一种高产乙醛的植物乳杆菌及其应用的制作方法

本发明属于微生物学领域，涉及一种植物乳杆菌，具体来说是一种高产乙醛的植物乳杆菌(Lactobacillus plantarum)及其应用。

背景技术：

乳酸菌(Lactic acid bacteria，LAB)是一类能利用可发酵性糖产生大量乳酸的细菌总称，目前在自然界已发现的这类细菌在分类学上至少有23个属。在食品、医药等领域应用较多的乳酸菌主要有乳杆菌属、链球菌属、肠球菌属、乳球菌属、片球菌属和明串珠菌属等。乳酸菌是益生菌最主要的来源，许多乳酸菌是人体肠道固有的益生菌，已具有改善人体肠道菌群，调节机体免疫力，抑肿瘤，降低血清胆固醇，调节血压等重要的生理活性。

风味是发酵乳品质形成的重要因素之一，也是影响消费者对发酵乳认可度的关键指标。发酵乳中最具有代表性的风味物质是乙醛，但是乙醛的利用率较低，其含量在5-21ppm范围内，含量越高对发酵乳的风味越有利。一些研究认为不合标准的弱香味发酵乳就是由于其中乙酵含量低于4.0ppm。这一含量也被认为是发酵乳中乙醛含量达不达标的临界含量，而具有良好风味的发酵乳的乙酸含量可以达到8.0ppm(参考文献Sandine W E,Daly C,Elliker P R,et al.Causes and control of culture-related flavor defects in cultured dairy products[J].Journal of Dairy Science,1972,55(7):1031-1039.)。因此提高乳酸菌产乙醛的能力，可以从源头改善酸乳的风味，提高发酵乳香气品质，为乳品工业的生产提供一定的指导意义。

技术实现要素：

针对现有技术中的上述技术问题，本发明提供了一种高产乙醛的植物乳杆菌及其应用，所述的这种高产乙醛的植物乳杆菌及其应用要解决现有技术中的乳酸菌产乙醛的能力不足的技术问题。

本发明提供了一种高产乙醛的植物乳杆菌，其保藏编号为CCTCC M2016514。

本发明还提供了一种工作发酵剂，将上述的植物乳杆菌菌种接种于灭菌乳中培养至凝乳，连续培养活化两代作为母发酵剂；将母发酵剂按体积百分比3-5％接种于添加乳清蛋白的灭菌乳中培养至凝乳，即得工作发酵剂。

进一步的，在培养至凝乳的过程中，在35-37℃条件下培养10-12h。

本发明还提供了一种工作发酵剂，将上述的植物乳杆菌菌种接种于液体培养基中连续活化两代，然后将活化培养物按体积百分比3-5％接种于液体培养基中培养，固液分离得到细胞沉淀，将沉淀用无菌乳悬浮，即得工作发酵剂，其中，活菌数为10⁹cfu/mL以上。

进一步的，在液体培养基中活化的过程中，在35-37℃条件下培养10-12h。

本发明还提供了上述的一种高产乙醛的植物乳杆菌在发酵食品中的用途。

进一步的，所述的发酵食品为乳酸菌奶饮料或者发酵乳。

本发明还提供了上述的一种乳酸菌饮料的制备方法，将原料乳灭菌后冷却，然后加入上述的工作发酵剂混合均匀，使上述的植物乳杆菌浓度达到10⁶cfu/mL以上，即得到含有权利要求1所述的植物乳杆菌的乳酸菌奶饮料。

本发明还提供了上述的一种发酵乳的制备方法，将原料乳灭菌后冷却，再加入上述的工作发酵剂和常规商品发酵剂，所述的工作发酵剂占发酵乳的体积为3-5％，所述的常规商品发酵剂占发酵乳的体积为3-5％，混匀后在35-37℃的条件下发酵，至滴定酸度70-80°T，即得到上述植物乳杆菌的发酵乳。

进一步，所述的常规商品发酵剂为保加利亚乳杆菌、双歧杆菌、嗜热链球菌或者嗜酸乳杆菌中的任意一种或者两种以上的组合。

其中，所述的灭菌方法是常规的原料乳灭菌方法，较佳的如超高温瞬时灭菌，更佳的如在95℃下加热杀菌20min。待灭菌乳冷却后再加入所述的植物乳杆菌工作发酵剂，冷却温度常规，较佳的冷却到37-40℃。发酵温度常规，较佳的为37℃。

乙醛的测定方法是常规的顶空固相微萃取结合气相色谱质谱联用(HS-SPME-GC-MS)的方法进行检测，优选的包括将植物乳杆菌CCTCC M2016514的发酵乳置于顶空固相微萃取小瓶中待测。

其中，顶空固相微萃取的测定条件为：5g-10g上述发酵乳置于20ml顶空瓶中，55℃-60℃恒温水浴下萃取30-40min，萃取头置于GC-MS上解析5min。

其中，GC-MS测定条件为：60m×0.25mm×0.25μm HP-INNOWX毛细色谱柱(美国J&W公司)；50/30μm DVB/CAR/PDMS固相微萃取头(美国Supelco公司)；初温60℃，保持3min，5℃/min升温至230℃，保持10min。

本发明的植物乳杆菌(Lactobacillus plantarum)菌株CCTCC M2016514，其生物学名称为：植物乳杆菌Z02(Lactobacillus plantarum Z02)，其属于乳杆菌属植物乳杆菌种。于2016年9月22日保藏于中国典型培养物保藏中心，保藏地址：湖北省武汉市武昌珞珈山武汉大学保藏中心。邮编：430072，其保藏编号为CCTCC M2016514。

本发明和已有技术相比，其技术进步是显著的。本发明的高产乙醛的植物乳杆菌CCTCC M2016514，通过对其发酵乳中的乙醛含量进行检测和感官评定，结果表明本发明的植物乳杆菌乙醛产量较高，感官评分较高，改善了发酵乳的香气品质，促进发酵乳品质的提高，在发酵乳领域具有广阔的前景。

附图说明

结合以下附图说明本发明的特征和有益效果。

图1显示了本发明所述植物乳杆菌CCTCC M2016514的菌落形态。

图2显示了本发明所述植物乳杆菌CCTCC M2016514的细胞形态(×1000)。

图3显示了本发明所述植物乳杆菌CCTCC M2016514的生长曲线。

图4显示了本发明所述植物乳杆菌CCTCC M2016514的最适生长温度。

图5显示了本发明所述植物乳杆菌CCTCC M2016514的发酵乳GC-MS总离子流图。

图6显示了本发明所述植物乳杆菌CCTCC M2016514的发酵酸乳和空白酸乳的感官得分雷达图。

具体实施方式

本发明从乳酸菌生境中采集样品，筛选高产乙醛的乳酸菌菌株，研究其产乙醛的能力，开发新的益生菌。本发明所用的原料或试剂除特别说明之外，均市售可得。

本发明从西藏灵菇中筛选出一株乳酸菌1-34，利用形态特征、培养性状和生理生化特征等微生物学特性及其遗传特性16s rDNA对该乳酸菌1-34鉴定为植物乳杆菌(Lactobacillus plantarum)，该菌株已于2016年9月22日保藏于中国典型培养物保藏中心(简称CCTCC)，其保藏编号为CCTCC M2016514。

本发明植物乳杆菌CCTCC M2016514的形态学特征：

菌落特征：菌株在MRS平板上划线分离，37℃培养48h，菌株生长良好，其菌落形态如图1所示。菌落大小0.2-2mm，菌落圆形，边缘整齐，正面微凸起，颜色乳白中带点微黄色，不透明，表面湿润光滑。

菌体特征：菌体呈杆状(图2)，菌体大小一般为0.6μm×1.5μm，不产芽孢，革兰氏染色阳性。

本发明植物乳杆菌CCTCC M2016514的培养特征：植物乳杆菌CCTCC M2016514的最低生长温度为15℃，最高生长温度为45℃，在30-40℃生长温度最佳；菌株CCTCC M2016514的延迟期相对较短，2h进入对数生长期，10h达到稳定期。

本发明的植物乳杆菌CCTCC M2016514来源于传统发酵食品，属公认安全(Generally Recognized As Safe，GRAS)菌种，可用于乳酸菌食品中。

因此，本发明还涉及所述的植物乳杆菌CCTCC M2016514在发酵食品中的用途。所述含有植物乳杆菌CCTCC M2016514的发酵食品包括乳酸菌奶饮料和发酵乳。

本发明还提供所述植物乳杆菌CCTCC M2016514工作发酵剂。

本发明工作发酵剂较佳的是采用下述制备方法制备的：将植物乳杆菌CCTCC M2016514菌种接种于12％(w/v)的脱脂乳中，在37℃条件下培养10-12h至凝乳，连续培养活化两代，作为母发酵剂使用；将母发酵剂按3-5％(v/v)接种于上述的灭菌乳中，培养10-12h至凝乳，此时凝乳中活菌数约在10⁹cfu/mL，得到所述的工作发酵剂；或者将植物乳杆菌CCTCC M2016514菌种接种于MRS液体培养基中，在37℃条件下培养10-12h进行活化，连续活化两代，然后将活化培养物按3-5％(v/v)接种于MRS培养基中，培养10-12h，在4℃条件下6000r/min离心10min，去除上清液，得到细胞沉淀，将沉淀用一定量的无菌脱脂乳悬浮，得到所述的工作发酵剂。

本发明中优选的所述的乳酸菌奶饮料是按照下述步骤制备得到的：原料乳在95℃下加热杀菌20min，然后冷却到40℃，再加入所述的植物乳杆菌CCTCC M2016514工作发酵剂，使其浓度达到10⁶cfu/mL以上，在4℃冷藏保存即得到含有植物乳杆菌CCTCC M2016514的乳酸菌奶饮料。

本发明中优选的所述的发酵乳是按照下述步骤制备得到的：原料乳在95℃下加热杀菌20min或在140℃下高温热杀菌2s，然后冷却到37℃，再按照3-5％(V/V)加入所述植物乳杆菌CCTCC M2016514，再加入3-5％(V/V)发酵乳商品发酵剂，混匀后在37℃下混菌发酵至滴定酸度70-80°T，然后冷却至40℃，再进行冷藏保存得到含有植物乳杆菌CCTCC M2016514的发酵乳。

下面用实施例来进一步说明本发明，但本发明并不受其限制。下列实施例中未注明具体条件的实验方法，通常按照常规条件，或按照制造厂商所建议的条件。实施例中所述的“室温”是指进行试验的操作间的温度，一般为25℃。

实施例1 植物乳杆菌CCTCC M2016514的采集、分离

(1)、样品预处理

分别取3g西藏灵菇若干份，分别放入装有15无菌水的50ml锥形瓶中，震荡后，静置20min，备用。

(2)、乳酸菌菌株分离

使用无菌水以体积计，按照1：10对上述样品进行连续稀释，在每个稀释度取0.1mL稀释样品，分别涂布MRS琼脂平板和M17琼脂平板，在37℃厌氧条件下恒温培养24-48h，用无菌牙签挑取大小不同、凸起，微白色，湿润，边缘整齐，菌落背面为黄色的单菌落。然后在相应的琼脂平板上划线分纯，得到纯的单菌落，进行革兰氏染色，接触酶实验。纯化菌株保藏在相应的分离培养基中，添加30％的甘油作为保护剂，-20℃冻存。

其中使用的培养基配方如下：

MRS培养基(乳杆菌选择性培养基，北京陆桥技术股份有限公司购得)。

M17培养基(乳球菌选择性培养基，北京陆桥技术股份有限公司购得)。

不同批次样品在MRS琼脂培养基和M17琼脂培养基上共分离出100株菌。这些菌株在分离平板上表现出凸起，微白色，湿润，边缘整齐，菌落背面为黄色。

(3)不同菌株产乙醛能力测定

将从平板上得到的分离株接种到MRS液体培养基中培养12h，再按5％(V/V)的接种量接种到含MRS液体培养基中二次活化，在37℃发酵10h。将发酵液在4℃时6000rpm/min下离心10min，取菌体。用无菌水冲洗3次，加入无菌水混匀，备用。

原料乳在95℃下加热杀菌20min或在140℃下高温热杀菌2s，然后冷却到40℃，再加入菌悬液，再加入5％(V/V)可共生的制备发酵乳商品发酵剂，混匀后在37℃下混菌发酵至滴定酸度70-80°T，然后冷却至室温，再进行4℃冷藏保存。

将上述冷藏的发酵乳称取5g，置于顶空固相微萃取小瓶(20ml)中。将顶空瓶置于55℃的恒温水浴锅中，插入事先老化好的萃取头(50/30μm DVB/CAR/PDMS)，顶空吸附40min，萃取结束，将萃取头转移到GC-MS进样口处，解析5min，完成进样。

其中，所述的植物乳杆菌的发酵乳是常规的发酵乳，较佳的37℃条件下发酵10h而得发酵乳。

其中，顶空固相微萃取的测定条件为：5g上述发酵乳置于20ml顶空瓶中，55℃恒温水浴下萃取40min，萃取头置于GC-MS上解析5min。

GC-MS以初温60℃，保持3min，5℃/min升温至230℃，保持10min的速率升温，完成发酵乳香气化合物的检测，从而测定得出发酵乳中乙醛的含量。实验结果列于表1中。从表中可以看出，菌株1-34的乙醛产量相对较高，选取这株菌，命名为CCTCC M2016514。

表1.产乙醛乳酸菌的初步分离

实施例2 植物乳杆菌CCTCC M2016514的鉴定

(1)生理生化试验

菌株CCTCC M2016514为革兰氏阳性、过氧化酶阴性、不运动的杆菌，在15℃和45℃能够生长。

(2)菌株CCTCC M2016514的16s rDNA序列分析

菌株CCTCC M2016514基因组DNA提取方法：挑取纯化的CCTCC M2016514单菌落接种到10mL MRS液体培养基中，37℃培养8h后将菌液离心(5000g，10min)收集菌体。采用基因组DNA抽提试剂盒(生工生物工程(上海)股份有限公司)提取。

PCR扩增采用两种合成的通用引物：

16s 27F:GAGAGTTTGATCCTGGCTCAG；

16s 1492R：CGGCTACCTTGTTACGACTT；

PCR产物采用柱式PCR产物纯化试剂盒(生工生物工程(上海)股份有限公司)回收，纯化后送生工生物工程(上海)股份有限公司测序。所得菌株CCTCC M2016514的16s DNA核苷酸序列为1669bp(序列表中的SEQ ID NO：1)，送GenBank(GenBank accetion number：CP002222)做Blast分析。菌株CCTCC M2016514同源性最高菌株的是L.plantarum ST-Ⅲ(Sequence ID：CP002222.1)，同源性为99％。

根据Goodfellow和O′Donnell所说的DNA的G+C(mol％)≤10％～12％及16S rRNA的序列同源性≥95％的种可归为一个属，并且Embley和Stackebrangdt认为当16S rRNA的序列同源性≥97％时可以认为是一个种。由此可以推断：菌株CCTCC M2016514与L.plantarum ST-Ⅲ属于同一个种。菌株CCTCC M2016514鉴定为植物乳杆菌。

依据形态特征、生理生化特征等微生物学特性及其遗传特性16s rDNA对乳酸菌CCTCC M2016514鉴定为植物乳杆菌(Lactobacillus plantarum)，该菌株已于2016年9月22日保藏于中国典型培养物保藏中心(简称CCTCC)，其保藏编号为CCTCC M2016514。

实施例3 CCTCC M2016514菌株的生长特性

(1)CCTCC M2016514菌株生长曲线的绘制

将活化好的植物乳杆菌CCTCC M2016514按5％(V/V)接种量接入MRS液体培养基中，37℃恒温培养16h，每隔1-2h在600nm测定培养液的OD值，以OD值对时间作图得到菌株CCTCC M2016514在MRS中的生长曲线，其结果(图3)表明：植物乳杆菌CCTCC M2016514在MRS培养基中生长迅速，在2h左右进入对数期，10h左右进入稳定期。

(2)CCTCC M2016514菌株最适生长温度测定

将活化好的植物乳杆菌CCTCC M2016514按5％(V/V)接种量分别接于10mL MRS液体培养基中，分别置于15℃、25℃、32℃、37℃、40℃和45℃条件下恒温培养8h，以未接种的MRS液体培养基作对照，于600nm测定不同温度下培养的培养液的OD值，依据OD值的大小确定最适生长温度。结果表明：(图4)植物乳杆菌CCTCC M2016514的生长温度范围较广，从15℃到45℃都生长，在30℃-40℃生长良好，最适生长温度为37℃。

实施例4 植物乳杆菌CCTCC M2016514产乙醛能力测定

(1)菌种活化：将植物乳杆菌CCTCC M2016514菌种接种于MRS液体培养基中，在37℃条件下培养10h进行活化，连续活化两代。

(2)工作发酵剂的制备：将活化培养物按5％(v/v)接种于MRS培养基中，培养10h，在4℃条件下6000r/min离心10min，去除上清液，得到细胞沉淀，将沉淀用一定量的无菌脱脂乳悬浮，得到所述的工作发酵剂。

(3)发酵乳制备：原料乳在95℃下加热杀菌20min或在140℃下高温热杀菌2s，然后冷却到40℃，然后加入体积百分比5％植物乳杆菌CCTCC M2016514的工作发酵剂和体积百分比5％商品发酵剂，混匀后发酵至滴定酸度70-80°T，即得到含有所述植物乳杆菌的发酵乳CCTCC M2016514的发酵乳。

(4)乙醛含量测定：将上述冷藏的发酵乳称取5g，置于顶空固相微萃取小瓶(20ml)中。将顶空瓶置于55℃的恒温水浴锅中，插入事先老化好的萃取头(50/30μm DVB/CAR/PDMS)，顶空吸附40min，萃取结束，将萃取头转移到GC-MS进样口处，解析5min，完成进样。GC-MS以初温60℃，保持3min，5℃/min升温至230℃，保持10min的速率升温，完成发酵乳香气化合物的检测，从而测定得出发酵乳中乙醛的含量，总离子流图见图5。

应用实施例1 植物乳杆菌CCTCC M2016514工作发酵剂

将植物乳杆菌CCTCC M2016514菌种接种于添加1％乳清蛋白(WPC)的12％(w/v)在115℃灭菌15min的脱脂乳中，在37℃条件下培养10-12h至凝乳，连续培养活化两代，作为母发酵剂使用；将母发酵剂按5％(v/v)接种于上述的灭菌乳中，培养10h至凝乳，此时凝乳中活菌数约在10⁹cfu/mL，得到本发明的工作发酵剂(1)。

将植物乳杆菌CCTCC M2016514菌种接种于MRS液体培养基中，在37℃条件下培养10h进行活化，连续活化两代，然后将活化培养物按5％(v/v)接种于MRS液体培养基中，培养10h，在4℃条件下6000r/min离心10min，去除上清液，得到细胞沉淀，将沉淀用一定量的无菌脱脂乳悬浮，得到本发明的工作发酵剂(2)。

应用实施例2 含有植物乳杆菌CCTCC M2016514的乳酸菌奶饮料

原料乳在95℃下加热杀菌20min或在140℃下高温热杀菌2s，然后冷却到40℃，以5％(v/v)的量加入应用实施例1所得的植物乳杆菌CCTCC M2016514工作发酵剂【工作发酵剂(1)或者(2)】，使其浓度达到10⁶cfu/m以上，在4℃冷藏保存即得到含有植物乳杆菌CCTCC M2016514的乳酸菌奶饮料。

应用实施例3 含有植物乳杆菌CCTCC M2016514的发酵乳

将原料乳鲜奶在95℃加热灭菌20min或在140℃下高温热杀菌2s，再冷却至40℃，以5％(v/v)的量加入应用实施例1所得的植物乳杆菌CCTCC M2016514工作发酵剂【工作发酵剂(1)或者(2)】，以及商业发酵剂保加利亚乳杆菌，该混菌在37℃发酵至滴定酸度为70°T，冷藏至4℃并冷藏保存即得到含有植物乳杆菌CCTCC M2016514的发酵乳。

对比实施例1 空白发酵乳的制备

将原料乳鲜奶在95℃加热灭菌20min后，再冷却至37℃，以5％(v/v)的量加入商业发酵剂保加利亚乳杆菌，在37℃发酵至滴定酸度为70°T，冷藏至4℃并冷藏保存即得到空白发酵乳。

效果实施例1 含有植物乳杆菌CCTCC M2016514的发酵乳和空白发酵乳乙醛含量对比

将上述应用实施例3和对比实施例1中的发酵乳分别按照实施例4中的方法进行乙醛含量测定，结果表明含有植物乳杆菌CCTCC M2016514的发酵乳的乙醛含量为8.75mg/L，而对比实施例1中的空白发酵乳中的乙醛含量为3.44mg/L，乙醛含量提高两倍左右，证明植物乳杆菌CCTCC M2016514具有较高的产乙醛的能力。

效果实施例2 含有植物乳杆菌CCTCC M2016514的发酵乳和空白发酵乳感官评价对比。

由8位评价员(3男，5女)进行感官评价，评价前需要对他们专业训练，使他们完全理解感官特性，熟知发酵乳的评价标准。根据[参考文献(陈洁.中温发酵酸乳品质的研究[D].江南大学,2008.)/(康欢.酸奶中风味物质与酶活及感官特性关系的初探[D].东北农业大学,2013.)]，初步选择了9个可能对产品的可接受性有重要贡献的感官性质。感官评价术语相应的定义见表2。

表2感官评价术语和评分标准

首先，从冰箱中取出标识随机码的样品(应用实施例2和对比实施例1中的样品)，随机呈送给评价员。他们打开盖子后，首先用匙子轻轻搅动酸乳，通过嗅闻确定气味类型和强度，对其他性质依次评价。采用9点标度法。所有的评价过程都在有白色灯光和可控环境的感官评价实验室中进行。评价过程中，准备一杯纯净水漱口。每个样品重复三次。结果见图6。

从图6我们可以看出植物乳杆菌CCTCC M2016514的发酵乳在典型酸奶味、奶油味和整体接受性上高于空白发酵乳，这与效果实施例1中植物乳杆菌CCTCC M2016514具有较高的产乙醛的能力一致，乙醛具有奶油的香气，它的存在可以显著的改善发酵乳整体的风味特征，给消费者带来更为愉悦的感官体验，从感官评价图上也可以得出这一结论。

应理解，在阅读了本发明的上述内容之后，本领域技术人员可以对本发明作各种对本发明作各种改动或修改，这些等价形式同样落于本申请所附权利要求书所限定的范围。

序列表

<110> 上海应用技术大学

<120> 一种高产乙醛的植物乳杆菌及其应用

<160> 3

<170> PatentIn version 3.5

<210> 1

<211> 1669

<212> DNA

<213> lactobacillus plantarum

<400> 1

aaactggtcg taaatacgac tcactatagg gcgacatatg atcgatgata tcccatgggc 60

ggccgcctgc agaccaggtc tggttacctt gttacgactt caccctaatc atctgtccca 120

ccttaggcgg ctggttccta aaaggttacc ccaccgactt tgggtgttac aaactctcat 180

ggtgtgacgg gcggtgtgta caaggcccgg gaacgtattc accgcggcat gctgatccgc 240

gattactagc gattccgact tcatgtaggc gagttgcagc ctacaatccg aactgagaat 300

ggctttaaga gattagctta ctctcgcgag ttcgcaactc gttgtaccat ccattgtagc 360

acgtgtgtag cccaggtcat aaggggcatg atgatttgac gtcatcccca ccttcctccg 420

gtttgtcacc ggcagtctca ccagagtgcc caacttaatg ctggcaactg ataataaggg 480

ttgcgctcgt tgcgggactt aacccaacat ctcacgacac gagctgacga caaccatgca 540

ccacctgtat ccatgtcccc gaagggaacg tctaatctct tagatttgca tagtatgtca 600

agacctggta aggttcttcg cgtagcttcg aattaaacca catgctccac cgcttgtgcg 660

ggcccccgtc aattcctttg agtttcagcc ttgcggccgt actccccagg cggaatgctt 720

aatgcgttag ctgcagcact gaagggcgga aaccctccaa cacttagcat tcatcgttta 780

cggtatggac taccagggta tctaatcctg tttgctaccc atactttcga gcctcagcgt 840

cagttacaga ccagacagcc gccttcgcca ctggtgttct tccatatatc tacgcatttc 900

accgctacac atggagttcc actgtcctct tctgcactca agtttcccag tttccgatgc 960

acttcttcgg ttgagccgaa ggctttcaca tcagacttaa aaaaccgcct gcgctcgctt 1020

tacgcccaat aaatccggac aacgcttgcc acctacgtat taccgcggct gctggcacgt 1080

agttagccgt ggctttctgg ttaaataccg tcaatacctg aacagttact ctcagatatg 1140

ttcttcttta acaacagagt tttacgagcc gaaacccttc ttcactcacg cggcgttgct 1200

ccatcagact ttcgtccatt gtggaagatt ccctactgct gcctcccgta ggagtttggg 1260

ccgtgtctca gtcccaatgt ggccgattac cctctcaggt cggctacgta tcattgccat 1320

ggtgagccgt taccccacca tctagctaat acgccgcggg accatccaaa agtgatagcc 1380

gaagccatct ttcaaacttg gaccatgcgg tccaagttgt tatgcggtat tagcatctgt 1440

ttccaggtgt tatcccccgc ttctgggcag gtttcccacg tgttactcac cagttcgcca 1500

cttactcaaa tgtaaatcat gatgcaagca ccaatcaata ccagagttcg ttcgacttgc 1560

atgtattagg cacgccgcca gcgttcgtcc tgagccagga tcaaactcta agactggaga 1620

tctggatccc tcgagtctag agtcgacctg caggcatgca aaggtttgg 1669

<210> 2

<211> 21

<212> DNA

<213> 引物16s 27f

<400> 2

gagagtttga tcctggctca g 21

<210> 3

<211> 20

<212> DNA

<213> 引物16s 1492r

<400> 3

cggctacctt gttacgactt 20