专利名称：阳离子化当归多糖纳米粒基因传递系统及其制法的制作方法
技术领域：
本发明 涉及当归多糖和涉及基因传递系统，具体涉及一种阳离子化当归多糖纳米粒基因传递系统。
背景技术：
基因治疗已打开了其在生物医药领域的广阔应用前景，可用于治疗遗传性疾病和后天性疾病如血友病、囊性纤维病、妇科疾病等[参见Jay Lozier. Gene therapy of the hemophilias. Seminars in Hematology, 2004, 41 (4) :287 296. Uta Griesenbach, A. Christopher Boyd. Pre—clinical and clinical endpoint assays for cystic fibrosis gene therapy. Journal of Cystic Fibrosis, 2005, 4 (2) :89^100. Memy H, Hassan, Essam E, Othman, Daniela Hornung, Ayman Al-Hendy. Gene therapy of benign gynecological diseases. Advanced Drug Delivery Reviews, 2009,61 (10)822^835.]。基因治疗技术的关键在于能够有效地将外源基因传递进细胞核并使其高效的表达[参见I· Yudovin-Farberj A. J. Domb. Cationic polysaccharides for gene delivery. Materials Science and Engineering: C，2007，27 (3) :595 598·]。目前，基因传递技术被分为三大类电穿孔、显微注射和载体介导的基因传递系统(gene delivery systems, GDS)[参见Patrick Wunderbaldingerj Alexei BogdanovJrj Ralph Weissleder. New approaches for imaging in gene therapy. European Journal of Radiology, 2000，34 (3) :156 165. Mari Dezawaj Masahiko Takanoj Hisanari Negishij Xiaofen Mo， Toshiyuki Oshitarij Hajime Sawada. Gene transfer into retinal ganglion cells by in vivo electroporation: a new approach. Micron, 2002， 33 (1) : 1 6· Yoichiroh Hosokawaj Seriya lguchi， Ryohel Yasukuni， Yuji Hirakij Chisa Shukunamij Hiroshi Masuhara. Gene delivery process in a single animal cell after femtosecond laser microinjection. Applied Surface Science, 2009, 255 (24) : 9880 9884.]，而后者已成为基因治疗技术的研究热点。常用的GDS包括病毒载体和非病毒载体两大类，虽然前者表现出较高的转染效率但其潜在的致瘤性、诱导宿主免疫反应、装载容量有限、代价高等局限性制约了其在基因治疗领域的广泛应用。而非病毒载体的安全、低毒、无免疫原性、特异性和装载容量大等特点已受到该技术领域广大研究者的青睐。常见的非病毒载体有阳离子聚合物和阳离子脂质体[参见=Maureen D. Brown, Andreas G. . Schatzleinj ljeoma F. Uchegbu. Gene delivery with synthetic (non viral) carriers. International Journal of Pharmaceutics, 2001, 229 (1 2) 广21.]。目前人们研究较多的阳离子聚合物是聚乙烯亚胺(polyethyleneimine，PEI), 精胺修饰的复合物，和乙二胺及其衍生物交联的复合物[参见St印hmie Werth, Beata Urban-Klein, Lige Daij Sabrina Hobelj Marius Grzelinskij Udo Bakowskyj Frank Czubaykoj Achim Aigner. A low molecular weight fraction of polyethylenimine(PEI) displays increased transfection efficiency of DNA and siRNA in fresh or lyophilized complexes. Journal of Controlled Release, 2006， 112 (2) : 257 270. Lane V. Christensenj Chien-Wen Chang, James W. Yockmanj Rafe Connersj Heidi Jackson, Zhiyuan Zhongj Jan Feijenj David A. Bull, Sung Wan Kim. Reducible poly(amido ethylenediamine) for hypoxia-inducible VEGF delivery. Journal of Controlled Release, 2007， 118 (2) : 254 261. Toshihiro Kushibikij Natsuki Nagata-Nakajima, Manabu Sugaij Akira Shimizuj Yasuhiko Tabata. Enhanced anti-fibrotic activity of ρlasmid DNA expressing small interference RNA for TGF- β type II receptor for a mouse model of obstructive nephropathy by cationized gelatin prepared from different amine compounds. Journal of Controlled Release, 2006，110 (3) :610 617.]等。PEI 具有较为广泛的分子量，从25KD 的大分子量支链PEI到400K的小分子量直链PEI都已成为众多学术者研究的热点[参见 Rui Deng, Yanan Yuej Fan Jinj Yangchao Chen, Hsiang-Fu Kungj Marie C. Μ. Linj Chi Wu. Revist the complexation of PEI and DNA - How to make low cytotoxic and highly efficient PEI gene transfection non-viral vectors with a controllable chain length and structure Journal of Controlled Release, 2009， 140 (1): 40 60. Stephanie Werthj Beata Urban-Klein, Lige Dai， Sabrina Hobelj Marius Grzelinskij Udo Bakowskyj Frank Czubaykoj Achim Aigner. A low molecular weight fraction of polyethylenimine (PEI) displays increased transfection efficiency of DNA and siRNA in fresh or lyophilized complexes. Journal of Controlled Release, 2006，112 (2) :257 270.]。通过化学修饰方法，使载体分子带上正电荷，通过静电作用与带有负电荷的DNA质粒络合，形成稳定的阳离子聚合物-质粒复合物，通过细胞内吞作用，将外源基因导入靶向细胞核参与遗传物质的复制和表达。随着基因传递技术的深入发展，阳离子多糖已逐渐成为非病毒载体基因传递系统的强有力竞争者。中药多糖天然、无毒、生物相容、生物可降解以及其易于修饰，便于优化理化性质等特点为其在基因治疗领域的发展提供了独特的优势[参见Igor A. Schepetkin, Mark Τ. Quinn. Botanical polysaccharides: Macrophage immunomodulation and therapeutic potential. International Immunopharmacology, 2006, 6 (3)
:317 333.]。当归多糖具有良好的药用疗效，其免疫调节、抗肿瘤、抗衰老、降血糖、 抗凝血等生物活性已受到医药界的广泛重视和关注。
发明内容
本发明从伞形科植物当归(Angelica sinensis)的根中提取出水溶性多糖，经分离纯化，以及胺化修饰得到三种带有正电荷的阳离子化当归多糖，通过静电作用，使其与带有负电荷的DNA质粒络合形成稳定的纳米粒复合物。电泳、电镜、干细胞粘附性以及干细胞转染实验表明，三种阳离子化当归多糖纳米粒基因传递系统均能安全、有效的将外源基因传递入细胞核参与靶向细胞的遗传物质复制与表达，小分子PEI修饰的阳离子化当归多糖效果最佳，具体工艺流程图参加图1。
本发明采用化学修饰的方法，提供了一种基于阳离子化当归多糖的安全、高效、便捷的新型基因传递系统。本发明的技术方案如下
一种阳离子化当归多糖纳米粒基因传递系统，它是一种用胺类化合物修饰的当归多糖结合DNA质粒的基因传递系统，当归多糖的分子量分布为3CT50KD和8(T100KD，其中按质量比计，阳离子化当 归多糖DNA质粒=广200:1，阳离子化当归多糖-DNA质粒纳米复合物的粒径为21-77nm，所述的胺类化合物为精胺、乙二胺或数均分子量为600Da-2000Da的聚乙烯亚胺。一种制备阳离子化当归多糖纳米粒基因传递系统的方法，它包括以下步骤 步骤1.阳离子化当归多糖的制备
A.聚乙烯亚胺修饰的阳离子化当归多糖的制备
取0.广Ig精制的当归多糖，溶于5 20ml磷酸盐缓冲液(pH=7);将活化羟基的连接剂溶解于5ml 二氯甲烷中，所述的活化羟基的连接剂可以是N，N’ -羰基二咪唑、苯并三唑碳酸酯、羰基咪唑、N，N’- 二琥珀酰亚胺基硫酸酯中的任一种，在氮气的保护下，首先在多糖液中加入催化剂三乙胺，再将活化羟基的连接剂的二氯甲烷溶液缓慢加入多糖溶液中，勻速搅拌，在2(Tl00min内加完，加完之后，室温反应9(Tl50min，获得活化的多糖溶液；将数均分子量为600Da-2000Da的聚乙烯亚胺(PEI)溶于l_20ml磷酸盐缓冲液中，多糖与聚乙烯亚胺的质量比为0. 5 4:1，加入催化剂三乙胺，在避光、氮气保护、室温条件下缓慢加入到活化的多糖溶液中，在9(Tl50min内加完，避光、室温下反应10h，整个反应在勻速搅拌下进行； 反应完成之后的溶液经透析(截取分子量>3500Da)、冻干之后，得到PEI修饰的当归多糖。B.精胺或乙二胺修饰的阳离子化的当归多糖的制备 (1)氧化当归多糖的制备
取0. 2 lg精制的当归多糖，溶解于2(Tl00ml双蒸水中，加入KI04，KIO4与多糖中单糖单位的摩尔比为0. 5 5:1，迅速放到暗室，磁力搅拌，室温反应72h ；反应液加入广20ml乙二醇终止反应，按前述条件继续反应30min ；将反应液装入透析袋(截取分子量>3500Da)， 在双蒸水中透析48h ；透析液冻干，得到氧化当归多糖0. Γ1. 5g。(2)精胺修饰的阳离子化当归多糖的制备
称取0. Γ0. 5g氧化当归多糖，溶解于l(T50ml双蒸水中；称取精胺溶解于5ml的硼酸盐缓冲液(pH=9)，精胺与氧化多糖的醛基的摩尔比为0. 5 5:1 ；将含有精胺的硼酸盐溶液缓慢加入到当归多糖溶液中，同时进行磁力搅拌；加完之后，磁力搅拌，室温反应24h ； 然后，向反应液中加入0. rig硼氢化钠，相同条件下继续反应48h ；再向反应液中加入 0. rig硼氢化钠，加入硼氢化钠的总质量与氧化多糖的质量之比为0.5 4:1，相同条件下继续反应24h ；将反应液装入透析袋(截取分子量>3500Da)，在双蒸水中透析48h ；透析液冻干，得到精胺修饰的阳离子化当归多糖0. Γ0. Sg。(3)乙二胺修饰的阳离子化当归多糖的制备
称取0. Γ0. 5g氧化当归多糖，溶解于l(T30ml双蒸水中；称乙二胺溶解于5ml的硼酸盐缓冲液(pH=9)，乙二胺与氧化多糖的醛基的摩尔比为0. 5^5:1 ；将含有乙二胺的硼酸盐溶液缓慢滴加入当归多糖溶液中，同时进行磁力搅拌；加完之后，磁力搅拌，室温反应24h ； 之后，向反应液中加入0. Γ1. Og硼氢化钠，相同条件下继续反应48h ；再向反应液中加入0. Γι. Og硼氢化钠，加入硼氢化钠的总质量与氧化多糖的质量之比为0.5 4:1，相同条件下继续反应24h ；将反应液装入透析袋(截取分子量>3500Da)，在双蒸水中透析48h ；透析液冻干，得到乙二胺修饰的阳离子化当归多糖0. Γ0. 7g。步骤3.分别配制浓度为0.0广10mg/ml的三种阳离子化当归多糖水溶液，取 1(Γ20μ 1阳离子当归多糖水溶液和1(Γ20μ 1含0. Γ2μδ DNA质粒溶液，分别在55°C加 热 3(T60min ；立即混合，涡旋l(T60s，即得到阳离子化当归多糖纳米粒基因传递系统。有益效果
1.当归多糖具有免疫调节、抗衰老和抗凝血等多种生物活性，与传统的病毒载体和其他非病毒载体基因传递系统相比，其安全、无免疫原性、生物可降解，制备工艺简单，经济、 简便。2.电泳实验和干细胞转染实验说明，三种阳离子化当归多糖均有良好的DNA质粒结合作用及基因传递表达作用。与糖链结合的伯、肿、叔胺基基团所带有的正电荷能够有效地与带有负电荷的DNA质粒通过静电作用结合，从而保护质粒免受细胞内外各种酶的降解。3.小分子PEI修饰的阳离子化当归多糖具有最佳的干细胞转染效果，电泳、电镜、 黏附性、转染实验说明其对干细胞有较强的增殖作用，并对DNA具有很好的包裹和释放效果，适宜的粒径分布易于被细胞吞噬，生物可降解，使外源基因更为有效的释放和参与靶向细胞的蛋白表达，无免疫原性、安全、高效等多重优势，为阳离子化当归多糖基因传递系统开拓了广泛的应用前景。
图1阳离子化当归多糖制备工艺流程图。图2阳离子化当归多糖-DNA纳米粒电泳图。图2A乙二胺-当归多糖-DNA质粒纳米粒电泳图，其中
孔道 1 裸 pTGFi3-l ；
孔道2 8 乙二胺-当归多糖pTGFi3-l质量比依次为2:1 ；5:1 ；10:1 ；30:1 ； 50:1 ； 70:1 ;100:1。图2B PEI-当归多糖-DNA质粒纳米粒电泳图，其中
孔道 Γ8 :PEI-当归多糖:pTGF^-l 质量比依次为1:1 ；5:1 ；10:1 ；20:1 ；30:1 ； 50:1 ；70:1 ；100:1。图2C精胺-当归多糖-DNA质粒纳米粒电泳图，其中
孔道 1 裸 pTGFi3-l ；
孔道2 8 精胺-当归多糖pTGFi3-l质量比依次为1:1 ;5:1 ；10:1 ；30:1 ；50:1 ； 70:1 ;100:1。图3阳离子化当归多糖-DNA纳米粒的透射电镜图。图4阳离子化当归多糖-DNA纳米粒的粒径分布图。图5阳离子化当归多糖-DNA纳米粒转染干细胞效果图。
具体实施例方式
以下实施例所采用的材料和仪器
实验材料当归(干燥根，镇江市芝林大药房)；95%乙醇(山东广源医药有限公司)；无水乙醇、丙酮、乙醚、乙二醇、三氯乙酸(国药集团化学试剂有限公司)；DEAE-52纤维素树脂 (Whatman 公司，英国);S印hadexG-100 凝胶树脂(Shanghai RiChu Bioscience 有限公司)； KIO4 (国药集团化学试剂有限公司);乙二胺(Sigma-Aldrich，美国);精胺(Biosharp公司， 美国)；PEI (Sigma-Aldrich,美国)；无内毒素质粒大提试剂盒(康为世纪)；Rat TGF-β 1 ELISA Kit (烟台赛尔斯生物技术有限公司)。实验器材磁力搅拌器(金坛大中仪器厂)；旋转蒸发仪(Heidolph公司，德国)；透析袋(Biosharp公司，美国);超低温高速离心机(Heareus，德国);CHRIST冷冻干燥干机(BMH 公司，德国)；H66025超声清洗机(无锡超声电子设备厂)；DY602S稳流稳压电泳仪(南京新校园生物技术研究所)；JEM-2100透射电子显微镜(日本电子)。精制的当归多糖的制备
取当归干燥根，粉碎，水提醇沉(按如下工艺热水浸提料液比1 :5 20，提取温度 6(T9(TC，提取时间2飞h/次，提取次数2次。合并两次提取液之后，旋转蒸发浓缩至原提取液体积的1/5-1/10，再将95%的乙醇加入到浓缩液中，至乙醇终浓度为65%-85%)，冷冻干燥，得当归粗多糖，三氯乙酸法去除蛋白，透析(截取分子量>3500Da)；依次使用DEAE-52 纤维素树脂(洗脱液双蒸水和0. 05、. 5mol/LNa0H)和S印hadexG-100葡聚糖凝胶树脂(洗脱液0. Imol/LNaCI)对其进行分离纯化，分离产物用凝胶色谱法测定分子量分布，得到数均分子量为3CT50KD和8(T100KD的两种具有生物学活性的当归多糖。实施例一
取0. 2g精制的当归多糖，溶于IOml磷酸盐缓冲液(pH=7)；将活化羟基的连接剂羰基咪唑0. 2g溶解于5ml 二氯甲烷中，在氮气的保护下，首先在多糖液中加入催化剂三乙胺 0. 05ml，再将羟基连接剂的二氯甲烷溶液缓慢加入多糖溶液中，勻速搅拌，在60min内加完，加完之后，室温反应120min，获得活化的多糖溶液；将3g小分子量PEI溶于IOml磷酸盐缓冲液中，加入催化剂三乙胺，在避光、氮气保护、室温条件下缓慢加入到活化的多糖溶液中，在120min内加完，避光、室温下反应10h，整个反应在勻速搅拌下进行；反应完成之后的溶液经透析(截取分子量>3500Da)、冻干，得到PEI修饰的阳离子化当归多糖。配制浓度为0. lmg/ml的PEI修饰的阳离子化当归多糖水溶液，取20 μ 1该溶液和 20 μ 1含2 μ g DNA质粒溶液，分别在55°C加热45min ；立即混合，涡旋45s，即得到PEI修饰的当归多糖-DNA质粒纳米复合物的基因传递系统。实施例二
取0. Sg精制的当归多糖，溶于20ml磷酸盐缓冲液(pH=7)；将活化羟基的连接剂N， N’-羰基二咪唑(Aldrich，美国)3g溶解于5ml 二氯甲烷中，在氮气的保护下，首先在多糖液中加入催化剂三乙胺0. 8ml，再将羟基连接剂的二氯甲烷溶液缓慢加入多糖溶液中，勻速搅拌，在45min内加完，加完之后，室温反应90min，获得活化的多糖溶液；将30g小分子量PEI溶于IOml磷酸盐缓冲液中，加入催化剂三乙胺，在避光、氮气保护、室温条件下缓慢加入到活化的多糖溶液中，在150min内加完，避光、室温下反应10h，整个反应在勻速搅拌下进行；反应完成之后的溶液经透析(截取分子量>3500Da)、冻干，得到PEI修饰的阳离子化当归多糖。
配制浓度为8mg/ml的PEI修饰的阳离子化当归多糖水溶液，取20 μ 1上述溶液和 20 μ 1含1 μ g DNA质粒溶液，分别在55°C加热30min ；立即混合，涡旋60s，即得到PEI修饰的当归多糖-DNA质粒纳米复合物的基因传递系统。按上述实施例二相同的步骤，但用苯并三唑碳酸酯(Aldrich，美国)或N，N’-二琥珀酰亚胺基硫酸酯(Aldrich，美国)替代N，N’ -羰基二咪唑得到的结果与上述结果相同。实施例三
取0. 3g精制的当归多糖，溶解于20ml双蒸水中，加入0. 4g KIO4,迅速放到暗室，磁力搅拌，室温反应72h ；反应液加入2ml乙二醇终止反应，按前述条件继续反应30min ；将反应液装入透析袋(截取分子量>3500Da)，在双蒸水中透析48h ；透析液冻干，得到氧化当归多糖。取0. 2g氧化当归多糖，溶解于20ml双蒸水中；称0. 4g精胺溶解于5ml的硼酸盐缓冲液(pH=9)；将含有精胺的硼酸盐溶液缓慢加入到当归多糖溶液中，同时进行磁力搅拌；加完之后，磁力搅拌，室温反应24h ；之后，向反应液中加入0. 3g硼氢化钠，相同条件下继续反应48h ；再向反应液中加入0. 3g硼氢化钠，相同条件下继续反应24h ；收集反应液于双蒸水中透析48h (截取分子量>3500Da)；冷冻干燥，得到精胺修饰的阳离子化当归多糖。配制浓度为5mg/ml的精胺修饰的阳离子化当归多糖水溶液，取20 μ 1该溶液和 20 μ 1含1 μ g DNA质粒溶液，分别在55°C加热30min ；立即混合，涡旋40s，即得到精胺修饰的当归多糖-DNA质粒纳米复合物的基因传递系统。实施例四
取0.9g精制的当归多糖，溶解于50ml双蒸水中，加入l.Og KIO4,迅速放到暗室，磁力搅拌，室温反应72h ；反应液加入IOml乙二醇终止反应，按前述条件继续反应30min ；将反应液装入透析袋，在双蒸水中透析48h (截取分子量>3500Da)；透析液冻干，得到氧化当归多糖。取0. 5g氧化当归多糖，溶解于20ml双蒸水中；称0. 7g精胺溶解于5ml的硼酸盐缓冲液(pH=9)；将含有精胺的硼酸盐溶液缓慢加入到当归多糖溶液中，同时进行磁力搅拌；加完之后，磁力搅拌，室温反应24h ；之后，向反应液中加入0. 4g硼氢化钠，相同条件下继续反应48h ；再向反应液中加入0. 4g硼氢化钠，相同条件下继续反应24h ；收集反应液于双蒸水中透析48h (截取分子量>3500Da)；冷冻干燥，得到精胺修饰的阳离子化当归多糖。配制浓度为lmg/ml的精胺修饰的阳离子化当归多糖水溶液，取20 μ 1该溶液和 20 μ 1含1 μ g DNA质粒溶液，分别在55°C加热30min ；立即混合，涡旋20s，即得到精胺修饰的当归多糖-DNA质粒纳米复合物的基因传递系统。实施例五
取0. 2g精制的当归多糖，溶解于20ml双蒸水中，加入0. 3g KIO4,迅速放到暗室，磁力搅拌，室温反应72h ；反应液加入4ml乙二醇终止反应，按前述条件继续反应30min ；收集反应液于双蒸水中透析48h (截取分子量>3500Da)；冷冻干燥，得到氧化当归多糖。取0. Ig氧化当归多糖，溶解于IOml双蒸水中；称0. 12ml乙二胺溶解于5ml的硼酸盐缓冲液(pH=9)；将含有乙二胺的硼酸盐溶液缓慢滴加入当归多糖溶液中，同时进行磁力搅拌；加完之后，磁力搅拌，室温反应24h ；之后，向反应液中加入0. Ig硼氢化钠，相同条件下继续反应48h ；再向反应液中加入0. Ig硼氢化钠，相同条件下继续反应24h ；收集反应液于双蒸水中透析48h (截取分子量>3500Da)，冷冻干燥，得到乙二胺修饰的阳离子化当归
多糖。 配制浓度为2mg/ml的乙二胺修饰的阳离子化当归多糖水溶液，取20 μ 1该溶液和 20 μ 1含1 μ g DNA质粒溶液，分别在55°C加热30min ；立即混合，涡旋20s，即得到乙二胺修饰的当归多糖-DNA质粒纳米复合物的基因传递系统。实施例六
取0. 8g精制的当归多糖，溶解于50ml双蒸水中，加入2. 5g KIO4,迅速放到暗室，磁力搅拌，室温反应72h ；反应液加入IOml乙二醇终止反应，按前述条件继续反应30min ；收集反应液于双蒸水中透析48h (截取分子量>3500Da)；冷冻干燥，得到氧化当归多糖。取0. 5g氧化当归多糖，溶解于20ml双蒸水中；称2ml乙二胺溶解于5ml的硼酸盐缓冲液(pH=9)；将含有乙二胺的硼酸盐溶液缓慢滴加入当归多糖溶液中，同时进行磁力搅拌；加完之后，磁力搅拌，室温反应24h ；之后，向反应液中加入0. 7g硼氢化钠，相同条件下继续反应48h ；再向反应液中加入0. 7g硼氢化钠，相同条件下继续反应24h ；收集反应液于双蒸水中透析48h (截取分子量>3500Da)，冷冻干燥，得到乙二胺修饰的阳离子化当归多糖。配制浓度为5mg/ml的乙二胺修饰的阳离子化当归多糖水溶液，取20 μ 1上述溶液禾口 20 μ 1含1 μ g DNA质粒溶液，分别在55°C加热60min ；立即混合，涡旋45s，即得到乙二胺修饰的当归多糖-DNA质粒纳米复合物的基因传递系统。实施例七
1.制备1%琼脂糖凝胶，加入0. 5 μ g/ml溴化乙啶，铺板，加样，在80V电泳1. 5h后采
用凝胶成像系统观察结果。结果显示阳离子化当归多糖能够稳定的滞留DNA质粒，有效的结合质粒。琼脂糖DNA电泳步骤
步骤1.制备1%琼脂糖凝胶称取0. 4g琼脂糖置于锥形瓶中，加入40ml 0. 5 X TBE, 瓶口倒扣小烧杯。微波炉加热煮沸3次至琼脂糖全部融化，摇勻，即得到1. 0%琼脂糖凝胶液。步骤2.胶板制备将电泳槽内的有机玻璃内槽和制胶槽洗干净，晾干，放入制胶玻璃板，将内槽放入卡槽内，并在固定位置放好梳子。待琼脂糖凝胶溶液冷却到65°C左右， 向其中加0. 5μ g/ml溴化乙锭，混勻，小心地倒入有机玻璃内槽，是凝胶液缓慢展开，直到整个玻璃板表面形成均勻胶层。室温下，静置直至凝胶完全凝固，垂直轻拔梳子，取下胶带， 将凝胶及内槽放入电泳槽中。步骤3.加样在点样板上混合DNA复合物样品和上样缓冲液，用10 μ 1微量移液器分别将样品加入胶板的样品小槽内。步骤4.电泳加样后的凝胶板立即通电进行电泳，电压70-100V，样品由正极(红色)向负极(黑色)方向移动。当溴酚蓝移动到距离胶板前沿约Icm处时，停止电泳。步骤5.电泳完毕后，取出凝胶，清水漂洗lOmin。步骤6.观察照相在紫外灯下观察，DNA存在则显示出橙红色荧光条带，采用凝胶成像系统拍照保存。可见阳离子化当归多糖对DNA质粒具有明显的结合包裹作用。实施 例八
以TGFii-I质粒为报告基因，按照实施例一、二、三所述制备三种阳离子化当归多糖-DNA质粒纳米粒基因传递系统。96孔板中培养SD大鼠骨髓间充质干细胞，细胞浓度达到2 X 105/ml完全培养基/ ？L，孵育24-48h后，用无血清培养基置换原培养基，分别加入三种阳离子化当归多糖-DNA质粒纳米复合物、脂质体Lipofectamine 2000-DNA质粒复合物、游离质粒，使每孔质粒DNA量均为0.2yg，并以空白细胞为阴性对照，孵育4h后，将无血清培养基置换成新鲜的含血清培养基，继续孵育72h，Rat TGF-β 1 ELISA Kit检测转染效果。结果显示，游离质粒孔TGF-β 1表达水平最低，精胺及乙二胺修饰的当归多糖-DNA纳米复合物孔TGF- β 1表达效果显著高于游离质粒孔并与Lipofectamine 2000-DNA质粒复合物的表达水平相近，而小分子PEI修饰的阳离子化当归多糖-DNA质粒纳米复合物转染效率最高，TGF-β 1的表达水平明显高于Lipofectamine 2000-DNA质粒复合物的表达水平。 实施例一和二所得PEI-当归多糖-DNA复合物纳米基因传递系统的转染效率最高，实施例三和四所得的精胺-当归多糖-DNA复合物纳米基因传递系统的转染效率居中，实施例五和六所得的乙二胺_当归多糖-DNA复合物纳米基因传递系统的转染效率较低。由此可见，小分子PEI修饰的阳离子当归多糖是上述基因传递载体的最佳选择。细胞转染实验步骤
步骤1.干细胞分离及培养将SD大鼠拉颈处死，体积分数为75%的乙醇浸泡3-5min， 无菌条件下取出胫骨和股骨；将其两端干骺端切除，露出骨髓腔，用无菌注射器吸取适量 PBS彻底冲洗骨髓腔；反复吹打冲出骨髓；使骨髓细胞充分分散；所获得的骨髓单细胞悬液沿管壁缓慢滴加于预置的Percoll分离液(相对体积质量1. 073)的离心管中，骨髓单细胞悬液与分离液的体积比为1 :1 ；2000rpm，离心20min，吸取中间云雾状细胞层，用PBS洗涤3 次；用完全培养基(含体积分数为10%胎牛血清的DMEM)重悬细胞，置于培养瓶中，于37°C 含有体积分数为5%的C02培养箱中培养。步骤2.细胞转染
取乙二胺修饰的阳离子当归多糖-DNA复合物(质粒含量为0. 2 μ g/孔)分别加至96孔板中(2X105/ml完全培养基/孔)并轻轻摇晃使其均勻混合；放置37°C，5%C02培养箱孵育 72h，以 Lipofectamine 2000-DNA 质粒复合物作为阳性对照，Rat TGF- β 1 ELISA Kit 检测转染效果。取精胺修饰的阳离子当归多糖-DNA复合物(质粒含量为0. 2 μ g/孔)分别加至96 孔板中(2X105/ml完全培养基/孔)并轻轻摇晃使其均勻混合；放置37°C，5%C02培养箱孵育 72h，以 Lipofectamine 2000-DNA 质粒复合物作为阳性对照，Rat TGF-β 1 ELISA Kit 检测转染效果。取小分子量PEI修饰的阳离子当归多糖-DNA复合物(质粒含量为0. 2μ g/孔)分别加至96孔板中(2XlO5Ail完全培养基/孔)并轻轻摇晃使其均勻混合；放置37°C，5%C02培养箱孵育72h，以Lipofectamine 2000-DNA质粒复合物作为阳性对照，Rat TGF- β 1 ELISA Kit检测转染效果。
权利要求
1.一种阳离子化当归多糖纳米粒基因传递系统，其特征是它是一种用胺类化合物修饰的当归多糖结合DNA质粒的基因传递系统，当归多糖的分子量分布为3(T50KD和 8(T100KD，其中按质量比计，阳离子化当归多糖DNA质粒=广200:1，阳离子化当归多糖-DNA质粒纳米复合物的粒径为21-77nm，所述的胺类化合物为精胺、乙二胺或数均分子量为600Da-2000Da的聚乙烯亚胺。
2.一种制备权利要求1所述的阳离子化当归多糖纳米粒基因传递系统的方法，其特征是它包括以下步骤步骤1.阳离子化当归多糖的制备A.聚乙烯亚胺修饰的阳离子化当归多糖的制备取0.广Ig精制的当归多糖，溶于5 20ml磷酸盐缓冲液(pH=7);将活化羟基的连接剂溶解于5ml 二氯甲烷中，所述的活化羟基的连接剂可以是N，N’ -羰基二咪唑、苯并三唑碳酸酯、羰基咪唑、N，N’- 二琥珀酰亚胺基硫酸酯中的任一种，在氮气的保护下，首先在多糖液中加入催化剂三乙胺，再将活化羟基的连接剂的二氯甲烷溶液缓慢加入多糖溶液中，勻速搅拌，在2(Tl00min内加完，加完之后，室温反应9(Tl50min，获得活化的多糖溶液；将数均分子量为600Da-2000Da的聚乙烯亚胺(PEI)溶于l_20ml磷酸盐缓冲液中，多糖与聚乙烯亚胺的质量比为0. 5 4:1，加入催化剂三乙胺，在避光、氮气保护、室温条件下缓慢加入到活化的多糖溶液中，在9(Tl50min内加完，避光、室温下反应10h，整个反应在勻速搅拌下进行； 反应完成之后的溶液经透析(截取分子量>3500Da)、冻干之后，得到PEI修饰的当归多糖；B.精胺或乙二胺修饰的阳离子化的当归多糖的制备(1)氧化当归多糖的制备取0. 2^1g精制的当归多糖，溶解于2(Tl00ml双蒸水中，加入KI04，KIO4与多糖中单糖单位的摩尔比为0. 5 5:1，迅速放到暗室，磁力搅拌，室温反应72h ；反应液加入广20ml乙二醇终止反应，按前述条件继续反应30min ；将反应液装入透析袋(截取分子量>3500Da)， 在双蒸水中透析48h ；透析液冻干，得到氧化当归多糖0. Γ1. 5g ；(2)精胺修饰的阳离子化当归多糖的制备称取0.广0.5g氧化当归多糖，溶解于l(T50ml双蒸水中；称取精胺溶解于5ml的硼酸盐缓冲液(pH=9)，精胺与氧化多糖的醛基的摩尔比为0. 5 5:1 ；将含有精胺的硼酸盐溶液缓慢加入到当归多糖溶液中，同时进行磁力搅拌；加完之后，磁力搅拌，室温反应Mh ； 然后，向反应液中加入0. rig硼氢化钠，相同条件下继续反应48h ；再向反应液中加入 0. rig硼氢化钠，加入硼氢化钠的总质量与氧化多糖的质量之比为0. 5 4:1，相同条件下继续反应Mh ；将反应液装入透析袋(截取分子量>3500Da)，在双蒸水中透析48h ；透析液冻干，得到精胺修饰的阳离子化当归多糖0. Γ0. 8g ；(3)乙二胺修饰的阳离子化当归多糖的制备称取0. Γ0. 5g氧化当归多糖，溶解于l(T30ml双蒸水中；称乙二胺溶解于5ml的硼酸盐缓冲液(pH=9)，乙二胺与氧化多糖的醛基的摩尔比为0. 5^5:1 ；将含有乙二胺的硼酸盐溶液缓慢滴加入当归多糖溶液中，同时进行磁力搅拌；加完之后，磁力搅拌，室温反应24h ； 之后，向反应液中加入0. Γ1. Og硼氢化钠，相同条件下继续反应48h ；再向反应液中加入 0. Γ1. Og硼氢化钠，加入硼氢化钠的总质量与氧化多糖的质量之比为0.5 4:1，相同条件下继续反应Mh ；将反应液装入透析袋(截取分子量>3500Da)，在双蒸水中透析48h ；透析液冻干，得到乙二胺修饰的阳离子化当归多糖0. Γ0. 7g ；步骤3.分别配制浓度为0. OriOmg/ml的三种阳离子化当归多糖水溶液，取10~20 μ 1 阳离子当归多糖水溶液和10 20μ 1含0.广2yg DNA质粒溶液，分别在55 °C加热 3(T60min ；立即混合，涡旋l(T60s，即得到阳离子化当归多糖纳米粒基因传递系统。
全文摘要
一种阳离子化当归多糖纳米粒基因传递系统，它是一种用胺类化合物修饰的当归多糖结合DNA质粒的基因传递系统，当归多糖的分子量分布为30~50KD和80~100KD，其中按质量比计，阳离子化当归多糖:DNA质粒=1~200:1，阳离子化当归多糖-DNA质粒纳米复合物的粒径为21-77nm。本发明的特点是1.当归多糖具有免疫调节、抗衰老和抗凝血等多种生物活性，安全、无免疫原性、生物可降解，制备工艺简单，经济、简便。2.三种阳离子化当归多糖均有良好的DNA质粒结合作用及基因传递表达作用。与糖链结合的伯、仲、叔胺基所带有的正电荷能够有效地与带有负电荷的DNA质粒通过静电作用结合，从而保护质粒免受细胞内外各种酶的降解。
文档编号B82Y5/00GK102154351SQ20101061360
公开日2011年8月17日 申请日期2010年12月30日 优先权日2010年12月30日
发明者余江南, 徐希明, 曹霞, 王淼, 邓纹纹 申请人:江苏大学