水1:9、2 :8、3:7、5:5、6:4、7:3梯度 洗脱，依次得到化合物2 (20. lmg)、I (9. 2mg)。
[0029] 实施例2
[0030] 黄腊果根4kg，粉碎后用12倍，10倍和8倍的95%醇室温下温浸提取三次，（第 一次4小时，第二次4小时，第三次3小时）过滤，合并滤液，回收溶剂或蒸干至浓缩至无 醇味后，加水稀释至2升，用非极性大孔吸附树脂D-101分离，流动相为甲醇/水，依次经 水、40^^85%甲醇洗脱，得到40%醇洗脱物，进一步用硅胶柱色谱分离，按每克提取物加入 1. 5克硅胶拌样装柱，用二氯甲烷/甲醇系统20:1、15:1、12:1、10 :1、7:1、5:1、3:1、2:1梯度 洗脱。取 10:1-2:1 的流分用 ODS 分离，经 1:15、1:10、3:20、1:5、1 :4、1:3、2:5、1:1、4:3 的 乙腈/水梯度洗脱，依次得到化合物2 (5. 6mg)、1 (4. 3mg)。
[0031] 实施例3
[0032] 黄腊果茎3kg，粉碎后用12倍，10倍和8倍的60%醇80°C下加热提取三次，（第 一次4小时，第二次3小时，第三次3小时）过滤，合并滤液，回收溶剂或蒸干至醇浓度小 于5%，加水稀释至6升，按1:1的比例，用环己烷、氯仿、乙酸乙酯、正丁醇萃取，分别萃取2 次，目标化合物主要富集于正丁醇层，合并正丁醇萃取液，回收溶剂，得到浸膏，用硅胶柱色 谱分离，按每克提取物加入1. 5克硅胶拌样装柱，用二氯甲烷/甲醇系统20:1、15:1、12:1、 10:1、7:1、5:1、3 :1、2:1 梯度洗脱。取 10:1-2:1 的流分用 ODS 分离，经 1:15、1:10、3:20、 1: 5、1: 4、1: 3、2: 5、1:1、4:3的乙腈/水梯度洗脱，依次得到化合物2 (20. lmg)、I (II. 6mg)。
[0033] 实施例4
[0034] 黄腊果茎3kg，粉碎后用12倍，10倍和8倍的80%醇80°C下加热回流提取三次， (第一次4小时，第二次3小时，第三次3小时）过滤，合并滤液，回收溶剂或蒸干至浓缩无醇 味，加水稀释至6升，用非极性大孔吸附树脂HPD-100分离，流动相为乙醇/水，依次经水、 40%、70%乙醇洗脱，得到70%醇洗部分，回收溶剂，得到浸膏，用硅胶柱色谱分离，按每克 提取物加入1.0克硅胶拌样装柱，用二氯甲烷/甲醇系统20:1、15:1、12:1、10:1、7:1、5:1、 3:1、2:1梯度洗脱。分别取10:1-2:1的流分用ODS分离，甲醇/水1:9、2 :8、3:7、5:5、6:4、 7:3梯度洗脱，依次得到化合物2 (3. 7mg)、I (3. 2mg)。
[0035] 实施例5
[0036] 黄腊果根3kg，用12倍，10倍和8倍的60%甲醇室温下超声提取三次，（第一次3 小时，第二次2小时，第三次2小时）过滤，合并滤液，回收溶剂或蒸干至浓缩无醇味，加水 稀释至3升，按1:2的比例，用正己烷、氯仿、乙酸乙酯、正丁醇萃取，分别萃取3次，目标化 合物主要富集于乙酸乙酯层，合并、回收溶剂，得到浸膏；进一步用硅胶柱色谱分离，按每克 提取物加入1.0克硅胶拌样装柱，用二氯甲烷/甲醇系统20:1、15:1、12:1、10:1、7:1、5:1、 3:1、2:1梯度洗脱。分别取10:1-2:1的流分用ODS分离，甲醇/水1:9、2 :8、3:7、5:5、6:4、 7:3梯度洗脱，依次得到化合物2 (25. 3mg)、1 (17. 4mg)。
[0037] 实施例6
[0038] 黄腊果茎4kg，用12倍，10倍和8倍的80%甲醇室温下超声提取三次，（第一次 3小时，第二次2小时，第三次2小时）过滤，合并滤液，回收溶剂或蒸干至浓缩无醇味，加 水稀释至2升，经中等极性树脂XAD-6大孔吸附吸附树脂，流动相为甲醇/ 7K，依次经水、 45%、85%甲醇洗脱，得到85%醇洗部分，回收溶剂，得到浸膏，用硅胶柱色谱分离，按每克 提取物加入1.0克硅胶拌样装柱，用二氯甲烷/甲醇系统20:1、15:1、12:1、10:1、7:1、5:1、 3:1、2:1 梯度洗脱。分别取 10:1-2:1 的流分用 ODS分离，经 1:15、1:10、3:20、1:5、1:4、1:3、 2: 5、1:1、4:3的乙腈/水梯度洗脱，依次得到化合物2 (15. 3mg)、1 (10. 4mg)。
[0039] 实施例7
[0040] 黄腊果叶2kg，用12倍，10倍和8倍的75%醇室80°C提取三次，（第一次4小时， 第二次3小时，第三次3小时）过滤，合并滤液，回收溶剂或蒸干至浓缩至醇浓度低于5%， 加水稀释至4升，弱极性大孔吸附树脂AB-8纯化，流动相为乙醇/水，依次经水、40 %、80 % 乙醇洗脱，得到80%醇洗部分，回收溶剂，得到浸膏，用硅胶柱色谱分离，按每克提取物加入 1.0克硅胶拌样装柱，用二氯甲烷/甲醇系统20 :1、15:1、12:1、10:1、7:1、5 :1、3:1、2:1梯 度洗脱。分别取10:1-2:1的流分用ODS分离，甲醇/水1:9、2 :8、3:7、5:5、6:4、7:3梯度洗 脱，依次得到化合物2 (I I. 2mg)、I (7. 5mg)。
[0041] 实施例8
[0042] 黄腊果果实4kg，用12倍，10倍和8倍的70%醇室80°C提取三次，（第一次4小时， 第二次3小时，第三次3小时）过滤，合并滤液，回收溶剂或蒸干至浓缩至无醇味，加水稀释 至4升，按1:1的比例，用正己烷、氯仿、乙酸乙酯、正丁醇萃取，分别萃取3次，目标化合物 主要富集于正丁醇层，合并、回收溶剂，得到浸膏；进一步用硅胶柱色谱分离，按每克提取物 加入1.0克硅胶拌样装柱，用二氯甲烷/甲醇系统20:1、15 :1、12:1、10:1、7:1、5:1、3 :1、2:1 梯度洗脱。分别取10:1-2:1的流分用ODS分离，甲醇/水1:9、2:8、3 :7、5:5、6:4、7:3梯度 洗脱，依次得到化合物2 (I I. 2mg)、I (9. 5mg)。
[0043] 实施例9
[0044] 黄腊果根6kg，粉碎后用12倍，10倍和8倍的70%乙醇室80°C提取三次（第一次 4小时，第二次3小时，第三次3小时）过滤，合并滤液，回收溶剂或蒸干至浓缩至醇浓度低 于5%，加水稀释至6升，经非极性大孔吸附树脂HPD 100以乙醇/水为流动相，依次经水、 40%、70%乙醇洗脱，得到70%醇洗部分，回收溶剂，得到浸膏，用硅胶柱色谱分离，按每克 提取物加入1.0克硅胶拌样装柱，用二氯甲烷/甲醇系统20:1、15:1、12:1、10:1、7:1、5:1、 3:1、2:1梯度洗脱。分别取10:1-2:1的流分用ODS分离，甲醇/水1:9、2 :8、3:7、5:5、6:4、 7:3梯度洗脱，依次得到化合物2 (47. 2mg)、1 (29. 5mg)。
[0045] 实施例10
[0046] 黄腊果根6kg，粉碎后用12倍，10倍和8倍的70%乙醇室80°C提取三次（第一次 4小时，第二次3小时，第三次3小时）过滤，合并滤液，回收溶剂或蒸干至浓缩至醇浓度低 于5%，加水稀释至6升，经非极性大孔吸附树脂HPD 100以乙醇/水为流动相，依次经水、 40 %、70 %乙醇洗脱，得到70 %醇洗部分的活性组合物。
[0047] 实施例11
[0048] 黄腊果茎4kg，用12倍，10倍和8倍的70%醇室80°C提取三次，（第一次4小时， 第二次3小时，第三次3小时）过滤，合并滤液，回收溶剂或蒸干至浓缩至无醇味，加水稀释 至4升，按1:1的比例，用正己烷、氯仿、乙酸乙酯、正丁醇萃取，分别萃取3次，富集于正丁 醇层，合并、回收溶剂，得到活性组合物。
[0049] 化合物1、2的结构鉴定数据如下：
[0050] 化合物1:白色粉末（CH3OH)，254nm下无暗斑，365nm下无突光，体积分数为10%硫 酸-乙醇显紫色，HR-TOF-MS中给出准分子离子峰[2M+Na+K] 2+:m/z 1500. 6718 (calcd. for 1500. 5993)，示分子式为 C67H1Q6033。
[0051] 化合物2 :白色针状粉末（CH3OH)，紫外（254nm)下无暗斑，体积分数为10 %硫 酸-乙醇溶液显紫色，HR-ESI-MS中给出准分子离子峰[M+Na]+;m/z:701. 3880(calcd 701. 3871，C37H58Na1O11)，示分子式为 C37H580n。
[0052] 表1化合物1和2降甲基三萜母核部分的核磁数据
[0053]
[0054]
[0055] 表2化合物1糖部分的核磁数据
[0056] Γ?，、《·， .、 如1，*^，.、 X / ? 1 I_I I D，、<， ?-i
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