专利名称：注射型聚酯类微载体与纤维蛋白凝胶复合支架的制备方法
技术领域：
本发明涉及一种注射型聚酯类微载体与纤维蛋白凝胶复合支架的制备方法。
背景技术：
软骨损伤是目前常见的疾病，由于关节炎或运动创伤所造成的关节软骨损伤给许多病人带来痛苦。软骨的代谢活跃而修复能力有限，没有血管，在损伤之后不能形成纤维凝块，没有炎性细胞迁移进入，也没有血管未分化细胞进入损伤的部位，所以不易自行进行修复。另外，软骨本身在损伤部位缺乏未分化的细胞，损伤之后没有软骨细胞迁移生长到损伤的软骨之中。而且，随着年龄的增长，软骨细胞的分裂能力逐渐降低，产生细胞外基质的能力也随之降低。迄今为止，临床上仍然缺少有效的方法修复受损的软骨组织。应用再生医学的方法和原理来进行软骨组织的修复是目前的一个重要手段，且取得了良好的效果。其中，软骨修复支架在软骨再生中起着十分重要的作用。
人体的软骨属于结缔组织，其中含有少量的软骨细胞和大量细胞间质。软骨细胞散在于软骨基质内的软骨陷窝内，陷窝周围的基质染色较深称为软骨囊。幼稚的软骨细胞较小，常单个分布于关节软骨的边缘区，呈扁圆形。由边缘向中央软骨细胞的体积逐渐增大，呈椭圆形或圆形，具有较明显的软骨囊。幼小的软骨细胞可分裂，深部成熟的软骨细胞常2～8个成群分布。软骨细胞间质的化学成分主要包括胶原蛋白、蛋白多糖和少量的非胶原蛋白。软骨组织中的胶原主要为II型胶原，占胶原总量的90％以上。II型胶原纤维在软骨内呈三维网状分布，为关节软骨提供抗张强度。蛋白多糖通过连接蛋白以非共价键形式与透明质酸结合形成巨大的蛋白多糖聚合体。蛋白多糖聚合体分子链上含有丰富的负酸根离子，可以结合大量的水形成水凝胶，为软骨提供抗压强度和弹性。水分占软骨组织全重的75％，其中含有大量正离子以平衡蛋白多糖分子中的负电荷，并含有许多软骨细胞所需的营养物质和细胞代谢产物。软骨组织内无血管，但由于软骨基质富含水分，营养物质易于渗透，故软骨细胞仍能获得必要的营养。
软骨组织中的其它非胶原蛋白如锚着蛋白、纤维粘连蛋白等通过与细胞表面受体和其它大分子之间的相互作用将软骨细胞粘连在软骨基质上，并稳定软骨基质的结构。
根据软骨基质成分和组织结构的不同，软骨分为透明软骨、纤维软骨和弹性软骨。关节软骨属于透明软骨，它的特点是纤维含量比纤维软骨和弹性软骨少，而蛋白多糖水凝胶含量相对较多，软骨基质为透明状。成熟的关节软骨根据其细胞和基质的变化可分为浅表层、中层、深层和钙化层。其中中层和深层中的蛋白多糖含量较高。
人体内的软骨具有极特殊的力学性能。例如关节软骨具有很好的弹性和韧性，可承受较大的负荷，同时具有光滑的表面，使关节活动时的摩擦力极小。软骨组织一旦缺损，将给患者带来巨大的痛苦和不便。
近年来，可注射型细胞微载体和注射型水凝胶材料由于其体内培养和微创修复等优点而广受关注。注射型细胞微载体需要液态载体进行输运。传统的液态载体包括甘油、明胶等。由于可注射微载体一般采用生物降解聚酯类聚合物为基材，密度较大，因此在注射过程中易发生沉淀而影响使用。因此，液态载体的性能仍需提高，如应具有足够的粘度或密度以确保细胞微载体在溶液中的悬浮，并保证一定时间内不会发生沉淀。此外，单纯的细胞微载体即便能够注射并在体内无规堆砌成型，但支架的结构松散、机械强度较低，微载体在体内可能迁移或游走而失去形状。水凝胶是另外一类可以注射的细胞支架，且水凝胶的前驱物均为溶液状态，极易注射，在物理或者化学刺激下在体内能够快速成型。但水凝胶的机械强度较低，降解速度较快，导致破碎或坍塌，从而失去应有的形状而不能继续维持细胞的生长空间。
将可注射细胞微载体与可注射水凝胶进行复合，利用液态的水凝胶前驱物为输运载体注射到体内受损部位后，前驱物在体内快速固化形成凝胶。凝胶与微载体形成具有一定形状和强度的复合支架。微载体被包裹在水凝胶中，从而限制了其迁移或游走；同时，微载体与凝胶复合，相当于粒子填充复合材料，能大大提高水凝胶的强度。此外，微载体的降解速度较慢，当水凝胶降解完全后，微载体的堆砌仍然能够维持细胞生长的空间，球与球之间的连通孔隙便于细胞所需营养和代谢产物的交换。因此，二者的复合可以互相弥补其缺点，具有一定的协同作用。
发明内容
本发明的目的是提供一种可以有效地负载微载体，防止微载体在体内游走，同时防止细胞在种植过程中流失，生物相容性好的注射型微载体与纤维蛋白凝胶复合支架的制备方法。
本发明的注射型聚酯类微载体与纤维蛋白凝胶复合支架的制备方法，包括以下步骤
1)将聚酯类聚合物溶解在二氯甲烷中，配制成浓度为50mg/ml的均匀溶液；将此溶液加入到质量浓度为0.1～0.5％的聚乙烯醇的水溶液中，聚乙烯醇的水溶液和二氯甲烷的体积比为5∶1，搅拌下挥发去除二氯甲烷，过滤分离出聚酯类微球，干燥；2)将步骤1)获得的聚酯类微球浸泡在质量浓度为6％的己二胺正丙醇溶液中，在40℃水浴中反应3～15分钟，用去离子水充分洗涤以除去未反应的己二胺，然后在35℃真空干燥至恒重，获得表面含有氨基的聚酯类微球；3)将纤维蛋白原粉末溶于生理盐水中，配制浓度为10～40mg/ml的纤维蛋白原溶液；将凝血酶溶解于氯化钙溶液中，配制浓度为20～40U/ml的凝血酶氯化钙溶液；4)将步骤2)获得的表面含有氨基的聚酯类微球浸入质量浓度为1％戊二醛溶液中，4℃下反应至少3h，用去离子水冲洗去除未反应的戊二醛，获得表面含有醛基的聚酯类微球；然后将此表面含有醛基的聚酯类微球浸入10mg/ml的纤维蛋白原溶液中，4℃下反应至少24h，冷冻-冻干，获得表面含有纤维蛋白原的聚酯类微载体；5)将聚酯类微载体与纤维蛋白原溶液按质量比为3％～15％混合，在振荡器上震荡使聚酯类微载体均匀分散在纤维蛋白原溶液中，然后将分散有聚酯类微载体的纤维蛋白原溶液与凝血酶溶液等体积均匀混合，37℃下形成凝胶，获得注射型聚酯类微载体与纤维蛋白凝胶复合支架。
本发明中，所说的聚酯类聚合物可以是聚乳酸或聚乳酸-乙醇酸共聚物。
本发明的有益效果在于本发明的注射型微载体与纤维蛋白凝胶复合支架具有复合结构特征，其中微载体可以为细胞生长和扩增提供一定的力学强度和空间；纤维蛋白凝胶则有利于实现微载体的输送和原位注射成型。纤维蛋白凝胶是来源于血液的制品，具有良好的生物相容性和降解性能，其中含有大量的活性因子，具有更好的促进软骨细胞的迁移、增殖及分化性能，加快修复受损的软骨组织。该复合支架可以有效地负载微载体，防止微载体在体内游走，防止细胞在种植过程中流失，生物相容性好，制备方法简单、材料来源广泛、生产效率高，具有良好的应用前景。
图1是聚乳酸-乙醇酸共聚物微球的扫描电镜照片。
图2是表面含有氨基的聚乳酸-乙醇酸共聚物微球的扫描电镜照片。
图3是表面含有纤维蛋白原的聚乳酸-乙醇酸共聚物微球的扫描电镜片。
图4是表面含有纤维蛋白原的聚乳酸-乙醇酸共聚物微球的激光共聚焦显微镜照片。纤维蛋白原首先用荧光素异硫氰酸酯标记。
图5是纤维蛋白凝胶复合聚乳酸-乙醇酸共聚物微载体支架的扫描电镜照片。
图6是纤维蛋白凝胶复合聚乳酸-乙醇酸共聚物微载体支架的激光共聚焦显微镜照片。纤维蛋白原首先用荧光素异硫氰酸酯标记。
图7是体外培养一周后，软骨细胞在纤维蛋白凝胶复合微载体支架中的形态及分布的激光共聚焦显微镜照片。其中细胞采用荧光素二乙酸酯的方法进行染色。
具体实施方法以下结合实例进一步说明本发明，但这些实例并不用来限制本发明。
实例11)将聚乳酸-乙醇酸共聚物溶解在二氯甲烷中，配制成浓度为50mg/ml的均匀溶液；将此溶液加入到质量浓度为0.1％的聚乙烯醇溶液中，聚乙烯醇的水溶液和二氯甲烷的体积比为5∶1。在机械搅拌下挥发8小时去除二氯甲烷；过滤分离出聚乳酸-乙醇酸共聚物微球，干燥；2)将步骤1)获得的聚乳酸-乙醇酸共聚物微球浸泡在质量浓度为6％的己二胺正丙醇溶液中，在40℃水浴中反应3分钟，用去离子水充分洗涤以除去未反应的己二胺，然后在35℃真空干燥箱中干燥至恒重，即获得表面含有氨基的聚乳酸-乙醇酸共聚物微球。图2是表面含有氨基的聚乳酸-乙醇酸共聚物微球的扫描电镜照片。
3)将纤维蛋白原粉末溶于生理盐水中，于37℃恒温水浴中孵育10分钟，使纤维蛋白原充分溶解，纤维蛋白原溶液的浓度为10mg/ml；将凝血酶溶解于40mM氯化钙溶液中，于37℃恒温水浴中孵育10分钟，配制成20U/ml的溶液。
4)将步骤2)获得的表面含有氨基的聚乳酸-乙醇酸共聚物微球浸入质量浓度为1％戊二醛溶液中，4℃下反应3h，用大量去离子水冲洗去除未反应的戊二醛，获得表面含有醛基的聚乳酸-乙醇酸共聚物微球；然后将此表面含有醛基的聚乳酸-乙醇酸微球浸入10mg/ml的纤维蛋白原溶液中，4℃下反应24h，隔2小时振荡一次。冷冻-冻干后，获得表面含有纤维蛋白原的聚乳酸-乙醇酸共聚物微球，即聚乳酸-乙醇酸共聚物微载体，如图3的扫描电镜照片和图4的激光共聚焦显微镜照片所示。
5)将聚乳酸-乙醇酸共聚物微载体与纤维蛋白原溶液按质量比为3％混合，在振荡器上震荡使聚酯类微载体均匀分散在纤维蛋白原溶液中，然后将分散有聚乳酸-乙醇酸共聚物微载体的纤维蛋白原溶液与凝血酶溶液等体积混合均匀，放入37℃恒温烘箱中孵育10分钟，使纤维蛋白原交联，形成凝胶，即获得注射型聚乳酸-乙醇酸共聚物微载体与纤维蛋白凝胶的复合支架。图5和图6分别是纤维蛋白凝胶复合聚乳酸-乙醇酸共聚物微载体支架的扫描电镜照片和激光共聚焦显微镜照片。
实例2同实例1的步骤1)制备聚合物微球，但使用的聚合物为聚乳酸，其余步骤同实例1，得到注射型聚乳酸微载体与纤维蛋白凝胶的复合支架。
实例3同实例1的步骤1)制备聚乳酸-乙醇酸共聚物微球，但聚乙烯醇溶液的质量浓度为0.5％，其余步骤同实例1。
实例4步骤1)同实例1的步骤1)。
步骤2)同实例1的步骤2)，但氨解的时间为15分钟，得表面含有氨基的聚乳酸-乙醇酸共聚物微球。其余步骤同实例1。
实例5步骤1)～3)同实例1的步骤1)～3)，但在步骤3)中同时配制纤维蛋白原浓度为40mg/ml的溶液。
步骤4)同实例1的步骤4)，但纤维蛋白原溶液的浓度为40mg/ml。其余步骤同实例1。
实例6步骤1)～3)同实例1的步骤1)～3)，但在步骤3)中同时配制凝血酶浓度为40U/ml的氯化钙溶液。
步骤4)同实例1的步骤4)，但凝血酶溶液的浓度为40U/ml。其余步骤同实例1。
实例7步骤1)～4)同实例1的步骤1)～4)。
步骤5)同实例1的步骤5)，但聚乳酸-乙醇酸共聚物微载体与纤维蛋白原溶液的质量比为15％。
实例8
步骤1)～2)同实例1的步骤1)～2)。
步骤3)同实例1步骤3)，但同时配制纤维蛋白原浓度为40mg/ml的溶液，凝血酶浓度为30U/ml的溶液。
步骤4)同实例1的步骤4)。
纤维蛋白原溶液(40mg/ml)和凝血酶(30U/ml)溶液首先用孔径为220nm的过滤膜过滤灭菌。然后将即实例1制备的聚乳酸-乙醇酸共聚物微载体与纤维蛋白原溶液均匀混合，其中聚乳酸-乙醇酸共聚物微载体的质量百分浓度为15％，然后再将该混合物与软骨细胞混合，放入37℃培养箱中孵育10分钟，得到含有软骨细胞的纤维蛋白凝胶复合微载体支架。软骨细胞的最终浓度为300万/ml。将此含有软骨细胞的复合支架放到24孔培养板中，加入培养液，在培养箱中进行体外培养。图7是体外培养7天后，软骨细胞在纤维蛋白凝胶复合微载体支架中的形态及分布的激光共聚焦显微镜照片。
权利要求
1.注射型聚酯类微载体与纤维蛋白凝胶复合支架的制备方法，其制备过程包括以下步骤1)将聚酯类聚合物溶解在二氯甲烷中，配制成浓度为50mg/ml的均匀溶液；将此溶液加入到质量浓度为0.1～0.5％的聚乙烯醇的水溶液中，聚乙烯醇的水溶液和二氯甲烷的体积比为5∶1，搅拌下挥发去除二氯甲烷，过滤分离出聚酯类微球，干燥；2)将步骤1)获得的聚酯类微球浸泡在质量浓度为6％的己二胺正丙醇溶液中，在40℃水浴中反应3～15分钟，用去离子水充分洗涤以除去未反应的己二胺，然后在35℃真空干燥至恒重，获得表面含有氨基的聚酯类微球；3)将纤维蛋白原粉末溶于生理盐水中，配制浓度为10～40mg/ml的纤维蛋白原溶液；将凝血酶溶解于氯化钙溶液中，配制浓度为20～40U/ml的凝血酶氯化钙溶液；4)将步骤2)获得的表面含有氨基的聚酯类微球浸入质量浓度为1％戊二醛溶液中，4℃下反应至少3h，用去离子水冲洗去除未反应的戊二醛，获得表面含有醛基的聚酯类微球；然后将此表面含有醛基的聚酯类微球浸入10mg/ml的纤维蛋白原溶液中，4℃下反应至少24h，冷冻—冻干，获得表面含有纤维蛋白原的聚酯类微载体；5)将聚酯类微载体与纤维蛋白原溶液按质量比为3％～15％混合，在振荡器上震荡使聚酯类微载体均匀分散在纤维蛋白原溶液中，然后将分散有聚酯类微载体的纤维蛋白原溶液与凝血酶溶液等体积均匀混合，37℃下形成凝胶，获得注射型聚酯类微载体与纤维蛋白凝胶复合支架。
2.按权利要求1所述的一种注射型聚酯类微载体与纤维蛋白凝胶复合支架的制备方法，其特征在于所说的聚酯类聚合物是聚乳酸或聚乳酸-乙醇酸共聚物。
全文摘要
本发明公开了一种制备可注射型聚酯类微载体与纤维蛋白凝胶复合支架的方法。该复合支架由纤维蛋白凝胶和聚酯类微载体复合而成。其中微载体为细胞生长和扩增提供一定的力学强度和空间；纤维蛋白凝胶模拟软骨细胞的细胞外基质，有利于实现微载体的输送和原位注射成型，并且可以促进软骨细胞的迁移、增殖及分化，加快修复受损的软骨组织。该复合支架可以有效地负载微载体，防止微载体在体内游走，防止细胞在种植过程中流失，生物相容性好，制备方法简单、材料来源广泛、生产效率高，具有良好的应用前景。
文档编号A61L27/22GK101041088SQ200710068118
公开日2007年9月26日 申请日期2007年4月17日 优先权日2007年4月17日
发明者高长有, 马列, 赵海光, 沈家骢 申请人:浙江大学