基数目更少，这包括但不限定于结构域、特征、重复等。也同样地，要明白氨基酸序列的片段或亚序列不必包括结构域、特征、重复等的氨基酸序列的全部序列。片段也可以是“功能片段”，其中片段保留了相关核苷酸序列或氨基酸序列的特异的生物学功能。例如，转录因子的功能片段可以包括，但不限定于DNA结合区、顺式活化结构域、或两者。同样，受体酪氨酸激酶的功能片段可以包括但不限定于配体结合区、激酶区、ATP结合区、及其组合。术语“基因”在此被广泛地使用，其指的是与生物学功能相关的任一DNA片段。因此，基因包括但不限定于编码序列和/或编码序列表达所需的调节序列。基因也可以包括非表达的DNA片段，例如它形成了多肽的识别序列。可以从不同的来源中获得基因，包括从相关来源中克隆得到，或从已知的或预期的序列信号中合成得到，并且它可以包括被设计成具有所需参数的序列。当术语“异源”和“重组”在此被用于说明核苷酸序列(例如DNA序列)或基因时，它们指的是源自异生于特殊宿主细胞的来源的序列，或来源于同一来源但经修饰其原始形式后得到的序列。因此宿主细胞中的异源基因包括已经经例如DNA步移或其他重组技术所修饰的内生于特殊宿主细胞的基因。术语也包括非天然存在的多个拷贝的天然存在的DNA序列。因此，术语指的是异生于宿主细胞的DNA片段，或宿主细胞中天然存在的DNA片段，但在自然界中通常不能找到其在宿主细胞内的位置或形式。同样，当用于说明多肽或氨基酸序列时，异源多肽或氨基酸序列是源自异生于特殊宿主细胞的来源的多肽或氨基酸序列(例如从异源编码序列中所产生的序列)，或者如果来自同一来源，所述异源多肽或氨基酸序列是通过修饰其原始形式后得到的多肽或氨基酸序列。因此可以表达异源DNA片段以产生异源多肽。“同源”核苷酸(或氨基酸)序列是与其所被引入到的宿主细胞天然相关的核苷酸(或氨基酸)序列，并且它出现在发现其在自然界中所正常位于的染色体或染色体外的位置上。词语“特异地杂交于”指的是在严格条件下分子只与特殊核苷酸序列结合、双链化、或杂交，当序列存在于复合混和物(例如细胞的总DNA或RNA)中时。词语“基本上结合于”指的是探针核酸和靶核酸之间的互补杂交，包括微小错配，通过减少杂交介质的严格性可以调节错配，以便获得所需的对靶核苷酸序列的检测。术语“突变”和“突变体”在此具有它们的常用含义，指的是在核酸或多肽序列中的遗传的、天然存在的、或引入的变化，它们的意义与本领域人员通常所知的意义相同。术语“抑制物”在此指的是灭活或降低多肽的生物活性(例如生物合成的和催化的活性、受体、信号转导多肽、结构基因产物、或转运多肽)的化学物质。术语“除草剂”(或“除草化合物”)在此定义为施用于植物的任一发育阶段的抑制剂，其中除草剂抑制了植物生长或杀死植物。当用于分离的DNA分子或分离的多肽的上下文时，术语“分离的”在此是通过人为的方法从其天然环境中分离到的DNA分子或多肽，因此它不是天然产物。分离的DNA分子或多肽可以以纯化的形式存在或者可以存在于非天然的环境中，例如在转基因的宿主细胞内。术语“成熟多肽”在此指的是其中已经去除了转移肽、信号肽、和/或前肽部分的多肽。术语“最小启动子”在此指的是能支持任何转录的最小片段的启动子，例如TATA元件。在没有上游或下游活化时，最小启动子通常已经极大地减弱了启动子活性。在存在合适的转录因子时，最小启动子可以发挥功能以容许转录。术语“细胞”、“细胞系”、和“细胞培养物”在此可以互换使用，以及所有的这些称谓都包括子代。因此，名词“转化体”和“转化细胞”包括原代对象细胞和源自于原代细胞的培养物，与原始被处理的细胞可能已经进行的转移的数目和/或细胞分裂的轮数无关。也要明白所有的子代在DNA内容物方面可能不是精确相同的，因为有意或无意突变的原因。术语包括具有所筛选的与原始转化细胞相同的功能或生物学活性的突变子代。预期了不同的称谓，从上下文中可以清楚地知道这一点。术语“天然的”在此指的是在未转化的植物细胞的基因组中天然存在的基因。同样，当用于多肽的上下文时，“天然多肽”是未转化的植物细胞的基因组的天然基因编码的多肽。术语“天然存在的”在此指的是在自然界中所发现的物体，其不同于人为地人工生产的物体。例如，没有在实验室中被人为地故意修饰或分离的、以天然状态存在于生物体中的多肽或核苷酸是天然存在的。同样，如果多肽或核苷酸序列是被重组分子所编码的或存在于重组分子内，那么就认为多肽或核苷酸序列是“非天然存在的”，即使氨基酸或核苷酸序列与自然界中所发现的氨基酸或核苷酸序列相同。术语“核酸”在此指的是单链或双链形式的脱氧核糖核苷酸或核糖核苷酸以及它们的聚合物。除非有特殊的限定，术语包括含有天然核苷酸的已知类似物的核酸，该核酸具有与参照核酸相似的结合性能，并以与天然存在的核苷酸相似的方式进行代谢。除非有不同的说明，特殊核苷酸序列也隐含地包括它的保守修饰的变体(例如简并密码子取代)和互补序列以及明确阐述的序列。具体地，通过产生其中一个或多个(或所有)选定密码子中的第三个位点被混和碱基和/或脱氧次黄苷残基所取代的序列可以实现简并密码子取代(Batzeretal.，1991；Ohtsukaetal.，1985；Rossolinietal.，1994)。术语“核酸”或“核苷酸序列”也可以与基因、cDNA、和基因所编码的mRNA互换使用。术语“定向进化同源基因”指的是在不同物种中编码实施相同生物学功能的蛋白的基因。例如，来自例如蜀黍和水稻的葡萄糖-6-磷酸脱氢酶基因是定向进化同源基因。定向进化同源基因的核苷酸序列的特征通常是高度的序列相似性(例如，至少约90％序列相同性)。利用标准的分子生物学技术，可以用一个物种(例如，水稻)的定向进化同源基因的核苷酸序列分离出另一个物种(例如，蜀黍)的定向进化同源基因的核苷酸序列。例如利用下面更详细描述的技术可以实现这一点(也见于，Sambrook&Russell，2001关于对可以被用于分离紧密相关的序列的杂交条件的讨论)。在两个核酸或多肽序列的上下文中，词语“相同性百分比”在此指的是当比较并排列两种或更多种序列或亚序列的最大对应性时，分别在一些实施方式中具有60％(例如，60、63、65、67、或69％)、在一些实施方式中具有70％(例如70、73、75、77、或79％)、在一些实施方式中具有80％(例如80、83、85、87、或89％)、在一些实施方式中具有90％(例如90、93、95、或97％)、以及在一些实施方式中具有至少99％核苷酸或氨基酸相同性的两种或更多种序列或亚序，如用下面的序列比较算法之一或通过肉眼观察所测定的那样。相同性百分比在一些实施方式中存在于长度为至少约50个残基的序列的区域上，在一些实施方式中存在于约100个残基的区域上，以及在一些实施方式中，相同性百分比存在于至少约150个残基上。在一些实施方式中，相同性百分比存在于序列的全长上。对于序列比较，通常一个序列作为参照序列，将其与测试序列进行比较。当使用序列比较算法时，将测试和参照序列都输入到计算机内，如果需要则指定亚序列坐标系，并指定序列算法程序参数。然后序列比较算法依据所指定的程序参数计算出测试序列相对于参照序列的序列相同性百分比。可以进行对用于比较的序列的最佳排列，例如通过在Smith&Waterman，1981中所阐述的局部同源性算法、通过在Needleman&Wunsch，1970中所阐述的同源性排列算法、通过在Pearson&Lipman，1988中所阐述的搜索相似性的方法，通过这些算法的电脑化实施(GAP、BESTFIT、FASTA、和GCGWISCONSINPACKAGE中的TFASTA，购自美国加州圣地亚哥的Accelrys公司)、或通过肉眼观察。通常见于Ausubeletal.，2002；Ausubeletal.，2003。适用于确定序列相同性和序列相似性的算法的一个实例是BLAST算法，在Altschul等，1990中描述了这个算法。通过国立生物技术信息中心的网站能公开地得到进行BLAST分析的软件。该算法包括首先通过鉴定查询序列中的长度为W的短子码鉴定出高积分序列对(HSPs)，当其与数据库序列中的相同长度的子码排列时，其匹配或满足一些正值的阈值积分T。T指的是邻近子码积分阈值。通常见于Altschuletal.，1990。这些最初的邻近子码采样点作为最初的用于发现更长的含该邻近子码的HSPs的搜索的种子。然后沿着每个序列的两个方向延伸子码采样点，直到可以增加累积排列积分。用参数M(一对匹配残基的奖分，始终＞0)和N(错配残基的罚分，始终＜0)计算出核苷酸序列的累积积分。对于氨基酸序列，用积分矩阵计算累积积分。当累积排列积分比其最大实现值下降了数量X，累积积分因为累积了一个或更多个负值的残基排列而成为0或更低、或到达每个序列的末端时，就终止子码采集点在每个方向上的延伸。BLAST算法中的参数W、T和X确定了排列的敏感性和速度。BLASTTN程序(对于核苷酸序列)用缺省值进行两个链的比较，其中字长(W)为11，预期值(E)为10，截断点为100，M＝5，N＝-4。对于氨基酸序列，BLASTP程序使用缺省值，其中字长(W)为3，预期值(E)为10，以及BLOSUM62积分矩阵。见Henikoff&Henikoff，1992。除了计算序列相同性百分比外，BLAST算法也进行两个序列之间的相似性的统计学分析(见例如Karlin&Altschul，1993)。BLAST算法所提供的一种相似性的测定法是最小总计概率(P(N))，它提供了对其中两个核苷酸或氨基酸序列之间可以随机发生匹配的概率的指示。例如，如果在测试核苷酸序列和参照核苷酸序列的比较中，最小总计概率在一些实施方式中小于约0.1、在一些实施方式中小于约0.01、以及在一些实施方式中小于约0.01时，就认为测试核苷酸序列与参照序列相似。术语“Q蛋白”、“55kDa蛋白”、“55kDaQ蛋白”、和“55kDa玉米蛋白”在此可以互换使用，并且指的是包括氨基酸序列SEQIDNO2、及其变体、片段、和结构域的多肽。已经鉴定出了该多肽序列的代表性的开放阅读框，其具有SEQIDNO1所提供的核苷酸序列。另外，已经鉴定出在玉米中控制该编码序列的转录的玉米启动子的区域，其在此也被称作“Q蛋白基因启动子”、“来自Q蛋白基因的启动子”等等，其包括在SEQIDNO6中所呈现的核苷酸序列。术语“穿梭核酸”在此指的是重组核酸分子，其中核苷酸序列包括多个核苷酸序列片段，其中至少其中一个片段对应于在SEQIDNO1中所列的核苷酸序列的区域，以及其中多个序列片段中的至少两个片段是依序排列的，从5’到3’，该次序不是所述多个片段在核酸中天然存在的次序。在两个核苷酸或氨基酸序列的上下文中，术语“基本上相同的”指的是当比较并排列两种或更多种序列或亚序列的最大对应性时，分别在一些实施方式中具有至少约60％核苷酸或氨基酸相同性(例如，60、63、65、67、或69％核苷酸或氨基酸相同性)、在一些实施方式中具有至少约70％核苷酸或氨基酸相同性(例如70、73、75、77、或79％核苷酸或氨基酸相同性)、在一些实施方式中具有至少约80％核苷酸或氨基酸相同性(例如80、83、85、87、或89％核苷酸或氨基酸相同性)、在一些实施方式中具有至少约90％核苷酸或氨基酸相同性(例如90、93、95、97或99％核苷酸或氨基酸相同性)的两种或更多种序列或亚序，如用下面的序列比较算法之一或通过肉眼观察所测定的那样。在一些实施方式中，基本上相同性存在于至少50个残基的核苷酸或氨基酸序列上，在一些实施方式中存在于至少约100个残基的核苷酸或氨基酸序列上，在一些实施方式中存在于至少约150个残基的核苷酸或氨基酸上，以及在一些实施方式中，存在于包括完全编码序列或完全氨基酸序列的核苷酸或氨基酸序列上。在一个方面，多态性序列可以是基本上相同的序列。术语“多态性”指的是群体中的两种或多种遗传学上决定的可选择序列或等位基因。等位基因的差异可以小到一个碱基对。但是，本领域的一般人员能识别出对应于相同基因的多态性序列。两种核苷酸序列是基本上相同的另一种指示是两种分子在中等或高严格性的条件下彼此特异地或基本上特异地杂交。在核酸杂交的上下文中，所比较的两种核苷酸序列被称作“探针序列”和“靶序列”。“探针序列”是参照核酸分子，以及“靶序列”是测试核酸分子，常常发现测试核酸分子是在异源的核酸群内。“靶序列”与“测试序列”同义。用于杂交研究或检测的核苷酸序列示例包括在一些实施方式中与本发明的核酸分子中的至少约14到40个核苷酸序列互补或模拟该序列的探针序列。在一些实施方式中，探针包括14到20个核苷酸，或甚至更长(只要需要)例如30、40、50、60、100、200、或500个核苷酸或最大到SEQIDNO1所示的任一核苷酸序列的全长核苷酸(例如，全部的互补序列)。例如通过化学直接合成片段、或通过应用核酸扩增技术、或通过将所选定的序列引入到用于重组生产的重组载体内都可以容易地制备出这些片段。词语“基本上杂交于”指的是探针核酸序列和靶核酸序列之间的互补杂交，并包括微小错配(例如多态性)，通过降低杂交和/或洗涤介质的严格性可以调节错配，以便获得所需的杂交。在核酸杂交试验例如Southern和Northern印迹分析的上下文中，“严格性杂交条件”和“严格性杂交洗涤条件”都是序列和环境依赖的。越长的序列在越高的温度下特异杂交。在Tijssen，1993中可以找到关于核酸杂交方面的指南。一般而言，所选的高严格性杂交和洗涤条件是比特异序列在给定离子强度和pH值时的热熔点(Tm)低约5℃的温度。探针通常在“高严格性条件”下与其靶序列特异杂交，但不会与其他序列杂交。同样，所选的中等严格性杂交和洗涤条件是比特异序列在给定离子强度和pH值时的Tm低约5℃以上的温度。示例的中等严格条件包括与高严格性条件一样的杂交和洗涤，除了在一些实施方式中杂交和洗涤的温度比特异序列在给定离子强度和pH值时的Tm低8℃，在一些实施方式中低10℃，在一些实施方式中低12℃，以及在一些实施方式中低15℃。Tm是其中有50％靶序列与优选匹配探针杂交时的温度(在给定的离子强度和pH值下)。所选的非常严格条件与特殊探针的Tm相同。对于具有约100个以上互补残基的互补核酸的Southern或Northern印迹分析的高严格性杂交条件的实例是在含有5xDenhardt试剂、0.5％十二烷基硫酸钠(SDS)、1μg/ml聚(A)、和100μg/ml鲑精DNA的6x标准柠檬酸盐水(SSC)或标准EDTA磷酸盐水中、65℃下(如果在杂交缓冲液中含有50％甲酰胺，则在42℃下)杂交过夜(50xDenhardt试剂是1％(w/v)Ficoll400、1％(w/v)聚乙烯吡咯酮、和1％(w/v)牛血清白蛋白，见。Sambrook和Russell，2001，可以使用与此所用的条件和溶液相同的其他的杂交和洗涤条件及溶液)。高严格性洗涤条件的实例是在0.1xSSC、0.1％(w/v)SDS中、65℃下洗涤15分钟。另一个高严格性洗涤条件的实例是在0.2xSSC缓冲液、65℃下洗涤15分钟。在高严格性洗涤之前常常是较低严格的洗涤，以便去除背景探针信号。中等严格洗涤条件的实例是超过约100个核苷酸的双链在1xSSC中、45-55℃下洗涤15分钟。另一个中等严格洗涤的实例是超过约100个核苷酸的双链在4-6xSSC中、40℃下洗涤15分钟。对于短探针(例如约10到50个核苷酸)而言，严格条件通常包括盐浓度小于约1MNa+离子，通常为约0.01到1MNa+离子浓度(或其他盐)(pH值7.0-8.3)，以及温度通常是至少约30℃。通过添加去稳定剂例如甲酰胺也能获得严格条件。一般而言，如果信号对噪音比值是所观察到的无关探针在特殊杂交检测中的信号噪音比值的2倍(或更高)，则说明检测到了特异杂交。下面是用于克隆与本发明的参照核苷酸序列基本上相同的同源的核苷酸序列的杂交和洗涤条件的实例在一些实施方式中，探针和靶序列是在7％SDS、0.5MNaPO4、1mM乙二胺四乙酸(EDTA)、50℃下杂交，随后是在2xSSC、0.1％SDS中、50℃下洗涤；在一些实施方式中，探针和靶序列是在7％SDS、0.5MNaPO4、1mMEDTA、50℃下杂交，随后是在1xSSC、0.1％SDS中、50℃下洗涤；在一些实施方式中，探针和靶序列是在7％SDS、0.5MNaPO4、1mMEDTA、50℃下杂交，随后是在0.5xSSC、0.1％SDS中、50℃下洗涤；在一些实施方式中，探针和靶序列是在7％SDS、0.5MNaPO4、1mMEDTA、50℃下杂交，随后是在0.1xSSC、0.1％SDS中、50℃下洗涤；在一些实施方式中，探针和靶序列是在7％SDS、0.5MNaPO4、1mMEDTA、50℃下杂交，随后是在0.1xSSC、0.1％SDS中、55℃下洗涤；在一些实施方式中，探针和靶序列是在7％SDS、0.5MNaPO4、1mMEDTA、50℃下杂交，随后是在0.1xSSC、0.1％SDS中、60℃下洗涤；以及在一些实施方式中，探针和靶序列是在7％SDS、0.5MNaPO4、1mMEDTA、50℃下杂交，随后是在0.1xSSC、0.1％SDS中、65℃下洗涤。在一些实施方式中，杂交条件包括在旋转管中、7％SDS、0.5MNaPO4、1mMEDTA、42℃下杂交至少12个小时。术语“前多肽”在此指的是被正常地导向细胞器例如叶绿体，并仍然包括转运肽的多肽。当应用于核酸或多肽时，术语“纯化的”在此表示核酸或多肽基本上不含有其他的在自然状态下与其相结合的细胞组分。它可以是均质状态，尽管它可以是干粉或水溶液。通常用分析化学技术例如聚丙烯酰胺凝胶电泳或高效液相色谱法确定出纯度和均质性。作为制剂中的超优势种的多肽是基本上纯化的。术语“纯化的”表示核酸或多肽在电泳凝胶中基本上形成了单一条带。具体地，这意味着核酸或多肽在一些实施方式中为至少约50％纯的，在一些实施方式中为至少约85％纯的、以及在一些实施方式中为至少约99％纯的。当来自两种核酸中的每种核酸的序列被组合于子代核酸时，两种核酸是“重组的”。当两种核酸都是重组的底物时，两种序列是“直接”重组的。当用中间物例如横跨寡核苷酸重组序列时，两种序列是“间接”重组的。对于间接重组，不超过一种序列是重组的实际底物，以及在一些情况中，没有一种序列是重组的底物。术语“调节元件”在此指的是在控制核苷酸序列的表达中所包含的核苷酸序列。调节元件可以包括与相关核苷酸序列可操纵地连接的启动子以及终止信号。调节序列也包括增强子和沉默子。它们通常也包括正确翻译核苷酸序列所需的序列。术语“转化”在此指的是用于将异源DNA引入到植物细胞、植物组织、或植物中的过程。转化植物细胞、植物组织、或植物被理解为不仅包括转化过程的终末产物，也包括其子代。术语“转化”、“转基因”、和“重组体”在此指的是其中已经被引入异源核酸分子的宿主细胞或生物体例如细菌或植物细胞(例如植物)。核酸分子可以被稳定地整合到宿主的基因组中，或者核酸分子也可以以染色体外分子的形式存在。这样一种染色体外分子可以是自我复制的。转化细胞、组织或植物被理解为不仅包括转化过程的终末产物，还包括其转基因子代。“未转化”、“未转基因”、或“未重组的”宿主指的是野生型生物体例如细菌或植物，它不包含异源核酸分子。当涉及到核苷酸序列(或其所编码的氨基酸序列)时，术语“异源的”在此不仅指的是源自不同于其所被引入的物种的物种的核酸或氨基酸序列，还指的是来自相同物种的核苷酸序列，其中该物种的细胞或有机体的基因组已经被加工处理，使得基因组含有一些人为的变更。因此，术语“转基因”不仅指的是例如包括在玉蜀黍中并非天然存在的核酸分子的玉蜀黍细胞，也包括例如包括在玉蜀黍中天然存在有其全部或一部分的核酸分子的玉蜀黍细胞，但是玉蜀黍细胞已经进行了一些形式的修饰，使得转基因植物的基因组明显不同于天然存在的玉蜀黍的基因组。在一些实施方式中，修饰包括将一个或多个附加拷贝的玉蜀黍核苷酸序列引入到玉蜀黍细胞内。在一些实施方式中，修饰包括将异源核苷酸序列“敲入”到Q蛋白基因内，使得异源核苷酸序列与内源性Q蛋白基因启动子可操纵地连接。III.核酸分子和多肽III.A.核酸分子本发明的实施方式包括对应于玉蜀黍谷类种子储存蛋白的谷醇溶蛋白家族成员的分离的核酸分子，以及来自这样一种家族成员的启动子区的能用于控制可操纵地连接的核苷酸序列的表达的核苷酸序列。在一些实施方式中，本发明的分离的核苷酸分子包括在高严格性杂交条件(6xSSC，65℃)以及随后的至少15分钟的终末洗涤步骤(0.1xSSC，65℃)下与SEQIDNO1所示的核苷酸序列、或其片段、结构域、或特征杂交的核苷酸序列。在一些实施方式中，本发明的分离的核苷酸分子包括与在高严格性杂交条件(6xSSC，65℃)以及随后的至少15分钟的终末洗涤步骤(0.1xSSC，65℃)下与SEQIDNO1所示的核苷酸序列、或其片段、结构域、或特征杂交的核苷酸序列基本上相同的核苷酸序列。在一些实施方式中，本发明包括分离的核酸分子，其包括与在高严格性杂交条件(6xSSC，65℃)以及随后的至少15分钟的终末洗涤步骤(0.1xSSC，65℃)下与SEQIDNO1所列的核苷酸序列、或其片段、结构域、或特征杂交的核苷酸序列相互补的核苷酸序列，或者包括作为在高严格性杂交条件(6xSSC，65℃)以及随后的至少15分钟的终末洗涤步骤(0.1xSSC，65℃)下与SEQIDNO1所列的核苷酸序列、或其片段、结构域、或特征杂交的核苷酸序列反向互补链的核苷酸序列。本发明的一些实施方式包括分离的核酸分子，其包括与基本上相同于或能杂交于在高严格性杂交条件(6xSSC，65℃)以及随后的至少15分钟的终末洗涤步骤(0.1xSSC，65℃)下与SEQIDNO1所列的核苷酸序列、或其片段、结构域、或特征杂交的核苷酸序列的核苷酸序列相互补的核苷酸序列，或者包括作为基本上相同于或能杂交于在高严格性杂交条件(6xSSC，65℃)以及随后的至少15分钟的终末洗涤步骤(0.1xSSC，65℃)下与SEQIDNO1所列的核苷酸序列、或其片段、结构域、或特征杂交的核苷酸序列的核苷酸序列的反向互补链的核苷酸序列。在一些实施方式中，基本上相同的是与SEQIDNO1所列的核苷酸序列、或其片段、结构域、或特征具有至少约60％相同性(例如60、63、65、67、或69％相同性)，在一些实施方式中至少约70％相同性(例如70、73、75、77、或79％相同性)，在一些实施方式中至少约80％相同性(例如80、83、85、87、或89％相同性)，在一些实施方式中至少约90％相同性(例如90或93％相同性)，在一些实施方式中至少约95％相同性，在一些实施方式中至少约97％相同性，以及在一些实施方式中至少约99％相同性。在一些实施方式中，具有基本上相同性的核苷酸序列包括在高严格性杂交条件(6xSSC，65℃)以及随后的至少15分钟的终末洗涤步骤(0.1xSSC，65℃)下与SEQIDNO1所列的核苷酸序列、或其片段、结构域、或特征杂交的核苷酸序列的等位基因变体。在一些实施方式中，具有基本上相同性的核苷酸序列包括天然存在的变体。在一些实施方式中，具有基本上相同性的核苷酸序列包括在高严格性杂交条件(6xSSC，65℃)以及随后的至少15分钟的终末洗涤步骤(0.1xSSC，65℃)下与SEQIDNO1所列的核苷酸序列、或其片段、结构域、或特征杂交的核苷酸序列的多态性变体。在一些实施方式中，具有基本上相同性的核酸包括至少一个核苷酸的缺失或插入。在一些实施方式中，缺失或插入包括少于约30个核苷酸的缺失或插入。在一些实施方式中，缺失或插入包括少于约5个核苷酸的缺失或插入。在一些实施方式中，具有基本上相同性的分离的核酸包括至少一个密码子的取代。在一些实施方式中，取代是保守取代。在一些实施方式中，分离的核酸包括多个具有在高严格性杂交条件(6xSSC，65℃)以及随后的至少15分钟的终末洗涤步骤(0.1xSSC，65℃)下与SEQIDNO1所列的核苷酸序列、或其片段、结构域、或特征杂交的核苷酸序列的区域。在一些实施方式中，与在高严格性杂交条件(6xSSC，65℃)以及随后的至少15分钟的终末洗涤步骤(0.1xSSC，65℃)下与SEQIDNO1所列的核苷酸序列、或其片段、结构域、或特征杂交的核苷酸序列具有基本上相同性的序列来自于植物。在一些实施方式中，植物是双子叶植物。在一些实施方式中，植物是裸子植物。在一些实施方式中，植物是单子叶植物。在一些实施方式中，单子叶植物是谷类植物。在一些实施方式中，谷类植物可以是例如玉米、小麦、大麦、燕麦、黑麦、粟、蜀黍、小黑麦、黑麦、单粒小麦、斯佩尔特小麦(Spelt)、双粒小麦、Teff、Milo、亚麻、格兰马草、摩擦禾属、或假蜀黍。在一些实施方式中，谷类植物是水稻。在一些实施方式中，核酸被表达于植物的特殊部位或组织。在一些实施方式中，部位或组织包括但不限定于表皮、根、维管组织、分生组织、形成层、皮层、木髓、叶、花、种子、以及它们的组合物。在一些实施方式中，部位或组织是种子。在一些实施方式中，部位或组织是种子的蛋白体。本发明的实施方式也涉及含有多个核苷酸片段的穿梭核酸分子，其中至少一个片段对应于在高严格性杂交条件(6xSSC，65℃)以及随后的至少15分钟的终末洗涤步骤(0.1xSSC，65℃)下与SEQIDNO1所列的核苷酸序列、或其片段、结构域、或特征杂交的核苷酸序列的一个区域，以及其中多个序列片段中的至少两种片段是依序排列的，从5’到3’，该次序并不是所述多个片段天然存在的次序。在一些实施方式中，包括多个核苷酸序列片段的穿梭核酸中的所有片段都来自单个基因。在一些实施方式中，多个片段都来源于至少两种不同的基因。在一些实施方式中，穿梭核酸与启动子序列可操纵地连接。在一些实施方式中，穿梭核酸包括嵌合多肽，其包括与穿梭核酸可操纵地连接的启动子序列。在一些实施方式中，穿梭核酸被包含在宿主细胞内。III.B.鉴定、克隆、和测序cDNA利用本领域已知的技术可以完成本发明的cDNA的克隆和测序。通常见于，Sambrook&Russell，2001；Silhavyetal.，1984；Ausubeletal.，2002；Ausubeletal.，2003；Reiteretal.，1992；Schultzetal.，1998。本发明的分离的核酸和多肽在多种植物中都是有用的，例如单子叶和双子叶植物，具体的单子叶植物包括蜀黍、水稻、小麦、大麦、和玉米。在一些实施方式中，单子叶植物是谷类植物。在一些实施方式中，谷类植物可以是例如玉米、小麦、大麦、燕麦、黑麦、粟、蜀黍、小黑麦、黑麦、单粒小麦、斯佩尔特小麦、双粒小麦、Teff、Milo、亚麻、格兰马草、摩擦禾属、或假蜀黍。在一些实施方式中，谷类植物是水稻。与本发明相关的其他植物种属包括，但不限定于南瓜属、玫瑰属、葡萄属、胡桃属、Gragaria、莲花属、苜蓿属、Onobrychis、胡芦巴属、Vigna、柑橘属、亚麻属、天竺葵属、木薯属、胡萝卜属、拟南芥属、芸苔属、萝卜属、芥子属、颠茄属、辣椒属、曼陀罗属、莨菪属、番茄属、烟草属、茄属、喇叭花属、洋地黄属、马约喇钠属、Ciahorium、向日葵属、莴苣属、Bromus、芦笋属、金鱼草属、异犬齿珊瑚属、Nemesis、天竺葵属、Panieum、狼尾草属、毛莨属、千里光属、喇叭舌属、黄瓜属、Browaalia、Glycine、Pisum、菜豆属、黑麦草属、稻属、燕麦属、大麦属、黑麦属、葱属、和小麦属。本发明也提供了用于将包括本发明的核酸分子的植物或植物部分基因分型的方法。任选地，植物是单子叶植物，例如但不限定于蜀黍、水稻、玉米、或小麦。基因分型提供了用于区分染色体对的同系物的方法学，并能被用于区分植物群体中的分离子。分子标记物方法可以被用于种系发育研究、表征农作物品种中的遗传学关系、鉴定单树杂交体或体杂交体、定位实现单基因性状的染色体片段、基于基因定位的克隆、以及对数量遗传的研究(见Clark，1997；Paterson，1996)。用于基因分型的方法可以采用任何数目的分子标记物分析技术，其包括但不限定于限制性片段长度多态性(RFLPs)。本领域公知的是，相同基因的等位基因之间的核苷酸差异所造成的DNA限制性片段长度的差异产生了RFLPs。因此，本发明提供了利用RFLP分析进行对本发明的基因或核酸或遗传学连接的染色体序列的分离的方法。所连接的染色体序列在一些实施方式中是在50厘摩(cM)本发明的核酸之内，在一些实施方式中是在40cM之内，在一些实施方式中是在30cM之内，在一些实施方式中是在20cM之内，在一些实施方式中是在10cM之内，以及在一些实施方式中是在5、3、2、或1cM之内。本发明的实施方式也涉及包括核苷酸序列的分离的核酸分子、它的互补物(例如它的完全互补物)、或它的反向互补物(例如，它的完全反向互补物)、核苷酸序列编码的多肽(例如，生物学活性多肽或生物学活性片段)。在一些实施方式中，核苷酸序列编码多肽，多肽是包括SEQIDNO2中所列的多肽序列、或其片段、结构域、重复、特征、或嵌合体的多肽的定向进化同源物。在一些实施方式中，核苷酸编码多肽，多肽是包括具有与SEQIDNO2中所列的多肽序列、或其片段、结构域、重复、特征、或嵌合体的多肽基本上相同性的多肽序列的多肽的定向进化同源物。在一些实施方式中，核苷酸序列编码多肽，多肽是包括由与SEQIDNO1中所示的核苷酸序列、或其片段、结构域、或特征、或其互补序列相同的核苷酸序列或具有与SEQIDNO1中所示的核苷酸序列、或其片段、结构域、或特征、或其互补序列基本上相同性的核苷酸序列编码的多肽序列的多肽的定向进化同源物。在一些实施方式中，核苷酸序列编码多肽，其包括由在高严格性杂交条件(6xSSC，65℃)以及随后的至少15分钟的终末洗涤步骤(0.1xSSC，65℃)下与SEQIDNO1所列的核苷酸序列、或其互补序列杂交的核苷酸序列所编码的多肽序列。在一些实施方式中，核苷酸序列编码本发明的多肽的功能片段。在一些实施方式中，分离的核酸包括多肽编码序列。在一些实施方式中，多肽编码序列编码多肽，多肽是包括SEQIDNO2中所列的多肽序列或其片段的多肽的定向进化同源物。在一些实施方式中，多肽是植物多肽。在一些实施方式中，植物是双子叶植物。在一些实施方式中，植物是蜀黍。在一些实施方式中，单子叶植物是谷类植物。在一些实施方式中，谷类植物可以是例如玉米、小麦、大麦、燕麦、黑麦、粟、蜀黍、小黑麦、黑麦、单粒小麦、斯佩尔特小麦、双粒小麦、Teff、Milo、亚麻、格兰马草、摩擦禾属、或假蜀黍。在一些实施方式中，谷类植物是玉米。本发明的实施方式也涉及分离的核酸分子，其包括核苷酸序列，它的互补物(例如，它的完全互补物)、或其反向互补物(例如，它的完全反向互补物)，所述核苷酸编码多肽，多肽选自包括下面的一种或多种多肽序列的组(a)在高严格性杂交条件(6xSSC，65℃)以及随后的至少15分钟的终末洗涤步骤(0.1xSSC，65℃)下与SEQIDNO1所列的核苷酸序列、或其片段、结构域、或特征、或其互补序列杂交的核苷酸序列所编码的多肽序列；和(b)(a)的功能片段。在一些实施方式中，具有基本上相同性的多肽包括多肽的等位变体，所述多肽是具有SEQIDNO2所列的氨基酸序列、或其片段、结构域、重复、特征、或嵌合体的多肽的定向进化同源物。在一些实施方式中，分离的核酸包括多个来自由在高严格性杂交条件(6xSSC，65℃)以及随后的至少15分钟的终末洗涤步骤(0.1xSSC，65℃)下与SEQIDNO1所列的核苷酸序列、或其片段、结构域、或特征、或其互补序列杂交的核苷酸序列所编码的多肽序列的区域。III.C.多肽本发明还涉及分离的多肽，它是包括SEQIDNO2所示氨基酸序列的多肽的定向进化同源物，其包括生物学活性多肽。在一些实施方式中，多肽包括SEQIDNO2所列的多肽的定向进化同源物的多肽序列。在一些实施方式中，多肽包括包括SEQIDNO2所列的多肽序列的多肽的定向进化同源物的功能片段或结构域。在一些实施方式中，多肽包括SEQIDNO2所列的多肽序列的定向进化同源物的嵌合体，其中嵌合体可以包括功能性的多肽基序，所述基序包括结构域、重复、翻译后修饰位点、或其他特征。在一些实施方式中，多肽是植物多肽。在一些实施方式中，植物是双子叶植物。在一些实施方式中，植物是蜀黍。在一些实施方式中，单子叶植物是谷类植物。在一些实施方式中，谷类植物可以是例如玉米、小麦、大麦、燕麦、黑麦、粟、蜀黍、小黑麦、黑麦、单粒小麦、斯佩尔特小麦、双粒小麦、Teff、Milo、亚麻、格兰马草、摩擦禾属、或假蜀黍。在一些实施方式中，谷类植物是玉米。在一些实施方式中，多肽被表达于植物的特殊部位或组织。在一些实施方式中，部位或组织包括但不限定于表皮、根、维管组织、分生组织、形成层、皮层、木髓、叶、花、种子、以及它们的组合物。在一些实施方式中，部位或组织是种子。在一些实施方式中，部位或组织是种子的蛋白体。在一些实施方式中，分离的多肽包括包括SEQIDNO2所示的氨基酸序列的多肽的定向进化同源物的氨基酸序列，以及具有保守氨基酸修饰的变体。术语“保守修饰的变体”指的是由具有简并密码子取代的核苷酸序列所编码的多肽，其中一个或多个所选(或所有)密码子中的至少一个位点被混和碱基和/或脱氧次黄苷残基所取代(Batzeretal.，1991；Ohtsukaetal.，1985；Rossolinietal.，1994)。另外，本领域人员将认识到变更、添加或删除所编码的序列中的单个氨基酸或一小部分氨基酸的对核酸、肽、多肽、或多肽序列的单个取代、删除或添加都是“保守修饰”，只要修饰造成了化学相似的氨基酸对相应氨基酸的取代。保守修饰的个体提供了与未修饰多肽相似的生物学活性。给出的功能相似氨基酸的保守取代列表在本领域是已知的，见Creighton，1984。术语“保守修饰的变体”也指的是具有与本发明的多肽的序列基本上相同的氨基酸残基序列的肽，其中一个或多个残基已经被功能相似的残基所保守取代。保守取代的实例包括一种非极性(疏水性)残基例如异亮氨酸、缬氨酸、亮氨酸、或甲硫氨酸对另一种非极性残基的取代；一种极性(亲水性)残基对另一种极性残基的取代，例如精氨酸和赖氨酸之间、谷氨酰胺和天冬酰胺之间、甘氨酸和丝氨酸之间的取代；一种碱性残基例如赖氨酸、精氨酸或组氨酸对另一种碱性残基的取代；或一种酸性残基例如天冬酸或谷氨酸对另一种酸性残基的取代。氨基酸取代(例如在修饰在此所述的多肽中可以采用的那些氨基酸取代)一般都依据于氨基酸侧链取代基的相对相似性，例如它们的疏水性、亲水性、电荷、大小等等。对氨基酸侧链取代基的大小、性状和类型的分析都发现精氨酸、赖氨酸和组氨酸全都是带正电荷的残基；丙氨酸、甘氨酸和丝氨酸都具有相似的大小；以及苯丙氨酸、色氨酸和酪氨酸全都具有普遍相似的性状。因此，根据这些认识，精氨酸、赖氨酸和组氨酸；丙氨酸、甘氨酸和丝氨酸；以及苯丙氨酸、色氨酸和酪氨酸在此都被定义为生物学功能等价物。本领域人员也知道其他的生物学功能等价的变化。在进行生物学功能等价的氨基酸取代时，可以考虑氨基酸的hydropathic指数。根据每种氨基酸的疏水性和电荷特征，给每种氨基酸都指定了hydropathic指数，它们是异亮氨酸(+4.5)、缬氨酸(+4.2)、亮氨酸(+3.8)、苯丙氨酸(+2.8)、半胱氨酸(+2.5)、甲硫氨酸(+1.9)、丙氨酸(+1.8)、甘氨酸(-0.4)、苏氨酸(-0.7)、丝氨酸(-0.8)、色氨酸(-0.9)、酪氨酸(-1.3)、脯氨酸(-1.6)、组氨酸(-3.2)、谷氨酸(-3.5)、谷氨酰胺(-3.5)、天冬酸(-3.5)、天冬酰胺(-3.5)、赖氨酸(-3.9)、和精氨酸(-4.5)。本领域一般都了解氨基酸hydropathic指数在赋予蛋白的相互作用的生物学功能上的重要性(Kyte&Doolittle，1982，在此通过引用并入本申请)。已知某些氨基酸可以被其他的具有相似hydropathic指数或积分的氨基酸所取代，并仍保持由相似的生物学活性。在根据hydropathic指数进行改变时，对氨基酸的取代可以包括在一些实施方式中其hydropathic指数是在原始值的±2之内的氨基酸，在一些实施方式中是在原始值的±1之内的氨基酸，以及在一些实施方式中是在原始值的±0.5之内的氨基酸。本领域也了解根据亲水性可以有效地进行相似氨基酸的取代。美国专利No.4,554,101(在此通过引用将其并入本申请)陈述了蛋白的最好的局部平均亲水性(通过其相邻氨基酸的亲水性所获得)与蛋白的免疫原性和抗原性(即蛋白的生物学性能)的相关性。已知氨基酸可以被另一种具有相似亲水性数值的氨基酸所取代并仍获得了生物学等价的蛋白。如美国专利No.4,554,101所详细阐述的那样，给氨基酸残基指定了下面的亲水性数值精氨酸(+3.0)、赖氨酸(+3.0)、天冬酸(+3.0±1)谷氨酸(+3.0±1)、丝氨酸(+0.3)、天冬酰胺(+0.2)、谷氨酰胺(+0.2)、甘氨酸(0)、苏氨酸(-0.4)、脯氨酸(-0.5±1)、丙氨酸(-0.5)、组氨酸(-0.5)、半胱氨酸(-1.0)、甲硫氨酸(-1.3)、缬氨酸(-1.5)、亮氨酸(-1.8)、异亮氨酸(-1.8)、酪氨酸(-2.3)、苯丙氨酸(-2.5)、色氨酸(-3.4)。在根据相似的亲水性数值进行改变时，对氨基酸的取代可以包括在一些实施方式中其亲水性数值是在原始值的±2之内的氨基酸，在一些实施方式中是在原始值的±1之内的氨基酸，以及在一些实施方式中是在原始值的±0.5之内的氨基酸。当讨论集中于氨基酸改变所造成的功能等价的多肽时，考虑到遗传密码子是简并的，以及两个或更多个密码子可以编码同一氨基酸，将明白通过变更编码DNA可以实现这些改变。在一些实施方式中，具有基本上相同性的序列具有至少一个氨基酸的缺失或插入。在一些实施方式中，缺失或插入是少于约10个氨基酸的缺失或插入。在一些实施方式中，缺失或插入是少于约3个氨基酸的缺失或插入。在一些实施方式中，具有基本上相同性的序列编码至少一个氨基酸的取代。本发明的实施方式也提供了包括选自由下面序列构成的组的多肽序列的分离的多肽(a)具有与SEQIDNO2所列的多肽序列、或其结构域或特征基本上相同的多肽序列；(b)由与在高严格性杂交条件(6xSSC，65℃)以及随后的至少15分钟的终末洗涤步骤(0.1xSSC，65℃)下与SEQIDNO1所列的核苷酸序列、或其外显子、结构域、或特征、或其互补序列杂交的核苷酸序列相同的或具有基本上相同性的核苷酸序列所编码的多肽；和(c)(a)或(b)的功能片段。在一些实施方式中，具有与SEQIDNO2所列的多肽序列、或其结构域或特征基本上相同性的多肽是SEQIDNO2所列的多肽序列的等位变体。在一些实施方式中，具有与SEQIDNO2所列的多肽序列、或其结构域或特征基本上相同性的多肽是SEQIDNO2所列的多肽序列的天然存在的变体。在一些实施方式中，具有与SEQIDNO2所列的多肽序列、或其结构域或特征基本上相同性的多肽是SEQIDNO2所列的多肽序列的多态性变体。在一些实施方式中，多肽是包括SEQIDNO2所列的氨基酸序列的多肽的定向进化同源物。在一些实施方式中，多肽是包括SEQIDNO2所列的氨基酸序列的多肽的定向进化同源物的功能片段或结构域。在一些实施方式中，多肽是嵌合体，其中嵌合体包括功能性的多肽结构域，其包括但不限定于多肽的结构域、重复、翻译后修饰位点、以及它们的组合物。在一些实施方式中，多肽是植物多肽。在一些实施方式中，植物是双子叶植物。在一些实施方式中，植物是蜀黍。在一些实施方式中，单子叶植物是谷类植物。在一些实施方式中，谷类植物可以是例如玉米、小麦、大麦、燕麦、黑麦、粟、蜀黍、小黑麦、黑麦、单粒小麦、斯佩尔特小麦、双粒小麦、Teff、Milo、亚麻、格兰马草、摩擦禾属、或假蜀黍。在一些实施方式中，谷类植物是玉米。在一些实施方式中，多肽被表达于植物的特殊部位或组织。在一些实施方式中，部位或组织包括但不限定于表皮、维管组织、分生组织、形成层、皮层或木髓。在一些实施方式中，部位或组织是叶或叶鞘、根、花、和发育中的胚珠或种子。在一些实施方式中，部位或组织可以是例如表皮、根、维管组织、分生组织、形成层、皮层、木髓、叶、或花。在一些实施方式中，部位或组织是种子。在一些实施方式中，多肽序列是由在高严格性杂交条件(6xSSC，65℃)以及随后的至少15分钟的终末洗涤步骤(0.1xSSC，65℃)下与SEQIDNO1所列的核苷酸序列、或其片段、结构域、或特征、或其互补序列杂交的核苷酸序列所编码的，其中核苷酸序列包括至少一个核苷酸的缺失或插入。在一些实施方式中，缺失或插入是至少约30个核苷酸的缺失或插入。在一些实施方式中，缺失或插入是少于约5个核苷酸的缺失或插入。在一些实施方式中，由在高严格性杂交条件(6xSSC，65℃)以及随后的至少15分钟的终末洗涤步骤(0.1xSSC，65℃)下与SEQIDNO1所列的核苷酸序列、或其片段、结构域、或特征、或其互补序列杂交的核苷酸序列所编码的多肽序列包括至少一个密码子的取代。在一些实施方式中，取代是保守取代。在一些实施方式中，具有与SEQIDNO2的多肽序列、或其片段、结构域、重复、特征、或其嵌合体基本上相同性的多肽序列包括至少一个氨基酸的缺失或插入。本发明的多肽、其片段、或其变体可以包括任何数目的来自本发明的多肽的连续的氨基酸残基，其中残基的数目选自由从10个到本发明的全长多肽的残基的数目所构成的整数组。在一些实施方式中，多肽的一部分或片段是功能多肽。在一些实施方式中，本发明包括具有天然(非合成的)内源性多肽的至少20％的特异活性的活性多肽，在一些实施方式中为至少30％，在一些实施方式中为至少40％，在一些实施方式中为至少50％，在一些实施方式中为至少60％，在一些实施方式中为至少70％，在一些实施方式中为至少80％，在一些实施方式中为至少90％，以及在一些实施方式中为至少95％。此外，底物特异性(Kcat/Km)基本上等同于天然的(非合成的)、内源性多肽。在一些实施方式中，Km通常至少是天然的、内源性多肽的30％，在一些实施方式中至少是40％，在一些实施方式中至少是天然的、内源性多肽的50％，在一些实施方式中至少是60％，在一些实施方式中至少是70％，在一些实施方式中至少是80％，以及在一些实施方式中至少是天然的、内源性多肽的90％。检测并定量测定活性和底物特异性的方法对于本领域人员是公知的。当被呈递作为免疫原时，本发明的分离的多肽可以引发产生与本发明的多肽特异性反应的抗体。因此，可以采用本发明的多肽作为用于构建与本发明的多肽免疫反应的抗体的免疫原，其用途包括但不限定于免疫检测或多肽纯化技术。用于确定结合力的免疫检测法对于本领域人员是公知的，其包括但不限定于酶联免疫吸附检测法(ELISA)和竞争性免疫检测法。本发明的实施方式也涉及当前所阐述的分离的核酸分子所编码的嵌合多肽，其包括含有由含有选自组的核苷酸序列的分离的核酸所编码的多肽序列的嵌合多肽，所述组包括(a)在高严格性杂交条件(6xSSC，65℃)以及随后的至少15分钟的终末洗涤步骤(0.1xSSC，65℃)下与SEQIDNO1所列的核苷酸序列、或其外显子、结构域、或特征杂交的核苷酸序列；(b)与(a)互补(例如完全互补)的核苷酸序列；和(c)与(a)反向互补(例如完全反向互补)的核苷酸序列；(d)或其功能片段。IV.控制并变更核酸分子的表达IV.A.概述本发明的一个方面提供了用于变更(即增加或减少)植物中的本发明的核酸分子和/或多肽的水平的组合物和方法。具体地，本发明的核酸分子和多肽可以被组成地、临时地、或空间分隔地(例如在发育阶段)等表达于某些组织，和/或表达一定的数量，这不是未重组遗传加工的植物的特征。因此，本发明提供了变更上面所鉴定的特殊特征在这些实例应用中的用途。本发明的分离的核酸分子可用于在重组遗传加工的细胞例如细菌、酵母、昆虫、哺乳动物、或植物细胞中表达本发明的多肽。表达细胞可以产生非天然条件下的多肽(例如数量、组成、部位、和/或时间)，因为所述表达细胞已经被遗传学变更成如此。本领域人员知道各种可用于表达编码本发明的多肽的核酸的表达系统。本发明的实施方式提供了表达盒，其包括与分离的核酸可操纵地连接的启动子序列，分离的核酸包括(a)在高严格性杂交条件(6xSSC，65℃)以及随后的至少15分钟的终末洗涤步骤(0.1xSSC，65℃)下与SEQIDNO1所列的核苷酸序列、或其片段、结构域、或特征杂交的核苷酸序列；(b)与(a)互补(例如完全互补)的核苷酸序列；和(c)与(a)反向互补(例如完全反向互补)的核苷酸序列；本发明还包括包括本发明的实施方式的表达盒的重组载体。也包括包括本发明的表达盒的植物细胞，以及包括这些植物细胞的植物。在一些实施方式中，植物是双子叶植物。在一些实施方式中，植物是蜀黍。在一些实施方式中，单子叶植物是谷类植物。在一些实施方式中，谷类植物可以是例如玉米、小麦、大麦、燕麦、黑麦、粟、蜀黍、小黑麦、黑麦、单粒小麦、斯佩尔特小麦、双粒小麦、Teff、Milo、亚麻、格兰马草、摩擦禾属、或假蜀黍。在一些实施方式中，谷类植物是玉米。在一些实施方式中，表达盒在整个植物中都表达。在一些实施方式中，表达盒被表达于植物的特殊部位或组织。在一些实施方式中，部位或组织包括但不限定于表皮、根、维管组织、分生组织、形成层、皮层、木髓、叶、花、种子、以及它们的组合物。在一些实施方式中，部位或组织是种子。在一些实施方式中，部位或组织是种子的蛋白体。本发明的实施方式也涉及包括选自组的核酸分子的表达载体，所述组包括(a)编码SEQIDNO2所列的多肽、或其定向进化同源物的核酸；(b)在高严格性杂交条件(6xSSC，65℃)以及随后的至少15分钟的终末洗涤步骤(0.1xSSC，65℃)下与SEQIDNO1所列的核苷酸序列杂交的核苷酸序列的片段、结构域、或特征区域；和(c)在高严格性杂交条件(6xSSC，65℃)以及随后的至少15分钟的终末洗涤步骤(0.1xSSC，65℃)下与SEQIDNO1所列的核苷酸序列、或其片段和异源序列的组合物杂交的完整的核苷酸序列。在一些实施方式中，表达载体包括一种或多种元件，其包括但不限定于启动子-增强子序列、选择标记序列、复制起点、表位标记编码序列、和亲和纯化标记编码序列。在一些实施方式中，启动子-增强子序列包括例如花椰菜花叶病毒(CaMV)35S启动子、CaMV19S启动子、烟草PR-la启动子、泛素启动子、或菜豆素启动子。在一些实施方式中，启动子是植物中的操纵型启动子，以及在一些实施方式中，启动子是组成型或诱导型启动子。在一些实施方式中，选择标记序列编码耐抗生素基因。在一些实施方式中，表位标记序列编码V5表位标记(GKPIPNPLLGLDST；SEQIDNO9；Southernetal.，1991)、肽FHHTT(SEQIDNO10)、血凝素、或谷胱苷肽-S-转移酶。在一些实施方式中，亲和纯化标记序列编码多氨基酸序列或多肽。在一些实施方式中，多氨基酸序列包括多组氨酸。在一些实施方式中，多肽是壳多糖结合区或谷胱苷肽-S-转移酶。在一些实施方式中，亲和纯化标记序列包括内蛋白编码序列。在一些实施方式中，表达载体包括真核表达载体，以及在一些实施方式中，表达载体包括原核表达载体。在一些实施方式中，真核表达载体包括组织特异性启动子。在一些实施方式中，表达载体在植物中是可操纵的。本发明的实施方式也涉及包括核酸构建体的细胞，核酸构建体包括表达载体和核酸，所述核酸包括编码作为SEQIDNO2所列的多肽的定向进化同源物的多肽的核酸，或包括在高严格性杂交条件(6xSSC，65℃)以及随后的至少15分钟的终末洗涤步骤(0.1xSSC，65℃)下与SEQIDNO1所列的核苷酸序列、或其亚序列和异源序列的组合物杂交的核苷酸序列。在一些实施方式中，细胞是细菌细胞、真菌细胞、植物细胞、或动物细胞。在一些实施方式中，多肽被表达于植物的特殊部位或组织中。在一些实施方式中，部位或组织包括但不限定于表皮、根、维管组织、分生组织、形成层、皮层、木髓、叶、花、种子、以及它们的组合。在一些实施方式中，部位或组织是种子。包括但不限定于大肠杆菌以及本领域已知的其他微生物菌株的原核细胞可以被用作宿主细胞。用于在原核细胞中表达多肽的方法在本领域是公知的，并且在许多实验手册(例如Sambrook&Russell，2001)中都可以找到这些方法。本领域人员都可以得到各种控制表达的启动子、核糖体结合位点、和操纵子、以及选择标记例如抗生素耐药基因。所选的载体类型容许在所选的细胞类型中进行最优化的生长和表达。可以获得各种真核表达系统例如酵母、昆虫细胞系、植物细胞、和哺乳动物细胞。在酵母中表达并合成异源多肽是公知的(见Shermanetal.，1982)。被广泛地用于生产真核多肽的酵母菌株是酿酒酵母和毕赤酵母，并且从商业供应商(例如InvitrogenCorp.，Carlsbad，California，UnitedStatesofAmerica)中都可得到载体、菌株和方案。可以用用于生产多肽的表达载体转化哺乳动物细胞。本领域人员可获得的合适的宿主细胞系包括，但不限定于HEK293、BHK21、和CHO细胞系。用于这些细胞的表达载体可以包括表达控制序列，例如复制起点、启动子(例如CMV启动子、单纯疱疹病毒胸苷激酶(HSV-tk)启动子或磷酸甘油酸激酶(pgk)启动子)、增强子、以及多肽加工位点例如核糖体结合位点、RNA剪切位点、多腺苷酸化位点、和转录终止序列。其他可用于生产多肽的动物细胞系是商业化可获得的或可以来自保藏单位例如美国典型培养物保藏中心(Manassas，Virginia，UnitedStatesofAmerica)。用于在昆虫细胞中表达多肽的表达载体一般都源自杆状病毒或本领域已知的其他病毒。可获得多种合适的昆虫细胞系，其包括但不限定于蚊幼虫、蚕、粘虫(例如Spodopterafrugiperda)、蛾、和果蝇细胞系。转化动物和更低等真核细胞的方法是已知的。可以用多种方法将异源DNA引入到真核细胞内，方法包括但不限定于磷酸钙沉淀法、受体细胞与含有DNA的原生质体的融合、用含DNA的脂质体对受体细胞的处理、DEAE葡聚糖、电穿孔法、生物弹射击法、和将DNA直接微注射到细胞内。用本领域公知的方法培养转化细胞(见Kuchler，1997)。一旦表达出本发明的多肽，利用本领域人员已知的方法可以将其从表达细胞中分离并纯化。可以用Western印迹技术、放射免疫检测法、或其他标准免疫检测技术监测纯化过程。本领域人员熟知并能应用多肽纯化技术(见Scopes，1982；Deutscher，1990)。本发明的实施方式提供了一种生产重组多肽的方法，其中表达载体包括一种或多种元件，元件包括但不限定于启动子-增强子序列、选择标记序列、复制起点、表位标记编码序列、和亲和纯化标记序列。在一些实施方式中，核酸构建体包括表位标记编码序列，以及分离步骤采用了特异于该表位标记的抗体。在一些实施方式中，核酸构建体包括多氨基酸编码序列，以及分离步骤采用了包括多氨基酸结合物的树脂，在一些实施方式中，其中多氨基酸是多组氨酸以及多氨基酸结合树脂是镍-带电荷的琼脂糖树脂。在一些实施方式中，核酸构建体包括多肽编码序列，以及分离步骤采用了多肽结合物的树脂。在一些实施方式中，多肽是壳多糖结合区以及树脂含有壳多糖-琼脂糖。利用本领域已知的非细胞的合成方法可以合成本发明的多肽。在Barany&Merrifield，1980；Merrifieldetal.，1963；Stewart&Young，1984描述了固相合成技术。本发明还提供了用于修饰植物或其器官中的本发明的多肽的浓度或组成的方法。通过增加或减少植物中的浓度和/或组成(即本发明的多肽的定额)可以实现修饰。方法包括如上所述的将包括本发明的核酸分子的表达盒引入到植物细胞内，以便获得转化植物细胞或组织，并培养转化植物细胞或组织。核酸分子可以处于组成型或诱导型启动子的调控之下。方法还可以包括诱导或抑制核酸分子序列在植物中的表达一段足以修饰植物或器官中的浓度和/或组成的时间。用本领域人员已知的方法可以分析并选择具有本发明的核酸分子的修饰表达的植物或植物器官，所述方法包括但不限定于Southern印迹法、DNA测序、或利用特异于核酸分子的引物并检测从中所产生的扩增子的PCR分析。一般而言，相对于缺少表达盒的天然的对照植物、植物器官、或细胞，在一些实施方式中，浓度或组成被增加或减少了至少5％，在一些实施方式中至少10％，在一些实施方式中至少20％，在一些实施方式中至少30％，在一些实施方式中至少40％，在一些实施方式中至少50％，在一些实施方式中至少60％，在一些实施方式中至少70％，在一些实施方式中至少80％，在一些实施方式中至少90％。IV.B.同源重组在一些实施方式中，通过同源重组(如在Paszkowskietal.，1988中进一步所述的)修饰了植物基因组中的至少一个对应于本发明的核苷酸序列的基因组拷贝。该技术利用了同源序列彼此相互识别以及通过在本领域被称作同源重组的过程交换相应核酸分子之间的核苷酸序列的能力。在细胞中的核苷酸序列的染色体拷贝和通过转化被引入到细胞内的核苷酸序列的新拷贝之间可以发生同源重组。因此，特异的修饰可以被准确地引入到核苷酸序列的染色体拷贝中。在一些实施方式中，修饰了本发明的核苷酸序列的调节序列。利用本发明的核苷酸序列或其一部分作为探针，通过筛选基因组文库可以容易地获得这些调节元件。用不同的调节元件取代现有的调节元件，因此变更了核苷酸序列表达，或者可以突变或删除现有的调节序列，因此去除了核苷酸序列的表达。在一些实施方式中，通过删除核苷酸序列的一部分或整个核苷酸序列，或通过突变可以修饰核苷酸序列。本发明也提供了突变多肽在植物细胞内的表达。已经阐述了最近对这种技术用于阻断内源性植物基因的改进方法(Kempinetal.，1997和Miao&Lam，1995)。在一些实施方式中，通过用由连续的RNA和DNA残基链组成的在其末端具有双发夹帽结构的双链构象的嵌合寡核苷酸转化细胞可以引入核苷酸序列的染色体拷贝中的突变。寡核苷酸的附加特性是例如在RNA残基上具有2’-O-甲基化。RNA/DNA序列被设计为与本发明的核苷酸序列的染色体拷贝的序列排列比较，并含有所需的核苷酸改变。例如，在美国专利No.5,501,967和Zhuetal.，1999中进一步地阐述了这个技术。IV.C.在植物细朐内的过度表达在一些实施方式中，编码多肽的本发明的核苷酸序列是被过度表达的。上面阐述了用于过度表达本发明的核酸分子的核酸分子和表达盒的实例。本发明也包括本领域人员已知的过度表达核酸分子的方法。在一些实施方式中，变更了本发明的核苷酸序列在每个植物细胞内的表达。例如通过同源重组或通过插入到染色体内都可以实现这一点。例如在每个植物细胞中通过在能表达有义或反义RNA、锌指多肽或核酶的启动子的控制下表达有义或反义RNA、锌指多肽或核酶也可以实现这一点。组成的、诱导的、组织特异的、或发育调节的表达也在本发明的范围之内，并造成了本发明的核苷酸序列在植物细胞内的表达的组成的、诱导的、组织特异的、或发育调节的变更。根据本发明的教义例如在此所阐述的教义，可以制备用于表达有义或反义RNA、锌指多肽或核酶、或用于过度表达本发明的核苷酸序列的构建体，并将其转化到植物细胞内。IV.D.植物表达载体的构建首先可以将预计用于在转基因植物中表达的编码序列组装到与在植物中可表达的合适的启动子可操纵地连接的表达盒内。表达盒也可以包括任何其他的表达转基因所需的或所选的序列。这些序列包括但不限定于转录终止子、增强表达的外来序列例如内含子、致病序列、和预计用于将基因产物导向特异细胞器和细胞间隔的序列。然后可以将这些表达盒容易地转移到下面所述的植物转化载体中。下面是对经典表达盒的各种组分的描述。IV.D.1.启动子对表达盒内所用的启动子的选择可以确定出转基因在转基因植物中的空间及时间表达模式。所选的启动子可以在特异的细胞类型(例如，叶外胚层细胞、叶肉细胞、根皮质细胞、和/或胚乳细胞)或特异的组织或器官(例如根、叶、花、和/或种子)中表达转基因，并且该选择可以反映出所需的基因产物的蓄积部位。同样，所选的启动子可以驱动在各种诱导条件下表达基因。启动子在其强度(即它们启动转录的能力)上可以有所不同。依赖于所用的宿主细胞系统，可以使用大量合适启动子中的任一种启动子，包括基因的天然启动子。下面是可以用于表达盒的启动子的非受限的实例。IV.D.1.a.组成表达泛素启动子泛素是已知能蓄积在多种细胞类型中的基因产物，已经从一些用于转基因植物的物种(例如向日葵-Binetetal.，1991；玉米-Christensen&Quail，1989；和Arabidopsis-Callisetal.，1990；Norrisetal.，1993)中克隆出它的启动子。在转基因单子叶植物系统中已经研制出玉米泛素启动子，在专利文献EP0342926(Lubrizol)中阐述了它的序列以及所构建的用于单子叶植物转化的载体，在此通过引用将其并入申请。Tayloretal.，1993描述了一种载体(pAHC25)，其包括玉米泛素启动子和第一内含子，并具有在多种单子叶植物的细胞悬浮液中的高活性(当经微粒轰击将其引入到细胞内时)。拟南芥泛素启动子适用于本发明的核苷酸序列。泛素启动子适用于转基因植物(单子叶和双子叶植物)中的基因表达。合适的载体是经引入适当的泛素启动子和/或内含子序列所修饰的pAHC25的衍生物或任一在此所述的转化载体。IV.D.1.b.组成表达CaMV35S启动子在已发表的专利文献EP0392225(实施例23)中阐述了对质粒pCGN1761的构建，在此通过引用将其并入本申请。pCGN1761含有“双份”CaMV35S启动子和tml转录终止子，并且在启动子和终止子之间具有独特的EcoRI位点，以及具有pUC型骨架。构建出pCGN1761的衍生物，其具有经修饰的多位点接头，除了已有的EcoRI位点外，还包括NotI和XhoI位点。该衍生物被称作pCGN1761ENX。在转基因植物中，在35S启动子的控制下表达该载体的目的是，pCGN1761ENX可用于克隆其多位点接头内的cDNA序列或编码序列(包括微生物的ORF序列)。用启动子5’端的HindIII、SphI、SalI、和XbaI位点以及终止子3’端的XbaI、BamHI和BglI位点可以切割下这样一种构建体的完整的35S启动子-编码序列-tml终止子表达盒，其可用于被转移到如在下面所述的那些转化载体中。此外，通过HindIII、SphI、SalI、XbaI、或Pstl的5’切割以及任一多位点接头限制性位点(EcoRI、NotI或XhoI)的3’切割可以去除双重35S启动子片段，用另一种启动子将其取代。如果需要，通过引入能增强翻译的序列可以进行克隆位点周围的修饰。当需要过度表达时，这是特别有用的。例如，如美国专利No.5,639,949的实施例37所述的，通过优化翻译起始位点可以修饰pCGN1761ENX，在此通过引用将其并入本申请。IV.D.1.c.组成表达肌动蛋白启动子已知一些肌动蛋白的亚型在大多数细胞类型中都有所表达，因此肌动蛋白启动子可被用作组成型启动子。具体地，已经克隆并描述了来自水稻ActI基因的启动子(McElroyetal.，1990)。发现启动子的1.3千碱基(Kb)片段含有所有的在水稻原生质体中表达所需的调节元件。此外，已经特异地构建出用于单子叶植物的多个基于ActI启动子的表达载体(McElroyetal.，1991)。这些表达载体整合了ActI-内含子1、AdhI5’侧序列(来自玉米乙醇脱氢酶基因)和AdhI-内含子以及来自CaMV35S启动子的序列。表现出最高表达的载体是35S和ActI内含子或ActI5’侧序列和ActI内含子的融合物。对起始ATG周围的序列(B-葡糖醛缩酶(GUS)报告基因)的优化也增强表达。可以容易地修饰用于表达的在McElroyetal.，1991中所述的启动子表达盒，它特别适用于单子叶植物宿主。例如，从McElroy构建体中取出含启动子的片段，并将其用于取代pCGN1761ENX中的双重35S启动子，这可用于插入特异的基因序列。因此，可以将所构建的融合基因转移到合适的转化载体内。在一个独立的报告中，也已经发现水稻ActI启动子及其第一内含子指导了在所培养的大麦细胞中的高表达(Chibbaretal.，1993)。IV.D.1.d.诱导表达PR-1启动子可以用所选的能造成合适高表达水平的任何其他的启动子取代pCGN1761ENX中的双重35S启动子。举例说明，在美国专利中所述的其中一种化学可调节的启动子No.5,614,395例如烟草PR-1启动子可以取代双重35S启动子。同样，可以使用在Lebel等，1998中所述的拟南芥PR-1启动子。通过限制性内切酶可以从其来源中切割下所选的启动子，但是所选的启动子同样可以是利用携带有合适的末端的限制性位点的引物所PCR扩增到的。当进行PCR扩增时，在将所扩增的启动子克隆到靶载体之后，可以重新测序启动子以检查扩增错误。从质粒pCIB1004(对于其构建，见EP0332104的实施例21，在此通过引用将其并入本申请)中解离出化学地/病原体可调节的烟草PR-1a启动子，并将其转移到质粒pCGN1761ENX(Uknesetal.，1992)。用NcoI解离出pCIB1004，通过T4DNA聚合酶的处理将所形成的线性化片段的3’悬突钝化。然后用HindIII解离所述片段，凝胶纯化所形成的含PR-1a启动子片段，并将其克隆到其中已经去除了双重35S启动子的pCGN1761ENX内。通过XhoI的解离以及T4聚合酶的钝化，随后用HindIII解离，分离出含更大载体终止子的片段，并将其克隆到pCIB1004启动子片段内，可以实现这一点。这就产生了具有PR-1a启动子和tml终止子以及所插入的具有唯一的EcoRI和NotI位点的多位点接头的pCGN1761ENX衍生物。可以将所选的编码序列插入到该载体内，随后可以将融合产物(即启动子-基因-终止子)转移到任一所选的转化载体中，包括那些在此所述的转化载体。可以采用各种化学调节物以诱导所选的编码序列在本发明的转化植物中的表达，所述调节物包括苯并噻二嗪、异烟腙以及在美国专利Nos.5,523,311和5,614,395中所述的水杨酸化合物。IV.D.1.e.诱导表达乙醇诱导型启动子由某些醇或酮(例如乙醇)诱导的启动子也可以被用于进行本发明的编码序列的诱导表达。这样一种启动子是例如来自构巢曲霉的alcA启动子(Caddicketal.，1998)。在构巢曲霉中，alcA基因编码乙醇脱氢酶I，化学诱导物经AlcR转录因子调节它的表达。对于本发明的目的，用本发明的编码序列取代包括alcA基因启动子的质粒palcACAT中的CAT编码序列，以便形成具有在alcA基因启动子控制下的编码序列的表达盒。用本领域已知的方法可以实现这一点。IV.D.1.f.诱导表达糖皮质激素诱导型启动子也提供了利用基于类固醇激素的系统对本发明的核苷酸序列的表达的诱导。例如，使用了糖皮质激素介导的诱导系统，并通过施用糖皮质激素例如合成的糖皮质激素(例如地塞米松)诱导基因表达，糖皮质激素的浓度范围在一些实施方式中是从0.1mM到1mM，以及在一些实施方式中是从10mM到100mM。对于本发明的目的，用本发明的核苷酸序列取代萤光素酶基因序列(Aoyama&Chua，1997)，以便形成具有在与35S最小启动子融合的6个拷贝的GAL4上游激活序列控制下的本发明的核苷酸序列的表达盒。用本领域已知的方法可以实现这一点。顺式作用因子包括与疱疹病毒多肽VP16的顺式激活区(Triezenbergetal.，1988)相融合的GAL4DNA结合区(Keeganetal.，1986)，所述VP16多肽与鼠糖皮质激素受体的激素结合区(Picardetal.，1988)相融合。通过本领域已知的启动子或在此所述的启动子控制融合多肽的表达。也提供了包括表达盒的植物，所述表达盒包括与6xGAL4/最小启动子相融合的本发明的核苷酸序列。因此，实现了融合多肽的组织或器官特异性，导致了所表达的核苷酸序列的可诱导的组织或器官特异性。IV.D.1.g.根特异性表达基因表达的另一种模式是根表达。合适的根启动子是在deFramond，1991以及在美国专利No.5,466,785中所述的玉米金属硫蛋白样(MTL)基因的启动子，在此通过引用将每个文献的内容都并入本申请。将这个“MTL”启动子转移到用于插入所选基因的合适载体例如pCGN1761ENX中，随后将整个启动子-基因-终止子转移到相关的转化载体内。IV.D.1.h.创伤诱导型启动子创伤诱导型启动子也可以适用于基因表达。已经描述了多种这样的启动子(例如，Xuetal.，1993；Logemannetal.，1989；Rohrmeier&Lehle，1993；Fireketal.，1993；Warneretal.，1993)，并且所有的启动子都适合用于本发明。Logemann等描述了双子叶植物马铃薯wunI基因的5’上游序列。Xu等显示了来自双子叶植物马铃薯(pin2)的创伤诱导型启动子在单子叶植物水稻中是有活性的。此外，Rohrmeier&Lehle描述了对玉米WipIcDNA的克隆，WipIcDNA是创伤诱导的，并能用于利用标准技术分离出同种启动子。同样，Firek等和Warner等已经描述了来自单子叶植物Asparagusofficinalis的创伤诱导型基因，其表达于局部创伤部位及病原体侵入部位。利用本领域公知的克隆技术，可以将这些启动子转移到合适的载体内，并与本发明的基因融合，并被用于在植物创伤的部位表达这些基因。IV.D.1.i.木髓优选的表达PCT国际文献WO93/07278(在此通过引用并入本申请)描述了对玉米trpA基因的分离，该基因优选地表达于木髓细胞中。显示了最大延伸到离转录起点-1726碱基对处的基因序列和启动子。利用标准的分子生物学技术，可以将该启动子或其一部分转移到载体(例如pCGN1761)中，其中它可以取代35S启动子，并被用于驱动以木髓优选的方式表达外来基因。事实上，可以将含有木髓优选的启动子或其一部分的片段转移到任一载体内，并将其修饰用于转基因植物。IV.D.1.j.叶特异性表达Hudspeth&Grula，1989已经描述了编码磷酸烯醇羧化酶(PEPC)的玉米基因。利用标准的分子生物学技术，该基因的启动子可以用于驱动在转基因植物中以叶特异性方式表达任一基因。IV.D.1.k.花粉特异性表达WO93/07278描述了对在花粉细胞中表达的玉米的钙依赖性蛋白激酶(CDPK)基因的分离。基因序列和启动子最大延伸到离转录起点1400碱基对(bp)处。利用标准的分子生物学技术，该启动子或其一部分可以被转移到载体(例如pCGN1761)中，其中它可取代35S启动子，并被用于驱动以花粉特异性方式表达本发明的核苷酸序列。IV.D.1.l.种子特异性表达在一些实施方式中，本发明的核酸分子可以被表达于种子内，和/或表达于种子的蛋白体内。如在此所述的，可以用从Q蛋白基因中分离处的核苷酸序列(SEQIDNO6)指导异源序列在植物种子中的表达。利用标准的分子生物学技术，该启动子或其一部分可以被转移到载体(例如pCGN1761)中，其中它取代了35S启动子，并被用于驱动以种子特异性方式表达本发明的核苷酸序列。IV.D.2.转录终止子各种转录终止子都可被用于表达盒。它们作用为终止转录并纠正mRNA的多腺苷酸化。合适的转录终止子是那些已知在植物中发挥作用的转录终止子，其包括CaMV35S终止子、tml终止子、胆脂碱合酶终止子、和碗豆rbcSE9终止子。它们都可被用于单子叶植物和双子叶植物。另外，可以使用基因的天然的转录终止子。IV.D.3.用于增强或调节表达的序列已经发现来自转录单位内的多个序列都可增强基因表达，可以结合本发明的基因使用这些序列，以便增加所述基因在转基因植物中的表达。各种内含子序列已经显示出增强表达，特别是在单子叶植物细胞内。例如，已经发现玉米AdhI基因的内含子显著地增强了在其同种启动子下的野生型基因的表达，当其被引入到玉米细胞内时。发现内含子1是特别有效的，并增强了具有氯霉素乙酰转移酶基因的融合构建体的表达(Callis等，1987)。在相同的试验系统中，来自玉米bronze1基因的内含子在增强表达上具有相似的作用。内含子部分已经被常规地整合到植物转化载体内，通常是在非翻译的前导部分。也已知多种来源于病毒的非翻译的前导序列能增强表达，它们在双子叶植物中是特别有效的。具体地，来自烟草花叶病毒(TMV，“W序列”)、玉米萎黄病斑点病毒(MCMV)、和苜蓿花叶病毒(AMV)的前导序列已经显示出能有效地增强表达(见例如，Gallieetal.，1987；Skuzeskietal.，1990)。本领域已知的其他前导序列包括，但不限定于微小RNA病毒前导序列，例如脑炎心肌炎病毒(EMCV)前导序列(5’端非编码区，见Elroy-Steinetal.，1989)；马铃薯Y病毒前导序列，例如来自烟草蚀纹病毒(TEV，见seeAllisonetal.，1986)、玉米矮小花叶病毒(MDMV，见Kong&Steinbiss1998)的前导序列；人免疫球蛋白重链结合多肽(BiP)前导序列(Macejak&Sarnow，1991)；来自苜蓿花叶病毒的被膜多肽mRNA的非翻译的前导序列(AMV，RNA4，见Jobling&Gehrke，1987)；烟草花叶病毒(TMV)前导序列(Gallieetal.，1989)；和玉米萎黄病斑点病毒(MCMV)前导序列(Lommeletal.，1991)。也见Della-Cioppaetal.，1987。除了将上面所提及的一种或多种元件整合到本发明的靶表达盒的5’调节区内以外，也可以整合其他的元件。这些元件包括，但不限定于最小启动子。最小启动子的意义是该基本启动子元件在缺少上游或下游激活的情况下是没有活性的或基本没有活性的。当不存在顺式激动剂或当增强子或应答元件结合位点都不存在时，这样一种启动子在植物中具有低的背景活性。对于植物中的靶基因特别有用的一种最小启动子是Bz1最小启动子，它是从玉米的bronze1基因中得到的。通过位于位点-53到-58的NheI位点上的解离，从“myc”突变体Bz1-萤光素酶构建体pBz1LucR98中得到了Bz1核心启动子(Roth等，1991)。因此，所形成的Bz1核心启动子片段从位点-53延伸到+227，并包括5’非翻译区的Bz1内含子1。也能用于本发明的是通过应用合成的TATA元件所产生的最小启动子。TATA元件容许RNA聚合酶因子对启动子的识别，并赋予了在没有激活情况下的基础水平的基因表达(通常见于，Mukumotoetal.，1993；Green，2000)。IV.D.4.基因产物在细胞内的靶向作用已知在植物中存在着各种用于靶向基因产物的机制，已经较详细地描述了控制这些机制的功能性的序列。例如，通过在各种多肽的氨基末端上所发现的信号序列控制基因产物向叶绿体内的靶向作用，在输入到叶绿体的过程中，解离出信号序列以便产生成熟的多肽(见例如Comaietal.，1988)。这些信号序列可以与异源的基因产物融合以实现异源产物向叶绿体内的输入(VandenBroecketal.，1985)。可以从编码核酮糖-1，5-二磷酸羧化酶/氧化酶(RUBISCO)多肽、叶绿素a/b结合(CAB)多肽、5-烯醇-pyruvyl莽草素-3-磷酸(EPSP)合酶、GS2多肽和许多其他的已知位于叶绿体内的多肽的cDNA的5’末端分离出编码合适的信号序列的DNA。也见于，美国专利No.5,639,949的实施例37中的题为“导向叶绿体的表达”的章节，在此通过引用并入本申请。其他基因产物可以定位于其他的细胞器例如线粒体和过氧化物酶体(例如Ungeretal.，1989)。也可以加工处理编码这些产物的cDNA以实现将异源基因产物导向这些细胞器。这些序列的实例是导向线粒体的核编码的ATP酶和特异的天冬氨酸氨基转移酶亚型。Rogers等，1985已经描述了靶向的细胞多肽体。另外，已经描述了控制基因产物导向其他细胞间隔的序列。氨基末端序列造成了序列导向内质网(ER)、质外体，以及aleurone细胞的细胞外分泌(Koehler&Ho，1990)。此外，氨基末端序列结合羧基末端序列造成了基因产物的空泡靶向作用(Shinshietal.，1990)。通过上面所述的合适的靶序列与相关的转基因序列的融合，指导转基因产物导向任一细胞器或细胞间隔是有可能的。对于叶绿体的靶向作用，例如来自RUBISCO基因、CAB基因、EPSP合酶基因、或GS2基因的叶绿体信号序列与转基因的氨基末端的ATG框内融合。所选的信号序列可以包括已知的解离位点，以及所构建的融合体可以含有解离位点之后的解离所需的任何氨基酸。在一些情况中，通过在解离位点和转基因ATG之间添加少数氨基酸、或同样地取代转基因序列内的一些氨基酸都可以满足这种需要。利用Bartlettetal.，1982和Wasmannetal.，1986所阐述的技术，通过对体外转录的构建体的体外翻译以及随后的体外叶绿体摄取可以测试所构建的用于叶绿体输入的融合体的叶绿体摄取的效率。这些构建技术在本领域是公知的，并被平等地应用于线粒体和过氧化物酶体。最后，利用包括Q蛋白启动子(SEQIDNO6)的核苷酸序列，可以完成异源序列的种子特异性的表达。因此，包括与SEQIDNO6可操纵地连接的异源编码序列的表达构建体可以被用于指导核苷酸序列在种子内的表达，在一些实施方式中，其可被用于生产包括异源编码序列所编码的多肽的蛋白体。不仅可以结合它们的同种启动子使用上述的细胞靶向作用的机制，也可以结合异源启动子使用上述的细胞靶向作用的机制，以便实现在启动子的转录调节下的特异的细胞靶向作用的目的，所述启动子具有不同于靶向信号所来源的物种的启动子的表达模式。IV.E.植物转化载体的构建多种可用于植物转化的转化载体对于植物转化领域的一般人员都是已知的，并且可以结合任一这样的载体使用从属于本发明的基因。对载体的选择将依赖于所选的转化技术以及用于转化的靶物种。对于某些靶物种，可以采用不同的抗生素或除草剂的选择标记物。在转化中常规使用的选择标记物包括nptII基因，它赋予了对卡那霉素和相关抗生素的耐药性(Messing&Vieira，1982；Bevanetal.，1983)；bar基因，它赋予了对除草剂phosphinothricin(Whiteetal.，1990；Spenceretal.，1990)的耐药性；hph基因，它赋予了对抗生素潮霉素的耐药性(Blochinger&Diggelmann，1984)；dhfr基因，它赋予了对甲氨蝶呤的耐药性(Bourouis&Jarry，1983)；EPSP合酶基因，它赋予对草甘膦的耐药性(美国专利Nos4,940,935和5,188,642)；和甘露糖-6-磷酸异构酶基因，它提供了代谢甘露糖的能力(美国专利Nos.5,767,378和5,994,629)。IV.E.1.活用于土壤杆菌转化的载体多种载体都可用于利用土壤杆菌的转化。它们通常携带有至少一个T-DNA边缘序列，并包括载体例如pBIN19(Bevan，1984)。下面，阐述了适用于土壤杆菌转化的两种常用载体的构建。IV.E.1.a.pCIB200和pCIB2001用二元载体pCIB200和pCIB2001构建用于土壤杆菌的重组载体，并按下面的方式进行构建。通过NarI消化pTJS75(其容许切除四环素耐药基因)以及随后插入来自携带有NPTII序列的pUC4K的AccI片段(Messing&Vieira，1982；Bevanetal.，1983；McBride&Summerfelt.1990)，产生了pTJS75kan(Schmidhauser&Helinski，1985)。将XhoI连接物连接到含有左侧及右侧T-DNA边缘的PCIB7的EcoRV片段，将植物可选择的nos/nptII嵌合基因以及pUC多位点接头(Rothsteinetal.，1987)、和XhoI消化过的片段克隆到SalI消化过的pTJS75kan中，以便产生pCIB200(也见于EP0332104，实施例19)。pCIB200含有下面的独特的多位点接头限制性位点EcoRI、SstI、KpnI、BglII、XbaI、和SalI。pCIB2001是通过pCIB200插入到具有附加的限制性位点的多位点接头内所产生的pCIB200的衍生物。pCIB2001的多位点接头中的独特的限制性位点是EcoRI、SstI、KpnI、BglII、XbaI、SalI、MluI、BclI、AvrII、ApaI、HpaI、和StuI。pCIB2001除了含有这些独特的限制性位点外，还含有植物和细菌的卡那霉素选择基因、用于土壤杆菌介导的转化的左侧和右侧T-DNA边缘、作用为大肠杆菌和其他宿主之间的动员作用(mobilization)的RK2衍生的trfA、以及也来自RK2的OriT和OriVfunctions。pCIB2001多位点接头适用于克隆含有其本身的调节信号的植物表达盒。IV.E.1.b.pCIB10及其潮霉素选择衍生物二元载体pCIB10含有编码用于植物选择的卡那霉素耐药性的基因、T-DNA右侧及左侧边缘序列，并整合有来自广泛宿主范围性质粒pRK252的序列，这容许其在大肠杆菌和土壤杆菌内进行复制。Rothstein等，1987阐述了载体的构建。可以构建出整合有Gritz&Davies，1983所述的潮霉素B磷酸转移酶基因的pCIB10的各种衍生物。这些衍生物使得能根据单一的潮霉素(pCIB743)、或潮霉素和卡那霉素(pCIB715、pCIB717)选择转基因植物细胞。IV.E.2.适用于非土壤杆菌转化的载体没有使用根瘤土壤杆菌的转化避免了所选转化载体对T-DNA序列的需要，因此除了上面所阐述的含有T-DNA序列的载体外，也可以使用缺失这些序列的载体。不依赖于土壤杆菌的转化技术包括经粒子轰击、原生质体摄取(例如聚乙二醇(PEG)和电穿孔)、以及微注射而实施的转化。对载体的选择主要依赖于所转化的物种。下面，阐述了适用于非土壤杆菌转化的常用载体的构建。IV.E.2.a.pCIB3064pCIB3064是适用于联合除草剂BSATA(glufosinateammonium或phosphinothricin)指导基因转化技术的pUC衍生的载体。质粒pCIB246含有与大肠杆菌β-葡糖醛酸酶(GUS)基因可操纵地融合的CaMV35S启动子以及CaMV35S转录终止子，PCT国际文献WO93/07278对此进行了阐述。该载体的35S启动子含有两个起点5’端的ATG序列。利用标准的PCR技术使得这些位点发生了突变，以便去除ATG并产生了限制性位点SspI和PvuII。新的限制性位点距离独特的SalI位点有96和37bp远，距离实际的起点有101和42bp远。所形成的pCIB246的衍生物被称作pCIB3025。然后通过SalI和SacI的消化从pCIB3025中切除GUS基因，将末端钝化并重新连接，产生了质粒pCIB3060。从英格兰诺维奇的JohnInnes中心得到了质粒pJIT82，切下400bp的含有来自产绿色链霉菌的bar基因的SmaI片段，并将其插入到pCIB3060的HpaI位点内(Thompsonetal.，1987)。这就产生了pCIB3062，其包括在CaMV35S启动子控制下的bar基因和用于除草剂选择的终止子、氨苄青霉素耐药性基因(用于大肠杆菌中的选择)以及具有独特位点SphI、PstI、HindIII、和BamHI的多位点接头。该载体适用于克隆含有其本身调节信号的植物表达盒。IV.E.2.b.pSOG19和pSOG35pSOG35是将大肠杆菌二氢叶酸还原酶(DHFR)基因用作选择标记物的转化载体，该基因赋予了其对甲氨蝶呤的耐药性。用PCR扩增35S启动子(-800bp)、来自玉米Adh1基因的内含子6(-550bp)、和来自pSOG10的18bp的GUS的非翻译的前导序列。也用PCR扩增编码大肠杆菌II型二氢叶酸还原酶基因的250bp片段，组装这两个PCR片段和来自pB1221(BDBiosciencesClontech，PaloAlto，California，UnitedStatesofAmerica)的含有pUC19载体骨架和胆脂碱合酶终止子的SacI-PstI片段。这些片段的组装产生了pSOG19，其含有与内含子序列融合的35S启动子、GUS前导序列、DHFR基因、和胆脂碱合酶终止子。用来自玉米萎黄病花叶病毒(MCMV)的前导序列取代pSOG19中的GUS前导序列产生了载体pSOG35。pSOG19和pSOG35携带有耐氨苄青霉素的pUG基因以及具有适用于克隆外来物质的HindIII、SphI、PstI、和EcoRI位点。IV.E.3.适用于叶绿体转化的载体为了在植物质体中表达本发明的核苷酸序列，使用了质粒转化载体pPH143(PCT国际文献WO97/32011的实施例36)。将核苷酸序列插入到pPH143内，以取代原卟啉原氧化酶(Protox)编码序列。然后将该载体用于质粒转化以及选择壮观霉素耐药的转化体。同样，将核苷酸序列插入到pPH143内，使得其取代aadH基因。对此，选择耐Protox抑制物的转化体。IV.F.转化一旦已经将本发明的核苷酸序列克隆到表达系统内，其被转化到植物细胞内。可以以多种本领域已知的方式将本发明的受体和靶表达盒引入到植物细胞内。用于再生植物的方法在本领域也是公知的。例如，Ti质粒载体、以及DNA摄取、脂质体、电穿孔、微注射、和微粒都已经被用于转运外来DNA。另外，可以用来自土壤杆菌属的细菌转化植物细胞。下面描述了用于转化双子叶和单子叶植物的代表性技术以及代表性的质粒转化技术。IV.F.1.双子叶植物的转化用于转化双子叶植物的技术在本领域是公知的，其包括基于土壤杆菌的技术以及不需要土壤杆菌的技术。非土壤杆菌技术包括原生质体或细胞对异源遗传学物质的直接摄取。通过PEG或电穿孔介导的社却、离子轰击阶段的转运、或微注射都也可以完成这一点。在Paszkowskietal.，1984、Potrykusetal.，1985、Reichetal.，1986、和Kleinetal.，1987中阐述了这些技术的实例。在每种情况中，利用本领域已知的标准技术将转化细胞再生成了整个植物。基于土壤杆菌的转化是转化双子叶植物的有用技术，因为其具有高的转化效率以及对多种不同物种的广泛的适用性。土壤杆菌转化通常包括携带有相关的外来DNA的二元载体(例如，pCIB200或pCIB2001)向合适的土壤杆菌菌株的转移，这依赖于共生Ti质粒上的或染色体上的宿主土壤杆菌菌株所携带的vir基因的互补物(例如，菌株CIB542对pCIB200和pCIB2001(Uknesetal.，1993))。通过三亲交配方法实现重组二元载体向土壤杆菌内的转移，所述三亲交配方法使用了携带有重组二元载体的大肠杆菌、携带有质粒例如pRK2013质粒的辅助大肠杆菌菌株，该辅助菌株能将重组二元载体动员到靶向土壤杆菌菌株中。同样，通过DNA转化可以将重组二元载体转移到土壤杆菌中(Hfgen&Willmitzer，1988)。经重组体土壤杆菌对靶向植物物种的转化通常包括土壤杆菌与植物外植块的共培养，按照本领域公知的方案。在选择培养基上再生出转化组织，所述组织携带有存在于二元质粒T-DNA边缘之间的抗生素或除草剂耐药标记物。另一种用基因转化植物细胞的方法包括往植物组织或细胞内推进惰性的或生物学活性的颗粒。在美国专利Nos.4,945,050、5,036,006、和5,100,792中阐述了这种技术，所有专利都被授权给Sanford等。一般而言，这个技术包括在足以穿透细胞的外表面并能整合到其内部的条件下，将惰性的或生物学活性的颗粒推进到细胞内。当使用惰性颗粒时，通过用含有所需基因的载体涂层颗粒可以将载体引入到细胞内。同样，用载体包绕靶细胞，通过唤醒颗粒将载体带入到细胞内。也可以将生物学活性颗粒(例如，干酵母细胞、干细菌、或噬菌体，每个都含有所需引入的DNA)推进到植物细胞组织内。IV.F.2.单子叶植物的转化绝大多数单子叶植物的转化现在已经成为常规。示例的技术包括用PEG或电穿孔将基因直接转移到原生质体内，以及用离子轰击将基因转移到愈伤组织内。用单一DNA物种或多DNA物种(及共转化)都可以完成转化，并且这两种技术都适用于本发明。共转化具有的优点是避免了完整载体的构建，并生成具有相关基因和选择标记物的未连锁基因座的转基因植物，这使得在之后的后代中去除了可选择标记物，这被认为是所需要的要求。但是，应用共转化的一个缺点是分离DNA物种的序列被整合到基因组中的频率小于100％(Schocheretal.，1986)。专利申请EP0292435、EP0392225、和WO93/07278描述了用于从玉米的良种近交系中制备愈伤组织和原生质体、用PEG或电穿孔对原生质体的转化、以及从转化原生质体再生出玉米植物的技术。Gordon-Kammetal.，1990和Frommetal.，1990已经发表了利用离子轰击转化A188衍生玉米系的技术。此外，WO93/07278和Kozieletal.，1993描述了用于经离子轰击转化玉米的良种近交系的技术。这个技术利用了从传粉后14-15天的玉米穗中切下来的1.5-2.5mm长的未成熟的玉米胚芽以及用于轰击的PDS-1000/HeBiolistic粒子转运设备(Bio-RadLaboratories，Hercules，California，UnitedStatesofAmerica)。通过利用原生质体或离子轰击的直接基因转移技术也可以进行水稻的转化。已经阐述了Japonica型水稻和Indica型水稻的原生质体介导的转化(Zhangetal.，1988；Shimamotoetal.，1989；Dattaetal.，1990)。利用离子轰击也可以常规地转化这两种类型的水稻(Christouetal.，1991)。此外，WO93/21335描述了用于经电穿孔转化水稻的技术。Casas等，1993阐述了经微粒轰击生产转基因的蜀黍植物。欧洲专利申请EP0332581描述了用于产生、转化、和再生Pooideae原生质体的技术。这些技术容许转化Dactylis和小麦。此外，在Vasiletal.，1992中已经阐述了利用对C型长期再生性愈伤组织细胞的离子轰击所进行的小麦转化，Vasiletal.，1993和Weeksetal.，也利用对不成熟胚芽和不成熟胚芽来源的愈伤组织的离子轰击所进行的转化。但是，用于小麦转化的代表性技术包括通过对不成熟胚芽的离子轰击所进行的小麦转化，并包括基因转运之前的高蔗糖或高麦芽糖步骤。在轰击之前，将胚芽(长度为0.75-1mm)铺板到用于体细胞胚芽诱导的具有3％蔗糖(Murashige&Skoog，1962)和3mg/l2，4-二氯苯氧代乙酸(2，4-D)的MS培养基上，这个步骤可以在暗处进行。在选定的轰击的日子，从诱导培养基中取出胚芽，并将其放置到渗压剂(即加有所需浓度的蔗糖或麦芽糖(通常是15％)的诱导培养基)上。容许胚芽进行原浆分离2-3个小时，然后进行轰击。20个胚芽/靶板是常见的，虽然这并非关键。用标准方法将携带合适基因的质粒(例如pCIB3064或pSG35)沉淀到微米大小的金颗粒上。利用每平方英寸约1000磅的攻击压力，利用标准的80筛，用Biolistics设备轰击每个板上的胚芽。在轰击之后，将胚芽放回到暗处，进行复原约24个小时(仍在渗压剂上)。在24个小时之后，从渗压剂中取出胚芽，并放回到诱导培养基上，在再生之前，其在此被放置约1个月。在近1个月之后，将具有发育中的胚芽发生的愈伤组织的胚芽外植物转移到再生培养基(MS+1mg/LNAA，5mg/LGA)中，培养基还含有合适的选择试剂(对于pCIB3064是10mg/lBASTA，以及对于pSOG35是2mg/l甲氨蝶呤)。在近1个月之后，将发育中的嫩枝转移到更大的无菌容器(称作“GA7s”)中，其中含有半浓度MS、2％蔗糖、以及相同浓度的选择试剂。也已经阐述了利用土壤杆菌对单子叶植物的转化。见WO94/00977和美国专利No.5,591,616，通过引用将其都并入本申请。也见于Negrottoetal.，2000，在此通过引用并入本申请。Zhaoetal.，2000具体地描述了土壤杆菌对蜀黍的转化。见美国专利No.6,369,298。可以用水稻(Oryzasativa)生成转基因植物。可以使用各种水稻培养物(Hieietal.，1994；Dongetal.，1996；Hieietal.，1997)。同样，下面所述的各种培养基组分在其数量上都可以有所不同或者可以被取代。通过在MS-CIM培养基(4.3g/升MS基本盐、5ml/l维生素B5(200x)、30g/l蔗糖、500mg/l脯氨酸、500mg/l谷氨酰胺、300mg/l酪蛋白水解物、2ml/l2，4-D(1mg/ml)、用NKOH将pH值调整到5.8with1NKOH、3g/lPhytagel)上的培养开始胚芽发生应答和/或从成熟胚芽中建立培养物。将培养应答最初阶段的成熟胚芽或所建立的培养物系都接种，并将其与含有所需的载体构建体的根瘤土壤杆菌菌株LBA4404(土壤杆菌)共培养。将来自甘油储存液中的土壤杆菌在固体YPC培养基(加有100mg/L壮观霉素和任何其他合适的抗生素)上、28℃下培养2天。将土壤杆菌重悬在液体MS-CIM培养基中。将土壤杆菌培养物稀释到OD600为0.2-0.3，并加入乙酰丁香酮(终浓度为200μM)。在混和融合和水稻培养物之前加入乙酰丁香酮，以便诱导出用于将DNA转移到植物细胞内的土壤杆菌。对于接种而言，将植物培养物浸泡在细菌悬浮液中。去除液体细菌悬浮液，将所接种的培养物放置到共培养培养基上，并在22℃下孵育2天。然后将培养物转移到含有抑制土壤杆菌生长的替卡西林(400mg/l)的MS-CIM培养基中。对于利用PMI选择标记物基因的构建体(Reed等，2001)，7天后将培养物转移到甘露糖作为碳水化合物来源的选择培养基(含2％甘露糖、300mg/l替卡西林的MS)中，并在暗处培养3-4周。然后将耐药克隆转移到再生诱导培养基(无2，4-D，但含有0.5mg/lIAA、1mg/l玉米素、200mg/lTIMENTIN、2％甘露糖和3％山梨糖醇)中，并在暗处生长14天。然后将增生的克隆转移到另一轮的再生诱导培养中，并将其移到有光亮的生长屋内。然后将再生嫩枝转移到具有GA7-1培养基(不含激素、含2％山梨糖醇的MS)的GA7容器内生长2周，当其足够大并具有充分的根时，将其移到温室内，将植物移植到温室的土壤内(T0代)，生长到成熟并收集T1种子。IV.F.3.质粒转化在1”环形检测中，将每板7粒烟草c.v.“Xanthinc”的种子在T琼脂培养基中进行发芽，并在播种后12-14天，用如所述的主要经来自质粒pPH143和pPH145涂层的1μm钨离子(M10，Bio-RadLaboratories，Hercules，California，UnitedStatesofAmerica)轰击种子。将轰击后的种子在T培养基中孵育2天，之后切下叶子并将其轴外侧向上放置在光亮处(350-500μmol光子/m2/s)的RMOP培养基板上(Svabetal.，1990)，培养基含有500μg/ml盐酸壮观霉素(Sigma，St.Louis，Missouri，UnitedStatesofAmerica)。在轰击后3到8周，将出现在漂白叶之下的耐药嫩芽亚克隆到相同的选择培养基上，容许其形成愈伤组织，分离并亚克隆次级嫩芽。用Southern印迹的标准技术(Sambrook&Russell，2001)评价独立亚克隆中的转化质粒基因组拷贝(同质性)的完全分离。在1％Tris-硼酸-EDTA(TBE)琼脂糖凝胶上分离经BamHI/EcoRI消化过的细胞总DNA(Mettler，1987)，将其转移到尼龙膜(AmershamBiosciences，Piscataway，NewJersey，UnitedStatesofAmerica)，并用32P标记的对应于0.7kb的来自含rps7/12质粒靶向序列的一部分的pC8的BamHI/HindIIIDNA片段的随机引物DNA序列作为检测探针。同质嫩芽在含壮观霉素的MS/IBS培养基(McBrideetal.，1994)中无菌地生根，并将其转移到温室内。V.植物、育种、及种子生成V.A.植物本发明也提供了包括所述组分的植物。在一些实施方式中，修饰包括富集必需氨基酸在植物的多肽部分中的比例。在一些实施方式中，多肽部分可以是例如总的种子多肽、可溶性多肽、不可溶性多肽、水可提取性多肽、和脂结合性多肽。在一些实施方式中，修饰包括基因的过度表达、表达低下、反义调控、有义抑制、诱导型表达、诱导型抑制、或诱导型调控。V.B.育种经本发明的核苷酸序列的转化所获得的植物可以是多种植物物种中的任一种植物，其包括单子叶和双子叶植物；但是，在一些实施方式中，在本发明的方法中所用的植物选自上面所示的农学上重要的靶向谷类植物的列表。通过育种可以将本发明的基因联合其他的对于产量和质量是重要的表征的表达整合到植物系内。育种方法和技术在本领域是已知的。见于例如Welsh，1981；Wood，1983；Mayo，1987；Singh，1986；Wricke&Weber，1986。通过有性繁殖或赘生物生长可以传递上面所述的被遗传加工到转基因种子和植物中的遗传性状，因此其能被保持在后代植物中，并进行繁殖。一般而言，所述保持和繁殖利用了所开发的已知的农业方法，以便符合特殊的目的例如耕作、播种、或收获。也可以采用专门的方法例如水栽法或温室技术。因为生长的谷类植物易感于昆虫或感染所引起的攻击和损害以及杂草植物的竞争作用，所以实施了控制杂草、植物疾病、昆虫、线虫、和其他不利条件的措施以便提高产量。这些措施包括机械措施例如耕作土壤或清除杂草及被感染治疗，以及应用农药例如除草剂、杀真菌剂、杀配子剂、杀线虫剂、生长调节剂、成熟剂、和杀虫剂。根据所需的性能采取不同的育种措施。相关的技术在本领域是公知的，其包括但不限定于杂交、近亲交配、回交育种、多系育种、变种混和、种间杂交、异倍体技术等等。杂交技术也可以包括通过机械的、化学的、或生物化学的方法使得植物不育以生成雄性或雌性的不育植物。用不同系的花粉对雄性不育植物的异花传粉保证了雄性不育植物的基因组始终将获得两个亲代系的性状，而雌性不育植物却没有获得。因此，本发明的转基因种子和植物都可以被用于改良植物系的育种，这例如增加了常用方法例如除草剂或杀虫剂的疗效或因为所述方法的修饰的遗传性状而容许本领域人员采用所述方法。同样，可以获得具有改良的应激耐受性的新的谷类植物，因为它们的优化的遗传“装备”，因此生成了具有比不能耐受相当的不良的发育条件(例如干旱)的产物更好质量的收获产物。V.C.种子生成本发明的一些实施方式也提供了来自包括表达盒的植物的种子及分离的产物，所述表达盒包括与分离的核酸可操纵地连接的启动子序列，核苷酸序列选自由下面序列构成的组(a)在高严格性杂交条件(6xSSC，65℃)以及随后的至少15分钟的终末洗涤步骤(0.1xSSC，65℃)下与SEQIDNO1所示的核苷酸序列、或其片段、结构域、或特征杂交的核苷酸序列；(b)编码作为SEQIDNO2的定向进化同源物的多肽、或其片段、结构域或特征的核苷酸序列；(c)与(a)或(b)互补(例如完全互补)的核苷酸序列；和(d)作为本说明的(a)或(b)的反向互补物(例如完全互补物)的核苷酸序列。在一些实施方式中，分离的产物包括酶、营养多肽、结构多肽、氨基酸、脂类、脂肪酸、多糖、糖、醇、生物碱、类胡萝卜素、丙醇、类固醇、色素、维生素、或植物激素。本发明的实施方式也涉及通过分离核酸的表达所产的分离的产物，所述核酸包括选自由下面序列构成的组的核苷酸序列(a)在高严格性杂交条件(6xSSC，65℃)以及随后的至少15分钟的终末洗涤步骤(0.1xSSC，65℃)下与SEQIDNO1所示的核苷酸序列、或其片段、结构域、或特征杂交的核苷酸序列；(b)编码作为SEQIDNO2的定向进化同源物的多肽、或其片段、结构域或特征的核苷酸序列；(c)与(a)或(b)互补(例如完全互补)的核苷酸序列；和(d)作为本说明的(a)或(b)的反向互补物(例如完全互补物)的核苷酸序列。在一些实施方式中，产物是在植物中产生的。在一些实施方式中，产物是在细胞培养物中产生的。在一些实施方式中，产物是在无细胞系统中产生的。在一些实施方式中，产物包括酶、营养多肽、结构多肽、氨基酸、脂类、脂肪酸、多糖、糖、醇、生物碱、类胡萝卜素、丙醇、类固醇、色素、维生素、或植物激素。在一些实施方式中，产物是包括SEQIDNO2中所列的氨基酸序列或其定向分化同源物的多肽。在一些实施方式中，多肽包括酶。在种子生成中，发芽质量及种子的均质性是主要的产物表征。因为保持谷类植物避免其他谷类植物及杂草种子的污染、控制种子生疾病、和生产具有好发芽品质的种子是困难的，在非混杂种子的生长、控制、和市场化的领域上富有经验的种子生产者已经研发出了相当广泛的和清晰的种子生产实践。因此，购买经认证的符合特殊质量标准的种子而不是使用从其本身的谷类中收获到的种子已经成为了农民的普遍习惯。用作种子的繁殖材料是常规用包括除草剂、除虫剂、杀真菌剂、杀菌剂、杀线虫剂、软体动物清除剂、或其混和物的保护剂涂层处理过的种子。常规使用的保护剂涂层包括化合物例如克菌丹、carboxin、福美双(二硫四甲秋兰姆；TMTD；来自R.T.VanderbiltCompany，Inc.，Norwalk，Connecticut，UnitedStatesofAmerica)、methalaxyl(APRONXL；来自SyngentaCorp.，Wilmington，Delaware，UnitedStatesofAmerica)、和pirimiphos-methyl(ACTELLIC；来自Agriliance，LLC，St.Paul，Minnesota，UnitedStatesofAmerica)。如果需要，可以与其他的载体、表面活性剂、和/或在制剂领域常规采用的促施用的佐剂(提供了抗细菌、真菌、或动物害虫所引起的损害的保护作用)一起制剂这些化合物。通过用液体制剂浸泡繁殖物质或通过用组合的湿或干制剂涂层可以实现这些保护剂涂层。其他的施用方法也是可能的，例如定向于芽或果实的处理方法。VI.其他应用本发明也提供了用于将感兴趣的蛋白质导向植物细胞内的结构的方法。在一些实施方式中，结构选自包括但不限定于内质网(ER)和质外体的组。在一些实施方式中，方法包括(a)将编码玉蜀黍Q蛋白的信号序列的核苷酸分子与编码感兴趣的蛋白质的核苷酸序列框内融合，其中编码玉蜀黍Q蛋白的信号序列的核酸分子和编码感兴趣的蛋白质的核苷酸序列与启动子可操纵地连接，以生成植物表达构建体；和(b)用植物表达构建体转化植物细胞，其中相关蛋白被导向结构。在一些实施方式中，信号序列对应于SEQIDNO2的前19个氨基酸。名词“相关蛋白”在此指的是任一多肽或多肽片段，其在植物或植物细胞中的表达是必需的。实例的相关蛋白包括但不限定于糖酶、纤维素酶、半纤维素酶、果胶酶、异构酶、分解酶、蛋白酶、热休克蛋白、伴侣蛋白、植酸酶、杀虫蛋白、抗微生物蛋白、α-淀粉酶、葡萄糖糖化酶、葡聚糖酶、葡糖苷酶、木聚糖酶、阿魏酸酯酶、半乳糖苷酶、果胶酶、和凝乳酶。在一些实施方式中，虽然相关蛋白天然地出现在植物细胞内，但是提供了作为转基因的一个或多个额外拷贝的编码相关多肽的核苷酸序列。在一些实施方式中，相关蛋白异源于植物或植物细胞。本发明也提供了用于生产营养价值增高的植物种子的方法。在一些实施方式中，方法包括(a)用包括编码SEQIDNO2、或其片段或衍生物的核苷酸序列的表达载体转化植物细胞；(b)从转化植物细胞中再生出植物；和(c)从转化植物中分离出种子，这就生成了营养价值增高的种子。词语“营养价值增高的种子”在此指的是已经被修饰而含有正常地在种子中所不能发现的多肽的种子，或者含有提高量的正常地在种子中所发现的多肽的种子。在一些实施方式中，正常地在种子中所不能发现的多肽是种子所正常含有的蛋白的衍生物。例如通过修饰天然存在的蛋白的氨基酸序列可以表征这样一种衍生物，当与来自相同物种的未转化植物的种子比较时，该衍生物包含更高含量的一种或多种氨基酸(例如增加一种或多种必需氨基酸的比例)、提高了的氨基酸平衡、和/或提高了的氨基酸可消化性。通过用本领域已知的技术诱变编码多肽的核苷酸序列可以实现这些氨基酸序列的修饰。本发明也提供了用于将感兴趣的蛋白质导向植物的蛋白体内的方法。在一些实施方式中，方法包括(a)将编码SEQIDNO2、或其片段或衍生物的核酸分子与编码感兴趣的蛋白质的核苷酸序列框内融合，其中编码SEQIDNO2、或其片段或衍生物的核酸分子和编码感兴趣的蛋白质的核苷酸序列与启动子可操纵地连接，以产生植物表达构建体；和(b)用植物表达构建体转化植物细胞，这使得相关蛋白导向植物中的蛋白体。在一些实施方式中，与编码感兴趣的蛋白质的核苷酸序列框内融合的编码SEQIDNO2、或其片段或衍生物的核酸分子包括编码编码SEQIDNO2、或其片段或衍生物的核酸分子和编码感兴趣的蛋白质的核苷酸序列之间的蛋白酶解离位点的核苷酸序列。其解离位点可以被引入到融合蛋白内的蛋白酶、和所识别的解离位点的氨基酸序列在分子生物学和蛋白表达领域是已知的，并包括但不限定于Xa、凝血酶、caspases家族、糜蛋白酶、胃蛋白酶、烟草蚀纹病毒蛋白酶、和胰蛋白酶。见Sambrook&Russell，2001，以及其中所引用的关于蛋白酶解离融合蛋白的用途的讨论的参考文献。根据它的识别序列可以选择蛋白酶，例如根据识别序列在相关蛋白内的缺失，使得当用蛋白酶处理融合蛋白时，可以从完整的Q蛋白(或其片段或衍生物)中释放出相关蛋白。然后可以用本领域熟练人员已知的附加的纯化步骤纯化相关蛋白。这些技术包括亲和纯化(如果可以得到相关蛋白的抗体)、SDS-PAGE分离、基于大小的色谱法、或任何本领域熟练人员可获得的其他方法。实施例用下面的实施例举例说明了本发明的代表性的和实例的模式。根据本说明书和本领域熟练人员的一般水平，本领域熟练人员明白下面的实施例只打算用于举例说明，可以采用多种变化、修饰、和变更，只要它们不脱离本发明的精神和范围。在此所用的标准重组DNA和分子克隆技术在本领域是公知的，并在Sambrook&Russell，200l；Silhavyetal.，1984；Ausubeletal.，2002；Ausubeletal.，2003；Reiteretal.，1992；和Schultzetal.，1998中对此进行了阐述。实施例1对应于Q蛋白基因的启动子/基因组克隆的分离用Q蛋白ORF(SEQIDNO1)的核苷酸序列设计用于基因组步移的引物。利用基于GENOMEWALKERTM试剂盒(BDBiosciencesClontech，PaloAlto，California，UnitedStatesofAmerica)的玉米文库作为模板，经PCR分离出对应于Q蛋白cDNA的基因组克隆。用来自玉米品种6N615的DNA构建出GENOMEWALKERTM接合体连接的玉米基因组文库。构建出5种不同的文库，通过用下面的钝化末端限制性酶DraI、EcoRV、HincII、SspI、或StuI的消化产生了每个包括基因组DNA片段的文库。利用一种或多种基因特异性引物QP1(SEQIDNO4)和QP2(SEQIDNO5)及试剂盒所提供的接合体引物筛选GENOMEWALKERTM文库。PCR条件是在BDBioscienceClontech的用户手册中所推荐的条件。在琼脂糖凝胶上分离PCR产物，切割下所形成的产物条带，将其亚克隆到TOPO载体(InvitrogenCorp.，Carlsbad，California，UnitedStatesofAmerica)内，并测序以确认正确的产物。从DraIGENOMEWALKERTM中克隆到了对应于Q蛋白基因的516个碱基对的基因组克隆。实施例2Q启动子的活性利用土壤机介导的转化，用二元载体11037稳定地转化转基因的玉米植物。载体11037与pNOV4061(SEQIDNO14也见于PCT国际专利申请文献WO03/57248)相同，除了在11037中用Q启动子(SEQIDNO6)取代了在pNOV4061的植酸酶表达盒中所见的γ-玉米醇溶蛋白启动子。SEQIDNO12显示了载体11037中的植酸酶表达盒的基因产物，这与PCT国际专利申请文献WO03/57248的SEQIDNO6相同。它包括来自27kDaγ-玉米醇溶蛋白的19个氨基酸的信号序列(对应于SEQIDNO12的前19个氨基酸)、Nov9x植酸酶、和六肽SEKDEL(SEQIDNO11)。从经载体11037所转化的玉米组织中所再生出的植物中收获T1种子。将种子粉末化，并用提取缓冲液(50mMTris-HCl、pH值8.0、100mMNaCl、2mMEDTA)从粉末样品中提取出可溶性蛋白。通过搅拌将粉末悬浮液在室温下孵育60分钟，并通过离心去除不可溶性蛋白。如在PCTWO03/5728的实施例3中所述的那样，通过Western印迹分析进行对植酸酶活性的测定和对Nov9x植酸酶的检测。所有试剂和反应条件都与在PCTWO03/5728中所述的一样，并按比例地调节所有试剂的体积。简单地，对植酸酶活性的测定依据于检测通过植酸酶的水解作用从植酸钠底物中所释放出的无机磷酸盐。植酸酶检测方法采用了Wyssetal.，1999和Engelenetal.，2001的方案。在pH值5.5和37℃下测定来自单个核及混和核的粉末样品中的植酸酶活性。表1显示了从两种再生的转基因植物(植物A和B)中收获到的8种T种子样品的检测结果。样品305B-11A代表从含有Nov9x植酸酶的对照玉米粉样品种提取到的植酸酶活性。按植酸酶活性减低的顺序列出所述样品。表1转基因玉米粉中的植酸酶活性a每个样品都来自有限数目的、单个种子，除了称作混和种子的样品以外，它们对应于10个混和在一起的粉末状的T1核。如图1所示，利用纯化Nov9x植酸酶的抗血清，用Western印迹分析分析了在表1中所分析的粉末提取物。图1中所示的印迹中的第一列表示分子量标准物(标记于左侧)的位置。A188是非转基因玉米的种子的提取物。Nov9x植酸酶被鉴定为迁移到55kDa标准物区的显著条带。在A188玉米粉提取物中没有检测到Nov9x植酸酶。实施例3对从种子中提取的蛋白的SDS-PAGE分析将来自Hi-IIxA188玉米的干燥核浸泡在蒸馏水中4℃下过夜。分离出胚乳和胚芽，并将其冷冻在-80℃。用KLECO组织粉碎器(KLECO，Visalia，California，UnitedStatesofAmerica)将冷冻组织粉碎。通过加入每100mg粉末500μl提取缓冲液(50mMHEPES，pH8、2mMEDTA、100mMNaCl、和4mMDTT)从胚乳粉中提取出蛋白。在室温下将样品涡旋并搅拌40分钟。通过加入每100mg组织2.5ml提取缓冲液从胚芽浆中提取出蛋白。将可溶性部分的一部分在80℃下加热20分钟，并通过离心去除聚集的蛋白。用SDS-PAGE分析在加热前(-)和加热后(+)的提取物样品(见图2)。实施例1-3的讨论55kDa蛋白是胚乳粉在缓冲液和DTT中所释放出的第二丰富的蛋白。在测试用于提取玉米粉中的重组的热稳定性酶的各种条件的过程中，发现55kDa的丰富的胚乳蛋白在80℃下的加热过程中仍是可溶性蛋白(实施例3，图2)。55kDa蛋白是胚乳粉在含有100mMNaCl和4mMDTT的缓冲液中所释放出的第二丰富的蛋白。在这些提取物中最为丰富的蛋白是27kDaγ-玉米醇溶蛋白，它是一种玉米醇溶蛋白，通常占胚乳总蛋白的15％。Vitaletal.，1982描述了相似的胚乳部分。他们将蛋白体孵育在DTT和β-ME中，并表征了可溶性部分中的蛋白。在这些条件下从蛋白体中所释放出的两种最丰富的蛋白具有的分子量是28,000和58,000。在这个部分中的蛋白被称作“可溶性降低的蛋白”或RSPs。GENBANK中的一种EST与55kDa蛋白的前20个密码子匹配，并编码171个残基的多肽链。确定出了上面所讨论的27kDa和55kDa蛋白的氨基末端上的氨基酸序列。27kDa蛋白的部分序列是THTSGGXXXQPPPPVHLLPP(SEQIDNO7)。这个序列匹配于28kDa玉米谷蛋白-2(glutelin-2)的氨基末端(γ-玉米醇溶蛋白；Pratetal.，1985；Boronatetal.，1986)。55kDa蛋白的部分序列是TQTGGCSCGQQQSHEQQHHP(SEQIDNO8)。对PIR和SwissProt数据库的搜索没有鉴定出任何与该序列匹配的序列。但是，当用反向翻译的DNA序列筛选GENBANK时，查询序列的每个密码子都与胚乳cDNA文库的表达序列标记(EST)(GENBANK编号No.AI812147)匹配。EST序列的翻译从对应于55kDa蛋白的氨基末端的密码子开始，产生了所推论的171个残基的多肽链。对两种编码289个残基的蛋白(分子量34,000)的重叠cDNA的克隆。用针对EST序列的寡核苷酸引物扩增来自玉米cDNA文库的cDNA克隆。发现在EST序列中的预期终止密码子在新克隆中编码Leu，ORF持续到所克隆的序列的终点。从相同的文库中扩增出与第一个cDNA的3’末端重叠的第二个cDNA克隆。新的ORF编码附加的118个氨基酸，总计289个氨基酸。计算出的所推论的蛋白的分子量为34,000。所计算出的分子量(34,000)与从SDS-PAGE分析中所估计出的分子量(55,000)之间的偏差可能是因为与Gln残基的丰度相关的不同寻常的结构特性。表2显示了所推论蛋白的氨基酸组成。表2玉米醇溶蛋白的氨基酸组成C末端的氨基酸序列显示出与谷醇溶蛋白同源，谷醇溶蛋白是谷类植物的种子储存蛋白。来自成熟蛋白的残基172-289的氨基酸序列显示出与一些谷类植物的谷醇溶蛋白同源，所述谷类植物包括玉米、水稻、和大麦。58-118残基链的序列相同性的范围是从36％到53％水稻的谷醇溶蛋白为37％(44/116个残基)，玉米的玉米醇溶蛋白为38％(46/118个残基)，蜀黍的谷醇溶蛋白γ-蜀黍醇溶蛋白为36％(40/115)，燕麦的燕麦谷蛋白为53％(31/58)，以及大麦的B-大麦醇溶蛋白为55％(33/59)。与27kDaγ-玉米醇溶蛋白(谷蛋白-2(glutelin-2))在119个残基链上的相同性为38％(46个残基匹配)。同源区限定于γ-玉米醇溶蛋白的C末端区。表2包括了用于与55kDa蛋白比较的主要的玉米醇溶蛋白的氨基酸组成。在三种氨基酸的相对水平上，推论序列与其他的玉米醇溶蛋白相比有着明显的不同推论序列在总共289个残基中含有106个Gln、13个Glus、和5个Lys。所有的其他玉米醇溶蛋白都含有0个Lys，除了18kDa的δ-玉米醇溶蛋白，它只含有1个Lys。表3显示了推论蛋白和其他玉米醇溶蛋白的每种氨基酸的组成百分比。55kDa蛋白含有36％Gln。通过比较发现，α-玉米醇溶蛋白是紧接其后的最富含Gln的谷醇溶蛋白，且只含有20％Gln。在玉米醇溶蛋白中，55kDa蛋白也有着最少的Pro含量。与55kDa蛋白并列展示了Vitaleetal.，1982所表征的58kDaRSP的氨基酸组成。表3玉米醇溶蛋白的氨基酸组成百分比实施例4Q蛋白融合蛋白在转基因种子中的蓄积构建体11045是编码经三肽连接物Gly-Gly-Ala连接的全长Q蛋白与T.maritima的α-半乳糖苷酶的融合蛋白的二元载体。编码融合蛋白的基因与27kDaγ-玉米醇溶蛋白蛋白(SEQIDNO13)的启动子可操纵地连接。设计引物以便从pNOV4349(SEQIDNO17，其中核苷酸10061-10090对应于Q蛋白编码序列)中分离出编码Q蛋白的核苷酸序列，同时在其3’末端添加编码三肽连接物的9bp序列。将3’NcoI和5’BamHI添加到PCR产物的末端。从pNOV4349中扩增出953bp的PCR片段，并用BamHI和NcoI切割，然后将其插入到pNOV4325(SEQIDNO16；核苷酸3565-5901编码α-半乳糖苷酶多肽)的5227bp的BamHI/Nco片段内。该质粒称作pWIN010。然后用KpnI和HindIII切割构建体pWIN010，并将3489bp片段连接于二元载体pNOV2117(SEQIDNO15；也见于PCT国际专利文献WO03/57248)的9154bp的KpnI/HindIII片段。利用土壤杆菌介导的转化，用二元载体11045稳定地转化转基因玉米植物。收获从经载体11045所转化的玉米组织中再生出的植物的种子。将种子粉碎，并用提取缓冲液(50mMTris-HCl，pH8.0、100mMNaCl、2mMEDTA)从粉末样品中提取出可溶性蛋白。在室温下，搅拌孵育粉末悬浮液60分钟，离心去除不可溶性物质。然后分析玉米粉样品的α-半乳糖苷酶活性，表4显示了α-半乳糖苷酶活性结果。表4.转基因玉米中的α-半乳糖苷酶活性对α-半乳糖苷酶活性的测定是依据于比色测定法，其包括如Liebl等，1998所述的测定p-硝基苯基-α-d-半乳糖吡喃糖苷所释放出的p-硝基苯基。如表4所示，含有编码Q蛋白/α-半乳糖苷酶融合蛋白的构建体11045的转基因玉米的α-半乳糖苷酶活性比阴性玉米粉对照中的α-半乳糖苷酶活性更高。水平范围从4个α-半乳糖苷酶单位/克玉米粉到9个α-半乳糖苷酶单位/克玉米粉。阴性玉米粉对照没有α-半乳糖苷酶活性。图3也显示了这些结果。实施例5Q蛋白信号序列指导融合蛋白在转基因种子内的蓄积通过设计引物从pNOV4349中分离出Q蛋白信号序列(SEQIDNO2的氨基酸1-19)，并往PCR产物的末端添加3’NcoI和5’BamHI位点，制成了二元载体12173。从pNOV4349中扩增出80bp的PCR片段，并用BamHI和NcoI切割，然后将其插入到pNOV4328(SEQIDNO18；核苷酸3621-5279编码α-半乳糖苷酶多肽)的5226bp的BamHI/Nco片段内。该质粒称作pWIN013New。然后用KpnI和HindIII切割构建体pWIN013New，并将2614bp片段连接于二元载体pNOV2117(SEQIDNO15；也见于PCT国际专利文献WO03/57248)的9154bp的KpnI/HindIII片段。该构建体被称作二元载体12173。它在玉米27kDa伽马玉米醇溶蛋白启动子(SEQIDNO13)的转录控制下编码含有与α-半乳糖苷酶蛋白融合的Q蛋白的19个氨基酸的信号序列(对应于SEQIDNO2的前19个氨基酸)的融合蛋白。利用土壤杆菌介导的转化，用二元载体12173稳定地转化转基因玉米植物。收获从经载体12173所转化的玉米组织中再生出的植物的种子。将种子粉碎，并用提取缓冲液(50mMTris-HCl，pH8.0、100mMNaCl、2mMEDTA)从粉末样品中提取出可溶性蛋白。在室温下，搅拌孵育粉末悬浮液60分钟，离心去除不可溶性物质。然后分析玉米粉样品的α-半乳糖苷酶活性，表5显示了α-半乳糖苷酶活性结果。表5转基因玉米的α-半乳糖苷酶活性从含有Q蛋白信号序列的构建体12173中所得到的α-半乳糖苷酶活性结果表现出了α-半乳糖苷酶蛋白的增加。水平范围从3个α-半乳糖苷酶单位/克玉米粉到71个α-半乳糖苷酶单位/克玉米粉。阴性玉米粉对照没有α-半乳糖苷酶活性。图4也显示了这些结果。参考文献在此通过引用将下面所列的参考文献以及在说明书中所引用的所有参考文献的全部内容并入本申请，它们补充、解释、教导在此所采用的方法学、技术、和/或组合物，或为在此所采用的方法学、技术、和/或组合的提供了背景知识。AllisonRF，JohnstonRE&DoughertyWG(1986)ThenucleotidesequenceofthecodingregionoftobaccoetchvirusgenomicRNAevidenceforthesynthesisofasinglepolyprotein.Virology1549-20.AltschulSF，GishW，MillerW，MyersEW&LipmanDJ(1990)BasicLocalAlignmentSearchTool.JMolBiol215403-410.AoyamaT&ChuaN-H(1997)Aglucocorticoid-mediatedtranscriptionalinductionsystemintransgenicplants.PlantJ11605-612.AusubelFM，BrentR，KingstonRE，MooreDD，SeidmanJG，SmithJA&StruhlK(2002)ShortProtocolsinMolecularBiology，Fifthed.Wiley，NewYork，NewYork，UnitedStatesofAmerica.AusubelFM，BrentR，KingstonRE，MooreDD，SeidmanJG，SmithJA&StruhlK(2003)CurrentProtocolsinMolecularBiology，JohnWylie&Sons，Inc.，NewYork，NewYork，UnitedStatesofAmerica.BaranyG&MerrifieldRB(1980)Solid-PhasePeptideSynthesis，inPeptidesAnalysis，Synthesis，Biology，Vol.2，SpecialMethodsinPeptideSynthesis，PartA(GrossE&MeienhoferJ，eds)AcademicPress，NewYork，NewYork，UnitedStatesofAmerica，pp.3-284.BartlettSG，GrossmanAR&ChuaN-H(1982)inMethodsinChloroplastMolecularBiology，(EdelmanM，HallickRB&ChuaN-H，eds.)ElsevierBiomedicalPress，NewYork，NewYork，UnitedStatesofAmerica，pp.1081-1091.BatzerMA，CarltonJE&DeiningerPL(1991)EnhancedevolutionaryPCRusingoligonucleotideswithinosineatthe3′-terminus.NucleicAcidRes.195081.BevanM(1984)BinaryAgrobacteriumvectorsforplanttransformation.Nucl.AcidsRes128711-21.BevanM，FlavellRB&ChiltonMD(1983)Achimericantibioticresistancegeneasaselectablemarkerforplantcelltransformation.Nature304184-187.BinetMNWeilJH&TessierLH(1991)Structureandexpressionofsunflowerubiquitingenes.PlantMolBiol17395-407.BlochingerK&DiggelmannH(1984)HygromycinBphosphotransferaseasaselectablemarkerforDNAtransferexperimentswithhighereukaryoticcells.MolCellBiol42929-2931.BoronatA，MartinezMC，ReinaM，PuigdomenechP&PalauJ(1986)Isolationandsequencingofa28kDglutelin-2genefrommaize.Commonelementsinthe5′flankingregionsamongzeinandglutelingenes.PlantSci.4795-102.BourouisM&JarryB(1983)VectorscontainingaprokaryoticdihydrofolatereductasegenetransformDrosophilacellstomethotrexate-resistance.EMBOJ21099-1l04.CaddickMX，GreenlandAJ，JepsonI，KrauseKP，QuN，RiddellKV，SalterMG，SchuchW，SonnewaldU&TomsettAB.(1998)Anethanolinduciblegeneswitchforplantsusedtomanipulatecarbonmetabolism.NatBiotechnol16177-180.CallisJ，FrommM&WalbotV(1987)Intronsincreasegeneexpressionincultutedmaizecells.GenesDev.11183-1200.CallisJ，RaaschJA&VierstraRD(1990)UbiquitinextensionproteinsofArabidopsisthaliana.Structure，localization，andexpressionoftheirpromotersintransgenictobacco.JBiolChem26512486-12493.CasasAM，KononowiczAK，ZehrUB，TomesDT，AxtellJD，ButlerLG，BressanRA&HasegawaPM(1993)Transgenicsorghumplantsviamicroprojectilebombardment.ProcNatlAcadSciUSA9011212-6.ChibbarRN，KarthaKK，DatlaRSS，LeungN，CaswellK，MallardCS&SteinhauerL(1993)Theeffectofdifferentpromoter-sequencesontransientexpressionofgusreportergeneinculturedbarley(HordeumvulgareL.)cells.PlantCellRep12506-509.ChristensenAH&QuailPH(1989)Sequenceanalysisandtranscriptionalregulationbyheatshockofpolyubiquitintranscriptsfrommaize.PlantMolBiol12619-632.ChristouP，FordT&KofronM(1991)Productionoftransgenicrice(OryzasativaL.)plantsfromagronomicallyimportantindicaandjaponicavarietiesviaelectricdischargeparticleaccelerationofexogenousDNAintoimmaturezygoticembryos.Bio/Technology9957-962.ClarkMS(ed.)(1997)PlantMolecularBiologyALaboratoryManual，Chapter7，Springer-VerlagGmbH&Co.KG，Berlin，Germany.ComaiL，Larson-KellyN，KiserJ，MauCJ，PokalskyAR，ShewmakerCK，McBrideK，JonesA&StalkerDM(1988)Chloroplasttransportofaribulosebisphosphatecarboxylasesmallsubunit-5-enolpyruvyl3-phosphoshikimatesynthasechimericproteinrequirespartofthematuresmallsubunitinadditiontothetransitpeptide.JBiolChem26315104-15109.CreightonTE(1984)Proteins，WHFreeman&Co.，NewYork，NewYork，UnitedStatesofAmerica.DattaSK，PeterhansA，DattaK&PotrykusI(1990)GeneticallyengineeredfertileIndica-ricerecoveredfromprotoplasts.Bio/Technology8736-740.deFramondAJ(1991)Ametallothionein-likegenefrommaize(Zeamays).Cloningandcharacterization.FEBSLett290103-6.Della-CioppaG，KishoreGM，BeachyRN&FraleyRT(1987)Proteintraffickinginplantcells.PlantPhysiol84965-968.DeutscherMP(1990)GuidetoProteinPurification，SimonMI&AbelsonJN(eds)，MethEnzymolVolume182.Dong，JJ，TengWM，BuchholzWG&HallTC(1996).Agrobacterium-mediatedtransformationofjavanicarice.MolBreeding2267-276.Elroy-SteinO，FuerstTR&MossB(1989)Cap-IndependentTranslationofmRNAConferredbyEncephalomyocarditisVirus5’SequenceImprovesthePerformanceoftheVacciniaVirus/BacteriophageT7HybridExpressionSystem.ProeNatlAcadSciUSA866126-6130.EngelenAJ，vanderHeeftFC，RandsdorpPH，SomersWA，SchaeferJ&vanderVatBJ(2001)Determinationofphytaseactivityinfeedbyacolorimetricenzymaticmethodcollaborativeinterlaboratorystudy.JAOACInt84629-33.EP0292435EP0332104EP0332581EP0342926EP0392225FirekS，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文档编号C12N15/00GK1950510SQ200580007459公开日2007年4月18日申请日期2005年3月8日优先权日2004年3月8日发明者斯科特·贝茨,戴尔·韦恩·斯卡拉,桑德拉·琳恩·福尔拉特,科恩·亨德里克斯申请人:先正达合作有限公司