一种磁微粒化学发光法检测腺病毒IgM抗体的试剂盒及其制备方法与流程

本发明涉及免疫检测领域，具体涉及一种磁微粒化学发光法检测腺病毒igm抗体的试剂盒及其制备方法。

背景技术：

腺病毒(adenovirus，adv)属于腺病毒科，具有双螺旋dna基因组。腺病毒壳体周围并没有脂质体外鞘，而是直接作用于宿主细胞。腺病毒有47种亚型对人体致病的病毒，是引起人类呼吸道和消化道感染的重要病原之一。对腺病毒进行早期预防具有重要意义。

目前临床和科研用腺病毒诊断主要包括病原学诊断、分子生物学诊断及免疫学诊断等。病原学诊断主要通过细胞培养的方法分离鉴定临床尿液、血液等标本中的病原体，病原学诊断阳性率低，操作繁琐，分离周期较长，主要应用在科研教学方面，并不适合大规模，快速，准确的临床检测需求。分子生物学主要检测病原体核酸，该方法对标本的采集要求严格，如时间、部位等，并对实验技术要求较高，容易产生假阳性结果。免疫学诊断主要检测血清中的抗体，包括胶体金法、酶联免疫吸附法。胶体金法一般通过手工进行实验操作，最终通过肉眼进行定性判定，该技术灵敏度低，易出现假阳性，人为主观因素影响较大。酶联免疫吸附法的灵敏度较胶体金法有所提升，但仍然较低，并且线性范围窄，反应时间也较长，仍然不能很好满足临床的应用。

公开于该背景技术部分的信息仅仅旨在增加对本发明的总体背景的理解，而不应当被视为承认或以任何形式暗示该信息构成已为本领域一般技术人员所公知的现有技术。

技术实现要素：

发明目的

为解决上述技术问题，本发明的目的在于提供一种磁微粒化学发光法检测腺组病毒(adv)igm抗体的试剂盒及其制备方法。本发明实施例提供的试剂盒，使用磁微粒化学发光法检测腺病毒igm抗体，与传统的胶体金法和酶联免疫吸附法相比，提高了灵敏度和线性范围，且特异性、准确性好。本发明的试剂盒，酶标工作液中hrp上标记的是经过特别选择的腺病毒基因工程抗原，提高了试剂盒的反应的灵敏度。本发明的试剂盒，磁微粒上标记的是鼠抗人igm单克隆抗体，可提高试剂盒的特异性。

解决方案

为实现本发明目的，本发明实施例提供了一种试剂盒，所述试剂盒包括：

校准品、样本稀释液、酶标工作液、磁珠悬浮液和发光底物液；

其中，酶标工作液包括辣根过氧化物酶标记的腺病毒抗原，

磁珠悬浮液包括偶联有鼠抗人igm抗体的磁微粒；

所述腺病毒抗原包括重组抗原a、重组抗原b或重组抗原c中的一种或多种；

所述重组抗原a的氨基酸序列包括seqidno.1所示序列；

所述重组抗原b的氨基酸序列包括seqidno.2所示序列；

所述重组抗原c的氨基酸序列包括seqidno.3所示序列。

腺病毒六邻体为腺病毒主要的结构蛋白，六邻体的中和抗原决定簇主要存在于其两个环区l1、l2。这些区域在六邻体的三维结构图上位于三角形顶端(l1，l2)，在病毒颗粒表面处于易接近的位置。该区域具有较高的抗原性及很好的暴露性，是型间特异性表位。六邻体有很高的同源性，本发明选择具有较强抗原性和较强亲水性的六邻体蛋白序列构建腺病毒六邻体基因工程抗原来建立腺病毒检测方法。

上述试剂盒在一种可能的实现方式中，编码重组抗原a的核苷酸序列包括seqidno.4所示序列。

上述试剂盒在一种可能的实现方式中，编码重组抗原b的核苷酸序列包括seqidno.5所示序列。

上述试剂盒在一种可能的实现方式中，编码重组抗原c的核苷酸序列包括seqidno.6所示序列。

上述试剂盒在一种可能的实现方式中，所述腺病毒抗原包括重组抗原a。选取两段具有较强的抗原性的六邻体蛋白序列，加入连接臂，将其连接在硫氧还蛋白羧基端，从而构建得到重组抗原a。

上述试剂盒在一种可能的实现方式中，酶标工作液包括牛血清白蛋白(bsa)，新生牛血清，磷酸盐缓冲液(pbs)和辣根过氧化物酶标记的腺病毒抗原；可选地，酶标工作液包括下述终浓度的组分：牛血清白蛋白(bsa)2-5g/l，新生牛血清80-120ml/l，氯化钠5-10g/l，磷酸氢二钠4-8g/l，磷酸二氢钠0.4-1g/l和辣根过氧化物酶标记的腺病毒抗原0.8-1.2μg/ml；进一步可选地，酶标工作液包括下述终浓度的组分：牛血清白蛋白(bsa)2.4-2.6g/l，新生牛血清95-105ml/l，氯化钠7.5-8.5g/l，磷酸氢二钠5.5-6.0g/l，磷酸二氢钠0.55-0.65g/l和辣根过氧化物酶标记的腺病毒抗原1μg/ml。

本领域通用的辣根过氧化物酶标记的腺病毒抗原(adv-ag-hrp)的标记比例为1mghrp上标记1mg腺病毒抗原。本发明试剂盒中，adv-ag-hrp的终浓度以腺病毒抗原的质量计，即“adv-ag-hrp0.8-1.2μg/ml”指以腺病毒抗原的质量计，酶标工作液中adv-ag-hrp的终浓度为0.8-1.2μg/ml。

上述试剂盒在一种可能的实现方式中，磁珠悬浮液包括下述终浓度的组分：偶联有鼠抗人igm抗体的磁微粒(以磁微粒的质量计)0.8-1.2mg/ml，其中，1mg磁微粒上偶联有30-50μg的鼠抗人igm抗体；可选地，磁珠悬浮液包括下述终浓度的组分：偶联有鼠抗人igm抗体的磁微粒(以磁微粒的质量计)1mg/ml，其中，1mg磁微粒上偶联有40μg的鼠抗人igm抗体。

上述试剂盒在一种可能的实现方式中，磁微粒为超顺磁性微粒。

上述试剂盒在一种可能的实现方式中，所述磁微粒使用碳二亚胺(edc)和n-羟基琥珀酰亚胺(nhs)活化；可选地，每100ml磁微粒使用1ml含有浓度为4.80-5.20mg/ml的edc和2.3-2.7mg/ml的nhs的活化剂活化，或含有浓度为4.80-5.20mg/ml的edc和4.80-5.20mg/ml的nhs的活化剂活化，或含有浓度为4.80-5.20mg/ml的edc和9.8-10.2mg/ml的nhs的活化剂活化；进一步可选地，每100ml磁微粒使用1ml含有浓度为4.80-5.20mg/ml的edc和2.3-2.7mg/ml的nhs的活化剂活化。

上述试剂盒在一种可能的实现方式中，校准品包括腺病毒igm抗体；可选地，校准品包括20、40、80、160、320、640au/ml的腺病毒igm抗体。所述腺病毒igm抗体为高值血清。

上述试剂盒在一种可能的实现方式中，校准品用校准品稀释液稀释，所述校准品稀释液包括下述终浓度的组分：na2hpo4·12h2o5-6g/l，nah2po4·2h2o0.5-0.7g/l，nacl6-10g/l，bsa2-3g/l，ph7.1-7.3。

上述试剂盒在一种可能的实现方式中，样本稀释液为ph值为7.0-7.2的生理盐水。

上述试剂盒在一种可能的实现方式中，发光底物液包括发光底物液a和发光底物液b，发光底物液a包括鲁米诺或鲁米诺钠盐；化学发光底物液b包括过氧化脲。

本发明实施例还提供了利用上述试剂盒的组分制备磁微粒化学发光法检测腺病毒igm抗体试剂盒的制备方法。

上述制备方法在一种可能的实现方式中，校准品、样本稀释液、酶标工作液和发光底物液按照本领域常规的溶液配制方法配制即可。

上述制备方法在一种可能的实现方式中，磁珠悬浮液的制备方法包括下述步骤：将磁微粒用碳二亚胺(edc)和n-羟基琥珀酰亚胺(nhs)活化后，加入鼠抗人igm抗体；可选地，每100ml磁微粒使用1ml含有浓度为4.80-5.20mg/ml的edc和2.3-2.7mg/ml的nhs的活化剂活化，或浓度为4.80-5.20mg/ml的edc和4.80-5.20mg/ml的nhs的活化剂活化，或浓度为4.80-5.20mg/ml的edc和9.8-10.2mg/ml的nhs的活化剂活化；进一步可选地，每100ml磁微粒使用1ml含有浓度为4.80-5.20mg/ml的edc和2.3-2.7mg/ml的nhs的活化剂活化。

上述制备方法在一种可能的实现方式中，磁珠悬浮液的制备方法包括下述步骤：

取100mg磁微粒，磁分离去上清，用10ml偶联缓冲液重悬，磁分离去上清，重复数次，置换磁微粒液体环境；向去上清的磁微粒加入9ml偶联缓冲液重悬，再加入1.0ml新配制的含有浓度为4.80-5.20mg/ml的edc和2.3-2.7mg/ml的nhs的偶联缓冲液，室温振荡混悬，使磁珠充分活化；磁分离，去上清，用偶联缓冲液重悬，加入3.5-4mg鼠抗人igm抗体，使磁微粒浓缩液总体积为10ml，2-8℃振荡混悬8-12h；磁分离，去上清，用10ml储存液重悬，室温条件下混匀，再磁分离，去上清，重复数次，清洗磁微粒液体环境中游离抗体；向去上清的磁微粒加入10ml储存液重悬；室温条件下混匀后，使超声，将聚集成团的磁珠分散成单颗粒状态；

室温条件下混匀后，加入储存液90ml，得到所述磁珠悬浮液；所述磁珠悬浮液中磁微粒的浓度为0.8-1.2mg/ml；

其中，偶联缓冲液包括下述终浓度的组分：2-吗啉乙磺酸3-3.5g/l，ph5.90-6.10；

储存液包括下述终浓度的组分：tris1-1.3g/l，nacl8.5-9g/l，牛血清白蛋白0.8-1.2g/l，ph7.30-7.50。实际制备中，改变磁微粒的用量，其余试剂用量相应调整。

本发明实施例还提供了上述试剂盒的使用方法，所述使用方法包括下述步骤：

将校准品梯度稀释；在全自动化学发光仪的反应杯中，每孔分别加入样本稀释液，校准品或待测样本，磁珠悬浮液，酶标工作液和发光底物液；检测发光强度，输出检测结果；

计算：以校准品发光强度rlu值建立定标曲线，将待测样本的rlu值代入定标曲线中计算待测样本中腺病毒igm抗体的含量。

本发明的试剂盒的检测原理为：将待测样品、样本稀释液和adv-igm磁珠悬浮液混合温育，样品中的adv-igm抗体与adv-igm磁珠悬浮液中的鼠抗人igm单克隆抗体结合，adv-igm抗体被吸附到磁微粒表面；随后加入酶标工作液并混合温育，此时，辣根过氧化物酶标记腺病毒抗原与已经结合在磁珠上的adv-igm抗体特异性结合；随后，hrp催化底物发光，测定相对发光强度(rlu)。在一定范围内，rlu与样品中adv-igm浓度呈正比，通过rlu即可从标准曲线上计算出待测样品的adv-igm含量。

有益效果

(1)本发明实施例提供的试剂盒，使用磁微粒化学发光法检测腺病毒igm抗体，与传统的胶体金法和酶联免疫吸附法相比，提高了灵敏度和线性范围，且特异性、准确性好。

本发明的试剂盒，酶标工作液中hrp上标记的是经过特别选择的腺病毒基因工程抗原，提高了试剂盒的反应的灵敏度。

本发明的试剂盒，磁微粒上标记的是鼠抗人igm单克隆抗体，可提高试剂盒的特异性。

经验证，本发明的试剂盒可成功避免与抗核抗体、类风湿因子阳性样本以及柯萨奇病毒a组16型igm抗体(ca16-igm)阳性血清、肠道病毒71型igm抗体(ev71-igm)阳性血清、单纯疱疹病毒1型igm抗体(hsv1-igm)阳性血清、单纯疱疹病毒2型igm抗体(hsv2-igm)阳性血清、水痘-带状疱疹病毒igm抗体(vzv-igm)阳性血清、a群轮状病毒igm抗体(rota-igm)阳性血清、风疹病毒igm抗体(rv-igm)阳性血清、麻疹病毒igm抗体(mv-igm)阳性血清、人类巨细胞病毒igm抗体阳性血清(hcmv-igm)、流行性腮腺炎病毒igm抗体阳性血清(muv-igm)、乙型肝炎病毒核心抗体igm(hbc-igm)阳性血清、甲型肝炎病毒igm抗体(hav-igm)阳性血清、人细小病毒b19igm抗体(b19-igm)阳性血清、弓形虫igm抗体(tox-igm)阳性血清等相关疾病抗体阳性样本的交叉反应，特异性强。

(2)本发明实施例提供的试剂盒，对腺病毒基因工程抗原进一步进行了选择，使用重组抗原a的试剂盒的反应灵敏度进一步提高。

本发明的试剂盒，对磁微粒的活化条件进行了进一步选择，使用本发明的活化条件活化后的磁微粒，标记鼠抗人igm抗体效果更好，进一步用于本发明的试剂盒时，试剂盒的检测灵敏度和特异性进一步提高。

本发明试剂盒的磁微粒为高分散性的超顺磁性微粒，可保证磁微粒在保存和使用过程中完全不会发生聚集。并且，使用hrp催化发光底物发光，1分钟即达发光反应平台期，并保持平稳的光信号，可保证高检测精度和效率。

此外，本发明的试剂盒，酶标工作液、磁珠悬浮液、样本稀释液、校准品和发光底物液搭配使用，发明人对各组分组成及用量进行了特定选择，为试剂盒的使用效期及检测性能提供了有力保障。

(3)本发明实施例提供的试剂盒的制备方法，步骤简单，生产成本低。

(4)本发明实施例提供的试剂盒的使用方法，配合全自动化学发光免疫分析仪实现全自动使用，具有操作简便，结果判断客观等优点，对于临床诊断具有重要价值，应用前景广阔。

附图说明

一个或多个实施例通过与之对应的附图中的图片进行示例性说明，这些示例性说明并不构成对实施例的限定。在这里专用的词“示例性”意为“用作例子、实施例或说明性”。这里作为“示例性”所说明的任何实施例不必解释为优于或好于其它实施例。

图1为本发明磁微粒化学发光法原理图。

具体实施方式

为使本发明实施例的目的、技术方案和优点更加清楚，下面将对本发明实施例中的技术方案进行清楚、完整地描述，显然，所描述的实施例是本发明一部分实施例，而不是全部的实施例。基于本发明中的实施例，本领域普通技术人员在没有作出创造性劳动前提下所获得的所有其他实施例，都属于本发明保护的范围。除非另有其它明确表示，否则在整个说明书和权利要求书中，术语“包括”或其变换如“包含”或“包括有”等等将被理解为包括所陈述的元件或组成部分，而并未排除其它元件或其它组成部分。

另外，为了更好的说明本发明，在下文的具体实施方式中给出了众多的具体细节。本领域技术人员应当理解，没有某些具体细节，本发明同样可以实施。在一些实施例中，对于本领域技术人员熟知的原料、元件、方法、手段等未作详细描述，以便于凸显本发明的主旨。

下述实施例中，除特别说明的，所述原料均为市售商品；其中，重组抗原a、b、c可根据抗原氨基酸序列直接人工合成，或使用下述方法制备得到：

1.重组抗原a，其氨基酸序列如seqidno.1所示，所示序列中包括硫氧还蛋白；其通过下述方法制备得到：

针对大肠杆菌表达偏好密码子对其进行密码子优化，得到编码重组抗原a的基因序列，如seqidno.4所示；按照pet28a(+)载体的多克隆位点序列信息，在重组抗原a的基因序列的上游设计ncoi酶切位点，下游加上6个组氨酸、终止密码子及ndei酶切位点，化学合成，克隆至原核表达载体pet28a(+)中，转化大肠埃希菌bl21(de3)，然后将含有重组抗原a基因的大肠杆菌菌株在lb中培养过夜，a600值为0.6-0.9时加入1μmol/mliptg诱导4小时收集菌体，用含0.1％tritonx-100的20mmtris(ph8.0)收集菌体；超声后高速离心收集上清进行亲和层析和离子交换层析，分离及收集纯化蛋白抗原，-20℃保存备用。

2.重组抗原b，其氨基酸序列如seqidno.2所示；其通过下述方法制备得到：

针对大肠杆菌表达偏好密码子对其进行密码子优化，得到编码重组抗原b的基因序列，如seqidno.5所示；按照pet28a(+)载体的多克隆位点序列信息，在重组抗原b的基因序列的上游设计ncoi酶切位点，下游加上6个组氨酸、终止密码子及ndei酶切位点，化学合成，克隆至原核表达载体pet28a(+)中，转化大肠埃希菌bl21(de3)，然后将含有重组抗原b基因的大肠杆菌菌株在lb中培养过夜，a600值为0.6-0.9时加入1μmol/mliptg诱导4小时收集菌体，用含0.1％tritonx-100的20mmtris(ph8.0)收集菌体；超声后高速离心收集上清进行亲和层析和离子交换层析，分离及收集纯化蛋白抗原，-20℃保存备用。

3.重组抗原c，其氨基酸序列如seqidno.3所示；其通过下述方法制备得到：

针对大肠杆菌表达偏好密码子对其进行密码子优化，得到编码重组抗原c的基因序列，如seqidno.6所示；按照pet28a(+)载体的多克隆位点序列信息，在重组抗原c的基因序列的上游设计ncoi酶切位点，下游加上6个组氨酸、终止密码子及ndei酶切位点，化学合成，克隆至原核表达载体pet28a(+)中，转化大肠埃希菌bl21(de3)，然后将含有重组抗原c基因的大肠杆菌菌株在lb中培养过夜，a600值为0.6-0.9时加入1μmol/mliptg诱导4小时收集菌体，用含0.1％tritonx-100的20mmtris(ph8.0)收集菌体；超声后高速离心收集上清进行亲和层析和离子交换层析，分离及收集纯化蛋白抗原，-20℃保存备用。

4.商购或自制获得腺病毒重组抗原后，使用本领域通用方法进行辣根过氧化酶标记，具体如下：

取4mghrp，加入1ml蒸馏水，0.2ml0.1mol/l高碘酸钠，室温避光搅拌30min；加入乙二醇0.080ml，室温避光搅拌30min；加入0.142ml0.5mol/l的碳酸盐缓冲液；加入4mg腺病毒重组抗原，混匀后使用0.05mol/l的碳酸盐缓冲液透析，4℃避光透析24h；加入0.143ml0.2mol/l硼氢化钠，4℃静置5h，混匀后使用ph7.0、0.02mol/l磷酸盐缓冲液透析过夜，加入等量丙三醇混匀，即得；-20℃储存备用。

5.所用的校准品(640au/ml的腺病毒igm抗体高值血清)通过下述方法获得：

收集腺病毒igm抗体阳性高值血清，用实施例1提供的试剂盒进行测试，将检测发光值大于40000万的血清混合备用。

收集腺病毒igm抗体阴性血清，用实施例1提供的试剂盒进行测试，将检测发光值小于2万的血清混合备用。

640au/ml的校准品制备方法为：先用阴性血清稀释腺病毒igm抗体高值血清，稀释比例20倍、40倍、80倍、160倍、320倍、640倍、1280倍、2560倍、5120倍、10240倍、20480倍、40960倍；使用实施例1提供的试剂盒检测稀释后的混合血清，混合血清的检测值接近发光底物液的检测值时，则将该稀释后的混合血清的腺病毒igm抗体的浓度定为0au/ml；例如，稀释40960倍的混合血清的腺病毒igm抗体的浓度定为0au/ml时，此浓缩的上一个浓度(稀释20480倍)时混合血清的腺病毒igm抗体浓度就定为5au/ml，稀释10240倍的混合血清的腺病毒igm抗体的浓度就定为10au/ml，稀释5120倍的混合血清的腺病毒igm抗体的浓度就定为20au/ml；依次类推，稀释160倍的混合血清的腺病毒igm抗体浓度就定为640au/ml。

以20-640au/ml的抗体混合血清为校准品，使用实施例1提供的试剂盒检测阳性血清10例，阴性血清10例，如均检测准确则符合要求；如果符合要求，将此批号的混合血清稀释160倍，即得腺病毒igm抗体浓度为640au/ml的校准品。

实施例1

1、一种磁微粒化学发光法检测腺病毒igm抗体的试剂盒，所述试剂盒包括：

酶标工作液、磁珠悬浮液、样本稀释液、校准品和发光底物液；

其中，酶标工作液包括下述终浓度的组分：牛血清白蛋白(bsa)2.5g/l，新生牛血清100ml/l，氯化钠8.0g/l，磷酸氢二钠5.8g/l，磷酸二氢钠0.593g/l和辣根过氧化物酶标记的腺病毒抗原1μg/ml；

磁珠悬浮液包括下述终浓度的组分：偶联有鼠抗人igm抗体的磁微粒(以磁微粒的质量计)1mg/ml，其中，1mg磁微粒上偶联有40μg的鼠抗人igm抗体；磁微粒为超顺磁性微粒；每100ml磁微粒使用1ml含有浓度为5mg/ml的edc和2.5mg/ml的nhs的缓冲液活化；

校准品包括20、40、80、160、320、640au/ml的腺病毒igm抗体高值血清；

样本稀释液为ph值为7.0-7.2的生理盐水；

发光底物液包括发光底物液a和发光底物液b，其中发光底物液a包括下述终浓度的组分：tris0.02g/l，盐酸0.006ml/l，鲁米诺0.003g/l；发光底物液b包括下述终浓度的组分：磷酸二氢钠0.2g/l，磷酸氢二钠2.9g/l，过氧化脲0.01g/l，氯化钠9g/l；

所述腺病毒抗原为重组抗原a。

2、上述试剂盒的制备方法包括下述步骤：

(1)制备adv-igm校准品

配制adv-igm校准品稀释液：加800ml纯化水和5.8g的na2hpo4·12h2o、0.593g的nah2po4·2h2o到容器中，搅拌混合均匀，再加8.0g的氯化钠，搅拌至完全溶解，将ph值调为7.10-7.30，加2.5g的bsa到容器中，搅拌至完全溶解，再将ph值调为7.10-7.30，用纯化水定容至1l，使用0.2μm滤器过滤，将获得的校准品稀释液保存在2-8℃待用。

用上述adv-igm校准品稀释液将腺病毒igm抗体高值血清分别配制为20、40、80、160、320、640au/ml共6个浓度点，得到所述adv-igm校准品。

(2)制备adv-igm样本稀释液

加800ml纯化水和9.0g的氯化钠于1l容器中，搅拌至完全溶解，将ph值调为7.00-7.20，用纯化水定容至1l，使用0.2μm滤器过滤，得到所述adv-igm样本稀释液。

(3)制备adv-igm酶标工作液

配制adv-igm酶稀释液：加800ml纯化水和5.8g的na2hpo4·12h2o、0.593g的nah2po4·2h2o到容器中，搅拌混合均匀，再加8.0g的氯化钠，搅拌至完全溶解，将ph值调为7.10-7.30，加2.5g的bsa和100ml的新生牛血清到容器中，搅拌至完全溶解，再将ph值调为7.10-7.30，用纯化水定容至1l，使用0.2μm滤器过滤，将获得的所述adv-igm酶稀释液保存在2-8℃待用。

将辣根过氧化物酶标记的腺病毒抗原(1mg/ml)用adv-igm酶稀释液以1:1000比例稀释，得到adv-igm酶标工作液。

(4)制备adv-igm磁珠悬浮液

配制偶联缓冲液：加800ml纯化水和3.2g的2-吗啉乙磺酸到容器中，搅拌至完全溶解，将ph值调为5.90-6.10，用纯化水定容至1l，使用0.2μm滤器过滤，将获得的所述偶联缓冲液保存在2-8℃待用。

配制储存液：加800ml纯化水和1.2114g的tris到容器中，搅拌混合均匀，再加8.766g的氯化钠，搅拌至完全溶解，用盐酸将ph值调为7.30-7.50，加1.0g的牛血清白蛋白到容器中，搅拌至完全溶解，再将ph值调为7.30-7.50，用纯化水定容至1l，使用0.2μm滤器过滤，将获得的所述储存液保存在2-8℃待用。

配制adv-igm浓缩磁微粒：取100mg磁微粒，磁分离去上清，取用偶联缓冲液10ml重悬，磁分离去上清，此步骤重复三次，置换磁微粒液体环境。向去上清的磁微粒加入9ml偶联缓冲液重悬，再加入1.0ml新配制的含有浓度为5mg/ml的edc和2.5mg/ml的nhs的偶联缓冲液，室温振荡混悬30min，使磁珠充分活化，磁分离，去上清，用偶联缓冲液重悬，加入4mg鼠抗人igm单克隆抗体，使磁微粒浓缩液总体积为10ml，2-8℃振荡混悬12小时。磁分离，去上清，取用储存液10ml重悬，室温条件下混匀30min，再磁分离，去上清，此步骤重复两次，清洗磁微粒液体环境中游离抗体。向去上清的磁微粒加入10ml储存液重悬，室温条件下混匀2h后，使用超声振荡仪将混悬液中聚集成团的磁珠分散成单颗粒状态，得到adv-igm浓缩磁微粒，保存在2-8℃待用。

配制adv-igm磁珠悬浮液：将adv-igm浓缩磁微粒，室温条件下混匀2h后，加入储存液90ml，得到adv-igm磁珠悬浮液。

实施例2

1、一种磁微粒化学发光法检测腺病毒igm抗体的试剂盒，所述试剂盒同实施例1，区别在于：

所述腺病毒抗原为重组抗原b。

2、所述试剂盒的制备方法同实施例1。

实施例3

1、一种磁微粒化学发光法检测腺病毒igm抗体的试剂盒，所述试剂盒同实施例1，区别在于：

所述腺病毒抗原为重组抗原c。

2、所述试剂盒的制备方法同实施例1。

实施例4

1、一种磁微粒化学发光法检测腺病毒igm抗体的试剂盒，所述试剂盒同实施例1，区别在于：每100ml磁微粒分别使用1ml下述活化剂活化：

a.含有浓度为5mg/ml的edc和0mg/ml的nhs的缓冲液；

b.含有浓度为5mg/ml的edc和5mg/ml的nhs的缓冲液；

c.含有浓度为5mg/ml的edc和10mg/ml的nhs的缓冲液。

2、所述试剂盒的制备方法同实施例1，区别在于：配制adv-igm浓缩磁微粒时，分别加入1.0ml新配制的下述偶联缓冲液：

a.含有浓度为5mg/ml的edc和0mg/ml的nhs的偶联缓冲液；

b.含有浓度为5mg/ml的edc和5mg/ml的nhs的偶联缓冲液；

c.含有浓度为5mg/ml的edc和10mg/ml的nhs的偶联缓冲液。

效果例1

利用中航赛维生物生产的vi-200全自动化学发光免疫分析仪对实施例提供的磁微粒化学发光法检测腺病毒igm抗体的试剂盒进行检测，所述检测方法包括下述步骤：

1.将试剂盒中的adv-igm样本稀释液，adv-igm酶标工作液，adv-igm磁珠悬浮液三个组分放置于分析仪试剂舱中；

2.在仪器软件上进行定标曲线，将adv-igm校准品放到仪器测试位置，得到由全自动化学发光免疫分析仪输出拟合曲线；

3.如果仪器提示拟合通过，则在仪器软件上进行质控品测试申请，将adv-igm质控品放到仪器指定位置，得到由全自动化学发光免疫分析仪输出质控品测试发光值和通过标准曲线拟合得到的质控品的浓度值；

4.如果质控测值在预定范围内，该可进行样品测试申请，将样品放到仪器测试位置。由全自动化学发光免疫分析仪输出样品测试发光值和通过标准曲线拟合得到的浓度值。

全自动化学发光免疫分析仪检测步骤如下：

步骤1)加10μl校准品或质控品或待测样本至检测管中；本发明的试剂盒，待测标本需要量仅为10μl，降低了试剂盒的成本；

步骤2)加100μl的adv-igm样本稀释液和20μl的adv-igm磁珠悬浮液至步骤1)所述检测管中，混匀后，37±0.5℃温育15min，进行磁分离去上清；磁珠悬浮液参与反应时间仅为15min，可大限度地避免非特异性吸附；

步骤4)加300μl的清洗液至检测管中，混匀，进行磁分离去上清；

步骤5)重复步骤4)三遍；

步骤6)加100μl的adv-igm酶标工作液至检测管中，混匀后，37±0.5℃温育15min，进行磁分离去上清；

步骤7)加300μl的清洗液至检测管中，混匀，进行磁分离去上清；

步骤8)重复步骤7)三遍；

步骤9)加50μl的化学发光底物a液和50μl的化学发光底物液b至检测管中，混匀，检测发光强度。

本发明磁微粒化学发光法的原理见图1；将待测样品、所述adv-igm样品稀释液和磁珠悬浮液混合温育，样品中的adv-igm抗体与磁珠悬浮液中的鼠抗人igm单克隆抗体结合，adv-igm抗体被吸附到磁微粒表面；随后加入酶标工作液并混合温育，此时，辣根过氧化物酶标记腺病毒抗原与已经结合在磁珠上的adv-igm抗体特异性结合；随后，hrp催化底物发光，测定相对发光强度(rlu)。在一定范围内，rlu与样品中adv-igm浓度呈正比，通过rlu即可从标准曲线上计算出待测样品的adv-igm含量。

使用上述检测方法对实施例1提供的试剂盒进行性能评价：

1.灵敏度测定

10例阳性血清收集于河南省人民医院、陕西省人民医院、福州军区医院经临床验证的adv-igm抗体阳性血清(其中阳性血清包括腺病毒1型阳性样本1例，腺病毒3型阳性样本1例，腺病毒7型阳性样本2例，腺病毒11型阳性样本1例，腺病毒19型阳性样本1例，腺病毒35型阳性样本1例)，用欧蒙医学诊断(中国)有限公司生产的抗腺病毒抗体igm检测试剂盒(酶联免疫吸附法)anti-adenoviruselisa(igm)进行复检筛选，得到的adv-igm抗体阳性血清建立为阳性质控品。

使用实施例1提供的试剂盒分别检测10份阳性质控品，将阳性质控品的发光值代入定标曲线计算浓度值，根据浓度值进行判断，样本浓度值<20au/ml判为阴性；浓度值≥25au/ml判为阳性；20au/ml≤浓度值<25au/ml判为可疑，建议1～2周后重新取样检测或用其他检测方法进行确认。结果见表1；由表1可知，10份阳性质控品符合率为10/10。

表1：阳性质控品符合率数据统计表(au/ml)

2.特异性测定

10例阴性血清收集于河南省人民医院、陕西省人民医院、福州军区医院经临床验证的adv-igm抗体阴性血清，用欧蒙医学诊断(中国)有限公司生产的抗腺病毒抗体igm检测试剂盒(酶联免疫吸附法)anti-adenoviruselisa(igm)进行复检筛选，得到的adv-igm抗体阴性血清建立为阴性质控品。

使用实施例1提供的试剂盒分别检测10例阴性质控品，将阴性质控品的发光值代入定标曲线计算浓度值，根据浓度值进行判断，结果见表2；由表2可知，10份阴性质控品符合率为10/10。

表2：阴性质控品符合率数据统计表(au/ml)

使用本发明实施例1提供的试剂盒检测20例类风湿因子阳性血清样本、10例抗核抗体阳性血清样本、10例柯萨奇病毒a组16型igm抗体(ca16-igm)阳性血清、10例肠道病毒71型igm抗体(ev71-igm)阳性血清、10例单纯疱疹病毒1型igm抗体(hsv1-igm)阳性血清、10例单纯疱疹病毒2型igm抗体(hsv2-igm)阳性血清、10例水痘-带状疱疹病毒igm抗体(vzv-igm)阳性血清、10例a群轮状病毒igm抗体(rota-igm)阳性血清、10例风疹病毒igm抗体(rv-igm)阳性血清、10例麻疹病毒igm抗体(mv-igm)阳性血清、10例人类巨细胞病毒igm抗体阳性血清(hcmv-igm)、10例流行性腮腺炎病毒igm抗体阳性血清(muv-igm)、10例乙型肝炎病毒核心抗体igm(hbc-igm)阳性血清、10例甲型肝炎病毒igm抗体(hav-igm)阳性血清、10例人细小病毒b19igm抗体(b19-igm)阳性血清、10例弓形虫igm抗体(tox-igm)阳性血清等，均为阴性，表明以上干扰因子基本不会造成本发明试剂盒的假阳性，特异性很好。

3.本发明试剂盒与德国欧蒙医学诊断试剂公司生产的抗腺病毒抗体igm检测试剂盒(酶联免疫吸附法)anti-adenoviruselisa(igm)，对1050例人血清样品进行了对比实验，结果见表3。

表3：与欧蒙酶联免疫试剂的对比检测结果

阳性符合率＝[134/137]×100％＝97.81％

阴性符合率＝[909/913]×100％＝99.56％

总符合率＝[(134+909)/(1050)]×100％＝99.33％

利用spss软件进行配对卡方得p＝1.000>0.05，kappa值＝0.971≥0.75，表明本试剂盒与酶联免疫试剂盒具有高度一致性，并且灵敏度略高于酶联免疫试剂盒。

效果例2

对使用不同腺病毒抗原的实施例1-3提供的试剂盒进行评价：

以10例阳性血清、10例阴性血清(收集于河南省人民医院、陕西省人民医院、福州军区医院经临床验证的adv-igm抗体阳性血清、阴性血清，用欧蒙医学诊断(中国)有限公司生产的抗腺病毒抗体igm检测试剂盒(酶联免疫吸附法)anti-adenoviruselisa(igm)进行复检筛选，得到的adv-igm抗体阳性血清、阴性血清建立为阳性质控品、阴性质控品)。

使用实施例1-3的试剂盒分别对上述阳性质控品和阴性质控品进行检测，结果见表4。由表4可知，本发明实施例1提供的试剂盒，检测得到的阳、阴性质控品的p/n比值最高，表明实施例1提供的试剂盒中使用重组抗原a标记的磁微粒，灵敏度和特异性优于重组抗原b和重组抗原c。

表4：不同序列腺病毒抗原标记的磁微粒检测结果

效果例3

对实施例1和实施例4提供的使用不同活化剂活化磁微粒的试剂盒进行评价：

以10例阳性血清、10例阴性血清(收集于河南省人民医院、陕西省人民医院、福州军区医院经临床验证的adv-igm抗体阳性血清、阴性血清，用欧蒙医学诊断(中国)有限公司生产的抗腺病毒抗体igm检测试剂盒(酶联免疫吸附法)anti-adenoviruselisa(igm)进行复检筛选，得到的adv-igm抗体阳性血清、阴性血清建立为阳性质控品、阴性质控品。

分别使用实施例1和实施例4提供的试剂盒对上述阳性质控品和阴性质控品进行测试，结果见表5；由表5可知，实施例1提供的试剂盒(活化剂为edc5mg/ml和nhs2.5mg/ml)，测得的阳、阴性质控品的p/n比值最高；表明以edc5mg/ml和nhs2.5mg/ml条件活化的adv-igm磁微粒，检测灵敏度和特异性优于其他活化条件。

表5：不同浓度的adv-igm磁微粒的活化剂活化磁微粒检测结果

最后应说明的是：以上实施例仅用以说明本发明的技术方案，而非对其限制；尽管参照前述实施例对本发明进行了详细的说明，本领域的普通技术人员应当理解：其依然可以对前述各实施例所记载的技术方案进行修改，或者对其中部分技术特征进行等同替换；而这些修改或者替换，并不使相应技术方案的本质脱离本发明各实施例技术方案的精神和范围。

序列表

<110>北京贝尔生物工程股份有限公司

<120>一种磁微粒化学发光法检测腺病毒igm抗体的试剂盒及其制备方法

<130>200006f

<160>6

<170>siposequencelisting1.0

<210>1

<211>329

<212>prt

<213>humanadenovirus

<400>1

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