专利名称：启动转录调控核苷酸序列的制作方法
技术领域：
本发明涉及启动转录的调控核苷酸序列及其在重组法生产多肽中的应用。
本发明研究中所提出的技术问题是识别一种强力的并且最终是可热诱导的启动子，它可以用于多种微生物，特别是可用于放线菌类。
鉴于放线菌中包括了链霉菌和分枝杆菌，使得放线菌成为一类具有重要经济意义和医学价值的微生物。
目前在抗生素的商品生产中，大约有70%使用了链霉菌，此外，如果说结核分枝杆菌和麻风分枝杆菌的危害性不再被强调，但是为了获得活的多价疫苗菌株，在牛分枝杆菌(M.bovis)BCG菌株中提取异种抗原仍有很大的价值。
在分子水平上对这些菌种的基因遗传学研究还很少，它们的基因表达调控与研究较多的一些菌如埃希氏大肠菌或枯草杆菌等表达调控是不同的。
尤其是DNA富含G+C(鸟嘌呤+胞嘧啶)的放线菌对埃希氏大肠杆菌或枯草杆菌中特征“启动子”序列的识别能力较小和较差。
Baird等人(J.Gen.Microbiol.1989，135，931-939)研究了分枝杆菌中热冲击蛋白质中的编码基因，并且假设，两种序列TTGAG和TCTCATGT，(它们出现在结核分枝杆菌中的10kDa，热冲击蛋白质的编码序列的前部)组成了启动子的-35和-10区域。
事实上，这两个序列呈现出与埃希氏大肠杆菌中的相应启动子的序列高度的同源性。此外，那些出现在各种分枝杆菌中的其它热冲击蛋白质(例如，麻风分枝杆菌的65kDa蛋白质或牛分枝杆菌的64kDa蛋白质)的编码基因前部的序列同样也包含了一对同样类型的序列，即TTGCCG和TTTCAT，或者TTGCCG和CTTCAT，因此它们与埃希氏大肠杆菌的启动子以及10kDa结核分枝杆菌的“-35及-10”序列有高度的同源性。
按照该论文以及Thole等人的论文(Infection and immunity，55 1987，1466-1475)，对分枝杆菌中热冲击蛋白质基因的转录起作用的启动子中包含了这种类型的序列(作为序列-35和-10)。以下把这种序列称为“埃希氏大肠杆菌型-35和-10序列”。这样，这些，作者还没有从结构带上证实这个假设，从而对启动子的辨认也还没有确定。
令人惊奇地是本发明的发明者已经证明，埃希氏大肠杆菌型-10和-35序列同样出现在链霉菌之中，但是它们在这些菌中并不起热冲击蛋白质转录的启动作用。
应该提及在上面所引述的论文中，Baird和Thole还证明了在分枝杆菌中热冲击蛋白质的编码基因前部的序列中，存在着一种含有序列GCACTC 9N GAGTGC的回文顺序结构。然而，这个结构的确切作用尚未确定。Thole假设，这个结构或者涉及到出现在热冲击蛋白质编码基因前部的操纵子(operon)转录的末端，或者涉及到多顺反子信使的译码规律。
为了克隆出一种可用于大量放线菌的强力的启动子，(并且最终是可热诱导的)，本发明者研究了链霉菌中热冲击的应答，并且克隆了一种强力表达的蛋白质，以便确定其启动子的特性。事实上，对通过重新合成蛋白质得到的热冲击的应答现象是一种普遍现象;所以人们可次预言，其规律对各种放线菌应该是相似的，特别是具有相同序列的启动子可以用于大量的菌株。
本发明者还在链霉菌中鉴定了两种功能性的启动子，并确定了它们的特性，由于观察到了这两个启动子都含有GCACTC 9N GAGTGC结构，从而确定了该结构的功能。
本发明涉及一个重组的核苷酸序列，其特征为一个启动转录调控序列，这个调控序列含有一个与结构GCACTC 9N GAGTGC联接的启动子，其中的“N”代表下述四个碱其中的任一个T-胸腺嘧啶，G-鸟嘌呤，A-腺嘌呤，C-胞嘧啶;
一个多肽的编码序列，称为“异源多肽”它不同于自然状态下与上述启动子联接的序列，其编码序列位于所述启动转录调控序列的后部，在适当条件下，该位置使得多肽的表达可以在上述启动子控制下进行。
本发明的重组核苷酸序列使得能够在含有异源基因的细胞中表达异源基因。
启动转录调控序列(它是重组核苷酸序列的一部分)是由一个与结构GCACTC 9N GAGTGC相联的启动子所组成的。这里，“相联”是指，结构GCACTC 9N GAGTGC可以不同于启动子，或者该结构可能被包含在(至少部分地被包含在)启动子中。这后一可能性同时包括了两种情况，一种情况是该结构重叠在启动子序列上，另一种情况是该结构组成了启动子整体的一部分。
本发明特别推荐的与结构GCACTC 9N GAGTGC相联的那些出现在放线菌中的启动子，在细菌基因组中，它们通常与热冲击蛋白质相联。作为这类启动子的例子，可以举出白色链霉菌中的18kDa(P1)和56kDa(P2)热冲击蛋白质启动子，在本发明者的发明范围中将它们识别为P1对应于下两序列之一
P2对应于下两序列之一
这些启动子中的任一个都可以在5′端缩短最多4或5个碱基，而不会损害其活性。
另外类型的启动子是那些在10kDa和65kDa结核分枝杆菌在64kDa牛分枝杆菌中的和65kDa麻风分枝杆菌中的热冲击蛋白质启动子。
结构GCACTC 9N GAGTGC与启动子的联连给启动子以热诱导的特性。这个结构有可能是一个操纵子(operateur)，并组成一个阻遏蛋白(represseur)的固定位置，从而阻止RNA多聚酶结合在启动子的-10和-35序列上。
在该结构和启动子分离的情况下，它倾向选择在启动子的前部，例如大概150至200个碱基处。
本发明的重组序列包括(除了启动转录调控序列外)一个多肽的编码序列，称“异源多肽”，它不同于自然状态下与上述启动子联接的序列。这样，启动子直接处在基因环境之中，与包围在产生启动转录活性的基因组之中的情形不同。作为异源多肽类型的例子，可以举出用于生产重组活疫苗的中和抗原，或者对抗生素以抵抗力的多肽，酶，等等。
在本发明的核苷酸序列中，编码序列位于所述调控序列的后部。当然，它们的相对位置是这样的即编码序列的表达在启动子的控制之下发生。
本发明此外还涉及一个表达载体，例如质粒，它包含本发明的核苷酸序列。
本发明同样还包括一个由该表达载体所转化的细胞，所述细胞能够识别启动转录调控序列的启动子，表达多肽。转化细胞是原核生物细胞，特别是属于放线菌类(例如链霉菌或分枝杆菌)的原核生物细胞。
本发明还涉及一个生产多肽的方法，其特征是它包含了以下步骤
-根据本发明，利用表达载体，在允许所述多肽表达的条件下，进行细胞转化，由表达载体所转化的细胞能够识别上述启动子;
-回收所表达的多肽。
允许多肽表达的条件在现有技术中是已知的，在目前情形中它包括最好是热冲击的使用，它具有诱导表达的作用。热冲击可以是提高温度，达到大约37-45℃，尤其是40℃至45℃，例如对链霉菌是37℃或41℃，对于分枝杆菌是42℃至45℃。
值得注意，利用本发明的启动子P1和P2将导致在高温下(例如对于链霉菌在37℃和41℃之间)能维持异源蛋白质的表达。
本发明的另一方面涉及到这样的可能性，即通过把一种启动子与结构GCACTC 9N GAGTGC相结合，使之转化成可热诱导的启动子。更特殊地，本发明的这个方面涉及到一种方法，该方法能赋于启动子以热诱导特性，其特征是两个一个是含有结构GCACTC 9N GAGTGC的序列，另一个是启动子含有结构GAGTC的序列位在启动子的前部，或者把含有结构GACTC 9N GAGTGC的序列全部或至少部分地插入到启动子中部，这后一位置的选择原则是，所述结构的简单插入不含干扰启动子的活性。
本发明涉及的核苷酸序列，其结构GCACTC 9N GAGTGC与启动子的序列不同。
当然，为了能够赋于热诱导特性，结构GCACTC 9N GAGTGC相对于启动子所应该占有的精确位置是随所用的启动子不同而有所变化的。在使用热冲击时，这可以在由待测试的结构所造成的转化细胞中，对易检测的异源基因(例如LacZ那样的标记基因)的表达进行检测而得到验证。位于启动子前部大概150至200个碱基的位置处的结构GCACTC 9N GAGTGC能够给出热诱导特性。在某些情况下，结构GCACTC 9N GAGTGC也可以全部或至少部分地插入启动子中部。这里，插入位置的选择应该使得该结构的简单插入既不干扰其热诱导效应，也不干扰启动子的活性。重要的是，在插入时不能改动启动子的-10的-35序列。这样产生的启动转录调控序列的热诱导特性可以用下述方法进行验证。
在研究启动子时，本发明者探索了不同种链霉菌对热冲击的应答。除分子量为90-100，70及56-58kDa的主要热冲击蛋白质外，还在每个被测试品种中观察到了一种16至18kDa的蛋白质。在30℃至37℃的传代培养过程中，这种蛋白质(称作HSP18)在白色链霉菌中有非常高的产率，可以多达全部蛋白质的10%。70和90-100kDa蛋白质的热冲击诱导是短暂的，然而56-58kDa和18kDa蛋白质热冲击诱导是稳定的，在高温下可以持续生产。
名为HSP18的蛋白质已被表达和确定特性。它的性质与其它热冲击蛋白质的不同。例如，除了它的大小比较小的调节的稳定外，它在高温下还具有一个超过9的等电点。然而这个非常高的等电点不能由它的氨基酸构成(见表2)反映出来。
此外，对它的氨基酸组成的确定显示了一种更基本的蛋氨酸持有者，这和利用了[35S]蛋氨酸的实验结果不一致。这些观察表明HSP18在译码之后发生了变更。
HSP18蛋白质既不对抗埃希氏大肠杆菌groEL蛋白质的多克隆抗体反应，也不对属于麻风分枝杆菌的65kDa热冲击蛋白质的单克隆抗体反应。
对HSP18蛋白质的编码基因“groEL-1”转录的研究表明，HSP18实际上是一种被截去一段的蛋白质。基因groEL-1实际上编码了一种56kDa蛋白质，该蛋白质在码后发生了变更，从而产生了18kDa蛋白质。
图6示出了基因groEL-1的部分序列以及它的氨基酸译码。这个序列证实了由HSP18的Edman蜕变确定的序列。在图6的序列中缺少结束56kDa蛋白质的COOH。18kDa蛋白质的序列被包含在这个序列之中，它们的两个NH2端同时结束第一个(氨基酸)。HSP18最多能扩展到大约170个氨基酸。
图8给出由基图groEL-1编码的蛋白质的全部序列，如同图6所表示的，它包含了HSP18蛋白质。
本发明包括了热冲击多肽，它或者含有(1)显示在图6中的氨基酸序列或对应于图8中的氨基酸链的序列，或者含有(2)呈现与该序列至少有85%-90%同源性的序列，或者含有(3)具有NH2末端和扩展到大约170个氨基酸的序列(1)或(2)的一部分，多肽(3)的大小约为18kDa，并具有约为9的非常碱性的等电点。
通过与groEL型的其它蛋白质的功能的类比，HSP18对细胞的存活可能是至关重要的，并且起着“分子罩”的作用，也就是说，它暂时附着在刚产生的多肽上，阻止不可溶蛋白质的聚集，并且允许脱开，就如同穿过细胞膜进行传递一样，同样可能的是，HSP18涉及到菌株对抗生素的抵抗力，或是涉及到耐热性质。
从一个特殊方面来说，本发明还包括一个含有如图8所示的GroEL1蛋白质的COOH-端区域的多肽。对应于这个定义的特定多肽，含有或对应于下列氨基酸序列，Gly His Gly His Gyl His Ser His。
本发明还涉及一种肽，其氨基酸序列为Gly His Gly His Gly His Ser His。
通过与热冲击蛋白质中已知的多肽COOH-端序列相比较，上述氨基酸序列对应于一个原始的氨基酸链。这个COOH-端序列涉及到18kDa截断蛋白质的形成。
本发明的各个方面在附图中说明
图1(A，B)示意地表示出基因groEL-1，groES和groEL2的克隆。在构成质粒pPM1005和pPM997+Neo时起作用的位置在括号内标明。
图2表示groEL2的启动子P2和groES，groEL-1的启动子P1。
图3表示pPM1005载体，它在白色链霉菌的440pb片段SmaⅠ的控制下含有Tn5的neo基因。这个片段含有启动子P1和groES基因的前160个碱基对。
图4表示pPM997+Neo载体，它在白色链霉菌的800pb片段Bg1Ⅱ/SstⅠ的控制制下含有Tn5的neo基因。这个片段含有启动子P2和groEL2基因的前183个碱基对。
图5表示groES结构基因和GroES蛋白质的核苷酸序列及所导出的氨基酸序列。
图6画出HSP18前端蛋白质的核苷酸序列以及导出的氨基酸序列。
图7表示gro es el操纵子的核苷酸序列及其启动子序列。
图8表示完整的，由与之对应的groEL1基因所编码的氨基酸序列。
图9表示完整groEL1基因的核苷酸序列。
实例温度对链霉菌中蛋白质合成的作用在使用热冲击(温度从30度过渡到41℃)的前后，对链霉菌的所有15个不同品种的蛋白质进行了制备。90-100，70以及56-58kDa的几种主要热冲击蛋白质已往在染成柯氏蓝的SDS-PAGE凝胶中检测到。此外，对应于18kDa蛋白质的分子带也已在某些品种中观察到。这种蛋白质在白色链霉菌中被十分强烈地诱导出来。
蛋白质的免疫学特性实现了对凝胶中蛋白质的“Western印迹”，其中使用了对麻风分枝杆菌的65kDa热冲击蛋白质的单克隆抗体和对埃希氏大肠杆菌的groEL蛋白质的多克隆抗体。所有蛋白质都不对单克隆抗体作出反应，只有HSP56-58对多克隆抗体有反应。
蛋白链霉菌中热冲击蛋白质的研究通过对所有的蛋白质在30℃和41℃的电泳，分析了白色链霉菌对热冲击的应答。蛋白质进行了40分钟的标记，所用的氨基酸是[35S]蛋氨酸和[14C]丙氨酸，已经能够观察到四种主要的热冲击蛋白质。HSP90在30度时尚不能检测到，但在热冲击后它出现了，约占全部蛋白质的3%，HSP70的产率至少高一倍。HSP56-58还要多出30%，HPS18在热冲击之前也检测不到，但冲击后约占全部蛋白质的4%至7%(见表1)。
表1进行14C丙氨酸和35S蛋氨酸标记后，几种主要热冲击蛋白质合成的定量产率。
30℃和41℃时的合成产率a蛋白质35S/30℃35S/41℃14C/30℃14C/41℃分子量b90 c 3 - 2.970 2.7 6.4 2.3 5.856-58 6.8 8.4 6.2 9.018 ＞0.7？ 6.9 ＞0.7？ 3.8a.由放射自显影照片上测得的光密度(O.D)百分比形式表示。
b.分子量单位是kDa。
c.没有检测。
白色链霉菌HSP18的研究白色链霉菌的18kDa蛋白质(HSP18)是非常碱性的，它已被纯化，并且其氨基酸的部分组成已被确定(见表2)表2HSP18的氨基酸组成Asx 12.2Thr 9.4Ser 3.2Glx 10.8Ala 12.1Cys 0.0
Met 0.0Val 9.2Ile 5.7Leu 6.8Tyr 1.3Phe 1.9His 0.3Lys 6.9Arg 4.5Gly 11.0Pro 4.4蛋白质的NH2端和两个内部片段的序列已借助Edman蜕变确定。
寡核苷酸的合成基于上述内部片段的肽序列，已经合成了两种30个碱基的寡聚核苷酸探针。该片段的序列为…D-D-P-Y-E-N-L-G-A-Q…所合成的脱氧寡聚核苷酸探针如下
热诱导蛋白质HSP18基因的克隆在60℃下与SSC 5x杂交之后，这些寡聚核苷酸探针能够描述和克隆白色链霉菌的1.9kb的Xhol限制性片段(见图1中的克隆A)。
这个片段的序列已被确定;它含有开放式结构的形态，对于超过50kDa的蛋白质，它从位于430位置处的一个ATG开始，扩展到编码克隆区，但是它的NH2末端对应于从HSP18的肽序列中导出的核苷酸序列。此外，该基因在其整个长度上都与埃希氏大肠杆菌的热冲击蛋白质groEL和麻风分枝杆菌的65kDa蛋白质氨基酸序列有高度的同源性(75%的同源性)。最初，这个基因被称做“groEL1”。
白色链霉菌中第二种“类grlEL”确定和克隆利用麻风分枝杆菌HSP65基因的5′端部分作为探针，实现了白色链霉菌基因组的杂交，在和白色链霉菌的基因组杂交之后，这个探针给出两个信号，一个强信号和一个弱信号，不论使用了什么样的酶来消化DNA都是如此。弱信号对应于从HSP18导出的寡聚核苷酸得到的信号，也就是从groEL1基因得到的信号。强信号对应于另一种具有典型大小(65kDa)的“类groEL”蛋白质的编码基因。于是在白色链霉菌中有两种groEL基因。
白色链霉菌HSP65热冲击蛋白质基因的克隆由麻风分枝杆菌的HSP65探针强烈反应1.2kbxhoⅠ限制性片段已被克隆(克隆C见图1)。
该片段的核苷酸序列已被确定。1.2kb的xhoⅠ片段碥码了一个麻风分枝杆菌65kDa蛋白质有90%的同源性的蛋白质内部片段，此外，白色链霉菌中的两种“类groEl”基因1和2有80%的同源性。
这种65kDa蛋白质的编码基因称做groEL2。
“类groEL”基因转录及启动子的研究。
在热冲击实验的过程中提取了白色链霉菌菌株的全部的RNA，并以“Northern印迹”技术进行了处理，然后与各种寡聚核苷酸进行杂交，或者用groEL1序列进行合成，或者用groEL2序列进行合成，并且分别确定了这两个序列中所选择的区域。在与两个克隆片段进行新的杂交时，使用了同一硝纤维素滤膜，观察到了三个有非常强的热诱导性的转录产物;它们的大小分别约为2500，2100和650个碱基。2100个碱基的对应于groEL2的转录产物;650个碱基的对应于位于groEL1前部的基因的转录产物;2500个碱基的对应于groEL1和位于groEL1前部的基因的共同转录产物。这些结果表明，一方面，groEL1和groEL2两种基因有强力的和可诱导的，尤其是热冲击性的启动子，另一方面，groEL1的启动子在1.9Kb片段中没有被克隆。特别是，这些结果证明了，在分枝杆菌中，在图1标有“P？”的环上没有任何RNA来行使一个假定能够作为启动子的序列。
事实上，这个环含有两个TTTGCCGGG和TTTCAT序列，虽然还缺乏对启动子结构描述的工作，它们已被认为分别是分枝杆菌中65kDa蛋白质的启动子的-35和-10区域(例如见J.Gen.Microbiol，(1989)，135，931-939)。这些结果表明，这两个序列不构成白色链霉菌中groEL1基因的启动子的一部分。
所研究的启动子应该位于形成携带groEL1操纵子基因的前部。位于groEL1前部的基因已被鉴别;这涉及到一种与埃希氏大肠杆菌的groES基因相高度同源的基因，在那里它同样形成了groEL1的操纵子(见图5)。
两种基因groEL1和groEL的启动子区的克隆借助于从用上述方法克隆的片段序列而合成的寡聚核苷酸，已经克隆了两种新的白色链霉菌DNA片段，它们已被BclⅠ/SacⅠ(1700bp)和Bg1Ⅱ/SacⅠ/(900bp)消化。于是它们分别部分地复盖了带有groEL1和groEL2的片段，并且各自都延伸到约800bp的前部(图1的克隆B和D)。
这些片段的序列已经确定，然后利用核酸酶S1的结构描述和反转录中的诱发扩展，研究了启动子的特性。这样确定了特性的两种基因groEL1和groEL2的启动子不具有相同的序列(图2)，但它们具有重要的结构同源性，特别是它们都呈现下述回文顺序结构GCACTC 9N GAGTGC两种启动子的序列如下P1对应于下两序列之一
P2对应于下两序列之一
利用groEL1和groEL2启动子表达异源基因这两个启动子已用来表达克雷伯氏菌的Tn5转座子的异源基neo，这个基因编码了氨基磷酸转移酶(APH)从而赋与了对新霉素/卡那霉素抵抗力。该基因已克隆在两个启动子的后部(图3和图4)，然后导入白色链霉菌和变铝青链霉菌中，于是这个新基因被有力地表达，证明它对所给予的抗生素有高水平的抵抗力。此外，我们已经能观察到在聚丙烯酰胺凝胶中电泳后的原始提取物中的APH合成和对抗APH抗体的免疫斑点。应该强调，这些结果是用整体的载体在链霉菌中得到的。因此在这些实验中只有基因neo的和用基因组研究的启动子一个考贝。事实上，为了判断启动子的能力，重要的是不要使用大量拷贝的载体来增加neo的拷贝数目，从而人为地增加neo的表达。
同样，pPM1005的HihdⅢ-BanHⅠ片段和pPM997的SmaⅠ-SmaⅠ片段也已被插入到分枝杆菌中去。pPM997的SmaⅠ-SmaⅠ片段含有neo基因，启动子P2和终止子。
权利要求
1.重组核苷酸序列，其特征是，它包括一个启动转录调控序列，这个调控序列含有一个与结构GCACTC 9N GAGTGC联接的启动子，其中“N”表示四个基团胸腺嘧啶，鸟嘌呤，腺嘌呤和胞嘧啶中的任何一个；一个多肽的编码序列，称做“异源多肽”，它不同于自然状态下与上述启动子联接的序列，所述编码序列位于所述启动转录调控序列的后部，在适当条件下，该位置使得多肽的表达可在上述启动子的控制之下进行。
2.根据权利要求1的核苷酸序列，其特征是，启动子是一种与热冲击蛋白质(例如出现在放线菌中的那种类型)正常相联的启动子。
3.根据权利要求1或2中任何一个核苷酸序列，其特征是，结构GCACTC 9N GAGTGC至少部分地被包含在启动子序列的中部。
4.根据权利要求2和3的核苷酸序列，其特征是，启动子是从下述序列中选出的P1对应于下两序列之一
P2对应于下两序列之一
5.根据权利要求1或2的核苷酸序列，其特征是，结构GCACTC 9N GAGTGC与启动子的序列不同。
6.根据权利要求5的核苷酸序列，其特征是，结构GCACTC 9N GAGTGC出现在启动子序列的前部，例如，约在前部150至200个碱基处。
7.根据权利要求1至6中任一个的含有重组核苷酸序列的表达载体，它能够表达多肽。
8.根据权利要求7的表达载体，它是一种质粒。
9.根据权利要求7和8中任一个的由表达载体转化的细胞，它能够识别所述启动子和表达所述多肽。
10.根据权利要求9的细胞，它是一种原核生物细胞，例如是放线菌类的细胞。
11.多肽的生产方法，其特征是，它包括下述步骤利用根据权利要求7或8中任一个的表达载体，在允许表达所述多肽的条件下进行细胞转化，所述细胞能够识别所述启动子;回收所表达的多肽。
12.根据权利要求11的方法，其特征是，允许表达所述多肽的条件包括应用热冲击。
13.根据权利要求11或12中的任一个的方法，其特征是，细胞是一种例如是放线菌类的原核生物细胞，更确切是链霉菌的细胞。
14.赋予启动子以热诱导特性的方法，其特征是，一方面含有结构GCACTC 9N GAGTGC的序例，另一方面是启动子;含有结构GCACTC 9N GAGTGC的序列位于启动子的前部，或者把含有结构GCACTC 9N GAGTGC的序列插入到这样的位置上，该位置至少部分地位于启动子的中部，该位置的选择方式使得所述结构的简单插入不会干扰启动子的活性。
15.根据权利要求14的方法，其特征是，启动子是一种出现在放线菌类，例如链霉菌或分枝杆菌中的启动子。
16.启动转录调控序列，其特征是，它包含与结构GCACTC 9N GAGTGC联连的启动子，这个序列没有通常与该启动子相联的编码序列。
17.启动转录调控的序列，其特征是，它含有下列序列之一P1对应于下两序列之一
或
P2对应于下两序列之一
18.热冲击多肽包括或者(1)下列氨基酸序列之一;或者(2)呈现与该序列有至少85-90%的同源性的一个氨基酸序列;或者(3)，序列(1)或(2)的一部分，所述部分含有NH2末端和所述多肽的大小约为18kDa，等电点约为9
或者含有下述序列
19.根据权利要求18的多肽，其特征是，从第1个氨基酸延伸到最多为170个氨基酸的氨基酸序列。
20.根据权利要求18或19中的任一个的热冲击蛋白的编码核酸序列。
21.根据权利要求20的核酸序列，其特征是，它至少包括权利要求18中所描述的序列的一个片段。
22.多肽，其特征是，它的COOH-终端区是由氨基酸序列Gly His Gly His Gly His Ser His结束的。
23.肽，其特征是，它对应于氨基酸序列Gly His Gly His Gly His Ser His。
全文摘要
本发明涉及一种重组核苷酸序列，其特征是，它包括一个启动转录调控序列，这个调控序列含有一个与结构GCACTC 9N GAGTGC联接的启动子，其中“N”表示四个基团胸腺嘧啶，鸟嘌呤，腺嘌呤和胞嘧啶中的任何一个；一个多肽的编码序列，称做“异源多肽”，它不同于自然状态下与上述启动子联接的序列。所述编码序列位于所述启动转录调控序列的后部，在适当条件下，该位置使得多肽的表达可在上述启动子的控制之下进行。
文档编号C07K14/36GK1059935SQ9110872
公开日1992年4月1日 申请日期1991年9月10日 优先权日1990年9月10日
发明者梅佐迪尔·菲利普, 古格埃尔米·热拉尔 申请人:巴斯德研究所