一种来源于放线菌(StreptomycesrameusL2001)的耐热木聚糖酶基因及其产物木聚糖...的制作方法

文档序号:408606阅读:273来源:国知局
专利名称:一种来源于放线菌(Streptomyces rameus L2001)的耐热木聚糖酶基因及其产物木聚糖 ...的制作方法
技术领域
本发明涉及ー种来源于放线菌(Streptomyces rameus L2001)的耐热木聚糖酶的基因及其产物木聚糖酶XynA的应用。
背景技术
木聚糖(xylan)主要是由五碳的D-卩比喃型木糖(xylopryanose)通过β-1,4_糖苷键以不同聚合度形成的不均一多糖,是植物半纤维素主要成分,是构成植物细胞壁的重要组成成分,占被子植物细胞壁干重的15% -30%,占裸子植物细胞壁干重的7% -12%,木 聚糖广泛存在于植物根、茎、叶、花和果实中,占植物总的生物量的20%-40%,是自然界中仅次于纤维素的最丰富的可再生有机资源。木聚糖除了含有聚合度不同的木糖外,还同其它多糖以多种糖苷键共价交联,同时还存在大量的支链取代基,完全降解需要一系列的酶协同作用,其中起主要作用的是β-1,4-内切木聚糖酶,以内切的方式破坏木聚糖主链的糖苷键,释放寡聚木糖和少量的木糖単体,其次需要β木糖苷酶,作用寡聚木糖的还原端,释放木糖単体,另外还需要降解支链的 α -L-呋喃阿拉伯糖苷酶(a -L-arabinofuranoside, EC 3. 2. I. 55),a -D-葡萄糖醒酸酶(α -D-glucuronidase,EC 3. 2. I. 139),こ酸木聚糖酯酶(acetyl xylan esterase,EC
3.I. I. 72)和酹醒酸酯酶(phenolic acid esterase)(包括阿魏酸酯酶和p_香豆酸酯酶)等木聚糖酶的參与。木聚糖酶目前被报道广泛存在于动物植物中,包括真菌,细菌,藻类,甲壳动物,蜗牛,藻类利陆生植物,其中丝状真菌,细菌以及放线菌是主要的生产者,包括丝状真菌的木霉属(Trichoderma sp·),腐质酶属(Humicola sp·),链抱霉属(Neurospora sp.),曲霉属(Aspergillus sp·),祿抱属(Fusarium sp·),青霉属(Penicillium sp.)和胶霉属(Gliocladium sp.)。细菌的放线菌包括 S. actuosus, S. cyaneus, S. halstedii,b.matensIs, b. 0丄Ivaceoviridis, b. roseisc丄eroticus, S. thermoviolaceus,b. viridosporus.木聚糖酶具有广泛的应用价值和前景,其主要在造纸,饲料和食品エ业得到广泛应用,在纺织、生物能源、化妆品、医药保健品等领域也有良好的应用前景。在造纸エ业中,传统的化学漂白法采用氯化物在碱性条件下去除木质素,一方面产生大量的有毒利强致癌化合物,ニ是在后处理过程中又消耗大量的能源,木聚糖酶的应用能够增强漂白效果和減少后续氯化物的用量,实际使用不仅大大降低了环境污染,还改善了纸张的性能,提高了纸张的质量。在分离自然的木聚糖酶的工作基础上,研究人员也在通过生物工程和基因工程的方法对木聚糖酶进行改造,试图进一步获得更适合造纸エ业生产所用的木聚糖酶。在饲料エ业中,非反刍动物消化道中由于缺少木聚糖酶等消化半纤维素酶,对饲料中丰富的半纤维素物质无法利用,造成饲料利用效率低,动物消化道疾病増加以及粪便污染环境等不良后果,在饲料中添加木聚糖酶等分解半纤维素的酶类,可以提高动物对饲料的利用效率,减少动物的肠道疾病,提高成活率,减少粪便污染。在食品エ业中,木糖的甜度是蔗糖的40%,在人体内不会造成葡萄糖的水平升高,因此可以作为糖尿病患者和肥胖患者的甜味剂,此外,作为难发酵型糖,不容易造成龋齿,因此也是儿童食品的甜味剂,在面包生产上,添加木聚糖糖浆,可以改良面包色泽,増加香味,保持面包水分等效果,这些都是木聚糖酶在食品エ业中的应用方向。在纺织エ业中,木聚糖酶在苎麻脱胶中起重要作用,作为优良的纺织原料,苎麻在我国纺织产业中有一定的地位,在生产过程中,重要的一歩是脱胶,传统方法采用高温强酸强碱法,污染环境,且破坏纤维降低品质,我国科研人员将木聚糖酶和果胶酶配合使用,创造出酶法脱胶法,改善了劳动环境,提高了产品品质,而且大大减轻了环境污 染。在能源エ业中,由于木聚糖是地球上仅次于纤维素的第二大可再生有机物,在生物质能源的生产上具备了潜在应用前景。在化妆品,木聚糖酶作用木聚糖,产生的寡聚合的木聚糖,具有很好的保水效果,可用于化妆品保持皮肤水分。在制备医药和保健品种行业中,木聚糖酶作用木聚糖产物単独或者和其它寡聚糖(如果聚糖)混合服用,产生的寡聚合的木聚糖可以改善人体肠道的菌群平衡,有助于良性细菌的繁殖,改善人的消化功能。

发明内容
本发明从来源于放线菌(Streptomyces rameusL2001)的耐热木聚糖酶获得木聚糖酶基因多核苷序列如SEQIDN01所示CCATAGGACGCGCTCAGCGTCTCGGCGATCTCCTCGTCGGCCTGCGCCACGGTGCGGCGGATCGTACGGTGCCGAGCAAGGGCCTGTCGGCGGGGTCGCTCTCGMGGGGCAGCGCCGGACATGGCCGGGCCCGTAGGCCTCGAGTCCGGCCGTCGCCACGCGGCGCAGCTCCTGTGTCGTCGAAACATTCGAAACCCAGTGTGGGGACTTCGGCGTCTCCATGGAGTGTTCCGGGATGTTCCTAGAGGGATCTCCTCACTCATGCCGATTCATCAGCGGACACGTAGCGACGGTCGCGCTAGGACGCAGACGAATGTTTCGAAATATCGACCGAAAGTGTTGACAGATGACATGGCCAGGCCAACACTCCCCATCACGTCACACCCCACCCGTCGCACAAGGAGGAAGTACGACATGAATCCGCTCGACCATGCGACGAGCCGCAGGGCCGCCTGCGCGCTGCTGCTCGGCACCGCGGCCGGACTGGCCCTGCCCGGCACCGCCCGTGCCGCCACGGTCGTCACCACGAACCAGACCGGCACCGACAACGGCTTCTACTACTCGTTCTGGACCGACGCGCAGGGCACGGTCTCGATGACCCTGGGCTCCGGTGGCAACTACAGCACCAGCTGGCGCAACACCGGCAACTTCGTGGCCGGCAAGGGCTGGAGCACCGGCGCCCGCAGGAACGTGACCTACTCCGGCAGCTTCAACCCGTCCGGCAACGGCTACCTGTCGCTCTACGGCTGGACGTCGAACCCGCTCGTGGAGTACTACATCGTCGACAACTGGGGCACCTACCGGCCCACGGGGACGTACAAGGGCAGTGTCACCAGTGACGGCGGAACGTACGACATCTACCAGACGACGCGGTACAACGCCCCGTCCGTCGAGGGCACCAGGACCTTCAACCAGTACTGGAGCGTGCGGCAGTCGAAGCGCACCGGCGGCACCATCACCACCGGCAACCACTTCGACGCCTGGGCCCGCGCCGGGATGCCCCTCGGCAGCTTCGCGTACTACATGATCCTCGCGACCGAGGGGTACCAGAGCAGCGGCAACTCCAATATCACGGTGTCGTCGTGAGGACCGCACGACAGCTCGCGTTACGTCCGGCGGTGACCGCCGCCGTCGCCGCACCGGCCCTCGCCGCTACGCTCATCGTCGGAGCCGCCCCTCGCACGCGCACCCTTCCC本发明从来源于放线菌(Streptomyces rameus L2001)的耐热木聚糖酶获得木聚糖酶基因多肽序列如SEQ IDN02所示
MAGPVGLESGRRHAAQLLCRRNIRNPVWGLRRLHGVFRDVPRGISSLMPIHQRTRSDGRARTQTNVSKYRPKVLTDDMARPTLPITSHPTRRTRRKYDMNPLDHATSRRAACALLLGTAAGLALPGTARAATVVTTNQTGTDNGFYYSFWTDAQGTVSMTLGSGGNYSTSWRNTGNFVAGKGWSTGARRNVTYSGSFNPSGNGYLSLYGffTSNPLVEYYIVDNWGTYRPTGTYKGSVTSDGGTYDIYQTTRYNAPSVEGTRTFNQYWSVRQSKRTGGTITTGNHFDAWARAGMPLGSFAYYMILATEGYQSSGNSNITVSS本发明从来源于放线菌(Streptomyces rameusL2001)的耐热木聚糖酶获得木聚糖酶基因多肽序列如SEQ IDN03所示MNPLDHATSRRAACALLLGTAAGLALPGTARAATVVTTNQTGTDNGFYYS FffTDAQGTVSMTLGSGGNYSTSWRNTGNFVAGKGffSTGARRNVTYSGSFNPSGNGYLSLYGWTSNPLVEYYIVDNWGTYRPTGTYKGSVTSDGGTYDIYQTTRYNAPSVEGTRTFNQYWSVRQSKRTGGTITTGNHFDAWARAGM-PLGSFAYYMILATEGYQSSGNSNITVSS本发明从来源于放线菌(Streptomyces rameus L2001)的耐热木聚糖酶获得木聚糖酶基因信号多肽序列如SEQ ID N04所示MNPLDHATSRRAACALLLGTAAGLALPGTARA


图I为枝链霉菌L2001基因组DNA电泳照片。图2为图2编码木聚糖酶的保守序列。图3Tail_PCR过程简略图。其中Spl,Sp2为嵌套引物,根据核心序列设计的,LAD为兼并引物。图4-1为5'端侧翼序列扩增电泳照片。泳道1、2、3为Sp5,与不同LAD引物之间的组合进行的第三轮Tail-PCR扩增结
果O图4-2为:V端侧翼序列扩增电泳照片。泳道1、2、3为Sp3,与不同LAD引物之间的组合进行的第三轮Tail-PCR扩增结
果O图5为转基因木聚糖酶A酵母中木聚糖酶活性分析。图6为大肠杆菌表达木聚糖酶A的SDS-PAGE蛋白电泳图。I =Marker, 2-3 :含空载体大肠杆菌表达蛋白4_7 :含XylA表达载体的大肠杆菌表达蛋白。图7为比赤酵母表达木聚糖酶A的SDS-PAGE蛋白电泳图。I =Marker,2_5 :阳性毕赤酵母pPIC9K-XylA表达蛋白。
具体实施例方式本发明以下结合具体实例作进ー步说明,但并不是限制本发明。菌株大肠杆菌DH5 α和Transtetta (DE3)感受态细胞购自全式金公司;毕赤酵母菌株GS115购自invitrogen公司。载体T载体 pEASY-blunt simple 和 pEASY-simple Tl 购自全式金公司;pET_28a (+)和pET_32a购自Merk公司,毕赤酵母表达载体购自pPIC9K Invitrogen公司。、
生化试剂rTaq,ExTaq, EcoRI, EcoRV, AvrII, XhoI 和 T41igase 等购自 Takara 公司,KDO-plus购自Toyobo公司。溶菌酶购自Amresco公司。质粒小量提取试剂盒,质粒中量提取试剂盒,胶回收试剂盒购自Omiga公司。细菌基因组DNA提取试剂盒购自天根生化科技有限公司。普通化学试剂氯仿,甲醇,こ醇,异丙醇,氯化钠,盐酸,冰醋酸等购自北京化学试剂厂,β -巯基こ醇,Tris, SDS,山犁醇,甘油,DMSO,卡那霉素,氨卞青霉素,考马斯亮蓝,过硫酸铵,丙烯酰胺,双丙烯酰胺等购自Amresco公司。桦木木聚糖购自Sigma公司。Tris-饱和酚,琼脂粉购自鼎国生物公司。琼脂糖购自西班牙Biowest公司。胰蛋白胨和酵母提取物购自Oxford公司。刚果红,咪唑-邻苯ニ甲酸氢钾购自天津市文达稀贵试剂化工厂。
引物扩增木聚糖酶核心序列所用兼并引物正向引物Xyn-p I 序列5' -STBSTACTCSTTCTGGACSGA-3'反向引物Xyn-p2 序列5' -CCASGCGTCGAAGTGRTT-3'(注R = A/G, S = C/G, W = A/T, B = C/G/T, N = A/C/G/T)。T载体用测序引物M13+序列5' -GTTTTCCCAGTCACGAC-3'M13-序列5' -CAGGAAACAGCTATGAC-3'全长基因扩增引物xynA-pI 5/ -CCATAGGACGCGCTCAG-3'xynA-p2 5/ -GGGAAGGGTG CGCGTG-3'Tail-PCR 所用引物上游扩增引物sp5-l:5' -CGATTCATCAGCGGACACGTAGC-3'sp5-2 5/ -GATGTTCCTAGAGGGATCTCCTCACTCAT-3' sp5-3 5/ -GTCGAAACATTCGAAACCCAGTGTGG-3'下游扩增引物sp3-l:5' -CCACACTGGGTTTCGAATGTTTCGAC-3'sp3-2 5/ -CATGAGTGAGGAGATCCCTCTAGGAACAT-3'sp3-3 5/ -GCTACGTGTCCGCTGATGAA TCG-3'大肠杆菌表达载体引物正向长片段引物xynA-eLl :5' -CAGAATTCATGAATCCGCTCGACCATG-3'正向短片段引物xynA-eSl :5' -CAGAATTCACGGTCGTCACCACGAA-3'反向通用弓丨物xynA-eD 5' ~TACTCGAGTCACGACGACACCGTGA~3'毕赤酵母表达载体引物正向长片段弓丨物xynA-yLl 5' -CAGAATTCATGAATCCGCTCGACCATG-3'正向短片段引物xynA-ySl :5' -CAGAATTCACGGTCGTCACCACGAA-3'反向通用弓丨物xynA-yD 5' -TACCTAGGTCACGACGACACCGTGA-3'基因组DNA的提取放线菌基因组总DNA提取使用细菌基因组DNA提取试剂盒(天根生化科技有限公司),方法略做改进,裂解完全后的菌体,采用等体积的Tris-饱和酚/氯仿抽提2次,等体积的氯仿抽提一次再上拄,可以得到纯净和不容易降解的放线菌基因组总DNA(图I)。
兼并引物的设计将来源于放线菌Streptomyces rameus发酵液并经过纯化后的木聚糖酶的纯酶,进行N末端蛋白序列測定,测得了此酶N端15个氨基酸序列ATVVTTNQTGTDNGF(Ala-Thr-Val-Val-Thr-Thr-Asn-Gln-Thr-Gly-Thr-Asp-Asn-Gly-Phe),用此 15 个氨基酸序列对 NCBI的蛋白数据库进行BLAST检索,获得相似度高的16条木聚糖酶的蛋白质序列,将这些蛋白质序列通过软件DNAman进行AUGMENT比对,分析得到该类木聚糖酶的保守序列区(图2),设计兼并引物Xyn-p I和Xyn-p2。PCR 扩增 以提取的基因组DNA为模板,使用Toyobo公司的高保真扩增酶KOD-plus,PCR扩增条件为94°C变性3分钟;94°C变性30秒,50°C退火30秒,68 °C延伸I分钟,共10个循环;94°C变性30秒,54°C退火30秒,68°C延伸I分钟,共20个循环;68°C延伸10分钟。得到ー个约450bp DNA片段。T-载体连接将上述PCR产物片段通过1%琼脂糖电泳,使用Omiga公司的胶回收试剂盒,并采用说明书提供的步骤回收PCR片段,随后将回收片段与T-载体pEASY-blunt simple (全式金公司)按说明书连接PCR产物和T载体,按《分子克隆》方法热激转化大肠杆菌DH5 α菌株。DNA序列測定将上述转化的后的阳性DH5a克隆接种于Iml LB培养基,交上海生エ生物技术公司进行DNA序列測定,使用通用测序引物M13+和M13-,测序获得如下序列GTGGTACTCGTTCTGGACCGACGCGCAGGGCACGGTCTCGATGACCCTGGGCTCCGGTGGCAACTACAGCACCAGCTGGCGCAACACCGGCAACTTCGTGGCCGGCAAGGGCTGGAGCACCGGCGCCCGCAGGAACGTGACCTACTCCGGCAGCTTCAACCCGTCCGGCAACGGCTACCTGTCGCTCTACGGCTGGACGTCGAACCCGCTCGTGGAGTACTACATCGTCGACAACTGGGGCACCTACCGGCCCACGGGGACGTACAAGGGCAGTGTCACCAGTGACGGCGGAACGTACGACATCTACCAGACGACGCGGTACAACGCCCCGTCCGTCGAGGGCACCAGGACCTTCAACCAGTACTGGAGCGTGCGGCAGTCGAAGCGCACCGGCGGCACCATCACCACCGGCAACCACTTCGACGCCTGGGTail-PCR引物的设计根据以上获得的DNA序列,在此序列内设计扩增木聚糖酶基因上游和下游Tail-PCR用引物各三条扩增方向为上游方向的引物分别命名为sp5-l,sp5_2和sp5_3,引物sp5-l在引物sp5-2外侧,引物sp5-2在引物sp5-3外测;引物扩增方向为下游方向的引物分别命名为sp3-l,sp3-2和sp3-3,引物sp3_l在引物sp3_2外侧,引物sp3_2在引物sp3-3外侧(表)。引物sp3-3和引物sp5-3之间存在200个bp的重叠区(图3),保证Tail-PCR产物测序后,可以正确拼节出完整的基因序列。Tail-PCR Tail-PCR的方法參考刘耀光(文献)的方法;分别获得基因上游方向PCR片段为500bp (图4-1),下游方向为400bp (图4-2)。使的用扩增酶为Takara公司的ExTaq酶。T-载体连接将基因上游和下游扩增片段经过1%琼脂糖电泳后,由Omiga公司的胶回收试剂盒回收PCR片段,然后同T载体pEASY-simple Tl (全式金公司)连接,热激转化大肠杆菌DH5 α菌株。DNA序列测定将上述转化的后的阳性DH5A接种于Iml LB培养基,交上海生エ生物技术公司进行DNA序列測定,采用通用测序引物Μ13+和Μ13-。全长基因PCR扩增
根据测得基因上游和下游序列,由软件DNAmanO进行序列拼接,获得全长基因得DNA序列,根据获得序列,设计引物xynA-pl和xynA_p2,采用全基因组DNA为模板,高保真扩增酶KOD-plus,扩增条件为94°C变性3分钟;94°C变性30秒,50°C退火30秒,68°C延伸I分钟,共10个循环;94°C变性30秒,54°C退火30秒,68°C延伸I分钟,共20个循环;68°C延伸10分钟。得到单ー约1200bp DNA片段。T-载体连接将上述PCR产物片段通过I %琼脂糖电泳,采用Omiga公司的胶回收试剂盒并采用说明书提供的步骤回收PCR片段,随后将回收片段与T-载体pEASY-simple blunt (全式金公司)按说明书连接PCR产物和T载体,按《分子克隆》方法热激转化大肠杆菌DH5 α菌株。DNA序列测定将上述转化的后的阳性DH5a接种于1ml LB培养基,交上海生エ生物技术公司进行DNA序列測定,采用通用测序引物M13+和M13-。经DNAman分析得到ORF全长为671个碱基或者966个碱基的XylA全长蛋白质编码序列。通过对NCBI进行blast序列比对,序列分析为木聚糖酶,可能编码长为234氨基酸和322氨基酸两种多肽。pET28a(+)表达载体的构建根据基因序列可能编码长度不同的两种多肽,分别设计基因正向引物xynA-eLl和xynA-eSl以及反向引物xynA_eD2,采用全基因组DNA为模板,高保真扩增酶KOD-plus,扩增条件为94°C变性3分钟;94°C变性30秒,50°C退火30秒,68°C延伸I分钟,共10个循环;94°C变性30秒,54°C退火30秒,68°C延伸I分钟,共20个循环;68°C延伸10分钟。得到ー个680bp DNA片和段ー个985bp (图6) DNA片段。将上述PCR产物片段通过1%琼脂糖电泳,采用Omiga公司的胶回收试剂盒并采用说明书提供的步骤回收PCR片段,按实施例方法连接T载体,并按实施例进行序列測定,测定结果完全正确的克隆用于表达载体的构建。将正确T-载体菌株接种于5ml LB 37°C培基中陪养过夜,按Omiga试剂盒方法提取质粒,质粒经过EcoRI和XhoI酶切,经过OMIGA公司PCR纯化试剂盒纯化酶切产物,将纯化后产物于同样经过EcoRI和XhoI酶切并通过I %琼脂糖电泳,采用Omiga公司的胶回收试剂盒的回收载体骨架连接,连接体系为IOOngPCR产物酶切片段,IOng pET28a(+)产物片段,Ιμ Τ4连接酶缓冲液,Ιμ T4DNA连接酶,补充无菌超纯水至10 μ 1,连接条件为在16°C低温连接过夜,按《分子克隆》方法热激转化大肠杆菌DH5 α菌株。转化得到的阳性克隆用于培养及木聚糖酶表达。酵母表达载体的构建根据基因序列可能编码长度不同的两种多肽,分别设计基因正向引物xynA-yLl和xynA-ySl以及反向引物xynA_yD2,采用全基因组DNA为模板,高保真扩增酶KOD-plus,扩增条件为94°C变性3分钟;94°C变性30秒,50°C退火30秒,68°C延伸I分钟,共15个循环;94°C变性30秒,54°C退火30秒,68°C延伸I分钟,共15个循环;68°C延伸10分钟。得到ー个680bp DNA片和段ー个985bp (图7) DNA片段。将上述PCR产物片段通过1%琼脂糖电泳,采用Omiga公司的胶回收试剂盒并采用说明书提供的步骤回收PCR片段,按实施例方法连接T载体,并按实施例进行序列測定,测定结果完全正确的克隆用于表达载体的构建。将正确T-载体菌株接种于5ml LB 37°C培基中陪养过夜,按OMGA试剂盒方法提取质粒,质粒经过EcoRI和AvrII酶切,经过Omiga公司PCR纯化试剂盒纯化酶切产物,将纯化后产物于同样经过EcoRI和AvrII酶切并通过I %琼脂糖电泳,采用Omiga公司的胶回收试剂盒的回收载体骨架连接,连接体系为IOOngPCR产物酶切片段,IOng pPIC9K产物片段,I μ I T4连接酶缓冲液,I μ I T4DNA连接酶,补充无菌超纯水至10 μ I,连接条件为在16°C低温连接过夜,按《分子克隆》方法热激转化大肠杆菌DH5 α菌株。毕赤酵母电激转化

将上述阳性克隆接种于500ml的LB培养基过夜,收集菌体后按Omiga公司质粒中型提取试剂盒提取质粒DNA,质粒DNA经过EcoRV酶切后,用Omiga公司胶回收试剂盒回收DNA片段,取至少2 μ g线性化的DNA电激转化毕赤酵母宿主菌GSl 15,RD培养基恢复培养。毕赤酵母产木聚糖酶转化子的筛选将RD培养基上正常生长的转化子转接于MD培养基中,待转化子纯化后,接种于3ml BMGY液体培养基富集培养36h,再转接入Iml BMMY液体培养基诱导培养24h,4°C,5000rpm,离心5min,得到上清液。将5 μ I上清液点于含O. 5%的桦木木聚糖底物的筛选培养基中,50°C反应30min,l%刚果红染色20min,lM NaCl脱色20min。有透明圈现象的为阳性转化子。木聚糖酶活性分析将上述阳性转化子接种于15ml BMGY液体培养基富集培养48h后,转接入50mlBMMY液体培养基诱导培养216h,每24h取样1ml,同时补加ImL终浓度O. 5%的诱导剂甲醇。4°C,5000rpm,离心5min处理发酵液样品,得到上清液,采用DNS法测定木聚糖酶活力。具体操作如下用O. 05M, pH值为5. 3的柠檬酸缓冲液稀释上清液样品,取100 μ I样品加入至900 μ I 1%的桦木木聚糖底物中,于55°C反应5min,加入Iml DNS反应终止液,于沸水中显色15min,加入Iml 40%的酒石酸钾钠溶液,于540nm下测定吸光度,计算得到木聚糖酶酶活。经上述木聚糖酶酶活力測定方法,得到6个高产酶转化子,分别为1-76、3-59、6-28、6-63、7-111、9-3,酶活力分别为 403±3U/mL、464±9U/mL、447± 13U/mL、479± IOU/mL、768±35U/mL、473±10U/mL。(图 5)木聚糖酶重组蛋白分析木聚糖酶基因XylA与载体pEASY-simple blunt连接转入大肠杆菌DH5 α中,发酵液经破壁后测定木聚糖酶活力为163U/mL,图6为其SDS-PAGE电泳图,由分析可知,木聚糖酶蛋白分子量为27KD。将木聚糖酶基因XylA与pPIC9K连接,诱导发酵196h。发酵液经浓度为12. 5%的SDS-PAGE变性凝胶电泳处理,电泳结束后,用考马斯亮蓝染色液染色20min,再用IM NaCl洗脱液脱色至蛋白带清晰,结果如图7所示,木聚糖酶蛋白大小为38kDa。
权利要求
1.一种木聚糖酶的核苷酸序列,其序列细节为SEQ NOl0
2.这个序列的至少90%的同源。
3.ー种木聚糖酶的多肽,其序列细节为SEQ N02。
4.这个序列的至少90%的同源。
5.ー种木聚糖酶的多肽,其序列细节为SEQ N03。
6.这个序列的至少90%的同源。
7.一种木聚糖酶的信号肽,其序列细节为SEQ N04。
8.这个序列的至少90%的同源。
9.包含权利1,2,3,4,5,6,7,8的重组载体。
10.权利9的大肠杆菌的重组表达系统。
11.权利9的毕赤酵母的重组表达系统。
12.类似于权利10,11在乳酸杆菌,酿酒酵母,芽孢杆菌(如枯草芽孢杆菌),曲霉(如黑曲霉或者米曲霉)中的表达应用。
13.权利1,2,3,4,5,6,7,8,9,10,11,12在造纸エ业,食品加工,饲料エ业,纺织エ业,生物能源,化妆品,医药保健品,以及各种生物反应器的应用。
全文摘要
本基因公开了一种来源于放线菌(Streptomyces rameus L2001)的木聚糖酶Xyn A的基因,包括其核酸和蛋白质/多肽序列。该基因编码的木聚糖酶Xyn A的最适反应pH值为5.3;50℃时pH值稳定范围是2.2~11.3,70℃时pH值稳定范围是4.3~6.7。该酶的最适反应温度为70℃;70℃时处理30min仍保留60%以上的酶活力。作为一种新的木聚糖酶,该酶及其作用产物具备在造纸工业,生物能源,食品加工,饲料工业,化妆品,医药,保健品,酿酒,农作物生产,以及各类生物反应器中的应用价值。
文档编号C12N15/81GK102643842SQ201210045108
公开日2012年8月22日 申请日期2012年2月27日 优先权日2012年2月27日
发明者孙学辉, 李秀婷, 李金春, 杨然, 滕超, 路铁刚 申请人:中国农业科学院生物技术研究所, 北京工商大学
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