示，FSHRPR 的序列如序列表SeqIDNo;2所示。
【具体实施方式】 [0022] 二；本实施方式与一不同的是；所述的分子标记引物 中的是FSHRPF引物通过W下方式设计的：采用引物单碱基错配方式，在FSHRPF引物序列上 设计CATC碱基，屏蔽掉引物区域内基因组上的Sau3AI干扰酶切位点，只保留用于C-365T 突变检测的酶切位点。其它与一相同。
[002引【具体实施方式】S;本实施方式该分子标记方法是利用绵羊FS皿基因5 ^调控区C.-365的C〉T突变位点进行分型，从而预示和鉴定绵羊超数排卵性状。
【具体实施方式】 [0024] 四；本实施方式与=不同的是；预示和鉴定绵羊超数 排卵性状的分子标记方法，它是按照W下步骤进行的：
[0025] 一、W提取的绵羊基因组DNA为模板，采用FSHRPF和FSHWR引物，进行PCR扩增， 收集PCR产物；取PCR产物进行凝胶电泳检测，并采用Sau3AI限制性内切酶对PCR产物进 行酶切，获得酶切产物；
[0026] 二、使用浓度为3%的琼脂糖凝胶对酶切产物进行分离，然后根据电泳分离结果 进行基因型判定；判定的标准为：①电泳后呈现单一条带，大小为138bp，则绵羊FS皿基因 5 ^调控区段-365位点未突变，碱基为C，PCR扩增产物不能够被限制性内切酶Sau3AI酶 切，将其命名为AA基因型；②电泳后呈现两条带，大小分别为138bp和26bp，则绵羊FS皿基 因5 ^调控区段-365位点发生突变，碱基为T，PCR扩增产物能够被限制性内切酶Sau3AI 完全酶切，将其命名为BB基因型；⑨电泳后呈现S条带，大小分别为138bp，112bp和26bp， 贝IJ绵羊FS皿基因5M周控区段-365位点处于杂合状态，碱基为C和T，PCR扩增产物只能 够被限制性内切酶Sau3AI部分酶切，将其命名为AB基因型；
[0027] S、构造W下线性模型；Y=y+G+L+H+6;其中；Y代表相关性状的记录值；y代表 群体的平均值；G代表基因型固定效应；L代表品种固定效应；H代表场年季固定效应；e代 表随机残差效应；然后利用SAS6. 12软件包将基因型固定效应与超数排卵状进行关联分 析，并估计性状的最小二乘均值，关联分析结果表明，对于卵巢上排卵点数量，各基因型群 体间为BB>AB>AA;BB型群体绵羊胚胎受精率和优良胚胎率的均值高于AA型和AB型群 体；在移植妊娠率方面，WAB型群体均值最高；
[002引四、依据基因型将绵羊供体分为S种类型，选择BB基因型绵羊供体参与超数排卵 处理，从而实现对绵羊超数排卵数的分子标记辅助选择，即完成预示和鉴定绵羊超数排卵 性状的分子标记方法；所述的FSHRPF的序列如序列表SeqIDNo;1所示，FSHWR的序列如 序列表SeqIDNo;2所示。其它与【具体实施方式】=相同。
[0029]所述的供体为实验群体，所述的实验群体为：①32只澳洲美利奴品种，28只德国 肉用美利奴品种，19只萨福克品种，16只特克塞尔品种，14只夏洛莱品种，36只东北细毛 羊；②均为母羊；⑨所有结果为=年内分析完成。
[0030]所述的S种类型为AA基因型、BB基因型和AB基因型。
【具体实施方式】 [0031] 五；本实施方式与=不同的是；步骤=构造线性模型 是依据实验群体的特点，所述的实验群体的特点为：①32只澳洲美利奴品种，28只德国肉 用美利奴品种，19只萨福克品种，16只特克塞尔品种，14只夏洛莱品种，36只东北细毛羊； ②均为母羊；⑨所有结果为=年内分析完成。其它与=相同。
【具体实施方式】 [0032] 六；本实施方式与=不同的是；步骤=中的关联分析 结果表明：对于卵巢上排卵点数量，各基因型群体间为BB>AB>AA;不同基因型对卵巢上 排卵数量存在显著的影响，其中，P<〇. 05 ;BB型群体绵羊胚胎受精率和优良胚胎率的均值 高于AA型和AB型群体，但差异不显著，其中，P〉0. 05 ;在移植妊娠率方面，WAB型群体均值 最高，但S种基因型间差异不显著，其中，P〉0. 05。其它与S相同。
【具体实施方式】 [0033] 走；本实施方式与S不同的是：步骤一中PCR扩增体 系为20y1，PCR反应体系如下；
[0034]
[0035]PCR扩增条件为；94°C预变性5min，94°C变性30s，59°C退火30s，72°C延伸30s，共 30个循环，再72°C延伸7min，4°C保温。
[0036] 其它与【具体实施方式】S相同。
【具体实施方式】 [0037] 八；本实施方式与=不同的是；步骤一中采用Sau3AI 限制性内切酶进行酶切的体系为10. 0y1，反应体系如下：
[00%]
[0039] 酶切反应条件为；37°C酶切12h。
[0040] 其它与【具体实施方式】S相同。
【具体实施方式】 [0041] 九；本实施方式与=不同的是；步骤一中采用Sau3AI 限制性内切酶对PCR产物进行酶切是指使用限制性内切酶Sau3AI对PCR产物的C-365T突 变位点进行酶切。其它与=相同。
[0042] 本
【发明内容】
不仅限于上述各实施方式的内容，其中一个或几个【具体实施方式】的组 合同样也可W实现发明的目的。
[0043] 下述实施例中所使用的实验方法如无特殊说明，均为常规方法。
[0044] 下述实施例中所用的材料、试剂等，如无特殊说明，均可从商业途径得到。
[0045] 实施例；
[0046] 1.提取绵羊基因组DNA
[0047] (1)剪取约6mg耳组织样放入一新离屯、管中，用眼科剪尽量剪碎，真空抽干机抽干 lOminW除去己醇，加入700y1组织DNA提取液，混匀。
[0048] (2)加入蛋白酶K至终浓度200 y g/ml，55°C消化过夜。
[0049] (3)加入等体积Tris-饱和酪，缓慢颠倒离屯、管lOmin，12000巧m离屯、lOmin。用 头端部分剪去0. 5cm的枪头小屯、将上清液移至另一干净离屯、管（如果所得溶液不清澈，可 重复此步骤一次）。
[0050](4)加入等体积的酪；氯仿（1:1)，缓慢颠倒离屯、管lOmin，12000巧m离屯、lOmin， 用头端部分剪去0. 5cm的枪头小屯、将上清液移至另一干净离屯、管。
[CK)5U(5)加入等体积的氯仿，缓慢颠倒离屯、管lOmin，1200化pm离屯、lOmin,用头端部分 剪去0. 5cm的枪头小屯、将上清液移至另一干净离屯、管。
[0化引 （6)加入两倍体积预冷的无水己醇，离屯、管颠倒混合均匀，600化pm离屯、5min。[0化3] (7)倒掉上清液，加入1ml70%己醇洗漆一次。
[0化4] (8)6000巧m离屯、5min，倒掉管中己醇，空气中惊干lOmin。
[005引 （9)加入适量TE溶解DNA。
[0化6] (10)0. 7%琼脂糖凝胶电泳初步检测浓度和纯度。-20°C保存待用。
[0化7] 2、建立PCR反应体系
[0化8]PCR扩增体系为20y1，PCR反应体系如下；
[0059]
[0060] 具体引物的核巧酸序列为；FSHRPF-AGCGAGAGAGACATCAGTGAC， FSHRPR-GCAGTGTGAAACATCATTAAGA〇
[0061] 1、建立PCR反应程序
[0062]
[0063]
[0064] PCR扩增所得产物利用3%的琼脂糖凝胶电泳进行检测，见图1，其中，M泳道为标 准分子量Marker, 1-10泳道为被检测的10个PCR产物。结果表明；产物与预期大小一致， 条带单一，无非特异性扩增杂带，扩增效率很高，可W用于下一步酶切分型。
[0065] 4、建立PCR-RFLP酶切体系采用Sau3AI限制性内切酶进行酶切的体系为10. 0y1， 反应体系如下：
[0066]
[0067] 酶切反应条件为；37°C酶切12h。
[0068]PCR扩增产物经Sau3AI限制性内切酶37°C酶切12h，利用3%的琼脂糖凝胶电泳 检测，结果产生3种基因型，见图2。其中，M泳道为标准