提高造血干细胞植入的方法和组合物的制作方法

专利名称：提高造血干细胞植入的方法和组合物的制作方法
提高造血干细胞植入的方法和组合物
1. 相关应用的交叉文献本申请要求根据35 U.S.C.S119(e)在2006年2月14日 提交的U. S.S.N. 60/773， 405，所以在此全文引用作为参考。
2. 发明领域本发明涉及提高干细胞治疗的方法和组合物，而且尤其是 有助亚优化剂量(suboptimal doses)造血干细胞植入的方法和组合 物。
3.
背景技术：
造血干细胞移植 (Hematopoietic stem cell transplantation, HSCT )是众多造血障碍疗法的重要组成部分。 一般 来讲，有两种HSCT:自体移植和同种异体移植。自体移植涉及清髓治 疗后受体自身细胞的注入。自体细胞移植可最小化移植物抗宿主 (Graft versus host disease, GVHD)疾病的风险并减少并发症。 同种异体移植涉及供体干细胞的注入，典型的是使用与受体MHC相配 的供体。但是，相配非相关供体(Matched unrelated donor, MUD)移 植也有很强的移植物抗宿主反应，因而导致较高的死亡率。造血千细胞(HSC)有三种主要来源骨髓，外周血及脐带 血。脐带血(Umbilical cord blood, UCB )是其他造血始源(也即骨 髓和动员后的外周血)的实用替代来源，可用于相关及非相关异体造 血千细胞移植。然而不幸的是，虽然脐带血容易获得，并展示了较低 的移植物对抗宿主疾病的发病率，但是它有延时植入的特性。
相应地，尽管从脐带血中获取HSC用以治疗造血障碍有广 大前景，但造血功能恢复緩慢仍然是一个主要问题。Laughlin等人， f/^. /. 351: 22; 2265-2275 (2004)。 低温储藏的有核细
胞(Nucleated cell, NC )剂量是决定嗜中性粒细胞恢复的主要因素， 较高的CD34+细胞量与非相关供体脐带血UCB移植中增高的存活率相 关。Laughlin等人。注入的细胞量少于1. 8 x 107个NC/kg或少于1. 7 x 105个CD34+细胞/kg受体重量的UCB成人受体移植， 一般移植较差 存活率较低。Wagner等人，"/ood 100; 51 1611-1618。当有核细胞 量低于1. 5 x 107kg时，尤为糟糕的结果曾发生在UCB移植中。Grewal 等人""od， 101; 11; 4233-4244。人白细胞抗^f、 (Human leukocyte antigen, HLA)错酉己7JC 平和HSCT存活率之间的关系已经被很好的建立。例如，当移植物至少 有1. 7 x 105个CD34+细胞/kg时，不超过两个相异HLA的UCB移植受 体有较高的存活率。Wagner等人。因此，含较高细胞量的UCB移植物是成人患者优化移植的 必须物这一事实已得到公认。Rocha等人建议一单位的脐带血冷冻时 应至少含有2. 0 x 10'个有核细胞/kg,并且在与受体HLA、 B或DRB1 相配性上(单一或混合)，相异体不应多于两个。Rocha等人，见 /. 351: 22; 2276-2285 (2004)。然而可接受的最小UCB移植
物细胞注入剂量仍未统一，有人提出最小可接受剂量约为1.5xl(T有 核细胞/kg至约1. 7 x 105 kg CD34+细胞。Grewal等人，Wagner等人。不论任何情况下，即使UCG细胞量等于或高于上述剂量， 其移植效率仍明显低于从骨髓或周边血而得的HSC移植。Rocha等人， p. 2281和图A。此外，即使只有一个错配，移植效果也会变得更糟。 Gluckflian等人，^r/ . #ei WoL 32: 397-407 (2004)。因此，人们仍极 为关注提高从UCB所获HSC的移植以及提高干细胞移植效率。4. 发明概述本公开内容描述了用于提高干细胞移植的方法、组合物和 试剂盒。尤其是提供了辅助造血干细胞(HSC)移植的方法，包括对移 植患者施用HSC移植物时联合使用髓系祖细胞(Myeloid progenitor cell, MP)移植物。该MP移植物可以是该HSC移植物和/或该患者的 自体或异体物质，并且可以进一步包括异体MP细胞的混合体。在优选 实施方案中，施用前会对MP细胞进行体外扩增。如此处所述，MP联合HSC的使用能极大地提高HSC移植， 尤其是在患者所受HSC为亚优化剂量的情况下。因此， 一方面本发明 提供了提高亚优化HSC移植的方法，包括对患者联合施用HSC移植物 和MP移植物。 一般来讲，优化的HSC移植剂量是指有核细胞(NC)和/ 或CD34+细胞在HSC移植物中的有效数量，以及/或者患者和HSC移植 物MHC的错配程度。—方面为获得成功的干细胞移植，优化的HSC移植物需达 到一临界细胞/患者kg量。优化的造血干细胞移植物一般包含至少约 1. 0 x 106个CD34+细胞每kg/患者、至少约2. 0 x 106个CD34+细胞每 kg/患者、优选的至少约3.0 x 106个CD34+细胞每kg/患者、更优选 的至少约4. 0 x 106个CD34+细胞每kg/患者以及最优选的高于5. 0 x 106个CD34+细胞每kg/患者。因此， 一方面来讲本发明使用MP移植物联合亚优化HSC 移植物的方法，该亚优化状态一般包含小于约5. 0 x 106 CD34+细胞每 kg/患者，更具体来讲小于约4.0 x 106 CD34+细胞每kg/患者、优选 小于约3. 0 x 106 CD34+细胞每kg/患者、更优选小于约2. 0 x 106 CD34+ 细胞每kg/患者或最优选小于约1. 0 x 10' CD34+细胞每kg/患者。
在某些实施方案中，从骨髓或周边血中获得亚优化移植物。 在一个实施方案中，注入的亚优化移植物包括少于约5 x 108个有核 细胞/kg患者、更优选的少于4. 5或4. 0 x 1()8个有核细胞/kg患者以 及最优选的少于约4. 1 x 1()8个有核细胞/kg患者。另一替代实施方案 中，注入的亚优化移植物可包括少于约6 x 1(T个CD34+细胞/kg患者、 更优选的少于约4. 5至5.5 x 106个CD34+细胞/kg患者/kg以及最优 选的少于约5. 0 x 106个CD34+细胞/kg患者。在某些实施方案中，从脐带血中获得亚优化移植物。在一 个实施方案中，亚优化移植物包括从少于两单位脐带血中衍生的HSC， 更优选的是只从一单位脐带血中获取。在另一例实施方案中，注入的 亚优化移植物包括少于约4 x 10'个有核细胞/kg患者、更优选的少于 约3. 0 x 1()7个有核细胞/kg患者以及最优选的少于约3.5 x 107个有 核细胞/kg患者。在另一替代实施方案中，亚优化移植物可包括少于 约5 x 105个CD34+细胞/kg患者、更优选的少于约3. 5至4. 5 x 105 个CD34+细胞/kg患者/kg以及最优选的少于约4. 0 x 105个CD3f细胞 /kg患者。另一方面，亚优化移植物包括与患者表型相比多于一个 MHC错配的HSC。本发明还提供了用于提高干细胞移植的组合物。 一方面， 该组合物包括造血千细胞和髓系祖细胞自体或异体混合物。在一个实 施方案中，该MP细胞在与HSC结合前被扩增。同时根据实验方法提供 试剂盒用以分离、扩增、保存和施用MP和HSC。
5. 附图简述技术人员会理解附图只是用于说明目的，而不是在任何方 面对本发明范围进行限制。
图l表示从C57B6/Ka(Thy-1.1， CD45. 2)中收集KTLS HSC 的分类门(Sortgate)。图3表示同源移植模型的存活数据。图4表示同种异体(相匹配的非相关供体)移植模型的存 活数据。图5表示同种异体(完全错配的)移植模型的存活数据。图6概述三种移植模型(同源、相匹配的非相关供体和错 配异体)的存活及嵌合数据。图7表示实施例3中用于纯化KTLS C57B6/Ka (Thy-l. 1、 CD45. 1、 H2b)HSC的分选。图8表示AKR(Thy-l. 1、 CD45. 2、 H2k)培育衍生的MP的 分析数据。图9表示移植模型的存活数据，相匹配的非相关供体KTLS HSC和完全错配的同种异体培育衍生的MP被共同移植入此模型。图IO表示移植模型的存活数据，MHC相匹配的非相关供体 HSC和从2 MHC错配供体衍生的MPC被共同移植入此模型。
6. 发明详述 6. 1定义参照本发明公开内容，除非特殊定义，本文叙述所用科技 术语均为本领域技术人员普遍理解的含义。因此，以下术语有如下含 义"同种异体的(Allogeneic)"指衍生于、起源于相同物 种或是为相同物种的成员，此处所说成员为遗传相关或遗传不相关但 相似。"异体移植"指从供体向受体转移细胞或器官，此处受体和供 体为同一物种。"自体的(Autologous)"指衍生或起源于相同目标物或患者。"自体移植"指目标物自身细胞或器官的收集和再移植。"常见髄系祖细胞"或"髓系祖细胞，，或"MP"指能最终 发育成任何一种髓系终端分化细胞的多能或单能祖细胞，但该细胞一 般不会分化成淋巴系细胞。因此，"髄系祖细胞"指髓系的任何祖细 胞。如此处所定义的，髓系常见祖细胞包括寡能干细胞CMP、 GMP和 MEP，也包括单能红系祖细胞、巨核祖细胞、粒系祖细胞和巨嗜祖细 胞。髓系祖细胞的分化细胞群不同于其他细胞的是它们的分化潜能和 一套特征性的细胞标记。"常见髓系祖细胞(Common myeloid progenitor cell)，， 或"CMP，，有能生成津立/单核4且细胞(Granulocyte/monocyte progenitor cell, GMP)以及巨核/红系祖细胞的细胞(Megakaryocyte/erythroid progenitor cell, MEP)的特性。该祖细胞有有限的或不具备自我更 新能力，但能生成髓系树突状细胞、髓系红细胞、红细胞、巨核细胞、 粒细胞/巨嚆细胞、粒细胞和巨噬细胞。"同类系(Congenic)"指衍生或起源于相同物种，或是 为相同物种的成员，此处所说的成员除一小部分遗传区域外(一般为 单遗传位点，即单一基因)有相同的遗传学特性。"同类系移植"指 将细胞或器官从供体转移到受体，此处受体与供体除单遗传位点外有 相同的遗传学特性。文中所述细胞"扩增，，或"扩增的，，指从初始细胞群增加 特定细胞型(们)的数量，此处的细胞群可以或不需为单一性的。用 于扩增的初始细胞不必与所得扩增细胞相同。例如，被扩增的细胞可 以经由初始细胞群间接体内或体外生长分化而的。本术语不包括用于 鉴定细胞分化潜能的有限稀释分析法。
文中所述细胞"功能的，，指能运作的细胞或是保有特殊细 胞型相关常规功能或活性的细胞，该功能可用定义的功能分析法(们) 鉴定。例如，"有功能的GMP细胞"指能最终分化为粒细胞和巨噬细 胞的祖细胞，此处所指终端分化的细胞有正常的粒细胞和巨噬细胞的 功能。"移植物对抗宿主反应"或"GVH"或"G濯"指当不同的 MHC类淋巴细胞被引入宿主时，引起的淋巴细胞对抗宿主的细胞学反应。"粒细胞/巨噬细胞祖细胞"或"GMP"指一种细胞，该细 胞衍生于常见髓系祖细胞、有能生成粒细胞和巨噬细胞的特性，但是 一般不能生成红系髓系细胞或巨核髓系细胞。"分离的，，指从至少另一种产物、化合物或组合物中分离 出的产物、化合物或组合物，不论是自然产生或合成而的，所得产物、 化合物或组合物为其自然态。"造血干细胞"或"HSC，，为克隆性的、能自我更新的多能 细胞，该细胞能最终分化成造血体系所有的细胞型，包括B细胞T细 胞、NK细胞、淋巴树突细胞、髓系树突细胞、粒细胞、巨噬细胞、巨 核细胞和红细胞。与造血系统其他细胞相同，HSC也有一套特定的细 胞标记来区别鉴定。"标记表型，，指细胞上决定其表型(例如分化状态和/或细 胞型)的特征性标记和抗原。这可用免疫表型来鉴定，即用抗体来识 别细胞表面抗原。抗体可为单克隆或多克隆抗体，但一般选用与其他 细胞标记交叉反应最小的抗体。众所周知特定细胞分化或细胞表面标 记对于待生出该细胞的动物物种是独特的，然而其他细胞标记可能常见于不同物种中。尽管物种结构不同(例如氨基酸序列)，定义物种 间等效细胞型的标记为相同的识别标记。细胞标记包括细胞表面分子
(特定情况也称为细胞分化(Cell differentiation, CD)标记)和 基因表达标记。基因表达标记是用于指示细胞型或分化状态的表达基 因。部分地，尽管基因表达镨可能包括非细胞表面分子，它们反映了 细胞表面4示i己。"错配的同种异体的"指衍生或起源于相同物种或为相同 物种的成员，该物种有非相同的主要组织复合物(Major histo函patability complex, MHC )抗原(即蛋白质)，该抗原一 般是用本领域标准分析法鉴定的(例如定义多种MHC抗原的血清学和 分子学分析)。"部分错配"指所测成员间(一般指供体和受体间) MHC抗原型部分相配。例如，"半数错配"指两成员间所测MHC抗原 有50%的不同。"全部，，或"完全"错配指两成员间所测MHC抗原全 部不同。"清髓性的(Myeloablative)，，或"清髓"指损坏或摧毁 造血系统， 一般用细胞毒试剂或辐射疗法进行。清髓包括完全清髓， 指用高剂量细胞毒试剂或全身辐射来摧毁造血系统。清髓也包括用非 清髓性条件造成的不完全清髓状态。因此，非清髓性条件指不完全摧 毁患者造血系统的疗法。"自我更新"指细胞能分裂生成至少一个与母细胞有相同 特性(例如，自我更新)子细胞的能力。第二个子细胞可能形成特姝的分化途径。例如，自我更新造血干细胞分裂形成一个子干细胞和另 一个向髓系或淋巴系分化的子细胞。常见祖细胞一般会失去自我更新 能力，而细胞分裂产生两个子细胞，它们表现出更为分化的(即限制 性的)表型。细胞"分选"指基于物理特性或所含标记进行的细胞分离 (如用测向散射(Side scatter, SSC)和前向散射(Forward scatter, FSC)分选或用标记的抗体进行荧光激活细胞分类(Fluorescence activation cell sorting, FACS ))，或是基于所含细胞标记进行 的细胞分析，例如不分选的FACS。"超纯细胞群，，指有特殊细胞标记特征和分化潜能的细胞 群，至少约50%、优选至少约75-80%、更优选至少约85-90%、以及最 优选至少约95%的细胞组成总细胞群。因此，"超纯细胞群"指在所 设计的分析条件下，没有特殊细胞标记特征和分化潜能的细胞占细胞 群的比例少于约50°/。、优选少于约20-25°/。、更优选少于约10-15%、以 及最优选少于约5%。"目标物"或"患者，，可相互替换，除特别说明外， 一般
指哺乳动物例如人类和非人灵长类动物，也可指兔子、大鼠、小鼠、 山羊、猪和其他哺乳类物种。"同源的(Syngeneic)，，指衍生或起源于相同物种，或为 相同物种的成员，此处相同物种指遗传相同，尤其是指抗原或免疫反 应相同。包括有相配MHC型的同卵双胞胎。因此"同源移植"指从供 体转移细胞或器官到受体，该受体与供体遗传相同。"异种的(Xenogeneic)"指衍生或起源于不同物种，或 为不同物种的成员，例如人类和啮齿类、人和猪、人和黑猩猩等。"异种移植，，指从供体转移细胞或器官到受体，该受体与供体属于不同物种。
6.2提高造血干细胞移植物的移植本发明公开内容描述了辅助干细胞移植的方法、组合物和 试剂盒。 一方面，本文提供了提高所需患者HSC移植的方法，包括施 用(MP)细胞。如本文首次说明，MP细胞提高多种HSC移植，因此提 高了接受HSC移植的患者生存率，尤其是在细胞计数及/或HLA错配为 亚优化情况下的HSC移植。造血干细胞为多能干细胞，能自我更新并且具有在许可条 件下生成造血系统所有细胞型的特性。HSC自我更新指HSC细胞分裂 产生至少一个与HSC —样具有自我更新和分化潜能的子细胞的能力； 也即，细胞分裂产生额外的HSC。自我更新为造血系统补给提供了连 续的非分化干细胞来源。用于鉴定HSC的标记表型为在本领域常见表 型。对于人类HSC，细胞标记表型优选为CD34+CD38—CD90(Thyl)+Lin—。 对于小鼠HSC，细胞标i己表型例证为Sca-l+CD90+(见例证，Spangrude， G. J.等人，Sc/e/ ce 1: 661-673 (1988))或c-kit+Thy'。Lin—Sca-r(见， Uchida， N,等人，/. //jyeW. 101 (5): 961-966 (1998))。替代
HSC才示i己:i口乙搭脱氛酵(见Storms等人，尸roc. A"at， / Sc/. 96:9118-23 (1999)、 AC133 (见Yin等人，Woc^ 90: 5002-12 (1997) 和CD150(SLAM)(见Kiel Ce// 2005， 121(7) 1109-21)有时也可便 利使用。 HSC生成常见淋系或髓系祖细胞(MP)。如本文所用，常 见髓系祖细胞指能分化成任一髓系终端分化细胞的细胞群。髓系祖细 胞包括常见髓系祖细胞(CMP)，指自我更新有限或非自我更新的细胞 群，但是它们能进行细胞分裂形成粒/巨噬祖细胞(GMP )和巨核/红系 祖细胞(MEP)。非自我更新细胞指细胞分裂产生子细胞，然而所有子细胞都没有母细胞型的分化潜能，而反之产生分化了的子细胞。用于
鉴别CMP的标记表型包括本领域通常所知的表型。对于鼠源CMP细胞， 细胞群的特异性标记表型为 c-Kithi"(CD117)CD16一CD34一 Sca-inesLin^和更为特异性的标记表型Fc y R'。IL-7R aneg (CD127)。鼠 CMP细胞群也特异性缺少某些标记的表达，包括B220、 CD4、 CD8、 CD3、 Terll9、Gr-1和Mac-l。对于人源CMP细胞，细胞群的特性为CD34+CD38+ 以及更为特异性的标记表型CD123+(IL-3Ra)CD45RAneg。人CMP细胞群 也特异性缺少一些细胞标记，包括CD3、 CD4、 CD7、 CD8、 CDIO、 CDllb、 CD14、 CD19、 C訓、CD56和CD235a。对多种髓性祖细胞标记表型的描 述都有记载，例如U.S. Patent Nos. 6, 465, 247和6, 761, 883; Akashi, iVa^re 404: 193-197 (2000)和Manz，tV^〃.力cad. /7W 99 (18): 11872-7 (2002);所有出版物在此全文引用作为参考。另一髓系常见祖细胞为粒/巨噬祖细胞(GMP)。该祖细胞 群的细胞特征为其产生粒细胞(例如嗜碱细胞、嗜曙红细胞和嗜中性 粒细胞)和巨噬细胞的能力。与其他常见祖细胞相似，GMP细胞缺少 自我更新能力。鼠 GMP 细胞特征性标记表型为 c-Kithi(CD117)Sca-lnesFcYRhi(CD16)IL-7RYnegCD34p°s。鼠GMP细胞也 缺少某些标记表达，如B220、 Terl19、 CD4、 CD8、 CD3、 Gr-l、 Mac-l 和C謂。人GMP细胞的特征性标记表型为CD34+CD38+CD123+CD45RA+。 人GMP细胞群也特征性的缺少标记CD3、 CD4、 CD7、 CD8、 CDIO、 CDllb、 CD14、 CD19、 CD20、 CD56和CD235a。从CMP细胞衍生的巨核/红系祖细胞(MEP)其特征为分化 成常见巨核祖细胞和红系祖细胞的能力。成熟巨核细胞为多倍体细胞， 是形成血小板的先驱细胞，此发育过程由血小板生成素调节。红细胞 由常见红系祖细胞生成，该过程由促红细胞生成素调节，最终分化成 成熟的血红细胞。鼠MEP特征性细胞标记表型为C-Kitw和IL-7Rneg，并进一步由FclT和CD34^特异化。鼠MEP细胞群也特异性的缺少标 记B220、 Terl19、 CD4、 CD8、 CD3、 Gr-l和C謂。另一'J、鼠MEP标记 表型例证为c-kithighSca-niiT"^CD16^CD34':人MEP细胞特征性 标记表型为CD34+CD38+CD123negCD45RAneg。人MEP细胞群也特征性缺少 标记CD3、 CD4、 CD7、 CD8、 CDIO、 CDllb、 CD14、 CD19、 CD20、 CD56 和CD235a。髓系中被进一步限定的祖细胞为粒祖细胞、巨噬祖细胞、 巨核祖细胞和红系祖细胞。粒祖细胞特征为具有分化成终端分化粒细 胞的能力，包括嗜曙红细胞、嗜碱细胞和嗜中性粒细胞。粒祖细胞一 般不分化成髓系其他细胞。巨核祖细胞(Megakaryocyte progenitor cell, MKP)特征为能分化成终端分化巨核细胞，但不能分化成髓系其 他细胞(见例证W0 2004/024875 )。可从多种来源获得HSC和MP细胞，包括骨髓、周边血、脐
带血和其它已知收集造血和髓系祖细胞的来源，包括肝脏尤其是胎儿 肝脏。周边和脐带血富含HSC和MP细胞。细胞用本领域已知或常用方 法获得。例如，准备骨髓细胞的方法在Sutherland等人，丑o/3e他rrofr 尸roces"'/7"/^/户ui^/2g.'爿户ra"/ca/ (7w/ e (Gee, A. P. ed.) ， CRC Press Inc. (1991))中有所描述。HSC和MP细胞也可用适当的扩增和 分化技术从原始干细胞资源获得，例如胚胎干细胞(Thomson等人， ^r/e/7ce 282: 1145 (1998))和生殖细胞(Shamblott等人，尸roc. ^s〃. Xc". Sc/.咖95: 13726 (1998))。如本文所述，HSC和MP细胞可衍生于任何有造血系统的动 物物种。优选地，合适的动物为哺乳动物，包括(仅为例证但不限于) 啮齿动物、兔子、犬、猫、猪、马、牛、灵长类动物(例如，人)等。某些实施方案中，用到扩增的干细胞群。可在含细胞因子混合物的不同培养液中扩增干细胞。扩增的干细胞群不受任何细胞起
源机制或理论的限制，并可体外培养细胞生长，因此可提高细胞CD34 抗原表达或结合。在本领域有已知的干细胞扩增技术，包括U. S. Pat. No. 6, 326, 198、 U.S. Pat. No. 6,338,942; U.S. Pat. No. 6， 335， 195， 在此全文引用作为参考。某些实施方案中，用到扩增的MP群。可在含细胞因子混合 物的不同培养液中扩增MP细胞。扩增的MP细胞群不受任何细胞起源 机制或理论的限制，并可体外培养细胞生长，因此可提高细胞CD34 抗原表达或结合。在本领域有已知的MP细胞扩增技术，例如包括待定 专利U.S. Patent App. Ser. No. 11/259, 592 (标题为扩增髓系细胞 群的方法及其相关应用)和U. S. Patent No: 6， 967， 029，在此全文引 用作为参考。本发明可用于自体或同种异体HSC移植。因此，在某一实 施方案中，提供了通过使用MP细胞提高自体HSC移植物移植的方法， 如本文所述，该MP细胞对于HSC移植物或患者可为自体或异体的。在 其他实施方案中，提供了通过使用MP细胞提高异体HSC移植物移植的 方法，如本文所述，该MP细胞对于HSC移植物或宿主可为自体或异体 的。因此，本发明确定了所述方法中使用的HSC和MP细胞相对于HSC 移植物的MHC和移植患者来说，可为完全匹配的细胞、部分错配异体 细胞和/或完全错配异体细胞，它们可来自于有关联的供体(通常为有 相同亲本等位基因的兄弟或姐妹)或不相关供体。HSC和MP细胞可被进一步筛选和纯化(包括正筛选和负筛 选)，以获得超纯细胞群。 一方面，用荧光激活细胞分类(Fluorescence activated cell sorting, FACS )(也作流式细胞术)分选和分析不 同细胞群。带有HSC和MP细胞群特异性细胞标记的细胞,皮与细胞标记 相结合的抗体(或一般来说抗体混合物)标识。识别不同标记的每一抗体都有与可检测的分子相结合，尤其是荧光染料，该染料能与偶连 在其他抗体上的荧光染料相区别。标记或"染色"的细胞流通过激发 荧光的光源，检测到的细胞发射谱可决定某一特殊标记抗体的存在。 通过检测同时发生的不同荧光(在本领域也作多色荧光细胞分选)， 携带不同标记组的细胞可从群中其他细胞中被鉴别和分离出来。其他
FACS参数，包括(仅为例证并不局限于)测向散射(SSC)、前向散 射(FSC)和活体染色(例如，碘化吡咬染色)，可通过大小和存活性 来筛选细胞。HSC和祖细胞的FACS分选和分析描述在U. S. Patent Nos. 5, 137, 809、 5， 750， 397 、 5, 840, 580; 6, 465, 249; Manz， M. G.等人， 尸roc. ^〃. JcaA 99: 11872-11877 (2002);和Akashi， K.
等人，iV^"re 404 (6774): 193-197 (2000))及其他文献中。关于荧光 激活细胞分选的一般性指导描述在，如，Shapiro, H. M.，户rac〃ca/ 尸/o^6W咖"ix 4th Ed. ， Wiley-Liss (2003)和Ormerod, M. G. ， Cyfo迈"w j /Vac〃ca/ y4/7proac力,3rd Ed. ， Oxford University Press (2000)。已知细胞纯化的方法也包括本文所述的组合法。典型的组 合措施包括有效移除多余细胞及细胞物质的初始步骤，例如白细胞去 除术。第二步包括用抗体结合底物的免疫吸附法分离表达一个或多个 祖细胞群常见标记的细胞。例如，携带抗CD3卩抗体的磁珠可结合并捕 获通常表达CD34抗原的HSC、 CMP和GMP细胞。另一额外步骤提供对 不同细胞型更高的分辨率(例如用识别一套特异性细胞标记的抗体进 行FACS分选)，该步骤可用于获得超纯目标细胞群。另一联合方法可 包括用携带抗CD34的磁珠进行初步分离，而后用FACS进一步纯化。根据特殊目的的常规程序将用实证决定治疗效果所需细胞 量。 一般来讲，为治疗目的使用的细胞需达到药理有效剂量。"药理 有效量，，或"药理有效剂量"指足以产生所要病理效果的剂量或是能 得到所要结果的剂量，特别是指患者的移植或存活。不论症状是否得到改善，治疗效果也包括暂停或减緩疾病或失调进程。如上所说，药 理有效计量也可用于和细胞结合的治疗复合物，这在下文有所描述。干细胞移植物的功能可随患者的年龄、体重和健康状态及 适应症的性质和严重程度变动。HSC的适用剂量根据这些条件变动。为得到成功的干细胞移植，优化的HSC移植物需要达到一 个细胞/kg患者的阈值。根据已出版资料和最近的临床研究结论，优 化的HSC移植物一般应含至少约1. 0 x 1()6个CD34+细胞每kg/患者、 至少约2. 0 x 106个CD34+细胞每kg/患者、优选的至少约3. 0 x 106 个CD34+细胞每kg/患者、更优选的至少约4. 0 x 106个CD34+细胞每 kg/患者以及最优选的大于5.0 x 106个CD34+细胞每kg/患者。例证 见01ivieri, A.等人(1998 )〃織"o/og/c3, 83: 329-337; Mavroudis， D.等人(1996 ) S/一 Vo. 88， No. 8 (October 15); pp3223-3229; Singhal， S.等人(2000 )A7/7e他r/w7ya卿/fl/ "〃叫26， 489-96; Bittencourt， H.等人(2002 ) Woo《Vol. 99， No. 8 (April 15); 2726-2733)。优化方面，主体方法和组合物被用于少于优化HSC剂量的 移植物，例如用本领域已知方法决定的、导致低于中间疗效的剂量。 在某些实施案例中，使用MP细胞提高亚优化剂量造血干细胞的移植。 在某些实施案例中，结合使用MP细胞和亚优化剂量造血千细胞可提高 患者生存率。该方法中，对患者使用结合MP的亚优化移植物可整体改
善有效治疗。因此，一方面本发明所用方法结合^f吏用MP移植物和亚优化 的HSC移植物， 一般来讲亚优化的HSC移植物包括少于约5.0 x 106 个CD34+细胞每kg/患者、更特异的是少于约4. 0 x 1(^个CDM+细胞 每kg/患者、优选少于约3.0 x 106个CD34+细胞^^kg/患者、更优选少于约2. 0 x 106个CD34+细胞每kg/患者或是最优选少于约1. 0 x 106 个CD34+细胞每kg/患者。 —单位脐带血指从单个胚胎和脐带中收集的血。脐带血中 的有核细胞数是变化的。此外， 一单位脐带血中的有核细胞数在冷冻 和解冻的过程中可能会减少。因此，使用HSC时，应注意单位血中的 有核细胞数是在解冻之前或之后计量的。在某些实施方案中，亚优化 移植物包括少于两单位的脐带血。在某些实施方案中，亚优化移植物 包括一单位的脐带血。在某些实施方案中，亚优化移植物功效取决于给患者施用 的每kg患者体重的个有核细胞(Nucleated cell, NC )。在一个实施 方案中，注入的亚优化UCB移植物约为4 x 10'个有核细胞/kg患者。 在一个实施方案中，亚优化UCB移植物为少于3 x 1()7个有核细胞/kg 患者、优选的为少于约3. 5 x 1()7个有核细胞/kg患者。在一个实施方 案中，注入的亚优化UCB移植物约为2或2. 5 x 10'个有核细胞/kg患 者。源自骨髓或周边血的优化HSC移植物细胞计数阈值一般比 UCB移植物大一个数量级。在一个实施案例中，从上述来源所得用于 注入的亚优化移植物约为5 x 1()8个有核细胞/kg患者。在一个实施案 例中，亚优化移植物少于4或4. 5 x 1()8个有核细胞/kg患者，而优选 量少于约4. 1 x 1()8个有核细胞/kg患者。在一个实施案例中，亚优化 移植物少于约3或3. 5 x 1()S个有核细胞/kg患者。在某些实施方案中，亚优化移植物功效取决于向患者施用 的有效CD34+细胞数。在一个实施方案中，注入的亚优化UCB移植物少 于约5 x 105个CD34+细胞/kg患者。在一个实施方案中，注入的亚优 化UCB移植物少于约3. 5至4. 5 x 105个CD34+细胞/kg患者，而优选的少于约4 x 105个CD34+细胞/kg患者。在一个实施方案中，注入的 亚优化UCB移植物少于约3 x 10s个CD34+细胞/kg患者。源自骨髓或周边血的优化HSC移植物细胞计数阈值一般约 比UCB移植物大一个数量级。在一个实施案例中，来自上述资源用于 注入的亚优化移植物少于约5 x 106个CD34+细胞/kg患者。在一个实 施案例中，用于注入的亚优化移植物少于约4 x 106个CD34+细胞/kg 患者，而优选的少于约3 x 106个CD34+细胞/kg患者。在一个实施方 案中，注入的亚优化移植物少于约2或1 x 106个CD34+细胞/kg患者。在某些实施方案中，亚优化移植物的功效取决于MHC错配 数，例如，亚优化移植物可来自部分或完全错配的异体供体。在某些 实施方案中，相对于患者亚优化移植物至少在一个MHC连锁位点有错 配。在一个实施方案中，亚优化移植物对一个或多个抗原有错配。在 一个实施方案中，亚优化移植物至少对两个抗原有MHC错配。该抗原 们可在相同的或不同的MHC连锁位点。用本领域已知标准试验来决定MHC错配程度。例如，人类 有至少6种主要的MHC基因分类，它们对移植生物学有重要作用。 HLA-A、 HLA-B、 HLA-C编码HLA I型蛋白，而HLA-DR、 HU-DQ和HLA-DP 编码HLAII型蛋白。两组中的所有基因都有高度的多态性，例如在人 类群体中有很多HLA等位基因或变化，而且不同组间的个体差异与对 抗移植细胞的免疫反应强度相关。检测MHC相配性的标准方法是检查 HLA-B和HLA-DR或HLA-A、 HLA-B和HLA-DR组的等位基因。因此，两 组HLA测试4个MHC抗原或优选为三组HLA测试6个MHC抗原。血清学MHC测试中，将对抗各种HLA抗原的抗体与目标物 (例如供体)的细胞反应，用以决定与抗体反应的特定MHC抗原是否 存在。将结果与其他目标物(例如受体)的反应特性相比较。将抗体与细胞一起孵育以检测抗体与MHC抗原的反应，然后加入补充物诱导 细胞裂解(也即淋巴细胞毒实验)。根据反应的细胞裂解量来检测和 评定反应(Mickelson, E.和Petersdorf, E. W. ， ^e迈"，/e〃c 6W/ rra/7Sp/a力^sThomas, E. D.等人 eds. ， pg28一37， Blackwell Scientific, Maiden, MA (1999)。其它以细胞为基础的分析包括^f吏用 才示i己抗体的；充式细胞术或酶联免疫反应(Enzyme linked immuno assays, ELISA)。检测MHC类型的分子方法一般为使用合成探针和/或引物 来检测编码HLA蛋白的特殊基因序列。合成寡核苷酸可用作杂交探针 来检测特定HLA类型的限制性片断长度多态性(Vaughn, R. W.， //7 M /,/" "/o/of 露戶r由coh 210: 45-60 (2002))。 或者可用引物扩增HLA序列(例如通过多聚酶链反应或连接链反应)， 所得产物可进一步用DM测序、限制性片断多肽分析(Restriction fragment polymorphism analysis, RFLP )检测或通过与序歹'J特异性 寡核脊酸引物(Sequence specific oligonucleotide primer, SS0P ) 杂交来检测(Petersdorf, E. W.等人，Wood92 (10): 3515-20 (1998); Morishima， Y.等人，(11): 4200—6 (2002);和Middleton， D. 和Williams, F.， //7淑ecw/ar S/o/of 柳C尸r"oco/s
210: 67-112 (2002))。尽管可用上述方法测定亚优化移植物，本公开内容不局限 于这些方法。本领域技术人员知道其他替代方法。例如，可用下述方 法测定亚优化移植物成细胞克隆数、粒-巨嗜成细胞克隆数、.突发成 单位红细胞数或成单位粒细胞红细胞单核细胞巨噬细胞克隆数，可收 集、解冻或施用这些细胞。—般来讲，为医疗目的使用MP细胞时，细胞需达到药理有 效剂量。"药瑝有效量，，或"药理有效剂量，，指足以产生所要求病理效果的剂量，或是能得到所要求结果的剂量(尤其是治疗失调或疾病 的情况)，包括减少或消除失调或疾病的一种或多种症状表现。不论 是否得到改善，治疗效果也包括暂停或延緩疾病或失调的进程。可根据特定目的的常用程序来决定达到治疗效果所需MP 细胞量。MP细胞的用量可随患者的年龄、体重和健康状态以及适应症 的性质和严重程度变动。此外，MP细胞的用量可随干细胞移植物变动， 但是一般来讲，MP细胞用量为可提高HSC移植的剂量。某些实施案例 中，MP细胞用量为提高患者存活率的剂量。在某些实施案例中，注入MP细胞数可从约1 x 105变动到 约1 x 1(T个细胞/kg、更优选的是从约1 x 106个变动到约1 x 108 个细胞/kg、而最优选的是约1 x 10'个细胞/kg体重或在必要情况下 更多。用本领域常用方法将细胞移植入患者。优选操作方法为静 脉注射。如上所述，会结合考虑性别、年龄、体重、疾病或失调类型、 失调状态、所需细胞数占细胞群的百分比(例如细胞群的纯度)以及 达到疗效所需细胞数等综合因素来决定移入的细胞数。细胞可一次注入，或在所定足以产生疗效的时间内连续注 入。当用连续注入治疗时，可用不同细胞群。如下所述，可用药学适 用载体将细胞注入患者。 一般包括如緩沖盐水(例如磷酸緩沖液)、补 充的基本细胞培养基，或是本领域已知其他培养基。在某些实施案例 中，MP细胞可与干细胞移植同时或是在其之前或之后使用。用髓系祖细胞提高造血干细胞移植物移植的方法可用于治 疗多种失调。在某些实施方案中，该失调与疾病或清髓治疗引起的造 血系统残缺有关。如本文所用，"治疗"指疗效性的或预防性的处理，或对疾病、失调或不适情况的抑制方法。治疗包括在病发之前、和/ 或有临床表现或疾病及状况其他表现之后，以合适的形式施用目标细 胞，以减轻疾病严重性、暂緩疾病进程或消除疾病。疾病预防包括延 长或拖延失调或疾病发生的症状，优选对失调有较高易感性的目标物。本公开内容进一步提供了在实体器官、细胞或组织移植领 域中，用MP细胞提高造血干细胞移植物移植的方法。例如(但不局限 于)，本公开内容进一步提供了用MP细胞提高造血干细胞移植物在心、 肺肝、肾、胰岛细胞、皮肤、内分泌器官或胰腺移植上的应用。
6.3辅佐疗法(Adjunctive Treatments)多种辅佐疗法可与本文所述方法合用。 一方面，辅佐疗法 包括抗真菌制剂、抗细菌制剂、抗病毒制剂以及其他。—方面，辅佐使用的制剂为抗真菌制剂。真菌感染是清髓 治疗和HSCT移植的重要问题。通常延緩移植的受体和形成GVHD的患
者有很高的真菌感染几率。真菌感染有很多种，包括念珠菌感染 (candidiasis)(例如克鲁斯念珠菌感染(Candida krusei)、光 滑念珠菌感染(Candida glabrata)、 白念珠菌感染(Candida albicans)、热带念珠菌感染(Candida tropicalis))、曲霉菌感染 (aspergillosis)(例如烟曲霉感染Aspergillus fumigatus)、黄 曲霉感染(aspergillus f lavus))、毛霉菌感染(mucormycosis)(例 如根瘤菌感染(rhizobium arrhizus)、伞枝犁头霉感染(absidia corymbifera)、微小根毛菌感染(rhizomucor pusillus))、隐球菌 感染(cryptococcosis)、 荚膜组织胞浆菌感染(histoplasma capsulatum)和球袍子菌感染(coccidioides immitis)。用于辅佐使用的抗真菌制剂一般为全身性抗真菌制剂。其 中一种有用的此类抗真菌制剂为多烯大环内酯类抗生素两性霉素B(amphotericinB)。两性霉素B常见于多种配方，包括与脱氧胆酸盐 组成复合物；与胆甾硫酸酯形成胶体悬液；用于由大豆卵磷脂、胆固 醇和双硬脂磷脂酰甘油组成的脂质体胶囊中，或是用于其它本领域已 知配方中o另 一抗真菌制剂是氟胞嘧啶(flucytosine)， 一种氟化的嘧 啶。真菌导致的氟胞嘧啶脱氨基化可产生5-氟尿嘧啶 (5-flurouracil)，它是抗代谢物和DNA合成的抑制物。通常氟胞嘧啶 用于对抗隐球菌(cryptococcus)和念球菌。尽管可单独使用，氟胞嘧 啶一般与两性霉素B结合使用。咪唑和三唑代表了广大的唑类抗真菌制剂。据信咪唑和三 唑抑制甾醇14-oc-脱甲基酶，导致麦角甾醇合成受损而且干扰给予细 胞膜的活性(例如电子传递)。基于咪唑的抗真菌剂可有效对抗特定 类型的念球菌，例如白念球菌、光滑念球菌和新型念球菌。咪唑抗真菌 剂用于全身施用的例证包括酮康唑(ketoconzaole )、异草康唑 (itracanazole )、氟康峻(fluconazole)、益康喳(econazole)、伏 立康喳(voriconazole)和四康峻(tercanozole )。除了真菌感染，中性粒细胞减少症的患者也易受多种细菌 病原体感染。接受清髓治疗和HSCT移植的患者很易感染革兰氏阳性菌
(例如链球菌(streptococcus)和金黄色葡萄球菌(staphylococcus aureus))和革兰氏阴性菌(例如大肠杆菌(E. col i.)和绿脓杆菌
(pseudomonas aeruginosa))。败血症是常发生病症。此夕卜，延緩的 移植和对抗包膜细菌(例如肺炎链球菌(streptococcus pneumoniae) 或流感嗜血杆菌(haemophilus influenza))免疫应答的失调会增高 GVHD移植患者的发病率。可用适于特异细菌病原体的已知抗生素进行辅佐抗细菌治疗。包括广镨抗生素和更为针对性的抗细菌化合物。适于扩增的髓系 细胞的多种抗细菌制剂包括(仅为例证并不局限于)全诺酮
(quinolone )和氟会诺酮(fluoroquinolone) 、 P -内酰胺抗生素(P -lactam antibiotic)、 氨基葡萄糖* (aminoglycoside)、 四环素 (tetracycline)、大环内酉旨(macrolide)和各种协同肌(cogener)等。 会诺酮化合物包括环丙沙星(ciprofloxacin)、氧氟沙星(ofloxacin)、 施帕沙星(sparf loxacin)、 洛美沙、星(lomef loxacin)和莫西沙星 (moxif loxacin) 。 P-内酰胺抗生素包括青霉素(penici 11 in)(例如 青霉素G、青霉素V)、氨苄西林(ampicillin)、羧苄青霉素 (carbenicillin)、 甲氧西林(methici 11 in)、碳青霉烯(carbapenem) 和先锋霉素(cephalosporin)(例如头孢蓬汾(cephalothin)、头孢孟 多(cefamandole)、头孢克洛(cefaclor)、头孢尼西(cefonicid)、头 孢替坦(cefotetan)、 头孢漆將(cefatoxime)、 头孢他啶 (cef tazidime)、头孢峻將(cef t izoxime)和头孢他坊(cef epime))。 氨基葡萄糖苷包括新霹素(neomycin)、链霉素(streptomycin)、卡那 霉素(ka謹ycin)、庆大霉素(gentamicin)、妥布霉素(tobramycin)、 阿米卡星(amikacin)和奈替米星(netilmicin)。大环内酯类包括红霉 素(erythromycin)、 克拉霉素(clarithromycin)和阿奇霉素 (azithromycin)。其他抗生素4皮本领域技术人员所熟知。病毒感染也是清髓或HSCT患者面对的问题。 一般来讲来清 髓治疗引起的免疫系统损坏增高了病毒感染的风险。许多感染源自潜 在于血清阳性患者或血清阳性供体细胞中病毒的活化。常见病毒包括 巨细胞病毒、单纯疱渗病毒、水痘-带状疱渗病毒、带状疱疹病毒-6、 eb病毒、腺病毒以及其他。作为细胞注入的辅助物，所选抗病毒化合 物为适用于患者所感染病毒的药物。有效抗病毒化合物包括(仅为例 证但不局限于)阿昔洛韦(acyclovir)、西多福韦(cidofovir)、更 昔洛韦(ganciclovir)、 疱渗净(idoxuridine)、 喷昔洛韦 (penciclovir)、 缬更昔洛韦(valganciclovir)、 伐昔洛韦(valacyclovir)、阿糖腺香(vidarabine)、金刚烷胺(amantadine)、 金冈'J乙胺(rimantadine)、 扎那米韦(zanamivir)、 福米韦生 (fomivirsen)、咪会莫特(imiquimod)和利巴韦林(ribavirin)。针对 反转录病毒的治疗物包括核苷类逆转录酶抑制剂(例如齐多夫定 (zidovudine)、 去羟肌普(didanosine)、 司他夫定(stavudine)、 扎 西他滨(zalcitabine)、拉米韦定(lamividudine )、非核苷类逆转录 酵冲卬制剂(例:i口奈韦拉平(nevirapine)、依,法韦仓(efavirenz)、第 仑韦定(delvirudine)和蛋白酶抑制剂(例如服妥美(saquinivir)、 印地那韦(indinavir)、 利托那韦(ritonavir)、 那非那韦 (nelf inavir)、安泼那韦(ampre謂ir)和洛匹那韦(lopinavir))。抗真菌、抗细菌和抗病毒制剂可用作预防药以减少感染的 发生或疾病的表症。尤其是用于预防免疫抑制患者常见的真菌感染， 以及血清阳性患者或血清移植供体的病毒感染。因此，用于治疗的实 施方案包括HSC、 MP细胞和抗真菌、抗细菌、或抗病毒化合物的组合 成份。在进一步的实施方案中，附加使用的制剂为提高终端分化
髓系细胞(尤其是粒细胞、巨噬细胞、巨核细胞和红细胞)分化和动 员的细胞因子或生长因子。可用细胞因子C-CSF和GM-CSF提高粒细胞
发育。G-CSF可有效提高HSCT移植和中性粒细胞生成。在另一个实施 案例中，细胞因子或生长因子为促血小板生成素。使用TPO可提高移 植祖细胞的植入，并促进巨核细胞和血小板的发育(Fox， N等人，/. 67/". //2mW. 110: 389-394 (2002); Akahori， H.等人，5Ye边 14 (6): 678-689 (1996))。如本领域技术人员所熟知的，多种载体、赋形剂和施用方 法可用于附加治疗。代表性的制剂技术记栽于 /""r a7ifl, to7/一o/7.' 7力"c/e/2ce a/7d户ra"/ce of户力ar鹏cy, 19th Ed. ， MackPublishing Co.， Eastern, PA(1995)和Handbook of Pharmaceutical Excipients， 3rd Ed， Kibbe， A. H. ed. ， Washington DC, American Pharmaceutical Association(2000);在此全文引用作为参考。药物组合物一般包括药学适用载体和药学有效剂量化合 物、或其混合物、或其盐物质。药学组合物可被制成粉剂、粒剂、溶 液、悬浮液、气雾剂、固形剂、丸剂、片剂、胶囊剂、凝胶剂、局部 软膏、栓剂、透皮贴剂和其他本领域已知制剂。本文所用"药学适用载体，，包括本领域药剂学技术人员所 知的任一标准药用载体。因此，化合物自身(例如药学适用盐类)或 作为结合物可用作制药时的药用稀释剂；例如，生理盐水、磷酸盐緩 冲液(Phosphate buffer saline, PBS)、乙醇水溶液、或是葡萄糖 溶液、甘露醇溶液、葡聚糖溶液、丙二醇溶液、油液(例如植物油、 动物油、合成油等)、微晶纤维素、羧甲基纤维素、羟丙基甲基纤维 素、硬脂酸镁、磷酸钙、明胶、聚山梨酸酯80或类似物质、或和适当 的赋形剂用作固体制剂。药学组合物进一步包括一种或多种緩冲液(例如中性緩冲 盐水或磷酸緩沖盐水)、碳水化合物(例如葡萄糖、甘露糖、蔗糖或 葡聚糖)、甘露醇、蛋白、多肽或氨基酸(如甘氨酸)、抗氧化剂(例 如抗坏血酸、焦亚硫酸钠、二丁基羟基甲苯、丁基羟基茴香醚等)、 制菌剂、螯合剂(例如EDTA或谷胱甘肽)、适应受者血液的等渗、 低渗或弱高渗溶质、悬浮液、增稠剂、防腐剂、调味剂、甜味剂和合 适的赋色化合物。本领域技术人员所知的任何适用栽体都可用于组合物，载 体类型一般取决于施用方法。治疗组合物可做成制剂用于任何合适的 施用途径，例如包括口服、经鼻入、粘膜用、直肠用、阴道用、局部用、静脉用、腹腔用、皮内用、皮下用和通过肌肉施用。本文所述药物组合物可置于单剂量或多剂量容器，例如密
封安瓶或药瓶。该容器一般密封以保证无菌和药剂使用的稳定性。一 般来讲，如上所述，制剂可在油或水载体中作为悬液、溶液或乳液保 存。又或者，药物组合物可在冻干状态下储存，只需在使用前加入灭 菌液体载体。对宿主的施用量根据施用物质、施用目的(如预防或治
疗)、宿主状态、施用方法、施用次数、施用间隔等决定。本领域技 术人员可依经验决定施用量并根据疗效程度调节。用于决定合适剂量 的因素包括(但不局限于)目标物大小和体重、年龄和性别、症状严 重度、疾病状态、制剂传送法、制剂半衰期和制剂效率。所考虑的疾 病状态包括急性还是慢性、复发还是緩解期以及疾病进程。本领域技术人员熟知达到有效治疗的剂量或施用时间。例 如，可用细胞培养或其他体外分析决定初始有效量。可用动物模型做
剂量试验来产生循环浓度或组织浓度，包括细胞培养分析决定的ic5。。
6.4试剂盒本文描述方法可辅以试剂盒来提高HSC移植。试剂盒可包 括(但不限于)HSC、 MP细胞(包括扩增或分离的细胞)和/或附加治疗 化合物、分离或扩增HSC和MP的方法、对患者用药的方法或它们的任 意组合。更优化的试剂盒可包括任何或所有药学适用载体、病理学适 用载体、使用指导、容器、施用容器、抗体或它们的任意组合。试剂 盒一般带有标记，包括任何书写或记录材料，这些材料可为电子的或 计算机识别形式(例如磁盘、光盘、闪存或磁带)，用来提供使用指
导或其他实际盒内容物的使用信息。7.实施例以下实施例会为本发明技术方面提供更好的理解，但不应 在任何方面限制本发明的范围。
7. 1实施例1:实验方法从小鼠中制备HSC或MP细胞。为获得鼠骨髓细胞，无痛 处死动物并清除股骨/胫骨肌肉。用研钵碾碎骨头，用尼龙膜过滤骨髓， 而后1200RPM离心5分钟。用lml ACK溶液(0. 3MN出C1、 0. 2MKHC03、 MiliQ过滤水)在水上重悬细胞3-4分，而后用标记培养液(含2% FCS 和2fflMEDTA不含钾、镁和酚红的HANKs生理盐水)灌注清洗。用标记 培养液离心、过滤和重悬细胞，加入小鼠IgG(l:50稀释lmg/ml储藏 液，Sigraa， St Louis MO)。冰育细胞10-15分，而后与10nl/小鼠体 积CD117微珠混合(Miltenyi Biotech, Auburn CA)，标记培养液 终体积为100pl/小鼠。冰育细胞25分钟。以终体积约lml/小鼠的标 记培养液清洗和重悬细胞，用尼龙膜过滤。根据生产商指导手册富集 设置，用AutoMACs (Miltenyi, Auburn, CA)富集细胞。用约1 x 10s 细胞/ml标记培养液重悬细胞，加入合适浓度的下列联合抗体 (eBioscience， San Diego, CA ) : Sca-l 另'J藻蓝蛋白 (Allophycocyanin， APC)、 c-kit R-藻红蛋白-花青 7 串 (Phycoerythrin-cyanine 7 tandem, PE-Cy7) 、 Thy-l. 1异硫氰酸焚光 素(Fluorescein isothiocyanate， FITC) 、 i脊系(CD3、 CD4、 CD5、 CD8、B220、mac-l、Gr-l和Terl19)R-藻红蛋白(Phycoerythrin， PE)。 冰育细胞25分钟，用标记培养液清洗、离心和重悬细胞。加入碘化吡 咬(Propidium iodide， PI)去除死细胞。用FACS分离小鼠KTLS-HSC、 c-kit一Thy^Sca-lP。siineage峭或MP c-kithighThynegSca-lneglineageneg/low。细胞培养和扩增。从 AKR 小鼠中分选Lin—KTLS-HSC(H2Kk)，铺入500^1/孔无血清培养液，该培养液含 细胞因子和成长因子并结合c-KUL、 FL、 TP0和IL-6(X-Vivol5基质 (Cambrex Bioscience, MD); 青霉素—链霉素(100x)、 glutamax(100x) 、 2-巯基乙醇(5xl(T5M ) 、 c-KitL(50ng/ml)、 FL(30ng/ml) 、TP0(5ng/ml)和IL-6(10ng/ml) (Biosource， Camarillo， CA和R&D Systems, Minneapolis, MN)。细胞铺入约10， 000细胞/孔 的24孔板。培养7天细胞以获得MPc(培养衍生MP)。在第2和第4 天给细胞换液(500ul/孔)，用新鲜培养液替换孔中一半培养液。笫 五天，加入lml新鲜培养液并将细胞移入6孔板。在第7天，收集细 胞并移取三小份用作分析。标记扩增细胞群中小鼠HSC:移取孔中细胞，清洗并转移 到锥形FACS管，用血球计计数。1100rpm离心细胞5分钟，移除上清。 加入50ul封闭抗体(大鼠IgG和小鼠IgG 1: 50)，孵育10分钟，加 入50—100ul合适浓度的下歹'J抗体(eBioscience， San Diego， CA): Sca-l别藻蓝蛋白(APC)、 Thy-l. 1异疏氰酸荧光素(FITC)、 c-kit藻 红蛋白-花蒉7串(PE-Cy7) 、 B220、 Mac-l、 GR-1 R-藻红蛋白(PE)。 水育25分钟，用含PI的标记培养液清洗、离心和重悬细胞。用FACS 分析细胞HSC。标记培养扩增细胞群中髓系祖细胞用上述标记HSC细胞 的相同方法准备细胞。用50ul封闭抗体(大鼠IgG和小鼠IgG 1: 50) 赙育，每管加入50-100ul镨系-生物素(Terl19、 Gr-l、 B220 )，冰 上放置20分。用2-3mlSM清洗细胞，离心，然后用50-100ul合适浓 度的下歹'J抗体重悬细胞Streptavidin Cascade Blue (Molecular Probes, Eugene, OR) 、 c-kit藻红蛋白-花菁7串(PE-Cy7) 、 Sca-l 别藻蓝蛋白(APC)、 CD34异硫氰酸荧光素(FITC) 、 2. 4G2 (Fc Y R) R-藻红蛋白(eBioscience， SanDiego， CA)。用FACS分析细胞MP (CMP、 GMP、 MEP)。
为成熟祖细胞亚群标记培养扩增细胞用上述方法处理细 胞。用封闭抗体孵育，用50-100ul抗体液重悬细胞CD3藻红蛋白-菁7串(PE-Cy7) 、 B220太平洋蓝、Gr-l R-藻红蛋白(PE)和Mac-l 别 藻蓝蛋白 (APC) (eBioscience, San Diego， CA))。冰上孵育25分， 用上述方法进行FACS分析。扫描重构小鼠检测供体细胞。室温收集约10-15滴血至 0. 5ml含5mM EDTA的PBS中，用其扫描HSC和/或MP移植的小鼠检测 供体细胞群。加入lml含2%右旋糖苷-500的PBS，混合，在37C孵育 30-45分。多数血红细胞被沉积。将上清移入一新管，离心收集细胞 (5分，1000rpm)，用1. 0ml IX ACK (0. 3M NH4C1， 0. 2MKHC03, MiliQ 过滤水)在冰上裂解剩余红细胞5-6分。清洗，而后1200rpm离心5 分。如果沉淀物仍为红色，重复清洗。用50ul/管大鼠IgG和小鼠IgG(各 为1: 50)在水上封闭细胞10到15分钟。加入合适浓度的生物素标识 Mac-l和GR-1 (eBioscience, San Deigo， CA)，在暗处水育20分。 清洗细胞，1200rpm离心5分。对同源或MUD移植物(C57B6/Ka， CD45. 1; C57B16/Ka CD45. 2或129 )加入合适浓度下例抗体，Streptaviden Cascade Blue (Molecular Probes, Eugene, OR) 、 CD45. 1另'J藻蓝 蛋白(APC)、 CD45. 2异硫氰酸荧光素(FITC)、 B220 R-藻红蛋白菁 串(PE-Cy7)和CD3、 CD4、 CD8 R-藻红蛋白 (PE) (eBioscience, San Diego, CA)。向异体移植物(C57B6/Ka、 H2Kb; Balb/b、 H2Kd)加入
Eugele， 0R)、CD3别藻蓝蛋白(APC) 、 H2Kb异硫氰酸荧光素(FITC)、 B220 R-藻红蛋白菁串(PE-Cy7)和 H2Kd R-藻红蛋白 (PE) (eBioscience, San Diego， CA)。向培养的异体MP ( C57B6/Ka、 CD45. 1; 129、 CD45. 2; AKR、 H2Kk ) MUD移植物加入合适浓度的下列 抗体CD45. 2生物素(eBioscience, San Diego, CA)。清洗后，加 入合适浓度的下列抗体Streptaviden R-藻红蛋白串(PE-Cy5 )、CD45. l别藻蓝蛋白(APC)、 H2Kk异硫氰酸荧光素(FITC) 、 Mac-l和 Gr-l R-藻红蛋白菁串(PE-Cy7)、 B220太平洋蓝和CD3 R-藻红蛋白 (PE) (eBioscience， San Diego， CA)。冰育25分钟，清洗，离心， 用含PI的SM重悬细胞。用FACS分析细胞。冷冻培养衍生MP:以2千万细胞/ml的浓度冷冻细胞。准 备含85%FCS和15%DMS0的冷冻培养液。计数和清洗培育衍生MP细胞。 1100RPM离心。以1千万细胞/ml的浓度重悬细胞。緩慢滴加等体积 DMS0冷冻液，轻柔混合试管。按lml每瓶分装细胞。在-80匸过夜冷 冻细胞。第二天移入液氮长期保存。
7.2实施例2:用纯化的髓系祖细胞联合亚优化剂量HSC提高存
活率该研究用于决定MP细胞能否提高特定案例的存活率，在 这些案例中为给100。/。受体鼠提供辐射保护，所用的HSC细胞不足。该 研究调查了 MP细胞能否提高纯化的HSC同源移植后的恢复(图3)、 相配非相关供体(MUD)纯化HSC移植后的恢复(图4)或是完全错配 异体移植后的恢复(图5)。各项研究中，HSC和MP衍生于相同供体。从小鼠骨髓(BM)中准备HSC，从C57B1/6KA小鼠(H-2b、 CD90. 1 、 CD45. 2 )中分选LinnegKTLS-HSCs 。图 1表示从 C57B6/Ka(Thy-l. 1、 CD45. 2)分选KTLS HSC的分选门。全骨髓和c-kit 富集后的门剖面都有标示。用该门参数分选的HSC用于移植实验。从小鼠骨髓(BM)准备MP，从C57B1/6KA小鼠(H-2b、 CD90丄CD45.2)分选。图2表示从C57B6/Ka (Thy-l. 1、 CD45.2)分 选MP的门。全骨髓分选和c-kit富集后的门剖面都有标示。用该门参 数分选的MP用于移植实验。
在第0天对宿主鼠、C57Bl/Ka(H-2b、 CD90. 1、 CD45. 1)、 129(H-2b、 CD45. 2)或Balb/c(H-2d、 CD45. 2)进行分次剂量致死辐射 (总共9-llGy，铯源)。分选的HSC和MP按所需剂量混合，在眼球 后注射入受体动物。监控动物存活率和供体嵌合性。图3表示同源移植模型存活率资料。50KTLS C57B6/Ka(Thy-l. 1 、 CD45.2)HSC可被单独移植或与 100,000 C57B6/Ka (Thy-1. 1、CD45. 2)MP混合移植入C57B6/Ka (Thy-1. 1、CD45. 1) 宿主。图3表示加入MP可提高HSC移植存活率。图4表示同种异体(相配非相关供体)移植模型的存活率 资料。100 (图4A)或250 (图4B) KTLSC57B6/Ka (Thy-l. 1、 CD45. 2、 H2b) HSC可单独移植或和200， 000 C57B6/Ka (Thy-l. 1、 CD45. 2、 H2b)MP 一起移入129 (CD45. 1、 H2b)宿主。图4表示加入MP可提高100和 250两个干细胞剂量的HSC移植存活率。图5表示同种异体(完全错配)移植模型的存活率资料。 500(图5A)或2000(图5B)KTLSC57B6/Ka (Thy-l. 1、 CD45. 2、 H2b) HSC 可单独移植或和200,000 C57B6/Ka(Thy-l. 1、 CD45.2、 H2b)MP —起 移入Balb/c(CD45. 1、H2b)宿主。图5表示加入MP可提高500和2000 两个千细胞剂量的HSC移植存活率。图6概述三种移植模型的存活率和嵌合性资料(同源、相 配非相关供体和错配异体)。在所有三种模型中(同源、MUD和错配异体)，与HSC单 独移植相比，结合MP的亚优化剂量HSC可提高存活率。7. 3实施例3结合使用异体培养衍生的髓系祖细胞可提高亚优化 剂量HSC的存活率本研究用于决定当HSC低于辐射防护剂量时，加入异体培 养-衍生MP是否能提高相配非相关供体(MUD) HSC移植的存活率。从小鼠骨髓(BM)制备HSC，从AKR小鼠(H-2k、 C跳1、 CD45. 2)分选Lirr^。TTLS-HSCs。将分选的细胞铺入含c-Ki tL、 FL、 TPO和IL-6的无血清培养基。培育细胞7天。培育期后收集细胞，用 FACS分析MP(CMP/GMP/MEP)和HSC含量，然后冷冻。图8表示对AO (Thy-l.l、 CD45.2、 H2k )培育衍生的MP的分析。图7表示移植当天从小鼠C57B1/Ka (H-2b、C謂.1、CD45. 1) 分选Lin^KTLS-HSC。分选AKR KTLS HSC并按所述方法培育7天。培 育期后分析和冷冻细胞。根据培养液中c-kit+细胞数计算移植所用细 胞量。图9表示移植模型的存活资料，相配非相关供体KTLS HSC 与完全错配异体培育衍生的MP共同移植入该模型。100KTLS C57B6/Ka(Thy-l. 1 、 CD45. 1 、 H2b)HSC 被单独移植或与 500, 000c-kit+AKR(Thy-l. 1、 CD45. 2、 H2k)培育衍生的MP ( MPc ) — 起移植入129 (CD45. 2、 H2d)宿主。向HSC移植物中加入MPc可提高 存活率。相对于单独使用相同剂量的HSC或MPc,两者结合的移植有更高的存活率。该模型中，相对于HSC或MP单独移植，异体(MUD)HSC 和第三方异体培育衍生的MP共同移植可提高存活率(图9)。

图10表示移植模型的存活率数据，MHC相配非相关供体 HSC与从2 MHC错配供体衍生的MP细胞被共同移植入此模型。50异体 HSC(Balb/b、 H-2b)被单独移植或与1或2百万混合异体培育衍生的 MP( FVB、 H-2q; AKR、 H2k )共同移植入致死辐射宿主(C57B1/Ka、 H-2b )。 与HSC单独移植相比，加入MP细胞的HSC移植有更高的存活率。相对 于HSC或MP细胞单独移植，HSC和MP细胞共同移植可提高存活率。前述本发明特殊实施案例用于说明和解释。并不限制本发 明于确切的公开形式，显而易见，可在上述技术上进行很多调节和变 动。所选用和描述的实施案例是为了最好的解释本发明的原理和其特 殊应用，因此能^f吏本领域其他技术人员最有效地利用本发明，而且多 种实施案例的多种调节方法是之可适用于所需特殊应用情况。所有的专利、专利应用、出版物和本文引用的参考文献在 此原文引用作为参考，每一出版物或专利应用都是特殊的，都单独引 用作为参考。
权利要求
1. 提高患者造血干细胞移植物植物的方法，包括对该患者施用有效量的髓系祖细胞(MP)移植物以提高造血干细胞移植入。
2. 权利要求1的方法，其中所述造血干细胞移植物为亚优化移 植物。
3. 权利要求2的方法，其中所述亚优化移植物包括少于约5. 0 x 106个CD34+造血干细胞(HSC)每kg患者体重。
4. 权利要求2的方法，其中所述亚优化移植物包括少于约1. 0 x 106个CD34+ HSCs每kg患者体重。
5. 权利要求2的方法，其中所述亚优化移植物是从周边血或骨 髓中获得。
6. 权利要求2的方法，其中所述亚优化移植物是从脐带血(UBC) 中获得。
7. 权利要求6的方法，其中所述亚优化移植物包括少于约4. 0x 107个有核细胞每kg患者体重。
8. 权利要求6的方法，其中所述亚优化移植物包括少于约4. 0 x 105个CD34+细胞每kg患者体重。
9. 权利要求6的方法，其中所述亚优化移植物包括衍生于少于 两脐带血单位的HSC。
10. 权利要求6的方法，其中所述亚优化移植物包括衍生于一脐 带血单位的HSC。
11. 权利要求1的方法，其中所述MP细胞移植物和所述HSC移植 物为所述患者的同种异体移植物。
12. 权利要求11的方法，其中所述同种异体移植物相对于患者至 少部分MHC错配。
13. 权利要求11的方法，其中所述同种异体移植物相对于患者为 MHC完全错配。
14. 权利要求11的方法，其中所述同种异体移植物相对于患者为 一个或多个MHC抗原错配。
15. 权利要求11的方法，其中所述同种异体移植物相对于患者为 MHC完全相配。
16. 权利要求l的方法，其中所述髓系祖细胞移植物与所述造血 干细胞移植物共同施用。
17. 权利要求l的方法，其中所述髓系祖细胞移植物在所述造血 干细胞移植12小时内施用。
18. 权利要求l的方法，其中所述髓系祖细胞移植物包括扩增的 髓系;f且细胞。
19. 权利要求18的方法，其中所述扩增的髓系祖细胞为同种异体 髓系;組细胞的混合物。
20.权利要求19的方法，其中所述同种异体髓系祖细胞对于造血 干细胞移植物至少部分MHC错配。
全文摘要
本发明提供了用于方便造血干细胞植入的方法和组合物，包括联合施用髓系祖细胞和造血干细胞。
文档编号C12N5/08GK101421393SQ200780012781
公开日2009年4月29日 申请日期2007年2月14日 优先权日2006年2月14日
发明者H·卡尔塞基, J·L·克里斯蒂森 申请人:塞勒兰特治疗公司