专利名称：筛选核酸以寻找核苷酸变异的方法
背景技术：
发明领域本发明与在核酸中探测核苷酸变异的领域有关。更具体地说，本发明有关在核酸中检测核苷酸变异的方法。该方法从样品获得一种核酸的不同长度的拷贝，把它们与参照核酸杂交并检测在这些不同长度的核酸的3’末端位点或3’末端倒数第二个位点上是否存在核苷酸变异。
领域背景随着人类基因组序列的破译，与基因突变相关连的疾病数目持续增长。核酸的测序是检测核苷酸变异的主要方法。它非常适用于在目标核酸片段上检测未知的突变或多态现象，这些现象可能出现在任何碱基上。酶法DNA测序是最常用的方法，从它开始(Sanger et al.,Proc.Natl.Acad.Sci.U.S.A.,74,5463(1977))就基本上没有什么变化。诸如引入荧光染色、机器人和自动检测的电泳系统，这些技术改善了本领域并产生了它的自动化。然而，如果样品中遗传变异的发生频率很低，这种自动化的成本对于大多数的实验室来说都将太高。于是本领域需要一种用于测序之前的简便廉价的方法来筛选核酸寻找核苷酸变异。
众多筛选未知突变的方法的形成使本领域的这种需求非常明显。单链构象多态型(SSCP)通过与已知样品比较在非变性凝胶中单链状态的迁移率来探测未知样品中的突变，该方法由Orita et al.提出，Genomics,5:874-879(1989)。核苷酸序列的变化影响DNA分子的二级结构或构象以致改变其电泳时的迁移率。然而，这一技术限于200bp以内的目标DNA，敏感性较低，再现需要严格的电泳条件。SSCP分析有了一些改进，例如双脱指纹技术-包括双向(Liu et al.,HumMol.Genet.,5:107-114(1996))和单向(Sarkar et.al.,Genomics,13:441-443(1992))，以及限制性内切酶指纹技术(Liu andSommer.Biotechniques,18:470-477(1995))，这些技术能够探测大于1kb的片段上的突变，但它们使得DNA片段结构复杂化从而使敏感度降低，探测突变变难。
在核酸中筛选核苷酸突变的另一种方法基于它们在凝胶基质中迁移时异源双链分子不同的迁移率，这一方法的最简形式被叫做异源双链分析，首次见于Nagamine et al.(Am.J Hum Genet.,45,337-339(1989))，一段未鉴定的DNA片段，通常为扩增物或PCR产物，与相应的野生型片段混和，加热，使之慢慢地复性。如果未鉴定的片段与野生型的片段序列不同便形成了异源双链分子碱基的错配改变了异源双链分子在非变性凝胶中的迁移率，使之与同源双链分子部分分离。
还有一种更加灵敏的方法叫做变性梯度凝胶电泳(DGGE)，使异源双链分子在凝胶中遭遇呈梯度增加的变性剂。首次描述于Fisherand Lerman(Proc.Natl.Acad.Sci.U.S.A,80:1579-1583(1983))。随着异源双链分子在变性剂中迁移，它们开始熔解变性，使得迁移减缓并不再呈线性。对于同源双链分子来说熔解温度略不有同，使得异源双链分子能够部分地分离，为了获得再现的结果，需要精确控制场强度、温度和时间，因此要不断重复再现有一定困难。
对于恒定变性凝胶电泳(CDGE)来说，这些变量就稍不重要，因为整个凝胶中变性剂的浓度是恒定的(Hoving et al.,Mut.Res.,262:63-71(1991))。一个核酸片段可能含有不止一个的熔解结构域，这样就不得不在不同的凝胶中制备不同的变性剂浓度用以电泳。这是CDGE的一大限制因素。
时序温度梯度凝胶电泳(TTGE)希望通过逐步升高电泳过程中的温度来规避CDGE的问题，见Borresen et al.(Bioradiations,99:12-113(1997))。这是CDGE和温度梯度凝胶电泳这两种技术的结合产物。温度梯度凝胶电泳仅仅把温度作为一种变性剂(Rosnbaum andRiesner,Biophys.Chem.,26:235-246(1987))。正如料想的一样，这一技术也难于实施并很难重现。
最近问世的一项技术叫做碱基切除序列扫描(BESS)，它由使用ddTTP的双脱氧指纹技术改进而来，免去了单独的测序反应(Epicentre Technologies,Madison,WI.)使用标记引物和限量的dUTP对目标DNA进行PCR扩增。扩增产物用尿嘧啶DNA糖基酶处理，在尿嘧啶位点处剪切。片段经过变性凝胶电泳后产生的梯与双脱氧胸腺嘧啶序列梯几乎完全相同。这一技术适用于筛选1kb以上片段DNA上的突变，但受到凝胶电泳分辨率的限制并且不能检测出G到C或C到G的突变。
另一种最近问世的技术使用一种叫做剪切酶的结构特异性内切酶去消化链内结构并产生片段长度多态型(CFLP)，见于Brow etal.,J.Clin.Microbiol.,34:3129～3137(1996)。这种结构的产生是通过先将一段DNA片段变性然后快速冷却到消化温度并加入酶。由于序列变异，特定片段DNA的折叠方式可能受到改变，通过用酶消化可在变性凝胶中产生一种独特的条带图形。然后，这一技术受到凝胶电泳分辨率的极大限制，这一过程中产生的DNA条带的复杂图形也使探测突变较为困难。
通过化学或酶切割在于异源双链DNA中的错配碱基以探测突变，这一方法见于Noack et al.,Proc Natl Alad.Sci.U.S.A.,83:586-590(1986),Cotton et al.Proc.Natl.Acad.Sci.U.S.A.,85:4394-4401(1988),Cotton et al.,U.S.Pat.No.5,202,231,(Winter et al.,Proc.Natl.Acad.Sci.U.S.A.,82:7575-7579(1989),Myers et al.,Science,230:1245-1246(1985)),(Luand Hsu,Genomics,14:249-255(1992))和U.S.Pat.No.5,698,400。这些技术中的大多数都因为剪切试剂无法识别所有类型的碱基错配而受到限制，另外一些技术可通过分析DNA片段的每一条链来克服这一限制。到目前为止，还没有发现这些技术的大规模使用，因为它们需要剧毒反应试剂并且它们的操作很难完成。
把DNA杂交过程微缩到一种小的固体表面上，即大家所知的DNA蕊片或微阵列，使得对于DNA片段的分析不再需要凝胶电泳。参见Macevicz,U.S.Pat.No.5,002,867,Drmanac.,U.S.Pat.No.5,202,231,Lipshutz et al.,Biotechniques,9(3)442～447(1995)和Chee etal.Science,274:610～614(1996))。然而，由于凝胶电泳的分辨率问题，前面所述的突变检测技术，包括DNA测序在内，都受到DNA片段大小的严格限制，这一方法中设备和蕊片的高成本限制了它的广泛使用。
本发明在这些以前的方法的基础上作了需要的改进并提供了一系列方法，用它们可以检测到任何可能的碱基变异，包括单个和多个碱基替换，插入和缺失。这些突变可以发生在一个或多个位点上并且影响每个位点上的一个或多个核苷酸。第二，作为一种筛选方法，本发明会产生非常明显的阳性或阴性结果。第三，本方法不受凝胶电泳分辨能力的限制因此可以对大于1kb的DNA片段进行分析。最后，因为无需电泳检测，本方法非常适于自动化因此适合大规模的筛选。
发明概述正如这里实施和广泛描述的，本发明符合其目的，在一方面，它有关于在初始核酸中探测核苷酸变异的一种方法，包括在存在修饰核苷酸条件下产生一系列以初始核酸为模板的单链延伸产物，这些延伸产物包含修饰的核苷酸并借此抑制核酸外切酶对3’末端核苷酸碱基的外切酶活性。这些延伸产物有着不同的长度，把它们与参照核酸杂交，并使用一种酶作用于杂交的核酸。在存在选择性标记的核苷酸的条件下，可用该酶切除并替换延伸产物的3’末端核苷酸。这样，那些在3’末端处无法与参照核酸对应位置杂交的延伸产物在相应的位置被替换以一个或多个可与参照核酸杂交的核苷酸。这样就可以把在3’末端可与参照核酸杂交的和不可与参照核酸杂交的延伸产物区别开来，并由此探测初始核酸上的核苷酸变异。
本发明又另外提供一种在初始核酸中检测核苷酸变异的方法，包括在存在修饰的核苷酸的条件下产生一系列单链延伸产物，延伸产物中的修饰核苷酸可抑制核酸外切酶对3’末端碱基的活性。这些延伸产物有着不同的长度，把它们与参照核酸杂交，并用一种酶处理，在存在选择性修饰的核苷酸条件下，该酶可以切除并替换延伸产物的3’末端核苷酸。这种被替换上去的选择性修饰核苷酸不会被再次替换而且可以抑制延伸产物的进一步延伸，而以非修饰核苷酸为末端的延伸产物则可以进一步的延伸，从而与那些不能进一步延伸的延伸产物区别开来。去除没有引入的选择性修饰的核苷酸，延伸那些可以进一步延伸的延伸产物，把可继续延伸的和不可继续延伸的延伸产物区别开来，从而检测初始核酸中的核苷酸变异。
本发明进一步提供一种在初始核酸中检测核苷酸变异的方法，包括在存在修饰核苷酸碱基和链终止核苷酸碱基的条件下，产生一系列以初始核酸为模板的延伸产物，它们包含修饰的核苷酸，可以抑制核酸外切酸对于3’末端核苷酸碱基的活性。这延伸产物有着不同的长度，把它们与参照核酸杂交，之后在存在三磷酸脱氧核苷酸的条件下，用一种可以切除并替换延伸产物3’末端核苷酸的酶去处理杂交核酸。3’末端的倒数第二个核苷酸不会被切除，因此如果在这一位置上含有不能与参照核酸配对的核苷酸，它不能被替换掉，因此不能够进一步地延伸。延伸那些可以进一步延伸的延伸产物，把可以进一步延伸和不可以进一步延伸的延伸产物区别开来，从而检测出初始核酸中的核苷酸变异。
附图简述
图1为单碱基延伸模板交换反应延伸检测方法的图示。
图2为延伸检测法图示。
图3为使用抗外切酶活性末端的非延伸模板交换延伸反应检测法图示。
图4为使用3’末端双脱氧核苷酸的非延伸模板变换延伸反应检测法图示。
发明详述通过参考以下对于本发明优选实施方案的详细描述以及其中的实施例，我们可以更容易地理解本发明。
在说明和描述本实验中的化合物和方法之前，我们需要知道本发明不限于特定的核酸、链终止核苷酶，剪接酶，延伸和/或扩增酶，可探测成分以及其他本发明中使用的试剂，它们当然可以变通使用，我们还需认识到这里所使用的术语是为了描述特定的实验方案而不是为了去限制。
必须指出，在本说明书和所附的权利要求中使用的单数形式“一个”、“一种”、“这”包括有复数的含义，除非上下文明确指出不是这样。因此，例如，提到“一种核酸”包括该核酸的多个拷贝而且可能包含不止一种种类的分子。
一方面，本发明有关于在初始核酸中探测核苷酶变异的一种方法，包括在存在修饰核苷酸的条件下产生一系列以初始核酸为模板的单链延伸产物。这些延伸产物包含有修饰的核苷酸，它们借此抑制核酸外切酶对3’末端核苷酸碱基的活性。这些延伸产物有着不同的长度，把它们与参照核酸杂交，并使用一种酶作用于杂交后的核酸。在存在选择性标记的核苷酸的条件下，可用该酶切除并替换延伸产物的3’末端核苷酸。这样那些在3’末端处无法与参照核酸对应位置杂交的延伸产物在相应的位置被替换以一个或多个可与参照核酸杂交的核苷酸。这样就可以把在3’末端可与参照核酸杂交的和不可与参照核酸杂交的延伸产物区别开来，并由此探测初始核酸上的核苷酶变异。
这里所说的核酸变异是指在一种核酸(初始核酸)的一个或多个位点上发生的替换、插入或缺失，或它们的组合。例如，一种核酶可能在被分析的某一区域有一个碱基被替换，或者在该区域有多个碱基被替换，或者发生任何碱基替换、插入和缺失的组合。这里所说的核酸变异也指任何可以引起表现型或基因型改变的核苷酸修饰。这里所描述的方法可以探测碱基替换、缺失、插入或任何其他的突变，这种突变导致一种核酸上的核苷酸无法与另一条独立的，至少部分互补的核酸上的相应核苷酸发生杂交。
初始核酸可以是一种来源于样品，即一个病人或实验样品，的单链或双链核酸。参照核酸可以是一种标准的或用于参照的核酸，初始核酸可与之杂交和/或比较。在这里所描述的方法中，初始核酸的一条或多条链被用于生成一系列至少部分抗3’→5’外切酶活性的单链延伸产物，这里延伸产物选择性地含有链终止核苷酸或在它们的3’末端含有脱氧核苷酸，以便生成的一系列延伸产物具有不同的长度。
本发明中所用的初始核酸的生产和分离可通过目标区域的扩增而简化。可以把目标区域克隆到诸如质粒或噬菌体的复制载体上，然后生成双链或单链的分子，如果初始核酸是通过克隆该核酸而得到的，在核酸被复制之后，则有许多已知的方法用于从克隆载体上分离核酸，如噬菌体分离，质粒分离，首先裂解菌体，对细胞蛋白作变性处理，最后离心核酸，或者甚至通过密度梯度离心产生质粒或噬菌体的核酸的密度条带。
本领域的技术人员会意识到还有许多其他的扩增技术可用于生成核酸一条或多条链的拷贝，如聚合酶链式反应(PCR)，其他的扩增技术也可以用来扩增一种核酸，自动维持序列扩增(3SR)系统，基于转录的扩增系统(TAS)，和基于Qβ复制酶的RNA复制系统。因此，扩增的产物，初始核酸，和/或参照核酸可能是RNA或DNA，可能是单链，也可能是双链。如果扩增产物是双链的，分离出单链的方法在本领域已为人们熟知，如使用与生物素联接的扩增引物或使用lambda外切核酸酶对磷酸化的链进行选择性地降解，见Higuchi and Ochman，NucleicAcids Research,17:5865(1989)，本领域还有其他一些可选的方法用于生成单链的模板，如不对称PCR(Ausbel et al,“Current Protocolsin Molecular Biology”,John Wiley&Sons,New York(1987)),和固相捕获(Holtman et al.,Nucleic Acids Research,17:4937-4946(1989))，如果扩增的产物是RNA，可以使用本领域中熟知的技术如使用反转录酶从RNA生成DNA。
不管这里描述的方法中的初始核酸是经过扩增的，或者经是直接获得的，如来源于病人样品或任何其他实验样品，最终该核酸作为模板用于生成一系列不同长度的单链延伸产物。例如，在反应中可以使用链终止双脱氧核苷酸生成的一系列单链延伸产物在双脱氧核苷酶引入的每一个位置发生终止。更好的情况是，这一系列长度变化的单链延伸产物中，在每一个可能的位置上引入特定种类的双脱氧核苷酸的延伸产物的数目至少是一，也就是形成“序列梯”，生成双脱氧序列梯在本领域为人熟知，可通过已商业化的序列试剂盒完成。在本发明的优选实施方案中，是通过温度循环序列形成多数与初始核酸对应的序列梯以易于后来的检测工作。探测出3’末端核苷酸可以与参照核酸相应位置杂交的和不可与之杂交的单链延伸产物。
做为选择，还有许多其他的方法可用来制备长度不同的单链延伸产物。例如，可以不在反应混合物中添加链终止核苷酸，而是限制脱氧核苷酸的量。另外，也可以使用足量的脱氧核苷酸合成与初始核酸全长相应的单链延伸产物，然后对它们进行部分末端水解，如使用核酸外切酶Ⅰ或Ⅲ，或T4 DNA聚合酶，最终制得不同长度的单链延伸产物，本领域的技术人员知道用于制备一系列单链延伸产物的特定技术可以变化。
本领域的技术人员也会认识到制备一系列单链延伸产物将需要一种引物以便使延伸反应能够进行。该引物可以是本身的，如同一分子3’区到5’区的杂交。该引物也可以不是自身的，例如可以使用合成的引物与初始核酸的相应位置进行杂交。
初始核酸、单链延伸产物，还有引物，它们都可以经过修饰，如与生物素、地高辛配基、半抗原、抗体、酶或其他部分相连，以利于分子的分离和/或检测。正如在实施例部分讨论的，引物可以与生物素相连，使用这种修饰的引物所制备的一系列单链延伸产物可以通过使用包裹链霉亲和素的磁珠从而与初始核酸以及延伸反应的其他成分分离开来。
任选地，这些被修饰的初始核酸，单链延伸产物，和/或引物可以被吸附到固体支撑物上从而从反应混和物和/或其他核酸中得到分离或纯化。例如，一种至少部分与引物互补的核酸可以被连接到固体支撑物上，如柱色谱中使用的珠子，引物被延伸之后，反应混合物加热到一定温度，使延伸产物与初始核酸变性。把这一混合物过柱，与珠子相连的核酸只与延伸产物杂交而不与初始核酸杂交，借此延伸产物从初始核酸中纯化出来。又例如，引物可包含与初始核酸互补的序列同时含有一段5’区域不与初始核酸互补，例如一个poly(C)区域，在延伸产物无法与初始核酸杂交的条件下，珠子上连结的核酸可包含poly(G)区域以便与poly(C)区域杂交。本领域的技术人员会认识到还有许多其他的方法可用于分离延伸反应中的一条链和与之互补或部分互补的链，这里所描述的方法不限于任何特定的分离或纯化过程。
可选择地，用于制备一系列单链延伸产物的引物可在5’端磷酸化，以便接下来使用lambda核酸外切酶去降解磷酸化的链，见Higuchiand Ochman(Nucleic Acids Research,17:5865(1989))，制备单链模板的其他可选方法也在本领域为人们所知，如不对称PCR(Ausbel,etal.,“Current Protocols in Molecular Biology”)John Wiley&Sons,New York(1987)和固相捕获(Holtman et al.,Nucleic AcidsResearch,17:4937-4946(1989))。
单链延伸产物典型地制备于至少含有一种修饰的核苷酸的反应体系中，它们被引入延伸产物以使后者至少具有部分的抗3’→5’核酸外切酶活性的能力。这些修饰的核苷酸被引入后的主要功能就是去限制核酸外切酶对于3’双脱氧核苷酶的3’→5’的外切活性。这些修饰的核苷酸为本领域所熟知，包括但不限于硫修饰的三磷酸脱氧核苷酸和硼修饰的三磷脱氧核苷酸(Eckstein and Gish,Trends in birchem,Sci.,14:97-100(1989)和Porter Nucleic Acids Research,25:1611-1617(1997))。
在制备了一系列不同长度的单链延伸产物并选择一种方法把它们与初始核酶分离之后，把这些单链延伸产物与参照核酸进行杂交，参照核酸可以是一个特定基因的被典型地认为是野生型的核酸或是该基因的一部分，其中包含结构和调控区域。例如，参照核酸可以是一段被称作基因座的核酸，它位于某一特定基因内部或附近，当它发生突变时，典型情况下会使个体产生改变的表现型或疾病。另外，突变也可以产生一种被认为有利的不同的表现型，例如能够解毒的细菌。任何突变通过这里所描述的方法检测并深入研究，突变的特性不会限制这些方法的适用性。另外，参照核酸的分离、制备、合成或扩增可以使用这里描述的方法也可使用本领域内的其他方法，因为参照核酸的来源不限于这里所用的方法。
杂交的精确条件当然将决定于参照核酸和初始核酸特定的序列，本领域的技术人员能容易地获得特定的杂交条件。典型的优化的杂交条件可以从很多种参考资料得到。例如，Innis et al(“PCRProtocols:A Guide to Methods and Applications”AcademicPress,Inc.1990)和Erlich,H.A.(PCR Technology,Principles andApplications for DNA Amplification)都说明了核酸扩增的标准杂交条件。Sambrook et al.(“Molecular Cloning,a LaboratoryManual”Cold Spring Harbor Laboratory Press(1989))提出了典型核酸杂交的一般方法以及这些方法的优化方案。任选地，单链延伸产物和参照核酸之间的特定杂交条件为保持可以剪切和替换单链延伸产物3’末端核苷酸的酶的活性，在典型情况下，酶活很高而且有高度的特异性。
在单链延伸产物和参照核酸杂交之后，一种可以剪切并替换单链延伸产物3’末端核苷酸的酶(也就是“校正”酶)被加入杂交反应体系。在本发明的一个实施方案中，这一反应可以在存在一种链终止核苷酸的条件下发生。如果3’末端核苷酸与参照核酸发生杂交，则这一3’末端核苷酸就会被替换以同一类型的链终止核苷酸(图1)，当延伸产物的3’末端核苷酸没有与参照核酸杂交时，例如延伸产物的3’末端核苷酸代表着初始核酸在那个特定位置上的突变，校正酶将会去除延伸产物上的错配基并用一个可以检测到的与参照核酸杂交的碱基替换。
这里描述的方法中所使用的特定的校正酶并不仅限于DNA聚合酶，而是包括任何酶或酶的组合，只要它们能够去掉3’末端核苷酸并用另一个同样或不同类型的核苷酸替换之。例如，校正酶可以是耐热的聚合酶如VentDNA聚合酶，Deep VentDNA聚合酶，E.coli DNA聚合酶Ⅰ,Klenow片段DNA，聚合酶Ⅰ,T4 DNA聚合酶，T7 DNA聚合酶，UltimaDNA聚合酶和PfuDNA聚合酶。剪切3’末端核苷酸的酶可以是核酸外切酶，如E.coli核酸外切酶Ⅲ或者核酸外切酶Ⅰ结合一种聚合酶如T4 DNA聚合酶，可以有效地获得同样的结果。另外，这里描述的方法中还可以使用非校正的聚合酶。这种酶无法延伸错配的碱基，这一点为本领域所熟知并且是等位基因特异PCT和扩增耐火突变系统(ARMS)的基础，见Wu et al.,Proc.Natl.Acad.Sci.U.S.A.,86:2757-2760(1989)和Newton et al.,Nucleic Acids Res.,17:2503-2516(1989)。
3’末端核苷酸无法与参照核酸杂交的延伸产物中混和的核苷酸可以包含这样一种类型，它们与那些3’末端最初可与参照核酸杂交的延伸产物的3’末端核苷酸类型相同并且可被探测出来。例如，延伸反应在相应于dATP的链终止核苷酸存在的条件下进行。发生在无法与参照核酸杂交的3’末端的核苷酸剪切/替换反应使得3’末端与参照核酸可以杂交，且这一过程是存在放射性标记的dGTP、dCTP和dTTP的条件下完成的，在这个例子中，放射性标记的dGTP、dCTP和dTTP的任何一个被引入延伸产物，都会使其因放射性而被检测出来。该反应可以进一步地包含一种内部的对照，该反应可以进一步地包含一种内部的对照，例如不同方法标记的核苷酸，如35S-dATP或荧光dATP，这样的标记可以进入那些在3’末端可与参照核酸苷相应位置杂交的单链延伸产物，以便人们监测反应的活性，尤其在检测到的突变很少或根本没有的情况下，因为那些3’末端可杂交的和不可杂交的延伸产物都可以被检测出来并且区别开来。或者，只让标记进入那些在3’末端可以杂交的延伸产物中。
人们用于检测突变存在的特定标记当然是可以变化的，例如，可以是放射性标记，荧光标记、发光标记、可被检测的与核苷酸相连的抗体、可被检测与核苷酸相连的半抗原或者其他可被直接或间接检测出的被修饰的核苷酸。因此用于检测并区别3’末端可与参照核酸杂交和不可与之杂交的单链延伸产物的特定方法取决于这里描述的方法中所用的特定的标记。例如，如果标记的核苷酸是放射性的，检测的方法应该包括光计数或把反应产物在底片上曝光，显影后能够区分标记的核酸和未标记的核酸。
本发明同时又提供了一种在初始核酸中检测核苷酸变异的方法，包括在存在修饰的核苷酸的条件下制备一系列单链延伸产物，延伸产物中的修饰核苷酸可以抑制核酸外切酶对于3’末端碱基的活性。这些延伸产物有着不同的长度，把它们与参照核酸杂交，并使用一种酶处理，在存在选择性修饰的核苷酸条件下，该酶可以切除并替换延伸产物的3’末端核苷酸。这种被替换上去的选择性修饰核苷酸不会再次替换而且可以抑制延伸产物的进一步延伸，而以非修饰核苷酸为末端的延伸产物则可以进一步地延伸，从而与那些不能继续延伸的延伸产物区别开来。去除没有引入的选择性修饰的核苷酸，延伸那些可以进一步延伸的延伸产物，把可继续延伸的和不可继续延伸的延伸产物区别开来，从而检测初始核酸中的核苷酸变异。
这一特定方法基于校正聚合酶能够在一种不可逆或“自杀”反应中，用具有抗3’-5’核酸外切酶活性能力的修饰的链终止核苷酸去替换配对的末端链终止核苷酸，如双脱氧核苷酸，由初始核酸而来的不同长度的单链延伸产物与已知模板或参照核酸混合形成稳定的杂交体。把它暴露于校正聚合酶或其类似的反应中，在存在具有抗3’-5’核酸外切酶活性能力的链终止核苷酸条件下，如α-硫代-双脱氧核苷酸，也就是延伸产物3’末端碱基的碱基类似物，把它们置于一定的条件下，该条件适于延伸产物3’末端核苷酸的切除及以用抗3’-5’核酸外切酶活性的链终止核苷酸替换(图2)，如果延伸产物的3’末端与参照核酸的相应位置杂交，则3’末端核苷酸会被切除并替换以具有抗进一步3’-5’核酸外切酶活性的相应的链终止核苷酸。校正聚合酶不再能够校正3’末端核苷酸同时也不能延伸配对的末端碱基。然而如果单链延伸产物的3’末端核苷酸无法与参照核酸杂交的话(也就是在末端有错配碱基)，校正聚合酶将切除单链延伸产物的3’-末端核苷酸但不会在该位置添入链终止核苷酸，因为，举例来说，可以与参照核酸相应位置杂交的链终止核苷酸在反应混合物中不存在，这样被校正的延伸产物能够进一步地延伸并被检测出来，因此，3’-末端核苷酸与参照核酸相应位置互补的延伸产物将被不可逆地终止而3’-末端核苷酸与参照核酸相应位置不互补的延伸产物会被校正然后作为引物进行接下来的延伸反应并被检测出来。
为了接下来的延伸反应，最好以反应体系中去除抗3’-5’核酸外切酶活性的链终止核苷酶。这一点可以通过往反应混和物中添加活性物质来实现，该物质可以使得抗3’-5’核酸外切酶活性的链终止核苷酶失去再次添加到单链延伸产物上去的能力，例如虾碱性磷酸酶，它能水解链终止核苷酸的三磷酸，之后可对该酶进行温度灭活。另外，本领域中还有许多其他的方法可用于把模板和延伸产物从抗3’-5’核酸外切酶活性的链终止核苷酶中分离出来。例如，分子重量或大小分离，用以上讨论的方法把延伸产物联接到固体支持物上或是对游离核苷酸进行选择性的降解。
本方法中的引物延伸反应可以通过引入标记进行检测，如上所述，或者间接地检测，例如通过无机焦磷酸盐的释放，它是DNA合成过程中聚合酶介导的核苷合并的结果(Nyren,Anal.Biochem.,167:235-238(1987))，这一方案有利用反应过程中对于聚合酶活性进行连续的监控。这一特定的反应可以通过加入以下物质进行起始核苷三磷酸碱基，D-荧光素，L-荧光素，ATP硫酸化酶，虫荧光素酶和一段寡核苷酸。该寡核苷酸与已知模板5’端区域或5’端附近的区域有着相同的序列并能够启动延伸反应。该寡核苷酸可通过反向启动任何制得的全长延伸产物用来提高分析的灵敏度。这一点当错配/突变发生在已知参照序列的近5’端时显得尤为重要，因为在到达模板末端之前，加入的核苷酸相对较少。典型的照度计检测，见Nyrenet al.(Anal Bochcm,244:367～373(1997))。使用耐热虫荧光素酶可以允许延伸反应在较高的温度进行从而提高反应的灵敏度和特异性(Kaliyama and Nakano,Biosci BiotechnolBiochom,58:1170～1171(1994))。
检测多碱基引物延伸的方法的另一个实例是使用从PerkinElmer,Foster City,CA那里获得的荧光5’核酸酶鉴定法，见Hollandet al,Proc.Natl.Acad.Sci.USA,88,7276～7280(1991)，这一方法涉及标记探针，被称为TaqMan探针，带有一个报告分子和猝灭染料。该探针对于被扩增的核酸的一段内部序列具有特异性。随着TaqDNA聚合酶延伸扩增引物，它会遇到TaqMan探针并利用聚合酶的5’到3’核酸外切酶活性将其降解。报告分子同猝灭剂分离导致荧光的上升。应用这种方法检测多碱基延伸只需要合成与已知模板5’端序列互补的TaqMan探针、至于生物发光检测，该方法允许连续监测反应过程中的聚合酶活性。它的另一个优点是高灵敏度和特异性，因为这一反应可在提升的温度下进行。
这种方法的一种变体中，去除未被引入的修饰的核苷酸本身可被检测则在检测步骤之前延伸可以延伸的延伸产物这一步骤可以去掉。例如，当3’末端碱基是一个猝灭核苷酸，去除该核苷酸可使核酸被检测到，这样延伸延伸产物并引入可检测成分对检测来说就不是必要的了。
另一种可选的检测方法为往延伸产物中引入修饰的三磷酸脱氧核苷(dNTP)，实例包括放射性标记、荧光标记和半抗原标记的dNTPs，例如，荧光标记的dNTP允许直接的非放射性的检测。和生物发光检测一样，这一方法的灵敏度可以通过使用一种寡核苷酸得到提高。该寡核苷酸可与已知模板的5’端区域或其附近区域发生杂交并且能够启动从初始核酸的延伸反应。和荧光5’核酸酶鉴定一样，这一方法具有高灵敏度和特异性的优点，因为延伸反应能够在提升的温度下进行，例如在一个温度循环反应中。这一方法可以增加一个额外的步骤用于去除任何没有被引入的标记，然后对引入的标记进行直接或间接的检测。在一种实施方案中，可以用固相纯化去捕获纯化延伸的寡聚体使之与所有未引入的荧光标记的dNTPs分离，接着进行荧光检测。
还有另一种方法可以把那些3’-末端核苷酸可以与参照核酸相应位置发生杂交的和不可以发生杂交的单链延伸产物区别开来。这一方法包括分离产物寻找全长延伸产物，例如，可以通过变性凝胶电泳看见单链的包括全长和非全长的延伸产物。全长的延伸产物是由校正活动替换3’末端核苷酸并进一步延伸延伸产物而得到的。
本发明的一些应用中，用于扩增在总分析物中只占一小部分比例的突变是可取的，如在早期癌症检测中，在大量的被检细胞中只存在很少的病变细胞，突变基因的选择性扩增，该突变发生在已知位点，如K-ras基因，可以通过设计特异的引物很容易地完成对突变的扩增，见Stork et al(Oncogene,6:857～862(1991))。然而要想通过标准PCR方法在高比例的野生型基因中去选择性地扩增一个基因的随机突变是不可能的，在这些应用中，选择性地扩增突变模板也许很不错。因此，可以把来源于突变模板的延伸产物从已知的模板中纯化出来与纯化的从未知序列的样品中扩增得到的核酸进行杂交。这些扩增得到的核酸在与延伸产物混和之前需要纯化去除残留的引物以防止野生型模板的再次扩增。杂交体可以与耐热聚合酶还有dNTPs混合并置于适合延伸产物聚合的温度循环条件下。那些因为3’末端错配而很难在已知模板上延伸的延伸产物现在可与产生它们的突变模板杂交并在聚合酶催化下进行延伸，最好dNTPs中的一种已做了标记，例如使用半抗原如地高辛配基可以对延伸产物进行固相捕获。之后使用最初目标扩增的引物进行标准的PCR扩增，优迭扩增含有突变的模板。然后，可以用标准方法对PCR产物序列进行测序鉴定出突变或核苷酸变异的精确位置。
本发明又提供了一种在初始核酸中检测核苷酶变异的方法，包括在存在修饰核苷酸碱基和链终止核苷酸碱基的条件下产生一系列以初始核模为模板的延伸产物，把它们包含的修饰核苷酸可以抑制核酸外切酶对于3’末端核苷酸碱基的活性。这些延伸产物有着不同的长度，把它们与参照核酸杂交，之后在存在三磷酸脱氧核苷酶的条件下，用一种可以切除并替换延伸产物3’末端核苷酶的酶去处理杂交核酸。3’末端的倒数第二个核苷酸不会被切除，因此如果在这一位置上为不能与参照核酸配对的核苷酸，它不能被替换掉，因此不能进一步地延伸延伸那些可以进一步延伸的延伸产物，把可以进一步延伸和不可以进一步延伸的延伸产物区别开来，从而检测出初始核酸中的核苷酸变异。
这一特定的方法基于校正聚合酶无法剪切和/或延伸抗3’-5’核酸外切酶活性的错配的3’核苷酸，如硫-修饰核苷酸或硼-修饰核苷酸，在这一方法中，如上所述，制备一系列不同长度的延伸产物，然后把这样延伸产物与参照核酸杂交。之后把杂交体与校正酶以及所有四种脱氧核苷酸混和并置于适合校正和聚合的条件下，(图3和4)。在那些3’末端核苷酸与已知参照核酸配对的单链延伸产物中，聚合酶切除链终止核苷酸或其他的3’-末端核苷酸然后替换该核苷酸并进一步延伸该延伸产物。然而，如果在3’末端临近处存在抗3’-5’核酸外切酶活性的修饰核苷酸的一个错配(也就是在3’末端核苷酸(图3)或3’端倒数第二个核苷酸(图4))，校正酶将不会剪切错配的末端或倒数第二个核苷酸并不会进一步延伸延伸产物该反应的产物可以用来分析，例如通过变性凝胶电泳。检测出的那些没有进一步延伸的延伸产物表明在未知核酸和参照核酸之间有变异存在。检测出的那些进一步延伸的延伸产物表明模板在3’末端末端碱基互补，因此初始核酸的3’末端相对于参照核酸没有变异存在。
由于末端碱基的类型对于该使用链终止核苷酸的方案并不重要，该末端碱基可在单链延伸产物与参照核苷酸杂交之前去除掉。几种具有3’-5’活性的核酸外切酶适用于这一方案且很容易获得，例如核酸外切酶Ⅰ和核酸外切酶Ⅲ。另外，切除末端碱基排除了接下来反应中校正酶的需求。因此，缺乏3’-5’核酸外切酶活性的酶，如Bst DNA聚合酶的大片段和TaqDNA聚合酶，都可用于延伸检测。
同时，因为3’末端核苷酶仅仅作为聚合酶延伸活性的合适的底物，可使用其他一些序列方法制备一系列不同长度的延伸产物用于该检测方法，例如，使用硫代磷酸化或硼磷酸化的修饰核苷酸作为引物延伸反应中的定界符，接着用核酸外切酶Ⅲ进行酶解(见Labeit etal.,DNA,5:173(1986)and Porter,Nucleic Acids Research25:1611～1617(1997))。通过这些方法所制备的一系列长度不同的单链延伸产物可以以硫-或硼-修饰核苷酸作为末端并且非常适合于这一方法。
以下的实例是为了为本领域内普通技术员提供所要求方法的完整的说明和描述，这些实例纯粹只是用于解释本发明，而不是为了限制发明者所认为的发明的范围。我们力图保证数字的准确(如，数量、温度等)，但难免还会出现一些错误和误差。除非特别指出，否则份数为重量份，温度单位为℃，压强为大气压或接近大气压。
实施例模板分子的制备K-ras的扩增、K-ras基因外显子1的275碱基对区通过聚合酶链式反应(PCR)得到扩增。该反应使用的引物为K-ras p-A(p-CAGAGAAACCTTTATCTG)(SEQ ID No:1)它包含一个5’磷酸和K-ras B(GTACTGGTGGAGTATTT)(SEQ ID No:2)参见Stork etal.Oncogene,6:857～862(1991)。所有引物都是通过OligosEtc.,Inc.,Wilsonyille,OR.合成。反应体系(20μl)包括10mMTris-Hol,pH8.3,50mM KCl,2.0,mM MgCl2,1pm/μl Kras A&B引物，200μM的每一种dNTP,1ng/μl K562基因组DNA(Promega,Madison,WI)和0.025units/μl的TaqDNA聚合酶(Perkin Elmer,FosterCity,CA)。根据制造商的说明，在使用之前，Taq聚合酶与Taq Start抗体(Clontech,Palo Alto CA)相混和，温度循环使用Gene Amp 9600PCR系统(Perkin Elmer)。并使用以下程序保持95℃5分钟，循环95℃15秒，53℃30秒，72℃15秒共33个循环，保持72℃5分钟。
序列确定。扩增得到的DNA用izard PCR Preps DNAPurification System(Promega)以便循环测序，测序沿所有两个方面使用引物K-rasA或K-rasB。循环测序和检测依照制造商说明使用Silver Sequence DNA Sequencing System(Promega)完成。循环条件为保持95℃5分钟，循环95℃30秒，50℃30秒，72℃60秒共60个循环，保持4℃永久，序列依照GenBank+EMBL+DDBJ+PDB数据库http:∥www.ncbi.nlm.nih.gov/BLAST的BLAST分析(Altschulet al.,J.Mol.Biol.215:403-10(1990))被确定为野生型即细胞c-ki-ras2的癌基因外显子1的正常序列。
单链模板的制备。使用lambda核酸外切酶(Higuchi andOchman,Nucleic Acids Research,17:5865(1989))把纯化的PCR产物消化成单链。使用的是Pharmacia Biotech,Inc.,Piscataway,NJ的PCT Template Preparation Kit。
制备双脱氧终止的寡聚体扩增和测序。从细胞系SW480(American Type CultureCollection,Rockville,MD)的基因组中扩增出K-ras基因的相同区域并用以上所述的方法纯化，纯化得到的模板(40ng)在10μl 0.7×Sequenase Reaction Buffer(Amersham)中与10pm的K-rasA引物混合，加热至100℃保持2分钟立即冰水浴5分钟，往冰冷的DNA混合物中加入5μm Enzyme Mix[1μl0.1MPTT(Amersham)+2μl的5×sequence Buffer(Amersham)+2μl的Sequence Version 2.0(Amersham)按1∶8稀释于Enzyme Dilution Buffer(Amersham)]。这一混和物(3.5μl)转到一支37℃的试管中它包含2.5μl 200μM的每一种α-硫代-dNTP(Amersham)和1μM的ddATP(Pharmacia)。类似地，对另外三种ddNTPs进行重复，把样品在37℃下反应5分钟，在每支试管中加入30μl的1×TE pH7.5(10mM Tris-Cl pH7.5,1mMEDTA)停止反应。
纯化模板的延伸产物。使用链霉亲和素包裹的磁珠(DynabeadsM-280,Dynal Inc.,Lake Success,NY)对延伸产物进行固相捕获，在使用之前，根据制造商的说明，Dynabead要用2×B&W buffer(10mMtris-HCl,pH7.5,1mM EDTA,2M NaCl)进行冲洗，对于每一个完成的双脱氧测序反应，需要加入40μl处于2×B&W缓冲液中的1.25μg/μl的链霉亲和素包裹磁珠在室温下反应15分钟，中间间断地旋振，之后用40μl的2×B&W缓冲液冲洗磁珠，根据制造商的说明熔解DNA双链使之解链。
从突变体和野生型模板制备α-硫代终止的寡聚体。从K562和SW480(Americarn Type Culture Collection,Rockville,MD)这两种细胞系中扩增得到K-ras基因的相同区域，纯化的模板(240ng)在60μl 0.07×Sequenase Reaction Buffer中与60pm的K-ras b-A引物混和。20μl等体积分装、加热到100℃，保持3分钟然后立即在冰浴中冷却5分钟，往冰冷的DNA混合物中加入10μl EnzymeMix(1μl的0.1M DTT+2μl的5×Sequenase Buffer+2μl的Sequenase Version 2.0以1∶8稀释于Enzyme Dilution Buffer)这一混合物(28μl)加到一支37℃的试管中，该试管中含有20μl 26μM的α-硫代-dATP,80μM的其余三种dNTPs，把样品在37℃反应5分钟之后加热至75℃保持10分钟使反应失活，往每一个失活的延伸反应中加入16μl含20U/μl核酸外切酶Ⅲ(Promega)的溶液，该反应在37℃反应30分钟然后加热到70℃保持10分钟进行热失活。
核苷酸变异的延伸检测非延伸检测。为SW480和K562α-硫代终止寡聚体设置2个杂交反应，一个包含来源于K562的单链K-ras模板DNA，一个没有模板DNA。含有杂交反应的模板包含以下的成分来自K562或SW480的36μlα-硫代终止寡物，100ng来源于K562的单链K-ras模板，60μl 2×B&W缓冲液(10mM Tris-HCl,pH7.5,1.0mM EDTA,2M NaCl)和分子生物学等级(MBG)的水(Sigma W-4502,St.Louis.MO)至终体积120μl。又设置一个没有模板的平行反应。反应加热至99℃保持2分钟，然后以每分钟1℃的速度冷却到58℃，反应物转移至MicroconYM-30离心过滤装置在7200×g下离心5分钟保留物与450μlMBG水混和并浓缩2次，保留物用MBG水调节到12μl的终浓度，把6μl保留物与4μl延伸主要混合物25mM Tris-HCl,pH8.3,125mM Kcl.510mMMgCl2,500μM的每一种dNTP和0.125units/μl的TaqNDA聚合酶(Perkin Elmer)在使用Taq聚合酶之前，根据制造商说明，要把它与Taq Start抗体(clontech,Palo Alto,CA)混合，反应按以下温度循环进行保持95℃5分钟，循环95℃15秒接着94℃15秒接下来的14个循环每次降低2℃，循环95℃15秒，68℃15秒并每次降低2℃,72℃15秒共19个循环，完成后，往每个反应中加入4μl反应终止溶液(95％甲酰胺20mM EDTA,0.05％溴汾蓝，0.05％二甲苯胺FF)，加样3μl上清到0.04mm×20cm×34cm 6％的变性聚丙烯酰胺凝胶作分析，加样之前凝胶在40W预热30分钟，40W下跑50分钟，根据制造商说明使用Phototope-Star Dctection Kit(New England Biolabs)对延伸产物进行化学发生检测。
单碱基延伸检测。6μl单碱基延伸主要混合物包含1×ThermoPol Reaction Buffer(New England Biolabs,Inc.Beverly,MA),2.0mM MgSO4,200μM一种与末端双脱氧核苷酸配对的非标记dd NTP,200μM用33P(Amersham)标记的其余三种ddNTPs,1ng/μl的单链模板DNA和0.01units/μl的Vent DNA聚合酶(New EnglandBiolabs Inc.)用于悬浮延伸产物的固相。温度循环如下保持95℃5分钟，循环95℃15秒，然后94℃15秒，接下来的14个循环每次降低2℃，循环95℃15秒。68℃15秒并每次降低2℃,72℃15秒共计19个循环，保持4℃。
贯穿本申请，参考了不同的出版物，作为参考引入本申请的出版物完整地引入是为了更好地说明本发明所属领域的情况。
虽然本发明参照某方案的特定细节进行描述，并不意味着这些细节是对本发明范围和对它们包含于附加权利要求的程度的一种限制。
序列表<110>Dahlhauser,Paul<120>筛选核酸寻找核苷酸变异的方法<130>07036.0001/P<150>09/137,075<151>1998-08-20<160>2<170>FastSEQ for Windows Version 3.0<210>1<211>18<212>DNA<213>人工序列<221>寡聚核苷酸，单链<223>扩增引物<400>1cagagaaacc tttatctg 18<210>2<211>17<212>DNA<213>人工序列<221>寡聚核苷酸，单链<223>人工引物<400>2gtactggtgg agtattt 1权利要求
1．一种在初始核酸中探测核苷酸变异的方法，包括a)在存在修饰核苷酸的条件下，产生一系列以初始核酸为模板的单链延伸产物，其中这些延伸产物掺入了修饰的核苷酸并借此限制核酸外切酶对3’末端核苷酸碱基的外切活性，其中这些延伸产物有着不同的长度；b)把这些不同长度的单链延伸产物与参照核酸杂交；c)在存在选择性标记的核苷酸的条件下，使用一种酶作用于杂交的核酸，该酶可切除并替换延伸产物的3’末端核苷酶，其中，那些3’末端无法与参照核酸相应位置杂交的延伸产物被替换以一个可与参照核酸杂交的核苷酸，这样就可以把在3’末端可与参照杂交的和不可与参照核酸杂交的延伸产物区别开来；d)区别那些3’末端不杂交的和3’末端杂交的延伸产物，借此检测初始核酸中的核苷酸变异。
2．权利要求1的方法，其中修饰的核苷酸包括硫修饰脱氧核苷酸。
3．权利要求1的方法，其中修饰的核苷酸包括硼修饰的脱氧核苷酸。
4．权利要求1的方法，其中切除和替换延伸产物3’末端的酶包括一种校正聚合酶。
5．权利要求1的方法，其中延伸产物被修饰。
6．权利要求5的方法，其中修饰包括把生物素连结到延伸产物上。
7．权利要求5的方法，其中修饰包括把半抗原连结到延伸产物上。
8．权利要求1的方法，进一步包括通过把它们吸附到固相支持物上而分离步骤(a)的延伸产物。
9．权利要求6的方法，其中延伸产物用生物素标记并把它们吸附到包裹有链霉亲和素的固相支持物上进行分离。
10．权利要求1的方法，其中步骤(c)进一步包括在存在标记的核苷酸碱基的条件下进行反应，该标记以二次标记的标记的三磷酸双脱氧核苷形式存在，借此作为酶发生作用的阴性对照。
11．权利要求1的方法，其中延伸产物因引入链终止核苷酸而具有不同的长度。
12．权利要求1的方法，其中延伸产物通过其部分核酸外切酶消化而且有不同的长度。
13．一种在初始核酸中检测核苷酶变异的方法包括a)在存在修饰核苷酸的条件下，产生一系列以初始核酸为模板的延伸产物，这些延伸产物掺入了修饰的核苷酸并借此限制了核酸外切酶对3’末端核苷酸碱基的外切活性，这些延伸产物有着不同的长度；b)把这些长度不同的延伸产物与参照核酸杂交；c)用一种酶处理杂交核酸，在存在选择性修饰核苷酸时，该酶能切除并替换延伸产物的3’末端核苷酸，因这种选择性修饰核苷酸抗进一步替换，当它引入延伸产物时可以抑制延伸产物的进一步延伸，而以非修饰核苷酸为末端的延伸产物则可进一步延伸，借此与不能继续延伸的延伸产物区别开来；d)去除未引入的选择性修饰核苷酸；e)延伸可继续延伸的延伸产物；f)区别可继续延伸的和不可继续延伸的延伸产物，借此检测初始核酸中的核苷酸变异。
14．权利要求13的方法，其中选择性修饰核苷酸包括硫-修饰的三磷酸双脱氧核苷酸。
15．权利要求13的方法，其中选择性修饰核苷酸包括硼-修饰的三磷酸双脱氧核苷酸。
16．权利要求13的方法，其中步骤(d)进一步包括加入虾碱磷酸酶并置于适合该酶活性的条件下，然后使该酶失活。
17．权利要求13的方法，其中去除和替换延伸产物3’末端核苷酸的酶包括一种校正聚合酶。
18．权利要求13的方法，其中延伸产物被修饰。
19．权利要求18的方法，其中修饰包括把生物素连结到延伸产物上。
20．权利要求18的方法，其中修饰包括把半抗原连结到延伸产物上。
21．权利要求13的方法，进一步包括通过吸附于固相支持物分离步骤(a)的延伸产物。
22．权利要求19的方法，其中延伸产物用生物素标记，并把它们吸附于包裹有链霉亲和素的固相支持物上进行分离。
23．权利要求13的方法，其中通过引入链终止核苷酸产生不同长度的延伸产物。
24．权利要求13的方法，其中通过延伸产物部分核酸外切酶消化产生不同长度的延伸产物。
25．一种在初始核酸中检测核苷酸变异的方法包括a)在存在修饰核苷酸碱基和链终止核苷酸碱基的条件下，以初始核酸为模板制备一系列单链延伸产物，其中延伸产物中引入的修饰核苷酸限制了核酸外切酶对3’末端核苷酸碱基的外切作用，这些延伸产物有着不同的长度；b)把这些不同长度的延伸产物与参照核酸杂交；c)用一种酶去处理杂交核酸，在存在三磷酸脱氧核苷酸的条件下，用该酶去除并替换延伸产物的3’末端核苷酸，3’端的倒数第二个核苷酸不会被切除，因此，那些3’端倒数第二个核苷酸无法与参照核酸相应位置杂交的延伸产物不会被替换以可与之杂交的核苷酸，因此不能继续延伸；d)延伸那些可继续延伸的延伸产物；e)区分可继续延伸的和不可继续延伸的延伸产物，从而检测初始核酶中的核苷酸变异。
26．权利要求25的方法，其中单链延伸产物用可检测的标记进行标记，区分步骤(e)包括对步骤(d)的反应物进行凝胶电泳，其中电泳有足够的分辨率来区别没有继续延伸的标记的延伸产物和进一步延伸的标记的延伸产物。
27．权利要求25的方法，其中修饰的核苷酸包括硫修饰脱氧核苷酸。
28．权利要求25的方法，其中修饰核苷酸包括硼-修饰的脱氧核苷酸。
29．权利要求25的方法，其中去掉并替换延伸产物3’末端核苷酸的酶包括一种校正聚合酶。
30．权利要求25的方法，其中延伸产物被修饰。
31．权利要求30的方法，其中修饰包括把生物素连结到延伸产物上。
32．权利要求30的方法，其中修饰包括把半抗原连结到延伸产物上。
33．权利要求25的方法，进一步包括通过吸附于固相支持物上而分离步骤(a)的延伸产物。
34．权利要求25的方法，其中延伸产物用生物素标记并通过把它们吸附于包裹有链霉亲和素的固相支持物进行分离。
35．一种在初始核酸中检测核苷酸变异的方法，包括a)在存在修饰核苷酸碱基的条件下以初始核酸为模板制备一系列单链延伸产物，延伸产物引入了抑制核酸外切酶对3’末端核苷酸碱基外切活性的修饰的核苷酸碱基，这些延伸产物有着不同的长度；b)把这些长度不同的延伸产物与参照核酸杂交；c)在存在三磷酸脱氧核苷酸的条件下，用一种酶处理杂交核酸，该酶可以进一步延伸那些3’末端可与参照核酸相应位置杂交的延伸产物，而那些3’末端未与参照核酸相应位置杂交的延伸产物则不能继续延伸；d)延伸那些可继续延伸的延伸产物；e)区别那继续延伸的延伸产物和没有继续延伸的延伸产物，从而检测出初始核酸中的核苷酸变异。
36．权利要求35的方法，其中延伸产物通过部分的核酸外切酶消化而产生不同的长度。
全文摘要
本发明提供了一种方法用于在初始核酸中探测核苷酸变异,包括在存在修饰核苷酸的条件下产生一系列以初始核酸为模板的单链延伸产物。这些延伸产物中含有修饰的核苷酸并借此抑制核酸外切酶对于3’末端核苷酸碱基的活性。这些延伸产物有着不同的长度,把它们与参照核酸杂交,并使用一种酶作用于杂交的核酸。当存在选择性标记核苷酸的条件下,可用该酶切除并替换延伸产物的3’末端核苷酸。这样,那些在3’末端处无法与参照核酸对应位置杂交的延伸产物在相应的位置被替换以一个或多个可以与参照核酸杂交的核苷酸,这样就可以把在3’末端可与参照核酸杂交的和不可与参照核酸杂交的延伸产物区别开来,并由此探测初始核酸的核苷酸变异。本发明还提供了这一方法的变型,利用它可以探测出单链延伸产物3’端倒数第二个碱基的突变。
文档编号G01N33/53GK1324410SQ99812395
公开日2001年11月28日 申请日期1999年8月18日 优先权日1998年8月20日
发明者P·A·达尔豪泽 申请人:遗传检测公司