鉴定大豆中的大豆蚜虫抗性数量性状基因座的方法及其组合物的制作方法

专利名称：：鉴定大豆中的大豆蚜虫抗性数量性状基因座的方法及其组合物的制作方法
技术领域：
：本发明属于植物育种领域。更具体地说，本发明包括使用与涉及大豆植物中的蚜虫抗性的数量性状基因座相关的标记筛选大豆属植物的方法和组合物。本发明进一步包括用于筛选与蚜虫抗性相关的大豆属植物的方法和基因组区域组合物。
背景技术：
：大豆，Glycinemax(L.)Merril，是世界上的一种重要的经济作物，并且是植物油和蛋白质的主要来源(Sinclair和Backman，CompendiumofSoybeanDiseases,3rdEd.APSPress,St.Paul,MN,p.106.(1989)。对低胆固醇和高纤维饮食的越来越多的需求也提高了大豆作为健康食物的重要性。在美国种植的大豆品种具有很窄的遗传基础。六个引入种，‘Mandarin’、‘Manchu，、‘Mandarin，(Ottawa)、“Richland，、‘AK，(Harrow)和‘Mukden，，贡献了136个栽培种形式中代表的几乎70%的种质。迄今为止，现代栽培种可以回溯到这6个来自中国的大豆株。在Cox等人，CropSci.25=529-532(1988)进行的研究中，大豆种质包含90%的适应化的材料、9%的未适应的材料，只有来自外来物种。外来物种可以加宽栽培的大豆的遗传基础。另外，外来物种可以具有关键的性状，如抗病性、应激抗性和昆虫抗性。大豆蚜虫，AphisglycinesMatsumura，在2001年被确定为大豆的新的昆虫害虫，并且到2003年在美国和加拿大的3个省扩大到超过21个状态(Vermette等人ArmEntomolSocAm97:217-226(2004))。高产量对于农民的利润率是关键的。大豆蚜虫可以引起超过50%的产量损失(Wang等人，PlantProtect20:12—13(1994))。除了产量降低之外，杀虫剂使用的增多也可能降低农民的利润率。在2003年，美国中北部有超过700万英亩大豆喷洒杀虫剂以控制大豆蚜虫；2003年仅在中北部地区，估计杀虫剂处理费用即达8400-10500万美兀(Landis等人NCR_125Arthropodbiologicalcontrol:statereportsfor2003；Li等人，MolBreedingl9:25_34(2007))。大豆蚜虫可以通过除去明显量的水和营养物，导致叶子变黄和萎蔫，而直接损害植物。另外，蚜虫向叶子和植物上排出蜜露一一种富含糖的粘性物质。蜜露通常导致烟霉的发展，烟霉影响光合作用，引起显著的产量损失(Gomez等人，EnvironExpBot55:477-86(2006))。大豆蚜虫携带大量的病毒，这些病毒可以阻碍植物生长、使叶子变形、引起叶子和茎的斑纹化、减少豆荚数和引起种子褪色。通过大豆蚜虫传播的病毒包括大豆花叶病毒、黄花叶病毒、烟草蚀纹病毒和烟草叶脉斑点病毒(Wang等人PlantDis90:920-926(2006))。宿主植物对昆虫的抗性通常是数量遗传的性状，并且不是主要的抗性基因。堆积的数量抗性比主要的抗性基因更持久，但是难以鉴定多个数量抗性和将其引入一个大豆品种中。与昆虫抗性相关的分子标记给育种者提供了更有效的用于数量性状和昆虫抗性的方法。大豆中的蚜虫抗性基因和QTL是已知的。它们的实例，包括Ragl，在大豆品种Dowling中鉴定，并且定位于连锁群M上(美国专利申请11/158,307)。另外，与蚜虫抗性相关的数量性状基因座在植物引入种(PI)567598B中鉴定，并且定位于连锁群B2、Dlb、J和K(PCT/US2006/019200)。植物育种领域需要鉴定大豆中与蚜虫抗性相关的另外的数量性状基因座。另外，需要快速、经济的测定大豆中是否存在蚜虫抗性基因座的方法。本发明提供一种使用单核苷酸多态性(SNP)技术筛查和选择包含与蚜虫抗性相关的数量性状基因座的大豆植物的方法。
发明内容本发明提供在大豆植物中产生蚜虫抗性的方法。本发明涉及确定大豆植物(包括但不限于外来种质、群体、品系、优良品系、栽培种和品种)中是否存在提供蚜虫抗性的数量性状基因座的方法。本发明不限于任一种类型的蚜虫抗性性状，如蚜虫的抗生作用、排拒作用或驱性。更具体地说，本发明涉及关于鉴定与蚜虫抗性数量性状基因座(QTL)相关的分子标记的方法。本发明涉及分子标记用来筛选和选择大豆植物(包括但不限于外来种质、群体、品系、优良品系、栽培种和品种)内的蚜虫抗性的应用。在一个优选实施方案中，本发明进一步提供与对一种或多种节肢动物的抗性相关的数量性状基因座，所述节肢动物包括但不限于鞘翅目(Coleoptera)，例如Cerotoma的种，如大豆叶甲(Cerotomatrifurcata),Diabrotica的种，如黄+一MOf甲(Diabroticaundecimpunctatahowardi),ii7ti^M(Epicauta)白勺种，如原野豆芫菁(Epicautapestifera)，弧丽金龟属(Popilli)的种，如日本弧丽金龟(Popilliajaponica)，卧毛天牛属(Dectes)的种，如大豆茎天牛(Dectestexanustexanus)和Colaspis的种，如葡萄肖叶甲(Colaspisbrunnea)，等等；直翅目(Orthoptera)，例如黑4皇属(Melanoplus)的种，如红足黑4皇(Melanoplusfemurrubrum),和沙漠蝗属(Shistocerca)的种，如美洲沙漠蝗(ShistocercaAmericana)，等等；鳞翅目(Lepidoptera),例如Plathypen的禾中，如绿夜娥(Plathypenascabra),Pseudoplusia的禾中，如大豆夜娥(Pseudoplusiaincludens),Anticarsia的禾中，如黎豆夜娥(Anticarsiagemmatalis),Epargyreus的禾中，如银星弄蝶(Epargyreusclarus)，顶灯蛾属(Estigmene)的种，如盐泽顶灯蛾(Estigmeneacrea)，灰翅夜蛾属(Spodoptera)的种，如甜菜夜蛾(Spodopteraexigua)，实夜蛾属(Heliothis)的种，如玉米夜蛾(Heliothiszea)禾口豆小卷娥属(Matsumuraeses)的种，如豆小卷娥(Matsumuraesesphaseoli)；半翅目(Hemiptera),例如Acrosternum的禾中，如拟绿虫春(Aerosternumhilare),美洲虫春属(Euschistus)的种，如褐美洲蝽(Euschistusservus)，绿蝽属(Nezara)的种，如稻绿蝽(Nezaraviridula)；同翅目(Homoptera)，例如Spissistilus的种，如三角苜蓿跳虫(Spissistilusfestinus)和蚜属(Aphis)的种，如大豆蚜(Aphisglycines)；缨翅目(Thysanoptera)，例如Sericothrips白勺禾中，如大豆莉马(Sericothripsvariabilis)。在一个优选实施方案中，本发明进一步提供与线虫抗性相关的基因座，所述线虫包括但不限于异皮线虫属(Heterodera)的种，如大豆囊泡线虫(Heteroderaglycines),刺线虫属(Belonolaimus)的禾中，如刺线虫(Belonolaimuslongicaudatus),肾状线虫属(Rotylenchulus)的种，如肾形线虫(Rotylenchulusreniformis)，根结线虫属(Meloidogyne)的种，如南方根结线虫(Meloidogyneincognita)、花生根结线虫(Meloidogynearenaria)禾口日本根结线虫(Meloidogynejavanica)。本发明涉及产生蚜虫抗性植物、群体、品系、优良品系和品种。更特别地，本发明包括将蚜虫抗性等位基因渗入大豆植物中的方法，包括(A)使至少一个包含选自SEQIDNO81至SEQIDNO120的核酸序列的第一大豆植物与至少一个第二大豆植物杂交，以形成分离群体，(B)用一种或多种核酸标记筛查该分离群体，以确定一个或多个来自该分离群体的大豆植物是否含有该核酸序列，和(C)从该分离群体中选择一个或多个包含选自SEQIDNO81至SEQIDNO120的核酸序列的大豆植物。本发明包括一种将等位基因渗入大豆植物中的方法，包括(A)使至少一个蚜虫抗性大豆植物与至少一个蚜虫敏感性大豆植物杂交，以形成分离群体，(B)用一种或多种核酸标记筛查该分离群体，以确定一个或多个来自所述分离群体的大豆植物是否含有蚜虫抗性等位基因，其中所述蚜虫抗性等位基因是选自以下的等位基因蚜虫抗性等位基因1、蚜虫抗性等位基因2、蚜虫抗性等位基因3、蚜虫抗性等位基因4、蚜虫抗性等位基因5、蚜虫抗性等位基因6、蚜虫抗性等位基因7、蚜虫抗性等位基因8、蚜虫抗性等位基因9、蚜虫抗性等位基因10、蚜虫抗性等位基因11、蚜虫抗性等位基因12、蚜虫抗性等位基因13、蚜虫抗性等位基因14、蚜虫抗性等位基因15、蚜虫抗性等位基因16、蚜虫抗性等位基因17、蚜虫抗性等位基因18、蚜虫抗性等位基因19、蚜虫抗性等位基因20、蚜虫抗性等位基因21、蚜虫抗性等位基因22、蚜虫抗性等位基因23、蚜虫抗性等位基因24、蚜虫抗性等位基因25、蚜虫抗性等位基因26、蚜虫抗性等位基因27、蚜虫抗性等位基因28、蚜虫抗性等位基因29、蚜虫抗性等位基因30、蚜虫抗性等位基因31、蚜虫抗性等位基因32、蚜虫抗性等位基因33、蚜虫抗性等位基因34、蚜虫抗性等位基因35、蚜虫抗性等位基因36、蚜虫抗性等位基因37and蚜虫抗性等位基因38、蚜虫抗性等位基因39和蚜虫抗性等位基因40。本发明包括一种优良大豆植物，其包含选自SEQIDN0:81至SEQIDN0:120的核酸序列。核酸薛列的简要说明SEQIDNO是用于扩增SEQIDNO81的正向PCR引物。SEQIDNO2是用于扩增SEQIDNO81的反向PCR引物。SEQIDNO3是用于扩增SEQIDNO82的正向PCR引物。SEQIDNO4是用于扩增SEQIDNO82的反向PCR引物。SEQIDNO5是用于扩增SEQIDNO83的正向PCR引物。SEQIDNO6是用于扩增SEQIDNO83的反向PCR引物。SEQIDNO7是用于扩增SEQIDNO34的正向PCR引物。SEQIDNO8是用于扩增SEQIDNO34的反向PCR引物。SEQIDNO9是用于扩增SEQIDNO35的正向PCR引物。SEQIDNO10是用于扩增SEQIDNO85的反向PCR引物。SEQIDNO11是用于扩增SEQIDNO86的正向PCR引物。SEQIDNO12是用于扩增SEQIDNO86的反向PCR引物。SEQIDNO13是用于扩增SEQIDNO87的正向PCR引物。SEQIDNO14是用于扩增SEQIDNO87的反向PCR引物。SEQIDNO15是用于扩增SEQIDNO88的正向PCR引物。SEQIDNO16是用于扩增SEQIDNO88的反向PCR引物。SEQIDNO17是用于扩增SEQIDNO89的正向PCR引物。SEQIDNO18是用于扩增SEQIDNO89的反向PCR引物。SEQIDNO19是用于扩增SEQIDNO90的正向PCR引物。SEQIDNO20是用于扩增SEQIDNO90的反向PCR引物。SEQIDNO21是用于扩增SEQIDNO91的正向PCR引物。SEQIDNO22是用于扩增SEQIDNO91的反向PCR引物。SEQIDNO23是用于扩增SEQIDNO92的正向PCR引物。SEQIDNO24是用于扩增SEQIDNO92的反向PCR引物。SEQIDNO25是用于扩增SEQIDNO93的正向PCR引物。SEQIDNO26是用于扩增SEQIDNO93的反向PCR引物。SEQIDNO27是用于扩增SEQIDNO94的正向PCR引物。SEQIDNO28是用于扩增SEQIDNO94的反向PCR引物。SEQIDNO29是用于扩增SEQIDNO95的正向PCR引物。SEQIDNO30是用于扩增SEQIDNO95的反向PCR引物。SEQIDNO31是用于扩增SEQIDNO96的正向PCR引物。SEQIDNO32是用于扩增SEQIDNO96的反向PCR引物。SEQIDNO33是用于扩增SEQIDNO97的正向PCR引物。SEQIDNO34是用于扩增SEQIDNO97的反向PCR引物。SEQIDNO35是用于扩增SEQIDNO98的正向PCR引物。SEQIDNO36是用于扩增SEQIDNO98的反向PCR引物。SEQIDNO37是用于扩增SEQIDNO99的正向PCR引物。SEQIDNO38是用于扩增SEQIDNO99的反向PCR引物。SEQIDNO39是用于扩增SEQIDNO100的正向PCR引物。SEQIDNO40是用于扩增SEQIDNO100的反向PCR引物。SEQIDNO41是用于扩增SEQIDNO101的正向PCR引物。SEQIDNO42是用于扩增SEQIDNO101的反向PCR引物。SEQIDNO43是用于扩增SEQIDNO102的正向PCR引物。SEQIDNO44是用于扩增SEQIDNO102的反向PCR引物。SEQIDNO45是用于扩增SEQIDNO103的正向PCR引物。SEQIDNO85是来源于大豆的对应于蚜虫抗性基因座2的基因组序列。0104]SEQIDNO86是来源于大豆的对应于蚜虫抗性基因座3的基因组序列。0105]SEQIDNO87是来源于大豆的对应于蚜虫抗性基因座4的基因组序列。0106]SEQIDNO88是来源于大豆的对应于蚜虫抗性基因座5的基因组序列。0107]SEQIDNO89是来源于大豆的对应于蚜虫抗性基因座6的基因组序列。0108]SEQIDNO90是来源于大豆的对应于蚜虫抗性基因座7的基因组序列。0109]SEQIDNO91是来源于大豆的对应于蚜虫抗性基因座8的基因组序列。0110]SEQIDNO92是来源于大豆的对应于蚜虫抗性基因座8的基因组序列。0111]SEQIDNO93是来源于大豆的对应于蚜虫抗性基因座9的基因组序列。0112]SEQIDNO94是来源于大豆的对应于蚜虫抗性基因座10的基因组序列。0113]SEQIDNO95是来源于大豆的对应于蚜虫抗性基因座11的基因组序列。0114]SEQIDNO96是来源于大豆的对应于蚜虫抗性基因座12的基因组序列。0115]SEQIDNO97是来源于大豆的对应于蚜虫抗性基因座13的基因组序列。0116]SEQIDNO98是来源于大豆的对应于蚜虫抗性基因座14的基因组序列。0117]SEQIDNO99是来源于大豆的对应于蚜虫抗性基因座15的基因组序列。0118]SEQIDNO100是来源于大豆的对应于蚜虫抗性基因座16的基因组序列。0119]SEQIDNO101是来源于大豆的对应于蚜虫抗性基因座16的基因组序列。0120]SEQIDNO102是来源于大豆的对应于蚜虫抗性基因座16的基因组序列。0121]SEQIDNO103是来源于大豆的对应于蚜虫抗性基因座17的基因组序列。0122]SEQIDNO104是来源于大豆的对应于蚜虫抗性基因座18的基因组序列。0123]SEQIDNO105是来源于大豆的对应于蚜虫抗性基因座19的基因组序列。0124]SEQIDNO106是来源于大豆的对应于蚜虫抗性基因座20的基因组序列。0125]SEQIDNO107是来源于大豆的对应于蚜虫抗性基因座21的基因组序列。0126]SEQIDNO108是来源于大豆的对应于蚜虫抗性基因座21的基因组序列。0127]SEQIDNO109是来源于大豆的对应于蚜虫抗性基因座22的基因组序列。0128]SEQIDNO110是来源于大豆的对应于蚜虫抗性基因座23的基因组序列。0129]SEQIDNO111是来源于大豆的对应于蚜虫抗性基因座23的基因组序列。0130]SEQIDNO112是来源于大豆的对应于蚜虫抗性基因座24的基因组序列。0131]SEQIDNO113是来源于大豆的对应于蚜虫抗性基因座25的基因组序列。0132]SEQIDNO114是来源于大豆的对应于蚜虫抗性基因座26的基因组序列。0133]SEQIDNO115是来源于大豆的对应于蚜虫抗性基因座26的基因组序列。0134]SEQIDNO116是来源于大豆的对应于蚜虫抗性基因座27的基因组序列。0135]SEQIDNO117是来源于大豆的对应于蚜虫抗性基因座28的基因组序列。0136]SEQIDNO118是来源于大豆的对应于蚜虫抗性基因座28的基因组序列。0137]SEQIDNO119是来源于大豆的对应于蚜虫抗性基因座28的基因组序列。0138]SEQIDNO120是来源于大豆的对应于蚜虫抗性基因座28的基因组序列。0139]SEQIDNO121是用于检测SEQIDN0:81的SNP的探针。0140]SEQIDNO122是用于检测SEQIDN0:81的SNP的探针。0141]SEQIDNO123是用于检测SEQIDNO82的SNP的探针。SEQIDNO124是用于检测SEQIDNO82的SNP的探针。SEQIDNO125是用于检测SEQIDNO83的SNP的探针。SEQIDNO126是用于检测SEQIDNO83的SNP的探针。SEQIDNO127是用于检测SEQIDNO84的SNP的探针。SEQIDNO128是用于检测SEQIDNO84的SNP的探针。SEQIDNO129是用于检测SEQIDNO85的SNP的探针。SEQIDNO130是用于检测SEQIDNO85的SNP的探针。SEQIDNO131是用于检测SEQIDNO86的SNP的探针。SEQIDNO132是用于检测SEQIDNO86的SNP的探针。SEQIDNO133是用于检测SEQIDNO87的SNP的探针。SEQIDNO134是用于检测SEQIDNO87的SNP的探针。SEQIDNO135是用于检测SEQIDNO88的SNP的探针。SEQIDNO136是用于检测SEQIDNO88的SNP的探针。SEQIDNO137是用于检测SEQIDNO89的SNP的探针。SEQIDNO138是用于检测SEQIDNO89的SNP的探针。SEQIDNO139是用于检测SEQIDNO90的SNP的探针。SEQIDNO140是用于检测SEQIDNO90的SNP的探针。SEQIDNO141是用于检测SEQIDNO91的SNP的探针。SEQIDNO142是用于检测SEQIDNO91的SNP的探针。SEQIDNO143是用于检测SEQIDNO92的SNP的探针。SEQIDNO144是用于检测SEQIDNO92的SNP的探针。SEQIDNO145是用于检测SEQIDNO93的SNP的探针。SEQIDNO146是用于检测SEQIDNO93的SNP的探针。SEQIDNO147是用于检测SEQIDNO94的SNP的探针。SEQIDNO148是用于检测SEQIDNO94的SNP的探针。SEQIDNO149是用于检测SEQIDNO95的SNP的探针。SEQIDNO150是用于检测SEQIDNO95的SNP的探针。SEQIDNO151是用于检测SEQIDNO96的SNP的探针。SEQIDNO152是用于检测SEQIDNO96的SNP的探针。SEQIDNO153是用于检测SEQIDNO97的SNP的探针。SEQIDNO154是用于检测SEQIDNO97的SNP的探针。SEQIDNO155是用于检测SEQIDNO98的SNP的探针。SEQIDNO156是用于检测SEQIDNO98的SNP的探针。SEQIDNO157是用于检测SEQIDNO99的SNP的探针。SEQIDNO158是用于检测SEQIDNO99的SNP的探针。SEQIDNO159是用于检测SEQIDNO100的SNP的探针。SEQIDNO160是用于检测SEQIDNO100的SNP的探针。SEQIDNO161是用于检测SEQIDNO:101的SNP的探针。SEQIDNO162是用于检测SEQIDNO:101的SNP的探针。SEQIDNO202是用于检测SEQIDNO82的SNP的探针。SEQIDNO203是用于检测SEQIDNO83的SNP的探针。SEQIDNO204是用于检测SEQIDNO83的SNP的探针。SEQIDNO205是用于检测SEQIDNO84的SNP的探针。SEQIDNO206是用于检测SEQIDNO84的SNP的探针。SEQIDNO207是用于检测SEQIDNO100的SNP的探针。SEQIDNO208是用于检测SEQIDNO100的SNP的探针。SEQIDNO209是用于检测SEQIDNO111的SNP的探针。SEQIDNO210是用于检测SEQIDNO111的SNP的探针。SEQIDNO211是用于检测SEQIDNO117的SNP的探针。SEQIDNO212是用于检测SEQIDNO117的SNP的探针。SEQIDNO213是用于检测SEQIDNO119的SNP的探针。SEQIDNO214是用于检测SEQIDNO119的SNP的探针。SEQIDNO215是用于检测SEQIDNO120的SNP的探针。SEQIDNO216是用于检测SEQIDNO120的SNP的探针。SEQIDNO217是用于检测SEQIDNO82的SNP的探针。SEQIDNO218是用于检测SEQIDNO83的SNP的探针。SEQIDNO219是用于检测SEQIDNO84的SNP的探针。SEQIDNO220是用于检测SEQIDNO100的SNP的探针。SEQIDNO221是用于检测SEQIDNO111的SNP的探针。SEQIDNO222是用于检测SEQIDNO117的SNP的探针。SEQIDNO223是用于检测SEQIDNO119的SNP的探针。SEQIDNO224是用于检测SEQIDNO120的SNP的探针。发明详述本发明提供28个位于大豆基因组中的连锁群々1、81、82、(1、013、0113』、？、6、!1、1和0上的蚜虫抗性基因座，它们以前没有与蚜虫抗性相关联(表1)。本发明还提供能够赋予大豆蚜虫抗性的数量性状基因座(QTL)等位基因。提供了位于蚜虫抗性基因座1、蚜虫抗性基因座2、蚜虫抗性基因座3、蚜虫抗性基因座4、蚜虫抗性基因座5、蚜虫抗性基因座6、蚜虫抗性基因座7、蚜虫抗性基因座8、蚜虫抗性基因座9、蚜虫抗性基因座10、蚜虫抗性基因座11、蚜虫抗性基因座12、蚜虫抗性基因座13、蚜虫抗性基因座14、蚜虫抗性基因座15、蚜虫抗性基因座16、蚜虫抗性基因座17、蚜虫抗性基因座18、蚜虫抗性基因座19、蚜虫抗性基因座20、蚜虫抗性基因座21、蚜虫抗性基因座22、蚜虫抗性基因座23、蚜虫抗性基因座24、蚜虫抗性基因座25、蚜虫抗性基因座26、蚜虫抗性基因座27和蚜虫抗性基因座28处的等位基因。在本发明中，蚜虫抗性基因座1位于连锁群J上。用来监测蚜虫抗性基因座1的渗入的SNP标记是SEQIDNO81至SEQIDNO:84。与蚜虫抗性基因座1相关的SNP标记DNA序列(SEQIDNO81至SEQIDNO84)可以使用如SEQIDNO:1至SEQIDNO8所示的引物扩增，并且使用如SEQIDN0:121至SEQIDNO128,SEQIDN0:201至SEQIFNO:206和SEQIDNO217至SEQIDNO219所示的探针检测。在本发明中，蚜虫抗性基因座2位于连锁群E上。用来监测蚜虫抗性基因座2的渗入的SNP标记是SEQIDNO:850与蚜虫抗性基因座2相关的SNP标记DNA序列(SEQIDNO:85)可以使用如SEQIDNO:9至SEQIDNO10所示的引物扩增，并且使用如SEQIDNO129至SEQIDNO130所示的探针检测。在本发明中，蚜虫抗性基因座3位于连锁群E上。用来监测蚜虫抗性基因座3的渗入的SNP标记是SEQIDNO:860与蚜虫抗性基因座3相关的SNP标记DNA序列(SEQIDNO:86)可以使用如SEQIDN0:11至SEQIDNO12所示的引物扩增，并且使用如SEQIDNO131至SEQIDNO132所示的探针检测。在本发明中，蚜虫抗性基因座4位于连锁群E上。用来监测蚜虫抗性基因座4的渗入的SNP标记是SEQIDNO:870与蚜虫抗性基因座4相关的SNP标记DNA序列(SEQIDNO:87)可以使用如SEQIDN0:13至SEQIDNO14所示的引物扩增，并且使用如SEQIDNO133至SEQIDNO134所示的探针检测。在本发明中，蚜虫抗性基因座5位于连锁群B1上。用来监测蚜虫抗性基因座5的渗入的SNP标记是SEQIDNO:880与蚜虫抗性基因座5相关的SNP标记DNA序列(SEQIDNO:88)可以使用如SEQIDN0:15至SEQIDNO16所示的引物扩增，并且使用如SEQIDNO135至SEQIDNO136所示的探针检测。在本发明中，蚜虫抗性基因座6位于连锁群N上。用来监测蚜虫抗性基因座6的渗入的SNP标记是SEQIDNO:890与蚜虫抗性基因座6相关的SNP标记DNA序列(SEQIDNO:89)可以使用如SEQIDN0:17至SEQIDNO18所示的引物扩增，并且使用如SEQIDNO137至SEQIDNO138所示的探针检测。在本发明中，蚜虫抗性基因座7位于连锁群G上。用来监测蚜虫抗性基因座7的渗入的SNP标记是SEQIDNO:90o与蚜虫抗性基因座7相关的SNP标记DNA序列(SEQIDNO:90)可以使用如SEQIDN0:19至SEQIDNO:20所示的引物扩增，并且使用如SEQIDNO139至SEQIDNO140所示的探针检测。在本发明中，蚜虫抗性基因座8位于连锁群N上。用来监测蚜虫抗性基因座8的渗入的SNP标记是SEQIDN0:91至SEQIDNO92。与蚜虫抗性基因座8相关的SNP标记DNA序列(SEQIDNO:91至SEQIDN092)可以使用如SEQIDNO:21至SEQIDNO24所示的引物扩增，并且使用如SEQIDN0:141至SEQIDNO144所示的探针检测。在本发明中，蚜虫抗性基因座9位于连锁群N上。用来监测蚜虫抗性基因座9的渗入的SNP标记是SEQIDNO:930与蚜虫抗性基因座9相关的SNP标记DNA序列(SEQIDNO:93)可以使用如SEQIDNO25至SEQIDNO:26所示的引物扩增，并且使用如SEQIDNO145至SEQIDNO146所示的探针检测。在本发明中，蚜虫抗性基因座10位于连锁群A1上。用来监测蚜虫抗性基因座10的渗入的SNP标记是SEQIDNO:94。与蚜虫抗性基因座10相关的SNP标记DNA序列(SEQIDNO:94)可以使用如SEQIDN0:27至SEQIDNO28所示的引物扩增，并且使用如SEQIDNO147至SEQIDNO148所示的探针检测。在本发明中，蚜虫抗性基因座11位于连锁群A1上。用来监测蚜虫抗性基因座11的渗入的SNP标记是SEQIDNO:95。与蚜虫抗性基因座11相关的SNP标记DNA序列(SEQIDNO:95)可以使用如SEQIDN0:29至SEQIDNO30所示的引物扩增，并且使用如SEQIDNO149至SEQIDNO150所示的探针检测。在本发明中，蚜虫抗性基因座12位于连锁群Dla上。用来监测蚜虫抗性基因座12的渗入的SNP标记是SEQIDNO:96。与蚜虫抗性基因座12相关的SNP标记DNA序列(SEQIDNO:96)可以使用如SEQIDN0:31至SEQIDNO:32所示的引物扩增，并且使用如SEQIDNO151至SEQIDNO152所示的探针检测。在本发明中，蚜虫抗性基因座13位于连锁群C2上。用来监测蚜虫抗性基因座13的渗入的SNP标记是SEQIDNO:97。与蚜虫抗性基因座13相关的SNP标记DNA序列(SEQIDNO:97)可以使用如SEQIDN0:33至SEQIDNO34所示的引物扩增，并且使用如SEQIDNO153至SEQIDNO154所示的探针检测。在本发明中，蚜虫抗性基因座14位于连锁群H上。用来监测蚜虫抗性基因座14的渗入的SNP标记是SEQIDNO:98。与蚜虫抗性基因座14相关的SNP标记DNA序列(SEQIDNO:98)可以使用如SEQIDN0:35至SEQIDNO36所示的引物扩增，并且使用如SEQIDNO155至SEQIDNO156所示的探针检测。在本发明中，蚜虫抗性基因座15位于连锁群H上。用来监测蚜虫抗性基因座15的渗入的SNP标记是SEQIDNO:99。与蚜虫抗性基因座15相关的SNP标记DNA序列(SEQIDNO:99)可以使用如SEQIDN0:37至SEQIDNO38所示的引物扩增，并且使用如SEQIDNO157至SEQIDNO158所示的探针检测。在本发明中，蚜虫抗性基因座16位于连锁群D2上。用来监测蚜虫抗性基因座16的渗入的SNP标记是SEQIDNO100至SEQIDNO:102。与蚜虫抗性基因座16相关的SNP标记DNA序列(SEQIDN0:100至SEQIDNO102)可以使用如SEQIDNO39至SEQIDNO:44所示的引物扩增，并且使用如SEQIDN0:159至SEQIDNO162、SEQIDNO207至SEQIDNO208和SEQIDNO220所示的探针检测。在本发明中，蚜虫抗性基因座17位于连锁群F上。用来监测蚜虫抗性基因座17的渗入的SNP标记是SEQIDN0:103。与蚜虫抗性基因座17相关的SNP标记DNA序列(SEQIDNO103)可以使用如SEQIDNO45至SEQIDNO:46所示的引物扩增，并且使用如SEQIDNO165至SEQIDNO166所示的探针检测。在本发明中，蚜虫抗性基因座18位于连锁群F上。用来监测蚜虫抗性基因座18的渗入的SNP标记是SEQIDN0:104。与蚜虫抗性基因座18相关的SNP标记DNA序列(SEQIDNO104)可以使用如SEQIDNO47至SEQIDNO:48所示的引物扩增，并且使用如SEQIDNO167至SEQIDNO168所示的探针检测。在本发明中，蚜虫抗性基因座19位于连锁群I上。用来监测蚜虫抗性基因座19的渗入的SNP标记是SEQIDN0:105。与蚜虫抗性基因座19相关的SNP标记DNA序列(SEQIDNO105)可以使用如SEQIDNO49至SEQIDNO50所示的引物扩增，并且使用如SEQIDNO169至SEQIDNO170所示的探针检测。在本发明中，蚜虫抗性基因座20位于连锁群Dlb上。用来监测蚜虫抗性基因座20的渗入的SNP标记是SEQIDNO:106。与蚜虫抗性基因座20相关的SNP标记DNA序列(SEQIDNO106)可以使用如SEQIDN0:51至SEQIDNO:52所示的引物扩增，并且使用如SEQIDN0:171至SEQIDNO:172所示的探针检测。在本发明中，蚜虫抗性基因座21位于连锁群Dlb上。用来监测蚜虫抗性基因座21的渗入的SNP标记是SEQIDN0:107至SEQIDNO.108。与蚜虫抗性基因座21相关的SNP标记DNA序列(SEQIDNO107至SEQIDNO.108)可以使用如SEQIDNO53至SEQIDNO:56所示的引物扩增，并且使用如SEQIDN0:173至SEQIDNO176所示的探针检测。在本发明中，蚜虫抗性基因座22位于连锁群0上。用来监测蚜虫抗性基因座22的渗入的SNP标记是SEQIDN0:109。与蚜虫抗性基因座22相关的SNP标记DNA序列(SEQIDNO109)可以使用如SEQIDN0:57至SEQIDNO58所示的引物扩增，并且使用如SEQIDNO177至SEQIDNO178所示的探针检测。在本发明中，蚜虫抗性基因座23位于连锁群0上。用来监测蚜虫抗性基因座23的渗入的SNP标记是SEQIDN0:110至SEQIDNO:111。与蚜虫抗性基因座23相关的SNP标记DNA序列(SEQIDNO110至SEQIDNO111)可以使用如SEQIDNO59至SEQIDNO:62所示的引物扩增，并且使用如SEQIDN0:179至SEQIDNO:182、SEQIDNO:209至SEQIDNO210和SEQIDNO221所示的探针检测。在本发明中，蚜虫抗性基因座24位于连锁群C1上。用来监测蚜虫抗性基因座24的渗入的SNP标记是SEQIDN0:112。与蚜虫抗性基因座24相关的SNP标记DNA序列(SEQIDNO112)可以使用如SEQIDNO63至SEQIDNO:64所示的引物扩增，并且使用如SEQIDN0:183至SEQIDNO184所示的探针检测。在本发明中，蚜虫抗性基因座25位于连锁群C1上。用来监测蚜虫抗性基因座25的渗入的SNP标记是SEQIDN0:113。与蚜虫抗性基因座25相关的SNP标记DNA序列(SEQIDNO113)可以使用如SEQIDNO65至SEQIDNO:66所示的引物扩增，并且使用如SEQIDNO185至SEQIDNO186所示的探针检测。在本发明中，蚜虫抗性基因座26位于连锁群C1上。用来监测蚜虫抗性基因座26的渗入的SNP标记是SEQIDN0:114至SEQIDNO:115。与蚜虫抗性基因座26相关的SNP标记DNA序列(SEQIDN0:114至SEQIDNO115)可以使用如SEQIDNO67至SEQIDNO70所示的引物扩增，并且使用如SEQIDNO187至SEQIDNO190所示的探针检测。在本发明中，蚜虫抗性基因座27位于连锁群K上。用来监测蚜虫抗性基因座27的渗入的SNP标记是SEQIDN0:116。与蚜虫抗性基因座27相关的SNP标记DNA序列(SEQIDNO116)可以使用如SEQIDN0:71至SEQIDNO:72所示的引物扩增，并且使用如SEQIDNO191MSEQIDNO192所示的探针检测。在本发明中，蚜虫抗性基因座28位于连锁群B2上。用来监测蚜虫抗性基因座28的渗入的SNP标记是SEQIDN0:117至SEQIDNO120。与蚜虫抗性基因座28相关的SNP标记DNA序列(SEQIDN0:117至SEQIDNO120)可以使用如SEQIDNO73至SEQIDNO:80所示的引物扩增，并且使用如SEQIDNO:193至SEQIDNO:200、SEQIDNO-.211-216和SEQIDNO:222-223所示的探针检测。本发明还提供了一种包含选自SEQIDN0:81至SEQIDNO120及其互补序列的核酸序列的大豆植物。在一方面，所述大豆植物包含1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、14、15、16、17、18、19、20、21、22、23、24、25、26、27或28个选自SEQIDN0:81至SEQIDN0:120、其片段和其互补序列的核酸序列。本发明还提供了一种包含1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、15、16、17、18、19、20、21、22、23、24、25、26、27或28蚜虫抗性基因座的大豆植物，其中在其一个或多个基因座处的一个或多个等位基因选自蚜虫抗性等位基因1、蚜虫抗性等位基因2、蚜虫抗性等位基因3、蚜虫抗性等位基因4、蚜虫抗性等位基因5、蚜虫抗性等位基因6、蚜虫抗性等位基因7、蚜虫抗性等位基因8、蚜虫抗性等位基因9、蚜虫抗性等位基因10、蚜虫抗性等位基因11、蚜虫抗性等位基因12、蚜虫抗性等位基因13、蚜虫抗性等位基因14、蚜虫抗性等位基因15、蚜虫抗性等位基因16、蚜虫抗性等位基因17、蚜虫抗性等位基因18、蚜虫抗性等位基因19、蚜虫抗性等位基因20、蚜虫抗性等位基因21、蚜虫抗性等位基因22、蚜虫抗性等位基因23、蚜虫抗性等位基因24、蚜虫抗性等位基因25、蚜虫抗性等位基因26、蚜虫抗性等位基因27、蚜虫抗性等位基因28、蚜虫抗性等位基因29、蚜虫抗性等位基因30、蚜虫抗性等位基因31、蚜虫抗性等位基因32、蚜虫抗性等位基因33、蚜虫抗性等位基因34、蚜虫抗性等位基因35、蚜虫抗性等位基因36、蚜虫抗性等位基因37、蚜虫抗性等位基因38、蚜虫抗性等位基因39和蚜虫抗性等位基因40。这些等位基因可以是纯合的或杂合的。本文使用的蚜虫是指同翅目(Homoptera)、进一步是指蚜科的各种吸吮植物的小的软体昆虫中的任何一种，其中蚜科的例子包括但不限于以下属Acyrth0Siph0n、奇圆尾虫^M(Allocotaphis)>Amphorophora>^SiiifM(Anoecia)>(Anuraphis)属(Aphidoounguis)、Aphidoura、虫牙属(Aphis)、Asiphonaphis、舞虫牙属(Astegopteryx)>fi客页虫^M(Aulacorthum)>(Betacallis)>M(Betulaphis)>Boernerina>短尾虫牙属(Brachycaudus)、小管虫牙属(Brachycorynella)、短棒虫牙属(Brevicoryne)、长角斑蚜属(Calaphis)、带斑蚜属(Callipterinella)、Callipterus,二尾蚜属(Cavariella)、坚虫牙属(Cerataphis)、㈣角虫牙属(Ceratovacuna)、Chaetomyzus>中瘤钉毛蚜属(Chaetosiphon)、毛蚜属(Chaitophorus)、毛角蚜属(Chaitoregma)、黑斑蚜属(Chromaphis)、长足大蚜属(Cinara)、刻斑蚜属(Clethrobius)、Clydesmithia、卡蚜属(Coloradoa)、Cornaphis>β急瘤虫牙属(Cryptomyzus)、Crypturaphis>Doralis>一条角虫牙属(Doraphis)>Drepanaphis>Drepanosiphoniella>ixIftiWifM(Drepanosiphum)>Hf圆H虫牙属(Dysaphis)>Eomacrosiphum>Epipemphigus、石冠虫牙属(Ericolophium)、绵虫牙属(Eriosoma)、Essigella、绵斑虫牙属(Euceraphis)、长大虫牙属(Eulachnus)>Eumyzus>真毛管虫牙属(Eutrichosiphum)、缕虫牙属(Fimbriaphis)、Fullawaya>Geopemphigus、周隹虫牙属(Glyphina)、Gootiella、毛管虫牙属(Greenidea)、GrylloprociphiIus>五节扁虫牙属(Hamamelistes)、Hannabura>Im^M(Hormaphis)、_虫牙M(Hyadaphis)、双;虫牙属(Hyalomyzus)、大尾虫牙属(Hyalopterus)、Hyperomyza、超瘤虫牙属(Hyperomyzus)、尾草蚜属(Hysteroneura)、伊州蚜属(Illinoia)、印蚜属(Indiaphis)、印马蚜属(Indomasonaphis)、卡基米虫牙属(Kakimia)、大虫牙属(Lachnus)、赖毛虫牙属(Laingia)、Lambersaphis>Latgerina>ixH,M(Longicaudus)(Longistigma)、蚜属(Macromyzus)、小长管蚜属(Macrosiphoniella)等，甚至进一步以下属种中的任何一种或多种蚜科，例如大豆蚜Aphisglycines、菜豆虫牙Aphisfabae、棉虫牙Aphisgossypii、J^MifMacrosiphunrosae(―虫牙)、杉匕虫^Myzuspersicae>57|tBf^Rhopalosiphummaidis、斑点紫花苜猜虫牙Therioaphismaculata、苹果棉虫牙EriosomaIanigerum等。本文使用的大豆虫牙Aphisglycines禾口AphisglycinesMatasamura是指以大豆为食的蚜虫。但是，任何在大豆植物上发现并且以此为食的蚜虫，如菜豆蚜Aphisfabae,是大豆中蚜虫抗性的目标，并且在本发明的范围内。本发明的大豆植物可以抵抗一种或多种侵袭大豆植物的蚜虫。一方面，本发明提供蚜虫抗性植物以及根据对蚜属引起的蚜虫的抗性或敏感性筛选大豆植物的方法和组合物。在一个优选方面，本发明提供根据对大豆蚜(Aphisglycines)的抗性或敏感性筛选大豆植物的方法和组合物。一方面，植物选自大豆属(Glycine)。大豆植物，包括但不限于外来种质、群体、品系、优良品系、栽培种和品种。如本文使用的大豆植物是指豆科(Fabaceae)的植物，在此以最广义的范围使用，包括但不限于大豆的任何种，例如大豆属的种。大豆植物可以是Glycinearenaria,Glycineargyrea、Glycinecanescens>Glycineclandestine>Glycinecurvata、Glycinecyrtoloba、Glycinefalcate、Glycinelatifolia、Glycinelatrobeana、Glycinemax、Glycinemicrophylla>Glycinepescadrensis、Glycinepindanica、Glycinerubiginosa、野大豆(Glycinesoja)、大豆属的禾中(Glycinesp.)、Glycinestenophita、Glycinetabacina禾口短绒里予大豆(Glycinetomentella)。本发明的植物可以是具有非常高的抗性、抗性、基本抗性、中度抗性、相当的抗性、部分抗性、中度敏感的或敏感的大豆植物。如本文所用的术语抗性的、抗性和宿主植物抗性是指宿主植物预防或减少选自昆虫、线虫、病原体、真菌、病毒和病害的害虫侵扰和损害的能力。如本文所用的术语排拒作用或非偏好抗性是指植物排斥昆虫、引起产卵和进食减少的能力。如本文所用的术语抗生作用是指植物降低以该植物为食的昆虫的存活力、生长或繁殖的能力。如本文所用的术语耐受性是指当给予相似数量的昆虫时，宿主植物比其它植物产生具有良好质量的更大产量的能力。在一个优选方面，本发明提供一种大豆植物，将要通过任何方法测定该大豆植物的蚜虫抗性或敏感性，以确定该大豆植物是否具有非常高的抗性、抗性、中度抗性、中度敏感性或敏感性。在该方面，通过目视估计植物上的蚜虫数测定植物的蚜虫抗性或敏感性(Mensah等人CropSci25:2228-2233(2005))。如本文所用的蚜虫抗性是指预防或抑制蚜虫引起宿主植物损害的能力，如减少进食、延迟生长和发育、降低繁殖力等。在另一方面，大豆植物可以显示与非抗性对照大豆植物相当的抗性。在此方面，对照大豆植物除了所述一个或多个蚜虫抗性等位基因以外，优选地是遗传上相似的。这些植物可以在相同或接近相同的害虫暴露的类似条件下生长。在此方面，与已知的敏感植物相比，一个或多个抗性植物在每株植物上具有显著较少的蚜虫，或者每株抗性植物具有较少的损害，并且每株植物上具有与已知抗性植物相等的蚜虫数或损害。如本文所用的术语数量性状基因座和QTL是指影响连续变化的性状如产量或抗性的表型变化的基因组区域。QTL可以包括多个基因或其它遗传因素，甚至在连续基因组区域或连锁群内。如本文所用的术语单核苷酸多态性和SNP是指两个DNA序列之间的单碱基差异。如本文所用的术语寡核苷酸是指由两个或多个脱氧核糖核苷酸或核糖核苷酸组成的分子。如本文所用的术语引物是指与给定核苷酸序列互补的并且是启动聚合酶的复制所需的寡核苷酸。如本文所用的术语探针是指能够与另一目标寡核苷酸杂交的寡核苷酸。探针可以是单链或双链的寡核苷酸。探针可用于特定核苷酸序列的检测、鉴定或分离。如本文所用的术语基因是指包含内含子、非翻译区和控制区和产生RNA、多肽或多肽的前体所需的编码序列的核酸序列。如本文所用的术语标记、DNA标记和遗传标记是指性状，包括遗传性状，如DNA序列基因座等位基因染色体特征同工酶，和形态特征，它可以用来检测个体或群体中的基因或性状的存在或位置。如本文所用的诊断标记是指可以检测或鉴定性状的遗传标记，例如蚜虫抗性、锈菌抗性和产量。本发明的抗性QTL可以被引入到优良大豆品系中。在此，“品系”是指来自相似的谱系、具有相似的性状的一组个体植物。“优良品系”指通过对较好的农艺学表现进行育种和选择而产生的任何株系。另外，优良品系足够同源和纯合，能够用于商业生产。优良品系可以用于进一步的育种工作以开发新的优良品系。本发明的蚜虫抗性QTL也可以被引入包含一种或多种转基因的大豆品系中，该转基因植物包含编码以下性状的一种或多种基因除草剂耐受性、产量增加、昆虫控制、真菌病抗性、病毒抗性、线虫抗性、细菌病抗性、支原体病抗性、油产生改变、高产油量、高蛋白质产量、发芽和幼苗生长的控制、动物和人类营养增强、低棉子糖、环境应激抗性、可消化性提高、工业酶、药用蛋白质、肽和小分子、加工性状改善、风味改善、固氮、杂种种子的产生、变应原性降低、生物聚合物和生物燃料等。这些农艺学性状可通过植物生物技术方法在大豆中作为转基因提供。一种或多种蚜虫抗性QTL等位基因可以从任何包含该等位基因的植物(供体)引入到任何接受体大豆植物中。一方面，接受体大豆植物可以包含另外的蚜虫抗性基因座。另一方面，接受体大豆植物可以包含转基因。另一方面，在保持引入的QTL的同时，可以通过回交或其它合适的方法来减少提供蚜虫抗性QTL的植物的遗传贡献。一方面，来自大豆植物中的供体材料的核遗传物质可能少于或是大约50%、少于或是大约25%、少于或是大约13%、少于或是大约5%、3%、2%或1%，但该遗传物质包含一种或多种感兴趣的蚜虫抗性基因座。含有所述的一个或多个蚜虫抗性基因座的植物可以是供体植物。含有抗性基因座的蚜虫植物可以是，例如通过使用能够检测与抗性相关的标记多态性的核酸分子进行筛选。在一方面，供体植物是PI594427C。在优选的一方面，供体植物是蚜虫抗性基因座1、2、4、6、7、8、9、11、13、15、16、17、18、19、20、21、22、23、27和28的来源。在另一方面，供体植物是大豆品种MV0031。在另一优选的方面，供体植物是蚜虫抗性基因座2、5、8、10、25和26的来源。在另一方面，供体植物是大豆品种CNS(PI548445)。在另一优选的方面，供体植物是蚜虫抗性基因座3、12、14和24的来源。供体植物是可以是敏感系。在一方面，供体植物也可以是接受体大豆植物。如本文所用的成熟期组是指基于植物最佳适应和最大生产能力的纬度范围对品种组的工业划分。大豆品种被分类为13个认可的成熟期组，命名为成熟期组000、00、0和I至X，其中OOO表示最早熟的品种，X代表最晚熟的品种。成熟期组000至IV中的大豆植物具有不确定的植物习性，而成熟期组V至X中的大豆植物具有确定的生长习性。在本文中，确定的生长习性是指在主茎终止于一簇成熟豆荚后停止营养生长。在本文中，不确定的生长习性是指叶和花在其生殖期的一部分中同时发育，在顶端处具有1至3个豆荚。早熟品种(000至IV)适应具有较长日长的北方纬度，在具有较短日长的南方纬度成熟期代码增大。在本文中，相对成熟期是指将成熟期组以十分之一为单位细分的大豆植物成熟期组，例如III.5。相对成熟期提供更精确的成熟期。小数点之后的数字是指成熟期组的相对早熟或晚熟，例如IV.2是早熟组IV品种，IV.9是晚熟组IV。进一步理解，本发明的大豆植物可以显示任何相对成熟期组的特征。一方面，相对成熟期组选自组000.1-000.9,00.1-00.9,0.1-0.9、I.1-1.9、II.1-II.9、III.1-111.9、IV.1-IV.9、V.1-V.9、VI.1-VI.9、VII.1-VII.9、VIII.1-VIII.9、IX.1-IX.9和Χ.1-X.9。选择的大豆植物的花粉可以低温贮藏，并且用于与来自其它成熟期组的大豆品系杂交，以使蚜虫抗性基因座渗入到正常情况下无法用于自然杂交的品系中。花粉低温贮藏技术是本领域公知的(Tyagi和Hymowitz，Cryoletters24:119_124(2003)，Liang等人ActaBotanicaSinica35:733-738(1993))。QTL的蚜虫抗性效果可能随亲本基因型和测定蚜虫抗性的环境因素而变化。植物育种领域的技术人员不需要过多的实验就可以使用此处所述的方法从植物群体或亲本基因型集合中选择那些当含有蚜虫抗性基因座时导致蚜虫抗性比亲本基因型增强的植物。在此，侵扰可以是由昆虫、真菌、病毒、细菌或无脊椎动物引起的。已经报道了大豆的大量分子遗传图谱(Mansur等人，CropSci.361327-1336(1996)，Shoemaker等人，Genetics144:329-338(1996)；Shoemaker等人，CropScience321091-1098(1992)，Shoemaker等人，CropScience35:436-446(1995)；Tinley和Rafalski，J.CellBiochem.Supp1.14E291(1990),)；Cregan等人，CropScience39:1464-1490(1999)。大豆(Glycinemax)、野大豆(Glycinesoja)和Glycinemaxχ.Glycinesoja具有共同的连锁群(Shoemaker等人’Genetics144329-338(1996))。连锁群(LG)是倾向于从一代向另一代共同遗传的一组基因。此处使用的大豆的连锁群(LG)，J、E、Bi、N、Al、DlaQ、H、D1、F、IDlb+W、0Cl和B2是指对应于大豆遗传图谱的连锁群J、E、Bi、N、Al、Dla_Q、H、D1、F、IDlb+W、0Cl和B2的连锁群(Mansur等人，CropScience361327-1336(1996)；Cregan等人，CropScience391464-1490(1999)禾口Soybase,AgriculturalResearchService,UnitedStatesDepartmentofAgriculture)。QTL的等位基因当然可以包含多个基因或其它遗传因素，甚至在连续基因组区域或连锁群如单元型内。连锁群是在同一染色体上携带的一组基因座。单元型是与一条染色体上的DNA区段紧密连锁并且倾向于作为单位遗传的一组遗传标记。如本文所用的，抗性基因座的等位基因可以包含一个以上的基因或其它遗传因素，其中，每个单独的基因或遗传组分也能够显示等位基因变异，并且其中每个基因或遗传因素也能够引发对所述数量性状的表型效应。在本发明的一方面，QTL的等位基因包含也能够显示等位基因变异的一个或多个基因或其它遗传因素。术语“QTL的等位基因”的使用并不排除包含一个以上的基因或其它遗传因素的QTL。特别是，本发明中的“QTL的等位基因”可以表示单元型窗口中的单元型，其中表型可以是害虫抗性。单元型窗口是可以用一组一个或多个多态性标记定义和示踪的连续的基因组区域，其中，多态性指示谱系同一性。该窗口中的单元型可以通过每个标记处的等位基因的独特指纹确定。如本文所用的，等位基因是占据染色体上给定基因座的基因的几种替代形式之一。当染色体上的给定基因座处存在的所有等位基因相同时，该植物在该基因座处是纯合的。如果染色体上的给定基因座处存在的等位基因不同，该植物在该基因座处是杂合的。本发明的植物在任何特定的蚜虫抗性基因座处或对于特定的多态性标记，可能是纯合或杂合的。本发明也提供了本发明的植物的部分。植物部分包括但不限于，种子、胚乳、胚珠和花粉。在本发明的特别优选的方面，植物部分是种子。本发明的植物或其部分可以在培养基中培养和再生。从各种组织类型再生大豆植物的方法和大豆的组织培养方法是本领域已知的(参见，例如，Widholm等人，InVitroSelectionandCulture-inducedVariationinSoybean,InSoybean:Genetics,MolecularBiologyandBiotechnology,Verma禾口Shoemaker编，CABInternational,Wallingford,Oxon,England(1996))。如大豆的植物的再生技术可以使用多种组织或细胞类型作为起始原料。尤其是对于大豆，已经开发了再生方法，其开始于某些分化的组织类型，如，分生组织(Cartha等人，Can.J.Bot.591671-1679(1981))、下胚轴节(Cameya等人，PlantScienceLetters21.:289_294(1981))和莲节点段(Saka等人，PlantScienceLetters,19193-201(1980)；Cheng等人，PlantScienceLetters,19:91_99(1980))。已报道了由未成熟大豆胚的外植体产生的体细胞胚再生完整的性成熟的大豆植物(Ranch等人，InVitroCellular&DevelopmentalBiology21:653-658(1985))。也已报道了通过器官发生和胚发生从组织培养物再生成熟大豆植物(Barwale等人，Planta167473-481(1986)；Wright等人，PlantCellReports5:150-154(1986))。本发明也提供一种通过针对大豆植物中的蚜虫抗性或敏感性进行筛查而选择的蚜虫抗性大豆植物，所述选择包括探询基因组核酸中是否存在与大豆植物中的蚜虫抗性相关的QTL的等位基因遗传连锁的标记分子，其中QTL的等位基因也位于与蚜虫抗性大豆相关的连锁群上。本发明包括一种将蚜虫抗性等位基因渗入大豆植物中的方法，包括(A)使至少一个包含选自SEQIDNO81至SEQIDNO120的核酸序列的第一大豆植物与至少一个第二大豆植物杂交，以形成分离群体，(B)用一种或多种核酸标记筛查该分离群体，以确定来自该分离群体的一个或多个大豆植物是否含有该核酸序列，和(C)从该分离群体中选择一个或多个包含选自SEQIDNO81至SEQIDNO120的核酸序列的大豆植物。本发明包括一种将等位基因渗入大豆植物中的方法，包括(A)使至少一个蚜虫抗性大豆植物与至少一个蚜虫敏感性大豆植物杂交，以形成分离群体，(B)用一种或多种核酸标记筛查所述分离群体，以确定来自所述分离群体的一个或多个大豆植物是否含有蚜虫抗性基因座，其中所述蚜虫抗性等位基因是选自蚜虫抗性等位基因1、蚜虫抗性等位基因2、蚜虫抗性等位基因3、蚜虫抗性等位基因4、蚜虫抗性等位基因5、蚜虫抗性等位基因6、蚜虫抗性等位基因7、蚜虫抗性等位基因8、蚜虫抗性等位基因9、蚜虫抗性等位基因10、蚜虫抗性等位基因11、蚜虫抗性等位基因12、蚜虫抗性等位基因13、蚜虫抗性等位基因14、蚜虫抗性等位基因15、蚜虫抗性等位基因16、蚜虫抗性等位基因17、蚜虫抗性等位基因18、蚜虫抗性等位基因19、蚜虫抗性等位基因20、蚜虫抗性等位基因21、蚜虫抗性等位基因22、蚜虫抗性等位基因23、蚜虫抗性等位基因24、蚜虫抗性等位基因25、蚜虫抗性等位基因26、蚜虫抗性等位基因27、蚜虫抗性等位基因28、蚜虫抗性等位基因29、蚜虫抗性等位基因30、蚜虫抗性等位基因31、蚜虫抗性等位基因32、蚜虫抗性等位基因33、蚜虫抗性等位基因34、蚜虫抗性等位基因35、蚜虫抗性等位基因36、蚜虫抗性等位基因37、蚜虫抗性等位基因38、蚜虫抗性等位基因39和蚜虫抗性等位基因40的等位基因。本发明包括核酸分子。这些分子包括那些能够检测与蚜虫抗性基因座遗传或物理连锁的多态性的核酸分子。这些分子可以被称为标记。可以通过现有技术获得与蚜虫抗性基因座1、蚜虫抗性基因座2、蚜虫抗性基因座3、蚜虫抗性基因座4、蚜虫抗性基因座5、蚜虫抗性基因座6、蚜虫抗性基因座7、蚜虫抗性基因座8、蚜虫抗性基因座9、蚜虫抗性基因座10、蚜虫抗性基因座11、蚜虫抗性基因座12、蚜虫抗性基因座13、蚜虫抗性基因座14、蚜虫抗性基因座15、蚜虫抗性基因座16、蚜虫抗性基因座17、蚜虫抗性基因座18、蚜虫抗性基因座19、蚜虫抗性基因座20、蚜虫抗性基因座21、蚜虫抗性基因座22、蚜虫抗性基因座23、蚜虫抗性基因座24、蚜虫抗性基因座25、蚜虫抗性基因座26、蚜虫抗性基因座27和蚜虫抗性基因座28连锁的另外的标记。一方面，核酸分子能够检测是否存在位于距离蚜虫抗性基因座小于50、40、30、20、10、5、2或1厘摩(centimorgans)的标记。另一方面，使用QgeneVersion2.23(1996)和默认参数进行蚜虫抗性测定，标记显示2或更高、3或更高、4或更高的L0D得分。另一方面，核酸分子能够检测选自蚜虫抗性基因座1、蚜虫抗性基因座2、蚜虫抗性基因座3、蚜虫抗性基因座4、蚜虫抗性基因座5、蚜虫抗性基因座6、蚜虫抗性基因座7、蚜虫抗性基因座8、蚜虫抗性基因座9、蚜虫抗性基因座10、蚜虫抗性基因座11、蚜虫抗性基因座12、蚜虫抗性基因座13、蚜虫抗性基因座14、蚜虫抗性基因座15、蚜虫抗性基因座16、蚜虫抗性基因座17、蚜虫抗性基因座18、蚜虫抗性基因座19、蚜虫抗性基因座20、蚜虫抗性基因座21、蚜虫抗性基因座22、蚜虫抗性基因座23、蚜虫抗性基因座24、蚜虫抗性基因座25、蚜虫抗性基因座26、蚜虫抗性基因座27和蚜虫抗性基因座28的基因座中的标记。在进一步的方面，核酸分子选自SEQIDN0:81至SEQIDNO:120、其片段、其互补物和能够与这些核酸分子中的一种或多种特异性杂交的核酸分子。在一个优选方面，本发明的核酸分子包括在中度严格条件下(例如在大约2.OxSSC和大约65°C下)与SEQIDNO81至SEQIDNO120所示的一种或多种核酸分子或其互补序列或其中任一个的片段特异性杂交的核酸分子。在特别优选的一方面，本发明的核酸分子在高严格条件下与SEQIDN0:81至SEQIDNO120所示的一种或多种核酸分子或其中任一个的互补分子或片段特异性杂交。在本发明的一方面，本发明的优选的标记核酸分子具有SEQIDN0:81至SEQIDNO120所示的核酸序列或其互补序列或其中任一个的片段。在本发明的另一方面，本发明的优选的标记核酸分子与SEQIDN0:81至SEQIDNO120所示的核酸序列或其互补序列或其中任一个的片段共有80%-100%或90%-100%的序列同一性。在本发明的进一步的一方面，本发明的优选的标记核酸分子与SEQIDN0:81至SEQIDNO:120所示的核酸序列或其互补序列或其中任一个的片段共有95%-100%的序列同一性。在本发明的更优选的一方面，本发明的优选的标记核酸分子与SEQIDN0:81至SEQIDNO:120所示的核酸序列或其互补序列或其中任一个的片段共有98%-100%的序列同一性。核酸分子或其片段在某些情况下能够与其它核酸分子特异性杂交。如本文所用，如果两个核酸分子能够形成反平行双链核酸结构，那么这两个分子能够彼此特异性杂交。如果它们表现出完全的互补性，则一核酸分子与另一核酸分子“互补”。如本文所用，当一个分子的每个核苷酸都与另一分子的核苷酸互补时，这两个分子显示“完全互补”。如果两个分子在至少常规的“低严格”的条件下能互相杂交，具有足够的稳定性，从而允许它们保持彼此退火，那么这两个分子是“最低限度互补的”。类似地，如果两个分子在常规的“高严格”的条件下能互相杂交，具有足够的稳定性，从而允许它们保持彼此退火，那么这两个分子是“互补的，，。Sambrook等人，In:MolecularCloning，ALaboratoryManual，2ndEdition，ColdSpringHarborPress，ColdSpringHarbor，NewYork(1989)与Haymes等人，In:NucleicAcidHybridization,APracticalApproach,IRLPress，Washington，DC(1985)描述了常规的严格条件。因而偏离完全互补性是允许的，只要这种偏离没有完全消除该分子形成双链结构的能力。为了使核酸分子作为引物或探针，只需要在序列上充分互补，以在所采用的特定的溶剂和盐浓度下能够形成稳定的双链结构。如本文所用，基本上同源的序列是在高严格条件下与所比较的核酸序列的互补序列特异性杂交的核酸序列。本发明的核酸探针和引物可以在严格条件下与靶DNA序列杂交。术语“严格的杂交条件”定义为在该条件下，探针或引物特异性地与靶序列杂交而不与非靶序列杂交，这可以根据经验确定。术语“严格的条件”是功能上的定义，涉及通过Sambrook等人，1989，9.52-9.55所述的具体的杂交程序，核酸探针与靶核酸(S卩，与感兴趣的特定核酸序列)的杂交。也参见Sambrook等人，19899.47-9.52，9.56-9.58；Kanehisa1984Nucl.AcidsRes.12:203_213；Wetmur等人1968J.Mol.Biol.31:349_370。促进DNA杂交的合适的严格条件是，例如，大约45°C、6.Ox氯化钠/柠檬酸钠(SSC)，接着50°C、2.OxSSC洗涤，这是本领域的技术人员已知的，或可以在CurrentProtocolsinMolecularBiology,JohnWiley&Sons,N.Y.，1989,6.3.1-6.3.6中找到。例如，洗涤步骤中的盐浓度可以从大约2.OxSSC、50°C的低严格条件到大约0.2xSSC、50°C的高严格条件中选择。另夕卜，洗涤步骤中的温度可以从低严格条件的室温大约22°C增加到高严格条件的大约65°C。温度和盐都可以变化，或者，温度或盐浓度可以保持不变，而另一个变量发生变化。对于高严格性，例如使用DNA或RNA探针或引物的杂交可以在65°C下在6xSSC，0.5%SDS，5xDenhardt，s，100μtg/mL非特异性DNA(例如，超声处理的鲑精DNA)中进行，于65°C用0.5xSSC，0.5%SDS洗涤。本发明考虑，如果保持探针或引物与靶序列结合的特异性，可以使用如较低的杂交和/或洗涤温度的较低严格杂交条件，来确认具有较低的序列相似性的相关的序列。因此，本发明的核苷酸序列可用于选择性地与DNA、RNA或cDNA片段的互补延伸形成双链分子的能力。核酸分子片段可以是任何大小的片段，且示例性的片段包括SEQIDNO:81至SEQIDNO:120所示的核酸序列及其互补序列的片段。一方面，片段可以是15-25、15-30、15-40、15-50、15-100、20-25、20-30、20-40、20-50、20-100、25-30、25-40、25-50、25-100、30-40、30-50及30-100。另一方面，片段可以是大于10、15、20、25、30、35、40、50、100或250个核苷酸。另外的遗传标记可以用来选择具有与本发明大豆的蚜虫抗性相关的QTL的等位基因的植物。公共标记数据库的例子包括，例如Soybase，AgriculturalResearchService,UnitedStatesDepartmentofAgriculture。一种遗传标记是在染色体上具有已知位置并且与特定性状或基因相关的DNA序列。与蚜虫抗性相关的遗传标记可以用来确定个体植物是否是蚜虫抗性的。本发明的遗传标记包括“显性”或“共显性”标记。“共显性标记”揭示两个或多个等位基因的存在(每个二倍体个体中有两个)。“显性标记”揭示只存在一个等位基因。显性标记表型(例如，DNA带)的存在表明在纯合或杂合条件下存在一个等位基因。不存在显性标记表型(例如，不存在DNA带)仅能证明存在“某些其它”不明确的等位基因。在群体中的个体主要是纯合的且基因座主要是二态性(dimorphic)的情况下，显性和共显性标记可能具有同样的价值。随着群体变得越来越杂合和多等位基因化(multiallelic)，共显性标记往往比显性标记提供更多的基因型信息。可以使用与本发明的QTL的等位基因遗传连锁或相关的标记，如单序列重复标记(SSR)、AFLP标记、RFLP标记、RAPD标记、表型标记、SNP、同工酶标记、微阵列转录概况(Walton,1993；Burow等人1988)。分离这些标记的方法是本领域中已知的。通过使用核酸扩增方法可有利于DNA、RNA或cDNA样品中的多态性位点的检测。这些方法特异性地增加了跨越多态性位点或包含该位点和位于其远端或近端的序列的多核苷酸的浓度。这些扩增的分子可以通过凝胶电泳、荧光检测方法或其它方法很容易地检测。实现这种扩增的一种方法采用聚合酶链反应(PCR)(Mullis等人1986ColdSpringHarborSymp.Quant.Biol.51:263_273；欧洲专利50，424；欧洲专利84，796；欧洲专禾Ij258，017；欧洲专利237，362；欧洲专利201，184；美国专利4，683，202；美国专利4，582，788；和美国专利4，683，194)，其中使用能够与以双链形式限定多态性的近端序列杂交的引物对。为了QTL作图，包括的标记应当是来源特征性的，以对随后的群体作出推断。SNP标记对于作图是理想的，因为特定的SNP等位基因源自特定物种的现存群体中的独立来源的可能性较低。因此，SNP标记可用于示踪和辅助QTL的渗入，特别是在单元型的情况下。可以通过基因作图模型建立另外的标记分子的遗传连锁，所述基因作图模型例如，但不限于，Lander等人(Lander等人，Genetics,121:185_199(1989))报道的侧翼标记模型，和区间作图(intervalmapping)，其基于其中所述的最大似然法，并用软件包MAPMAKER/QTL执行(Lincoln禾口Lander,MappingGenesControllingQuantitativeTraitsUsingMAPMAKER/QTL,WhiteheadInstituteforBiomedicalResearch,Massachusetts,(1990))。另夕卜的软件包括Qgene，Version2.23(1996),DepartmentofPlantBreedingandBiometry,266EmersonHall,CornellUniversity,Ithaca,NY。使用Qgene软件是一种特别优选的方法。对于标记的存在，计算最大似然估计值(MLE)，以及假设没有QTL效应的MLE，以避免假阳性。然后计算优势率的Iogltl(LOD)=LOD=Iogltl(存在QTL的MLE/假定没有连锁QTL的MLE)。LOD得分基本上指示，假定存在QTL，相对于不存在QTL，数据增大的可能性有多大。对于给定的置信度，比如95%，为了避免假阳性的L0D阈值取决于标记的数量和基因组的长度。Lander等人(1989)说明了显示L0D阈值的曲线图，且Artis和Moreno-Gonzdlez，PlantBreeding,Hayward,Bosemark,Romagosa(编)Chapman&Hall,London,第314-331页(1993)进一步对其描述。可以使用另外的模型。已经报导了对于区间作图的许多修改和可供选择的方法，包括使用非参数法(Kruglyak等人，1995Genetics,1391421-1428)。也可以使用多元回归方法或模型，其中，在大量标记上对性状进行回归(Jansen，BiometricsinPlantBreed,vanOijen,Jansen(编)ProceedingsoftheNinthMeetingoftheEucarpiaSectionBiometricsinPlantBreeding,TheNetherlands,第116-124页(1994)；Weber禾口Wricke,AdvancesinPlantBreeding,Blackwell,Berlin,16(1994))。Jansen等人(Jansen等人，1994Genetics，1361447-1455)和Zeng(Zeng，1994Geneticsl361457-1468)报道了组合了区间作图与回归分析的程序，由此将表型回归到给定的标记区间的单个假定的QTL上，且同时回归到作为'辅助因素'的标记数量上。一般来说，辅助因素的使用减少了估计的QTL位置的偏差和抽样误差(Utz和Melchinger，BiometricsinPlantBreeding,vanOijen,Jansen(编)ProceedingsoftheNinthMeetingoftheEucarpiaSectionBiometricsinPlantBreeding,TheNetherlands，第195—204页(1994))，从而提高了QTL作图的精度和效率(Zeng1994)。这些模型可以扩展到多环境实验，以分析基因型-环境的相互作用(Jansen等人，1995Theor.Appl.Genet.91:33_3)。合适的作图群体的选择对于图谱的构建是重要的。合适的作图群体的选择取决于所用的标记系统的类型(Tanksley等人，Molecularmappinginplantchromosomes,chromosomestructureandfunction:ImpactofnewconceptsJ.P.Gustafson禾口R.Appels(编).PlenumPress,NewYork，第157-173页(1988))。必须考虑在作图群体中所用的亲本的来源(适应的相对于外来的)。染色体配对和重组率在远缘杂交(适应的X外来的)中会受到严重干扰(抑制)，且一般产生大大降低的连锁距离。与近缘杂交(适应的X适应的)的后代相比，远缘杂交通常会提供具有相对较大的多态性阵列的分离群体。F2群体是产生杂种种子之后的自交的第一代。通常一个&植物自交，产生所有基因都以孟德尔(121)方式分离的群体。使用共显性标记系统从完全分类的F2群体中获得最大遗传信息(Mather，MeasurementofLinkageinHeredity:MethuenandCo.，(1938))。在显性标记的情况中，需要后代测试(例如F3，BCF2)来确定杂合子，从而使其等同于完全分类的&群体。但是由于后代测试的成本和时间原因，这一程序通常是不可行的。F2个体的后代测试通常在其中表型不能一贯地反映基因型(例如害虫抗性)或性状表达受QTL控制的图谱构建中使用。来自后代测试群体(例如的分离数据可以在图谱构建中使用。然后可以基于标记_性状图谱关联(F2，F3)，对杂交后代进行标记辅助的选择，其中连锁群没有被重组事件完全分离(即最大不平衡)。重组近交系(RIL)(遗传相关的系，通常是>F5，从继续自交的F2系向纯合性发展)可以作为作图群体使用。通过使用RIL可以将从显性标记获得的信息最大化，因为所有的基因座都是纯合的或接近纯合。在紧密连锁的条件下(即，大约<10%的重组)，对于每个个体，在RIL群体中评估的显性和共显性标记比在回交群体中的每个标记类型提供更多的信息(Reiter等人，1992Proc.Natl.Acad.Sci.(USA)89:1477_1481)。然而，由于标记之间的距离增大(即，基因座变得更加独立)，RIL群体中的信息明显减少。回交群体(例如，通过成功的品种(轮回亲本)和携带前者不具有的性状的另一品种(供体亲本)之间杂交产生)可作为作图群体来使用。可以与轮回亲本进行一系列回交，以恢复大部分其需要的性状。因此，产生由几乎类似于轮回亲本的个体组成的群体，但每个个体携带不同量的或嵌合的来自供体亲本的基因组区域。如果轮回亲本中的所有基因座都是纯合的，且供体亲本和轮回亲本具有截然不同的多态性标记等位基因，回交群体可以用于对显性标记作图(Reiter等人1992)。使用共显性或显性标记从回交群体获得的信息少于从F2群体获得的信息，因为从每株植物采集一个而不是两个重组配子。然而，与RIL相比，回交群体提供更多的信息(在低标记饱和度时)，因为RIL群体中的连锁的基因座之间的距离增加(即，大约0.15%的重组)。增加的重组对于紧密连锁的分析是有益的，但在构建具有低标记饱和度的图谱时可能是不需要的。为了产生除了接受探询的性状或基因组区域之外在遗传组成上几乎相同的个体的阵列，通过多次回交产生的接近等基因的品系(NIL)可用作作图群体。在用NIL作图时，预计仅有一部分多态性基因座将定位于选定的区域。集群分离分析法(BSA)是为快速鉴定标记与感兴趣的性状之间的连锁而开发的方法(Michelmore等人1991Proc.Natl.Acad.Sci.(U.S.A.)88:9828_9832)。在BSA中，从一次杂交产生的分离群体中抽取两个集群DNA样品。这些集群包含特定性状(对特定病害具有抗性或易感性)或基因组区域相同但在非连锁的区域是任意的(即，杂合的)个体。与靶区域不连锁的区域在BSA中的许多个体的集群样品之间没有差异。传统QTL作图的一种替代方法包括通过相对于各种标记对单元型作图以实现较高的分辨率(Fan等人2006Genetics172:663_686)。该方法追踪如由多态性标记限定的、被称为单元型的DNA组块，假定它们在作图群体中谱系相同。这种假设导致较大的有效样本大小，提供较高的QTL分辨率。确定表型与基因型(在此情况下为单元型)之间相关性的统计学显著性的方法可以通过任何本领域已知的统计学检验并且使用需要的任何公认的统计学显著性阈值来确定。特定方法和显著性阈值的应用在本领域普通技术人员的能力范围之内。本发明的植物可以是育种计划的一部分或由育种计划产生。育种方法的选择取决于植物繁殖方式、待改善的性状的遗传性以及商业使用的栽培种的类型(例如，&杂种栽培种、纯系栽培种等)。栽培种是已经产生或有意挑选并通过栽培维持的植物种的生理小种或品种。下文说明了用于培育本发明的植物的选择的、非限制性的方法。对任何杂交的后代使用标记辅助的选择(MAS)可以提高育种计划。可以理解本发明核酸标记可以在MAS(育种)计划中使用。进一步可以理解可以在育种计划中使用任何商业和非商业的栽培种。例如，如发芽活力、植物生长活力、应激抗性、抗病性、分枝、开花、结实、种子的大小、种子密度、直立性(standability)和脱粒性(threshability)等各种因素通常指导选择。对于高度遗传的性状，在单一位置评估优良的单株植物的选择是有效的，而对于具有低遗传性的性状，选择应该基于通过相关植物的科的反复评估获得的平均值。流行的选择方法通常包括系谱选择、修改的系谱选择、混合选择(massselection)和轮回选择。在优选的一方面，采取回交或轮回育种计划。遗传的复杂性影响了育种方法的选择。可以利用回交育种将一个或少数高度遗传性状的有利基因转移到希望的栽培种中。这种方法已经广泛用于培育抗病性和昆虫抗性栽培种。利用各种轮回选择技术改善由大量基因控制的数量遗传的性状。可以对育种系进行测试，且可以将其与代表商业目标区域的环境中合适的标准比较两代或更多代。最好的品系是新的商业栽培种的候选品系；那些仍然为性状缺陷的品系可用作亲本，以产生新的群体用于进一步选择。新的优良大豆杂种的开发需要优良近交系的开发和选择、这些品系的杂交和优良杂种的选择。杂种种子可以通过选择的雄性能育亲本之间的人工杂交或者使用雄性不育系统来产生。关于亲本系的另外的数据以及杂种的表型影响育种者关于是否继续特定杂种杂交的决定。系谱育种和轮回选择育种方法可用于从育种群体中开发栽培种。育种计划将来自两个或多个栽培种或各种广泛的来源的理想性状组合为育种池，从育种池中通过自交和所需的表型的选择开发栽培种。可以评估新栽培种以确定哪些具有商业潜力。回交育种已被用来将简单遗传的、高度遗传的性状的基因转移到作为轮回亲本的需要的纯合栽培种或自交系中。待转移的性状的来源称为供体亲本。在初始杂交后，选择具有供体亲本的表型的个体，并与轮回亲本反复杂交(回交)。产生的植物预计具有轮回亲本(例如，栽培种)的大部分属性，此外，还有从供体亲本转移来的理想的性状。严格意义上说，单种子遗传程序是指种植分离群体，每株植物收获一个种子的样品，并使用这一个种子样品种植下一代。当群体已从F2提高到理想的近交水平时，作为该品系的来源的植物均回溯到不同的F2个体。由于一些种子不能发芽或一些植物不能产生至少一个种子，种群中的植物数量每一代都在下降。结果，当完成了世代进步时，并非全部原先在群体中取样的F2植物都有后代代表。对于通常用于不同性状和农作物的其它育种方法的描述可在以下几种参考书中找至IJ(Allard,PrinciplesofPlantBreeding,JohnWiley&Sons，NY,U.ofCA,Davis,CA,50—981960；Simmonds,Principlesofcropimprovement,Longman,Inc.,NY,369-3991979；Sneep禾口Hendriksen,Plantbreedingperspectives,Wageningen(编)，CenterforAgriculturalPublishingandDocumentation1979；Fehr,In:SoybeansImprovement,ProductionandUses,2ndEdition,Manograph.,162491987；Fehr,"Principlesofvarietydevelopment,"TheoryandTechnique，(Vol.1)禾口CropSpeciesSoybean(Vol.2)，IowaStateUniv.，MacmillanPub.Co.，NY,360—376，1987)。进一步理解，本发明提供包含本发明的核酸分子的细菌、病毒、微生物、昆虫、哺乳动物和植物细胞。如本文所用，“核酸分子”，无论是自然产生的分子还是在需要时以其它方式“基本上纯化的”分子，指的是从基本上全部其它通常与其天然状态相关的分子中分离的分子。更优选地，基本上纯化的分子是制剂中存在的主要的种类。基本上纯化的分子可以大于60%、优选75%、更优选90%且最优选95%地不含天然混合物中存在的其它分子(不包括溶剂)。术语“基本上纯化的”并非意在包括以其天然状态存在的分子。本发明的材料优选是“生物活性的”，无论是在结构属性方面，如核酸与另一种核酸分子杂交的能力，还是在蛋白质被抗体结合(或与另一种分子竞争这种结合)的能力方面。或者，这种属性可以是催化性的，因此涉及该材料介导化学反应或应答的能力。本发明的材料也可以是重组的。如本文所用的术语重组是指通过核酸分子的人工操作间接产生的任何材料(例如，DNA、肽等)。本发明的材料可以用便于检测该材料的试剂标记(例如荧光标记(Prober等人，1987Science238:336_340；Albarella等人，欧洲专利144914)、化学标记(Sheldon等人，美国专利4，582，789；Albarella等人，美国专利4，563，417)、修饰的碱基(Miyoshi等人，欧洲专利119448)。现已一般性地描述了本发明，通过参考以下的由举例的方式提供的，并且除非另外指定，不限制本发明的实施例，会更容易理解本发明。实施例实施例1鉴定PI594427C中的排拒作用型蚜虫抗性大豆育种者评价了大豆种质的赋予对蚜虫攻击和伤害的抗性的遗传性状。宿主植物抗性被分类为排拒作用、抗生作用或耐受性。排拒作用也被称为非偏好性，是植物排斥昆虫从而引起产卵或摄食减少的能力。Dowling,CNS(PI548445)。评价了Jackson、PI597727C、PI594403和Williams的排拒作用型抗性。排拒作用抗性是典型评价的选择实验，其中昆虫可以在至少两种宿主植物之间选择。在密歇根州立大学经过三个季节进行的选择田间测试中，PI594427C被确定为具有蚜虫抗性。在选择田间测试中，种植Dowling、CNS、Jackson、PI597727C、PI594403和Williams，并且装在一个笼子中。每个植物上放置两个从野外采集的蚜虫。蚜虫能够从植物到植物自由移动，因此该研究评价蚜虫的植物偏好性。在侵扰后2、3、4或5周，根据何时第一次观察到症状对植物分别评分。给予植物从0到4的目测等级(表1)。表1用于蚜虫抗性表型分型的等级量表的描述<table>tableseeoriginaldocumentpage27</column></row><table>每周，也确定植物的损害指数(DI)，损害指数是使用下式计算的<formula>formulaseeoriginaldocumentpage27</formula>较高的损害指数对应于较敏感的植物。在三年的田间测试中，与已知的蚜虫抗性品种Jackson和Dowling相比，PI594427C一贯地显示相等的或较低的蚜虫等级和损害指数(表2)。CNS和Williams对蚜虫侵扰敏感。表2.在密歇根州立大学经过3年在田间笼中一式三份测试的蚜虫抗性和敏感性大豆基因型的平均大豆蚜虫等级和损害指数<table>tableseeoriginaldocumentpage28</column></row><table>实施例2鉴定PI594427C中的抗生作用型蚜虫抗性宿主植物抗性被分类为排拒作用、抗生作用或耐受性。抗生作用是植物降低以该植物为食的昆虫的存活力、生长或繁殖的能力。抗生作用通常是由植物产生毒性化学物质引起的。抗生作用型植物抗性通常在非选择研究中评价，其中给昆虫提供一种食物来源。在非选择实验中评价了Pana.PI594403,PI71506、Williams、PI594403、PI594427C、CNS、Jackson和Dowling的抗生作用抗性。在伊利诺伊州大学进行的非选择实验中鉴定了PI594427C中的抗生作用抗性。植物在选择情况下种植在分离的笼子中。每个植物上放置三个蚜虫蛹。接种后14、17和21天计数蚜虫数(表2)。每个项目进行4个重复。在排拒作用条件下，蚜虫能够容易地在CNS上繁殖(表2)，但是在抗生作用条件下不能。与在抗生作用评价时的蚜虫侵扰和年龄范围相比，在排拒作用评价时的蚜虫侵扰水平较高，并且蚜虫年龄范围较宽。蚜虫侵扰水平和蚜虫成熟度的差异可以说明在抗生作用和排拒作用评价时在CNS上观察到的差异。此外，来自伊利诺伊州和密歇根州的地理蚜虫生物型可以说明CNS上的反应的差异。表3在伊利诺伊州大学测试的蚜虫抗性和蚜虫敏感性大豆基因型的大豆蚜虫的平均数<table>tableseeoriginaldocumentpage29</column></row><table>*之后为不同字母的平均值在0.05水平上有显著性差异。实施例3蚜虫作图研究为了将推断的QTL对蚜虫抗性作图，将抗性品系(PI594427C)与CNS或MV0031杂交。为了对与蚜虫抗性连锁的推定QTL进行作图，开发了两个作图群体PI594427C(蚜虫抗性)XMV0031和PI594427C(蚜虫抗性)XCNS.在EastLansing,MI评价封闭笼子中的F3:PI594427CXMV0031和F4:PI594427CXCNS群体的蚜虫抗性表型。每个植物上放置3个蚜虫蛹，接种后3、4、5周评定蚜虫密度。等级量表为0-5(表1)。鉴定了28个蚜虫抗性基因座(表6和表7)。使用来自QTL作图研究的第4周评价的表型数据(表4和表5)。在第4周，蚜虫抗性亲本PI594427C被评定为1.5，而蚜虫敏感性亲本MV0031和CNS被评定为3.5。除了上述表型分型以外，用SNP标记对每个群体进行基因型分型181个多态性SNP用于F3PI594427CXMV0031群体，164个多态性SNP用于F4:PI594427CXCNS群体。进行单一标记和标记回归分析以确定调节蚜虫抗性的QTL区域。表6和表7列出了基因组区域和蚜虫抗性以及诊断标记之间的显著相关性。表4接种后第4周F4:PI594427CXCNS的表型<table>tableseeoriginaldocumentpage29</column></row><table>表5接种后第4周F3:PI594427CXMV0031的表型<table>tableseeoriginaldocumentpage30</column></row><table>表6;与测定的蚜虫抗性相关的标记的结果(ns-没有显著性)<table>tableseeoriginaldocumentpage31</column></row><table><table>tableseeoriginaldocumentpage32</column></row><table><table>tableseeoriginaldocumentpage33</column></row><table><table>tableseeoriginaldocumentpage34</column></row><table>表7用于蚜虫抗性基因座1-28的SNP标记的列表(续)<table>tableseeoriginaldocumentpage34</column></row><table><table>tableseeoriginaldocumentpage35</column></row><table>确定与区域1相关的SNP标记是SEQIDNO81至SEQIDNO:84。用于区域1的SNP标记定位于连锁群J上的区域。表7列出了如SEQIDNO:1至SEQIDNO8所示的PCR扩增引物和如SEQIDN0:121至SEQIDNO128所示的探针的序列。确定与区域2相关的SNP标记是SEQIDNO:85。用于区域2的SNP标记定位于连锁群E上的区域。表7列出了如SEQIDNO:9至SEQIDNO10所示的PCR扩增引物和如SEQIDN0:129至SEQIDN0130所示的探针的序列。确定与区域3相关的SNP标记是SEQIDNO:86。用于区域3的SNP标记定位于连锁群E上的区域。表7列出了如SEQIDN0:11至SEQIDNO12所示的PCR扩增引物和如SEQIDNO131至SEQIDN0132所示的探针的序列。确定与区域4相关的SNP标记是SEQIDNO:87。用于区域4的SNP标记定位于连锁群E上的区域。表7列出了如SEQIDN0:13至SEQIDNO14所示的PCR扩增引物和如SEQIDNO133至SEQIDN0134所示的探针的序列。确定与区域5相关的SNP标记是SEQIDNO:88。用于区域5的SNP标记定位于连锁群B1上的区域。表7列出了如SEQIDN0:15至SEQIDNO16所示的PCR扩增引物和如SEQIDN0:135至SEQIDN0136所示的探针的序列。确定与区域6相关的SNP标记是SEQIDNO:89。用于区域6的SNP标记定位于连锁群N上的区域。表7列出了如SEQIDN0:17至SEQIDNO18所示的PCR扩增引物和如SEQIDN0:137至SEQIDN0138所示的探针的序列。确定与区域7相关的SNP标记是SEQIDNO:90。用于区域7的SNP标记定位于连锁群G上的区域。表7列出了如SEQIDNO:19至SEQIDNO20所示的PCR扩增引物和如SEQIDN0:139至SEQIDN0140所示的探针的序列。确定与区域8相关的SNP标记是SEQIDNO91至SEQIDNO:92。用于区域8的SNP标记定位于连锁群N上的区域。表7列出了如SEQIDNO21至SEQIDNO24所示的PCR扩增引物和如SEQIDN0:141至SEQIDNO144所示的探针的序列。确定与区域9相关的SNP标记是SEQIDNO:93。用于区域9的SNP标记定位于连锁群N上的区域。表7列出了如SEQIDN0:25至SEQIDNO:26所示的PCR扩增引物和如SEQIDN0:145至SEQIDN0146所示的探针的序列。确定与区域10相关的SNP标记是SEQIDNO:94。用于区域10的SNP标记定位于连锁群A1上的区域。表7列出了如SEQIDN0:27至SEQIDNO:28所示的PCR扩增引物和如SEQIDN0:147至SEQIDN0148所示的探针的序列。确定与区域11相关的SNP标记是SEQIDNO:95。用于区域11的SNP标记定位于连锁群A1上的区域。表7列出了如SEQIDN0:29至SEQIDNO:30所示的PCR扩增引物和如SEQIDNO:149至SEQIDNO150所示的探针的序列。确定与区域12相关的SNP标记是SEQIDNO:96。用于区域12的SNP标记定位于连锁群Dla上的区域。表7列出了如SEQIDNO:31至SEQIDNO:32所示的PCR扩增引物和如SEQIDNO151至SEQIDN0152所示的探针的序列。确定与区域13相关的SNP标记是SEQIDNO:97。用于区域13的SNP标记定位于连锁群C2上的区域。表7列出了如SEQIDN0:33至SEQIDNO:34所示的PCR扩增引物和如SEQIDNO153至SEQIDN0154所示的探针的序列。确定与区域14相关的SNP标记是SEQIDNO:98。用于区域14的SNP标记定位于连锁群H上的区域。表7列出了如SEQIDN0:35至SEQIDNO:36所示的PCR扩增引物和如SEQIDN0:155至SEQIDN0:156所示的探针的序列。确定与区域15相关的SNP标记是SEQIDNO:99。用于区域15的SNP标记定位于连锁群H上的区域。表7列出了如SEQIDN0:37至SEQIDNO:38所示的PCR扩增引物和如SEQIDN0:157至SEQIDN0:158所示的探针的序列。确定与区域16相关的SNP标记是SEQIDN0:100至SEQIDN0:102。用于区域16的SNP标记定位于连锁群D2上的区域。表7列出了如SEQIDNO39至SEQIDNO42所示的PCR扩增引物和如SEQIDN0:159至SEQIDNO164所示的探针的序列。确定与区域17相关的SNP标记是SEQIDNO:103。用于区域17的SNP标记定位于连锁群F上的区域。表7列出了如SEQIDN0:45至SEQIDNO:46所示的PCR扩增引物和如SEQIDNO165至SEQIDN0166所示的探针的序列。确定与区域18相关的SNP标记是SEQIDNO:104。用于区域18的SNP标记定位于连锁群F上的区域。表7列出了如SEQIDN0:47至SEQIDNO:48所示的PCR扩增引物和如SEQIDNO167至SEQIDN0168所示的探针的序列。确定与区域19相关的SNP标记是SEQIDNO:105。用于区域19的SNP标记定位于连锁群I上的区域。表7列出了如SEQIDN0:49至SEQIDNO:50所示的PCR扩增引物和如SEQIDN0:169至SEQIDN0:170所示的探针的序列。确定与区域20相关的SNP标记是SEQIDNO:106。用于区域20的SNP标记定位于连锁群Dlb上的区域。表7列出了如SEQIDN0:51至SEQIDNO:52所示的PCR扩增引物和如SEQIDNO171至SEQIDNO172所示的探针的序列。确定与区域21相关的SNP标记是SEQIDN0:107至SEQIDN0:108。用于区域21的SNP标记定位于连锁群Dlb上的区域。表7列出了如SEQIDN0:53至SEQIDNO56所示的PCR扩增引物和如SEQIDNO173至SEQIDNO176所示的探针的序列。确定与区域22相关的SNP标记是SEQIDNO:109。用于区域22的SNP标记定位于连锁群0上的区域。表7列出了如SEQIDN0:57至SEQIDNO:58所示的PCR扩增引物和如SEQIDNO177至SEQIDNO178所示的探针的序列。确定与区域23相关的SNP标记是SEQIDN0:110至SEQIDN0:111。用于区域23的SNP标记定位于连锁群0上的区域。表7列出了如SEQIDNO59至SEQIDNO62所示的PCR扩增引物和如SEQIDN0179至SEQIDNO180所示的探针的序列。确定与区域23相关的SNP标记是SEQIDNO:111。用于区域23的SNP标记定位于连锁群C1上的区域。表7列出了如SEQIDNO61至SEQIDNO62所示的PCR扩增引物和如SEQIDNO181至SEQIDNO182所示的探针的序列。确定与区域24相关的SNP标记是SEQIDNO:112。用于区域24的SNP标记定位于连锁群C1上的区域。表7列出了如SEQIDN0:63至SEQIDNO:64所示的PCR扩增引物和如SEQIDNO183至SEQIDNO184所示的探针的序列。确定与区域25相关的SNP标记是SEQIDNO:113。用于区域25的SNP标记定位于连锁群C1上的区域。表7列出了如SEQIDNO65至SEQIDNO66所示的PCR扩增引物和如SEQIDNO185至SEQIDNO186所示的探针的序列。确定与区域26相关的SNP标记是SEQIDN0:114至SEQIDN0:116。用于区域26的SNP标记定位于连锁群C1上的区域。表7列出了如SEQIDNO67至SEQIDNO70所示的PCR扩增引物和如SEQIDN0187至SEQIDNO190所示的探针的序列。确定与区域27相关的SNP标记是SEQIDNO:116。用于区域27的SNP标记定位于连锁群K上的区域。表7列出了如SEQIDN0:71至SEQIDNO:72所示的PCR扩增引物和如SEQIDNO191MSEQIDNO192所示的探针的序列。确定与区域28相关的SNP标记是SEQIDNO:117。用于区域28的SNP标记定位于连锁群B2上的区域。表7列出了如SEQIDN0:73至SEQIDNO:80所示的PCR扩增引物和如SEQIDNO193至SEQIDNO200所示的探针的序列。实施例4.用于检测具有蚜虫抗性基因座的大豆植物的寡核苷酸杂交探针通过基于杂交的SNP检测方法，寡核苷酸也可用于检测与本文所公开的蚜虫抗性相关的多态性或对其进行分型。本发明提供了能够与包含多态性的分离的核酸序列杂交的寡核苷酸。本领域的技术人员能够设计具有经实验确定的严格性的试验，以区别本文提出的多态性的等位基因状态。示例性的试验包括Southern印迹法、Northern印迹法、微阵列、原位杂交和其它基于杂交的多态性检测方法。表8提供了示例性的用于基于杂交的SNP检测的寡核苷酸。可以用放射性标记、荧光团或其它化学发光手段可检测地标记这些寡核苷酸，以有助于使用本领域已知的方法检测与源自一种或多种大豆植物的基因组或扩增核酸的样品的杂交。表8.寡核苷酸杂交探针标记标记SEQIDSNP位置杂交探针SEQIDNS01221518262CCTTGCAAGTCATGCT201NS01221518262CCTTGCATGTCATGCT202NS012509683139AAGTTTATGATTTGAA20337<table>tableseeoriginaldocumentpage38</column></row><table>实施例5.用于通过单碱基延伸方法检测具有蚜虫抗性基因座的大豆植物的寡核苷酸探针通过基于单碱基延伸(SBE)的SNP检测方法，寡核苷酸也可用于检测与本文所公开的大豆蚜虫抗性相关的多态性或对其进行分型。表9提供了示例性的用于基于SBE的SNP检测的寡核苷酸。SBE方法基于与邻近多态性的序列杂交的核苷酸引物的延伸，以在引物延伸时掺入可检测的核苷酸残基。也预期SBE方法可以使用3种合成的寡核苷酸。其中两种寡核苷酸作为PCR引物发挥作用，并与位于包含待测多态性的区域两翼的基因座的序列互补。在表7的标注为“正向引物SEQID”和“反向引物SEQID”的栏中提供了可用于对本发明公开的多态性进行分型的示例性的PCR引物。在包含多态性的区域扩增之后，将PCR产物与延伸引物杂交，该延伸引物与邻近该多态性的扩增的DNA退火。然后提供DNA聚合酶和两种差别标记的双脱氧核苷三磷酸。如果模板上存在该多态性，可以在单碱基链延伸中将一种标记的双脱氧核苷三磷酸添加到引物中。然后通过确定两种差别标记中的哪一种添加到延伸引物中推断存在的等位基因。纯合的样品将导致两种标记的碱基中只有一种被掺入，因此两种标记中只有一种被检测到。杂合的样品存在两个等位基因，因此将直接掺入两种标记(进入延伸引物的不同的分子)，因此这两种标记都被检测到。表9.用于单碱基延伸(SBE)分析的探针(延伸引物)<table>tableseeoriginaldocumentpage39</column></row><table>实施例6选择的蚜虫抗性等位基因的证实在非选择田间研究中根据抗生作用筛查40个大豆育种系。将每个育种系10个植物种植在样地中。各个样地用一个小的昆虫笼子覆盖。当大豆植物达到VI期时向笼子中接种大豆蚜虫。每周如表1所述对植物进行等级评定。每周确定植物的损害指数(DI)。表8列出了具有各种蚜虫抗性等位基因的大豆系的平均DI等级。另外，在非选择温室研究中针对抗生作用筛查40个品系。40个大豆育种系各有几个植物在温室中栽培。从每个植物上切下叶子，在封闭的容器中用2个大豆蚜虫接种。7天后计数每个叶子上的蚜虫数。表10列出了具有各种蚜虫抗性等位基因的大豆系上的蚜虫的平均数。表10蚜虫抗性等位基因1、16、23和28的证实。在非选择温室和田间实验中根据对大豆蚜虫的抗生作用筛查大豆系。<table>tableseeoriginaldocumentpage40</column></row><table>蚜虫抗性等位基因1在非选择田间和温室测试中都赋予蚜虫抗性。另外，蚜虫抗性基因座16在非选择田间测试中赋予抗性。而且，蚜虫抗性等位基因23提高了由蚜虫抗性等位基因1提供的蚜虫抗性。类似地，蚜虫抗性等位基因28提高了由蚜虫抗性等位基因1提供的蚜虫抗性。具有三个蚜虫抗性等位基因的大豆植物比具有一个或两个抗性等位基因的大豆植物具有更高水平的蚜虫抗性。此外，具有四个蚜虫抗性等位基因的大豆植物具有最高水平的蚜虫抗性。宿主植物抗性控制方法可能属于以下三种类别(1)顺序地部署单抗性等位基因，(2)通过种子混合物或轮作部署多个具有不同的单抗性等位基因的品种，(3)将不同的抗性等位基因堆积或组合到一个大豆系中。可以为了单独或组合的蚜虫抗性等位基因1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、14、15、16、17、18、19、20、21、22、23、24、25、26、27、28培育大豆植物，这取决于地理区域的蚜虫压力和宿主植物抗性控制计划。已经说明和描述了本发明的原理，本领域的技术人员应该明白，在不背离这些原理的情况下，可以在排列和细节上修改本发明。我们要求保护在所附的权利要求书的精神和范围之内的所有修改。权利要求一种将等位基因渗入大豆植物中的方法，包括A)提供大豆植物群体，B)相对于选自SEQIDNO81至SEQIDNO120的大豆基因组核酸标记，对该群体中的至少一个大豆植物进行基因型分型，C)从所述群体中选择至少一个包含至少一个与蚜虫抗性相关的等位基因的大豆植物。2.如权利要求1所述的方法，其中，所述选择的大豆植物显示至少部分的蚜虫抗性。3.如权利要求1所述的方法，其中，所述选择的大豆植物显示至少基本的蚜虫抗性。4.如权利要求1所述的方法，其中所述基因型通过选自单碱基延伸(SBE)、等位基因特异性引物延伸测序(ASPE)、DNA测序、RNA测序、基于微阵列的分析、通用PCR、等位基因特异性延伸、杂交、质谱法、连接、延伸-连接和瓣核酸内切酶介导的测定的分析方法来确定。5.如权利要求1所述的方法，其中，所述大豆基因组核酸标记选自SEQIDN0:81-82。6.通过权利要求1的方法获得的优良大豆植物。7.一种将等位基因渗入大豆植物中的方法，包括A)使至少一个蚜虫抗性大豆植物与至少一个蚜虫敏感性大豆植物杂交，以形成分离群体，B)用一种或多种核酸标记筛查所述分离群体，以确定来自所述分离群体的一个或多个大豆植物是否含有蚜虫抗性等位基因，其中所述蚜虫抗性等位基因是选自1、2、3、4、5、6、7、8、9、10，11、12、13、14、15、16、17、18、19、20、21、22、23、24、25、26、27和28蚜虫抗性基因座的等位基因，其中在其一个或多个基因座处的一个或多个等位基因选自蚜虫抗性等位基因1、蚜虫抗性等位基因2、蚜虫抗性等位基因3、蚜虫抗性等位基因4、蚜虫抗性等位基因5、蚜虫抗性等位基因6、蚜虫抗性等位基因7、蚜虫抗性等位基因8、蚜虫抗性等位基因9、蚜虫抗性等位基因10、蚜虫抗性等位基因11、蚜虫抗性等位基因12、蚜虫抗性等位基因13、蚜虫抗性等位基因14、蚜虫抗性等位基因15、蚜虫抗性等位基因16、蚜虫抗性等位基因17、蚜虫抗性等位基因18、蚜虫抗性等位基因19、蚜虫抗性等位基因20、蚜虫抗性等位基因21、蚜虫抗性等位基因22、蚜虫抗性等位基因23、蚜虫抗性等位基因24、蚜虫抗性等位基因25、蚜虫抗性等位基因26、蚜虫抗性等位基因27、蚜虫抗性等位基因28、蚜虫抗性等位基因29、蚜虫抗性等位基因30、蚜虫抗性等位基因31、蚜虫抗性等位基因32、蚜虫抗性等位基因33、蚜虫抗性等位基因34、蚜虫抗性等位基因35和蚜虫抗性等位基因36。8.如权利要求7所述的方法，其中所述一种或多种标记中的至少一种位于所述抗性等位基因的30cM以内。9.如权利要求7所述的方法，其中所述一种或多种标记中的至少一种位于所述抗性等位基因的20cM内10.如权利要求7所述的方法，其中所述一种或多种标记中的至少一种位于所述抗性等位基因的2cM内。11.如权利要求7所述的方法，其中所述一种或多种标记中的至少一种位于所述抗性等位基因的lcM内。12.通过权利要求9的方法获得的优良大豆植物。13.如权利要求12所述的优良大豆植物，其中，所述优良大豆植物显示转基因性状。14.如权利要求12所述的优良大豆植物，其中，所述转基因性状选自除草剂耐受性、害虫抗性、油组成等。15.如权利要求12所述的优良大豆植物，其中，所述除草剂耐受性选自草甘膦、麦草畏、草丁膦、磺脲、溴苯腈和达草灭除草剂的耐受性。16.如权利要求12所述的优良大豆植物，其中，所述核酸序列在所述优良大豆植物中以单拷贝存在。17.如权利要求12所述的优良大豆植物，其中，所述核酸序列在所述优良大豆植物中以两个拷贝存在。18.如权利要求12所述的优良大豆植物，其中，所述优良大豆植物显示至少部分的蚜虫抗性。19.如权利要求16所述的优良大豆植物，其中，所述优良大豆植物显示至少基本的蚜虫抗性。20.一种用于检测与蚜虫抗性相关的基因座的基本纯化的核酸分子，其包含选自SEQIDNO:1至SEQIDNO175及其互补序列的核酸序列。21.包含权利要求20的核酸片段的载体。22.在与权利要求21的载体相容的宿主中表达的权利要求21的载体的表达产物。23.权利要求22的表达产物的抗体。24.一种鉴定大豆植物中的蚜虫抗性等位基因的方法，包括检测与选自SEQIDNO81至SEQIDNO120的SNP标记相关的基因座。25.一组寡核苷酸，包括A)一对寡核苷酸引物，其中所述引物中的每一个包含至少12个连续核苷酸，并且其中所述引物对允许PCR扩增包含与表6和表7中鉴定的蚜虫抗性基因座相关的大豆基因组DNA多态性的DNA区段；和B)至少一个检测寡核苷酸，其允许检测所述扩增的区段中的多态性，其中所述检测寡核苷酸的序列与包括或直接邻近步骤(A)的所述多态性的玉米DNA区段任一条链中相同数目连续核苷酸的序列至少95%相同。全文摘要本发明属于植物育种和蚜虫抗性的领域。更具体地说，本发明包括用于培育含有与蚜虫-大豆蚜-抗性相关的数量性状基因座的大豆植物的方法。本发明进一步包括在育种计划中监测赋予蚜虫抗性的数量性状基因座(QTL)向优良种质内的渗入的方法。文档编号A01H5/10GK101801175SQ200880106337公开日2010年8月11日申请日期2008年8月8日优先权日2007年8月8日发明者H·R·伯尔玛,J·纳费尔,J·耶茨,V·康希比多申请人:孟山都技术公司;乔治亚大学研究基金会