植入封装的生物材料治疗疾病的制作方法

专利名称：植入封装的生物材料治疗疾病的制作方法
技术领域：
本发明涉及通过将封装的生物材料植入需要治疗的患者体内来治疗诸如糖尿病的疾病的组合物和方法。
背景技术：
糖尿病是由将葡萄糖转运至机体细胞内的能力不足引起的疾病，其原因可能是胰岛素产量不足或胰岛素反应减弱。对于健康人，血中葡萄糖的短暂升高会刺激胰岛素的产生和分泌，而胰岛素的作用是增加摄取入细胞的葡萄糖量，从而使血中的葡萄糖回到理想水平。胰岛素刺激肝和骨骼肌细胞从血液中摄取葡萄糖并将其转化为糖原(一种储能分子)。胰岛素还刺激骨骼肌纤维从血液中摄取氨基酸并将其转化为蛋白，同时其对脂肪(fat)细胞作用从而刺激脂肪的合成。在糖尿病患者中，葡萄糖在血流中饱和，但却不能被转移至需要且利用葡萄糖的细胞中。结果就是，机体细胞缺乏所需的能量，这导致许多患有控制不佳的胰岛素依赖性糖尿病的患者外表很消瘦。
在发现胰岛素及其可用作糖尿病的治疗剂之前，唯一可用的治疗就是饥饿，而其后是可预见的死亡。目前，由于过量的胰岛素会导致极度的低血糖和昏迷进而导致死亡，除非有人迅速地将葡萄糖给予患者体内才能逆转，因此在胰岛素治疗中使用过量的胰岛素仍可导致死亡。同样，由于胰岛素剂量严重不足会引起高血糖和酮症酸中毒(ketoacidosis)，如果没有适当的和紧急的治疗其可导致昏迷和死亡，因此胰岛素剂量严重不足也会导致死亡。
虽然目前可提供的对糖尿病的疗法使得糖尿病不是通常的致命性疾病，但没有任何一种标准疗法可替代机体实时生成胰岛素和精确控制葡萄糖代谢的功能。因此，糖尿病患者的平均血液葡萄糖水平通常仍然很高。慢性升高的血液葡萄糖水平会导致多种长期并发症。糖尿病是新发失明、肾衰竭、心脏病或中风的早期发展、坏疽和截肢、以及阳痿的首要原因。其使患者的预计总寿命缩短十年到二十年。
糖尿病是全世界最普遍的慢性疾病之一。在美国，约1600万人患有糖尿病，超过45岁以上成年人口的12％。而新发病例以每年150,000的速度递增。除患有临床糖尿病的人，约有2000万人表现出葡萄糖耐量异常的症状。这些人是疑似糖尿病患者(borderline)，介于正常人和明确的糖尿病患者之间。他们之中许多人会如期发展为糖尿病，而有些预测的潜在糖尿病患者的数目高达3600万人或45岁以上成年人口的25％-30％。
糖尿病及其并发症对现代社会有重要的社会经济影响。今天在美国，约有7000亿美元花费在保健方面，而差不多有1000亿美元是花费在治疗糖尿病及其并发症上。由于糖尿病的患者数还在上升，除非迅速采取措施来应对这一挑战，糖尿病治疗的花费将成为总保健花费中持续上升的部分。糖尿病的医疗、情感和经济代价是巨大的，且随着糖尿病患者数量的增长而增大。
糖尿病可分为两种不同类型1型糖尿病和2型糖尿病。1型糖尿病的特征是极少或没有循环的胰岛素，且其多发生在儿童期或青春期的早期。1型糖尿病有遗传因素。其是因为胰岛中的胰岛素生成β细胞被破坏引起的；所述胰岛分布在整个胰腺(横向位于胃后方的细长腺体)中。所述β细胞被某些尚未确定的环境事件引起的自体免疫反应所攻击。可能是病毒感染或非传染性试剂(毒素或食物)引起免疫系统作用并破坏患者胰腺中的β细胞。导致1型糖尿病事件的致病性顺序被认为由几个步骤构成。首先，遗传敏感性确信为引发所述致病性过程的先决条件。其次，病毒或食物中的非传染性病原体介导的环境损伤引起了第三步，在胰岛中的炎症反应(胰岛炎)。第四步是所述β细胞的改变或转化，导致其不再被免疫系统识别为“自体成分”，而被视为外来细胞或“非自体成分”。最后一步是直接针对所述“目标”β细胞的完全免疫反应的发展，在其过程中细胞介导的免疫机制与细胞毒抗体联合对所述胰岛素生成β细胞进行破坏。虽然存在这种免疫攻击，在一段时间内，新生β细胞的产生足够迅速超过由所述免疫系统造成的破坏，并且有足够数量的β细胞来控制血液葡萄糖水平。然而，β细胞的数量逐渐下降。当所述β细胞的数量降至临界水平(正常量的10％)，血液葡萄糖的水平再也无法控制，且发展为胰岛素产生完全停止基本上不可避免。据认为，β细胞的再生还可以持续几年，甚至是在功能性胰岛素产生停止以后，但当这些细胞发展成熟时会被破坏。
为了降低其对糖尿病的急性和慢性并发症的易感性，l型糖尿病患者每天必须接受多次胰岛素注射，并且每天要多次对其手指进行穿刺采血以检测其血糖。然后他们必须根据其后几小时内食用的食物和身体活动、应激量和任何疾病状况来确定需注射的胰岛素量。每天多次注射胰岛素并不能充分模拟身体即时产生胰岛素和精确控制葡萄糖代谢的功能。血糖水平通常比正常高，导致包括失明、心脏病发作、肾衰竭、中风、神经损伤和截肢在内的并发症。即使使用胰岛素，糖尿病患者的平均预计寿命也比健康人短15-20年。
2型糖尿病通常发生在中年期或更高年龄段，特别是肥胖者。然而，在过去的几年内，年纪较轻的成年人中的2型糖尿病患者显著上升。在前几年中，肥胖人口中2型糖尿病的发病年龄从40岁降低到30岁。他们是这种疾病的新的更年轻的受害者。在2型糖尿病中，正常条件下需要胰岛素的机体细胞丧失了敏感性而且无法正常地对胰岛素作出反应。可能许多年内通过由所述胰腺β细胞产生更多的胰岛素可克服这种胰岛素抗性。然而，因为血液葡萄糖水平升高因此所述β细胞不得不产生大量过量的胰岛素，最终使其逐渐耗尽。最后，所述过劳的β细胞死亡而胰岛素分泌停止，随之而来的是血液葡萄糖升高，达到只能通过外源胰岛素注射才能控制的水平。2型糖尿病通常伴随有高血压和胆固醇水平异常。这些疾病状态与高血糖一起使心脏病发作、中风和导致截肢的腿部循环障碍的风险上升。治疗2型糖尿病的药物包括某些作用为减少从肠道的葡萄糖吸收或肝脏的葡萄糖生成的药物，减少肝脏和肌肉细胞生成更多的葡萄糖的其它药物，以及直接刺激所述β细胞生成更多胰岛素的其它药物。然而，高水平的葡萄糖对β细胞是有毒性的，导致功能的逐渐衰退和细胞死亡。其结果是，需要2型糖尿病患者最终需要外源的胰岛素。
另一种类型的糖尿病称为Maturity Onset Diabetes of the Young(年轻人成年期发病型糖尿病，MODY)。这种类型的糖尿病归因于胰岛素生成细胞的多种遗传差错之一，其限制了它们处理通过特定葡萄糖受体进入的葡萄糖的能力。MODY患者的β细胞不能正确地对葡萄糖反应产生胰岛素，导致高血糖。对这种患者的治疗最终导致需要胰岛素注射。
现有的胰岛素依赖型糖尿病的治疗方法仅限于胰岛素给药和用整个胰腺或部分胰腺进行的胰腺移植。
胰岛素治疗远比胰腺移植普遍。常规的胰岛素给药或者通过几次测量血液葡萄糖和皮下注射，通过多次测量血液葡萄糖及皮下注射胰岛素加强，或者通过用泵连续皮下注射胰岛素来实现。常规的胰岛素治疗包括每天一次或两次注射给药加入或不加入少量常规胰岛素的中效型胰岛素。加强胰岛素治疗包括全天多次给药中效或长效胰岛素，同时每餐前给药常规或短效胰岛素。连续皮下胰岛素输注包括使用小型电池驱动泵将胰岛素通过皮下输送到腹壁，通常通过27号规格(gauge)蝶形针头进行。这种治疗形式以基本速率昼夜连续输送胰岛素，但在餐前要程序化地提高速率。这些方法中的每一种，都需要患者频繁地监测他或她的血液葡萄糖水平，并且如果需要调整胰岛素剂量。然而，控制血糖并不简单。除了严格注意保持健康的饮食、运动制度，以及始终注射适量的胰岛素外，包括应激、激素变化、生长期、疾病、感染和疲劳在内的许多其它因素会严重影响身体的血糖水平。1型糖尿病患者必须随时对威胁生命的低血糖(血糖低)和高血糖(血糖高)反应做好准备。胰岛素依赖糖尿病是可以威胁生命的疾病，需要始终保持警惕。
对比胰岛素给药，全胰腺移植或部分胰腺移植已知通过调节糖尿病患者体内的新胰腺释放胰岛素来消除升高的葡萄糖数值。在组织学上，胰腺包含三种类型的功能细胞a)将其酶分泌入小型导管的外分泌细胞，b)将所述酶运送到肠道的导管细胞，及c)将其激素分泌入血流的内分泌细胞。所述外分泌部分构成大量小型的腺(腺泡)，其含有称为腺泡细胞的柱状到锥状上皮细胞。腺泡细胞构成胰腺细胞的约80％，并向胰腺导管系统中分泌诸如淀粉酶、脂肪酶、磷脂酶、胰蛋白酶、糜蛋白酶、氨肽酶、弹性蛋白酶的消化酶和各种其它蛋白。每天约有1.5-3升碱性分泌液被释放到胆总管中以帮助消化。
胰腺导管系统由相互连接的导管的复杂的分支样网络构成，其对每一分泌腺泡进行引流，导入逐渐变大的导管并最终导入胰总管。胰腺导管系统的内层上皮由导管细胞构成。约10％的胰腺细胞是导管细胞。导管细胞的形态包括从引流所述分泌腺泡的细小根部(fine radicle)中的立方形到总导管系统中的长柱形的黏液分泌细胞。
激素生成小岛分布在整个胰腺中，并将其激素分泌入血流而非导管中。小岛是富血管化的。小岛仅构成胰腺的1-2％，但接收了胰腺血流的约10-15％。在小岛中有三种主要细胞类型，其中每种都产生不同的内分泌物；α细胞分泌激素高血糖素(葡萄糖释放)；β细胞产生胰岛素(葡萄糖利用和贮存)并且是最丰富的小岛细胞；而δ细胞分泌激素促生长素抑制素(抑制其它激素的释放)。这些细胞类型并非随机分配在小岛中。β细胞位于所述小岛的中央部分，并被α细胞和δ细胞的外层所包围。除了胰岛素，高血糖素和促生长素抑制素、胃泌素和血管活性肠肽(VIP)也被鉴定为胰岛细胞的产物。
胰腺移植通常仅在需要肾移植才进行，这导致相对很少进行单独的胰腺移植。虽然胰腺移植可以成功地帮助胰岛素依赖糖尿病患者增强他们的血糖控制能力而无需胰岛素注射，并减少他们的长期并发症，但全胰腺移植有许多缺点。最重要的是，进行胰腺移植采用大手术，并且需要使用终身免疫抑制药物以防止机体的免疫系统破坏该胰腺。没有这些药物该胰腺每天都会受到破坏。使用这些免疫抑制药物的某些风险是增加了本身就足以致命的感染和肿瘤的发生率。所述风险还存在于手术过程中，为了克服移植物排斥患者对终身免疫抑制剂的需求，及与这一侵入性过程相关联的发病率和死亡率，表明了与为治疗糖尿病进行的全胰腺移植相关的严重缺点。因此，胰岛素注射和胰腺移植的替代方法将满足大量的公共卫生需求。
小岛移植是比全胰腺移植更为简单(和安全)的方法，并可通过替换受损的β细胞实现相同的效果。如上所述，当β细胞数量不足或胰岛素分泌不足时，不管其成因如何都会导致糖尿病。使糖尿病患者体内的小岛β细胞恢复到足够恢复正常葡萄糖反应的胰岛素产量的数量，可以同时解决与胰岛素注射和大器官移植相关的问题。将小岛细胞微囊化并植入糖尿病患者体内给这些糖尿病患者的治疗带来了希望。
在文献中论述了用于治疗多种疾病或病症的潜在手段的细胞封装。这一概念早在100年前就已经提出了，但在二十世纪50年代以前，即免疫学家开始使用带膜装置的封装细胞从宿主分离细胞以更好地理解免疫系统的不同方面以前，在这方面所作的工作很少。在二十世纪70年代和80年代进行了植入研究且第一篇综述写于1984年。随后又写了多篇其它综述说明处于开发中的不同方法和装置类型。细胞封装技术在许多医疗领域都有潜在的应用。例如，一些重要的潜在应用就是糖尿病的治疗(Goosen，M.F.A.等(1985)Biotechnology and Bioengineering，27146)，生产生物重要的化学物质(Omata，T.等“Transformation of Steroids byGel-Entrapped Nacardia rhodocrous Cells in Organic Solvent”Eur.J.Appl.Microbiol.Biotechnol.8143-155)，以及评价抗身体免疫缺陷病毒的药物(McMahon，J.等(1980)J.Nat.Cancer Inst.，82(22)1761-1765)。
有三种主要类型的封装装置，其最好通过描述封装的形成来分类。所述三种类型是a]大装置(macrodevice)，b]微胶囊，和c]共形(conformal)包衣。
大装置是含有选择通透性片状或管状形式的膜的大型装置，并通常含有支持结构。其含有一个或几个用于封装的细胞的隔室。其设计为用于植入血管外或血管位点。有些设计为生长进入宿主体内以增加氧扩散进入这些大型装置。其它设计为不受宿主的作用，从而提升将其从不同位点移除的方便性。开发了两种主要类型的大装置a]扁平片，和b]中空纤维。
在所述扁平片装置中，有一种类型(Baxter，Theracyte)是由多个用于增加强度的层构成，并在支持结构之间具有扩散膜，其带有放置细胞的加载孔。另一种类型在设计上更为简单。该装置用藻酸盐为基础的膜和其它支持膜来对位于所述片之间的藻酸盐基质中的小岛进行封装。所述复合装置设计为生长入体内以增加氧的扩散。由于其相对较大的尺寸，体内只有少数位置能够容纳它来治疗疾病，如糖尿病。因为其生长入体内并且不能期望所包含的细胞存活很多年，因此长期应用这种装置需要多次移除细胞并装填新的细胞。已证明很难在同时保持用于氧扩散的必要的细胞隔室距离的条件下对这类装置进行冲洗和再装填。
第二种扁平片类型的装置被设计为“整进/整出(all in/all out)”的装置，其与宿主的相互作用极少。对于糖尿病产品，很难在保持其完整的条件下将这类装置放入大型动物的腹膜内腔。其原因是难以将其固定在腹部，从而使得肠不会导致其移动或起皱，其可能损坏或破坏该装置。
其它主要的大装置类型是中空纤维，其通过将热塑性材料拉伸成中空纤维来制造。这些中空纤维可制成足够大以充当血液导管。一种模型设计为被紧固在宿主的大型血管内，而封装的细胞则位于该设备内的选择通透性膜后面。这种类型在大型动物糖尿病试验中显示了效果，但受到如何达到所述血管位点的难题的困扰。形成血栓和造成出血限制了这一方法的发展，现在其已经被放弃作为临床适用的产品。另一使用中空纤维的模型直径小得多，并设计为用作血管外装置。因为较低的填充密度，封装所需的细胞数量会使这类中空纤维的长度达到数米。因此，因为其不适用于临床的，因此这种方法被放弃用于治疗糖尿病。此外，对所述纤维的开放端进行密封不容忽视，并且强度是依赖于所述血管外位点而确定的问题。
微胶囊是首先表现出潜在临床效力的装置之一。藻酸盐微胶囊被用于对小岛进行封装，当腹膜内植入后其消除了啮齿动物的糖尿病。然而，离开这些不能证实临床效力的初次报道已经过去了接近25年。与微胶囊有关的问题之一是它们相对较大的尺寸以及较低的细胞填充密度，特别对于治疗糖尿病。另一问题是藻酸盐的使用；一种离子交联的水凝胶，其交联度依赖于钙的浓度。纯藻酸盐胶囊的选择通透性难以控制，其中绝大多数在分子量分布上是充分开放的。为了给所述胶囊提供选择通透性，加入了多种诸如多熔素的带正电的交联剂作为第二包衣。然而，多熔素和多数其它类似分子引起炎性反应，需要藻酸盐作为附加的第三包衣以降低宿主对所述胶囊的反应。此外，难以生产植入后在宿主体无反应性的较纯的藻酸盐。试图减小所述藻酸盐微胶囊会引起两个主要问题。第一，产生大量没有任何细胞的空胶囊。第二，生产更小的胶囊导致对细胞的包被变差。没有作用力使所包含的细胞保持在所述微胶囊的中心，导致随着胶囊尺寸的减小，包衣不完全的风险呈指数上升。没有证明用藻酸盐微胶囊可以产生共形包衣。
最后一类细胞封装是共形包衣。共形包被的细胞聚集体指不管该聚集体的大小或形状，在该细胞聚集体周围有基本均匀的细胞包衣。这种包衣不仅在厚度上可以是均匀的，而且在该包衣的保护性选择通透特性上也可以是均匀的，其提供了均匀的免疫保护。此外，其在强度和稳定性上可以是均匀的，从而防止所包被的材料被宿主的免疫系统侵害。
使用这些不同方法的可行性的重要方面是获得15,000IEQ/kg-BW的生理结果所需的相对大小和植入位点。将分离的小岛注射入门静脉需要2-3ml填充细胞。由一个小岛厚度(～500μm)的扁平片构成的大装置需要相当于两美元钞票的表面积。由负载密度5％的中空纤维构成的大装置需要30米的纤维。平均直径400-600μm的藻酸盐微胶囊将需要50-170ml体积。然而，产生25-50μm厚的覆盖物的小岛PEG共形包衣只需要6-12ml体积，且可以被注射入身体的任何区域。
对封装聚合物生物相容性(生物适应性)、化学稳定性、免疫保护和抗细胞过度生长能力的严格要求，限制了现有技术的封装细胞方法和其它生物材料的应用。所述膜必须在细胞存在下无毒性地制备，且必须具有选择通透性、化学稳定性的特性，并且具有很高的生物相容性。
用于暴露于生物液体或组织的合成或天然材料被广义地归类为生物材料。如果这些生物材料在体内产生很小或不产生有害反应则被认为是生物相容的。对于生物材料的许多用途，需要使生理环境与所述材料间的相互作用最小。对这些用途，如果植入后其表面上极少细胞生长、且在使用过程中极少炎性反应、没有过敏反应的迹象，则这种材料被认为是“生物相容的”。因此，所述材料不应引起特异性体液或细胞免疫反应以及非特异性异物反应。
成功防止所有上述反应的材料相对较少。生物相容性多数是大概的程度而非绝对状态。在任何植入物与周围生物液体的界面处首先发生的事件是蛋白吸附(Andrade，J.D.等(1986)V.Adv.Polym.Sci.，791-63)。在天然来源的材料的情况下，可以理解在宿主的整个免疫防御机制中存在对该材料特异的抗体。在这种情况下，可导致强烈的免疫反应。然而，多数合成材料并不引起这样的反应。它们可以活化补体级联反应和/或吸附诸如细胞粘附分子(CAMs)的血清蛋白，其介导细胞粘附(Buck，C.A.等(1987)Ann.Rev.Cell Biol.，3179-205)。
蛋白可吸附在几乎任何类型的材料上。其具有带正电和/或负电的区域以及亲水性和疏水性区域。因此其可通过任意的这些不同区域与植入材料相互作用，导致植入物表面的细胞增殖。诸如C3b的补体片段可停留在植入物表面并充当化学诱引剂。因而其可活化诸如巨噬细胞和嗜中性白细胞的炎性细胞，并使其附着在植入物表面并活化。这些细胞试图降解和消化异物。
在所述植入物不可降解且过于庞大不能被大量单独活化巨噬细胞摄取的情况下，所述炎性细胞可能遭受失败的吞噬作用(frustratedphagocytosis)。几个这种细胞可以结合形成异物巨细胞。在此过程中，这些细胞释放过氧化物、水解酶和趣化剂以及诸如白介素的过敏性试剂，其加重所述反应的严重性。它们还在异物表面诱导成纤维细胞的增殖。
过去用于增强材料的生物相容性的方法最初试图使所述材料与其水性环境之间的表面能最小。类似的固体与液体之间的表面张力被认为可以使细胞吸附的驱动力最小，并且其被认为可使表面的细胞粘附和血栓形成性降低。例如，Amudeshwari等人在HEMA和MMA存在下交联的胶原凝胶(Amudeswari，S.，et al.(1986)J.Biomed.Mater.Res.201103-1109)。Desai和Hubbell显示聚(HEMA)-MMA共聚物是不形成血栓的(Desai，N.P.et al.(1989)J.Biomaterials Sci.，Polym.Ed.，1123-146；Desai，N.P.et al.(1989)Polym.Materials Sci.Eng.，62731)。
Hubbell等人(美国专利第5,529,914号和相关专利)公开了在生物材料周围用水溶性分子光聚合形成生物相容性膜的方法。这些方法中每一种都采用含水溶性大分子单体的聚合体系，使用光敏引发剂(例如染料)聚合，并用可见光或长波长紫外光照射。
由于本领域所属技术人员不能提供成功的细胞封装的一种或多种重要特性，因此过去开发的封装技术都没有形成临床产品。这些特性可以划分为以下类别生物相容性-用于制备封装装置的材料必须不能引起宿主反应，否则单这些材料就可引起免疫系统的非特异性活化。当考虑到免疫隔离时，必须意识到其只有在宿主免疫细胞没有对所述材料活化的条件下才能起作用。如果宿主免疫细胞被所述材料活化，则响应的免疫细胞将把所述装置包围起来并试图破坏它。这一过程产生许多细胞因子(cytokine)，其肯定会通过所述胶囊扩散并极可能破坏封装的细胞。至今为止试验的多数装置都失败了，部分原因是它们在宿主体内缺乏生物相容性。
选择通透性-在使包围封装细胞的胶囊中具有可能的最大孔尺寸与最小孔尺寸之间存在重要的平衡，因为大的孔尺寸使得所有营养物质和废物可以通过所述胶囊从而保证最佳的活力和功能，而与此同时，小的孔尺寸使得所有免疫系统元件远离封装的细胞防止所述细胞的降解。小孔能够将免疫细胞因子排除在外，但也会因为缺乏营养元素和废物的扩散而导致封装细胞的死亡。最佳的细胞封装具有精确和一致的选择通透性，其保证了最大的细胞活力和功能，并提供了对宿主免疫系统的隔离。理想地，这种封装技术应该具备根据所封装的细胞及其功能来选择和改变孔尺寸的能力，并且孔尺寸可根据所述细胞是同种移植还是异种移植细胞而变化。
封装细胞的活力和功能-在形成包衣过程中或实施过程(ongoingbasis)中所述封装材料不能对所封装的细胞显示出细胞毒性，否则封装细胞的数量会下降，并且存在达不到有效治疗疾病或病症所需数量的风险。
相对尺寸-许多装置的尺寸是如此之大以至于宿主体内可行的植入位点数目很有限。另一个因素是封装的细胞与宿主之间的相对扩散距离。对细胞存活最关键的扩散性试剂是氧。因为在体内氧在组织水平的起始氧分压在30-40mmHg范围，因此这些扩散距离应该达到最小。由于起始的低氧分压，因此在扩散距离内对压降的耐受性很小。这会使氧气浓度进一步降低到细胞无法充分发挥功能或存活。
细胞回收或替换-所述封装装置应该是可回收、再填充或生物降解的，使得可进行细胞的替换或补充。许多装置的设计没有考虑到封装的细胞在宿主体内只有有限的寿命，且需要经常替换这一事实。
治疗效果-所述植入物应该含有足够数目的功能性细胞，从而对宿主体内的疾病应用具有治疗效果。
临床适用-所述细胞封装装置应该具有允许其被植入在侵入性最弱或生理性最强的位点来发挥功能的总体积或尺寸，其具有的风险/受益比例低于宿主患有当前疾病时所面对的比例。
商业适用-所述细胞封装装置应该能够满足上述要求，使得可不断生产该装置用于长期治疗其所设计的疾病过程。
当评价用于植入小岛以减轻糖尿病症状的具体技术、方法或产品时，所有上述因素都必须加以考虑。
通过降未封装的小岛注射入门静脉中可实现带免疫抑制的人体小岛移植，其中所述小岛注射过程是通过直接注射来实现的，使用荧光镜导向在肋骨间经皮进入肝脏然后进入门静脉。基本上所有的人体小岛移植都是通过这一技术实现的，除了最初的移植是通过经静脉造口术进行的脐静脉注射来完成的。这一过程的主要风险是将小岛注射入门静脉导致门静脉压力上升的事实，其依赖于输注速率和输注量。另一种升高门静脉压力的风险是注射入大量不够纯净的小岛组织。这也导致门静脉血栓成为这一过程的并发症。当介入性放射学家准备收回导管时，会留下一团明胶以防止从注射位点出血。然而，在这一过程后已经有几位患者有出血的情况。
除了将小岛注射入门静脉之外，一些患者的小岛被注射入脾脏体内。脾脏比肝脏更为脆弱，因此这些移植是在肾移植的时候进行的，此时脾脏注射可以当成开放过程来实现。将小岛自由地注射入腹腔可以毫无困难地在小鼠移植试验中进行。已发现，对大型动物或人体采用这一位点，在腹腔中所需的小岛数量为门静脉移植所需数量的两倍。如果出现任何排斥或炎性反应，则倾向于在肠环(loop)之间形成粘联，以及粘附在网膜上。这一反应可导致诸如肠梗阻的其它长期问题。因此，实现将封装的小岛植入皮下位点的能力将显著减少与这些其它位点相关的并发症。
皮下植入封装小岛的尝试不能产生持续的糖尿病治疗效果，其可能是由上述科学挑战中的部分或全部造成的。Tatarkiewicz等人(Transplantation Proceedings 1998，30，479-480)公开了在小鼠体内皮下移植封装在带组织扩散孔的装置中的大鼠小岛。Kawakami等人(CellTransplantation 19976，5541-545)在大鼠体内皮下移植了封装在琼脂糖-PSSa中的胰腺β细胞。移植后保持了所述细胞的胰岛素分泌。然而，这一研究仅对封装小岛细胞的皮下移植进行了一周的测试。没有提供证据证明所述细胞可以长期在皮下植入物中保持胰岛素分泌。Kawakami等人(Transplantation 2002，73，122-129)将大鼠小岛封装在琼脂糖/聚(苯乙烯磺酸)混合凝胶中，并将所封装的细胞植入前血管化的皮下位点。Stockley等人(J.Lab.Clin.Med.135484-492)将工程化为(engineered)分泌人体生长激素的同种异体MDCK细胞封装在藻酸盐-聚-L-赖氨酸-藻酸盐中，并用其进行植入。如果假设所用的胶囊体积为100μl并且这一体积不包括除封装细胞外的其它组分，则Stockley等人封装的细胞可估计为具有约1.5mm直径。Stockley没有提供与所应用的封装细胞的实际体积有关的任何信息。本领域所属技术人员不能确定需要对个体给药的封装细胞的所需体积。
发明概述在一实施方案中，本发明涉及用于细胞治疗的组合物，其包括包括聚乙二醇(PEG)在内的多个封装装置，所述PEG的分子量位于约900到约3,000道尔顿(Dalton)之间；以及封装在所述封装装置中的多个细胞，其中所述组合物具有至少约100,000细胞/ml的细胞密度。在优选实施方案中，所述封装装置是微胶囊。在更优选的实施方案中，所述微胶囊为共形包被的细胞聚集体。优选地，所述细胞聚集体是细胞密度为至少约6,000,000细胞/ml的胰岛。
在优选实施方案中，所述细胞是神经细胞、心血管细胞、肝细胞、内分泌细胞、皮肤细胞、造血细胞、免疫细胞、神经内分泌细胞、代谢细胞、系统细胞(systemic)或遗传细胞。优选地，所述细胞是自体固有的、同种异体的、异体的或遗传修饰的。在最优选的实施方案中，所述细胞是胰岛素生成细胞。
在另一方面，本发明涉及治疗有效的组合物，其包括多个平均直径小于400μm的封装装置，其中所述封装装置包括封装在封装材料中的细胞，并且所述组合物包括至少约500,000细胞/ml。在更优选的实施方案中，所述封装装置的平均直径小于300微米。在进一步优选的实施方案中，所述封装装置的平均直径小于200微米。在更进一步优选的实施方案中，所述封装装置的平均直径小于100微米。且在最优选的实施方案中，所述封装装置的平均直径小于50微米。
在另一实施方案中，本发明涉及治疗有效组合物，其包括多个平均直径小于400μm封装装置，其中所述封装装置包括封装在封装材料中的细胞，并且所述组合物中封装装置与细胞的体积比小于约20∶1。在更优选的实施方案中，所述组合物中封装装置与细胞的体积比小于约10∶1。在进一步优选的实施方案中，所述组合物中封装装置与细胞的体积比小于约2∶1。
在另一实施方案中，本发明涉及本文所述的治疗组合物在方法中的用途，其包括将所述组合物植入需要治疗疾病或病症的动物体内的植入位点的步骤。
在优选实施方案中，本发明涉及所述治疗组合物在方法中的用途，其中所述组合物包括带有分子量在900-3,000道尔顿之间的聚乙二醇(PEG)包衣的封装装置，并具有至少约100,000细胞/ml的细胞密度，所述方法包括将所述组合物植入需要治疗疾病或病症的动物体内的植入位点的步骤。优选地，所述植入方法是注射。
在优选的实施方案中，所述疾病或病症是神经疾病、心血管疾病、肝疾病、内分泌疾病、皮肤疾病、造血疾病、免疫疾病、神经内分泌疾病、代谢疾病、系统性疾病或遗传性疾病。在最优选的实施方案中，所述疾病是内分泌疾病，其为糖尿病。
在优选的实施方案中，所述动物属于兽亚纲(Subclass Theria)下属的偶蹄目、食肉目、鲸目、奇蹄目、灵长目、长鼻目或兔形目。优选地，所述动物为人。
在优选的实施方案中，所述植入位点为皮下、肌肉内、器官内、器官的动/静脉血管、脑-脊液位点。更优选地，所述植入位点是皮下位点。在最优选的实施方案中，所述方法包括将封装的小岛植入皮下植入位点。
在优选的实施方案中，将所述组合物植入需要治疗疾病或病症的动物体内的植入位点的方法还包括将免疫抑制试剂或抗炎试剂进行给药的步骤。优选地，给药所述免疫抑制试剂或抗炎试剂少于6个月。更优选地，给药所述免疫抑制试剂或抗炎试剂少于1个月。
在另一优选的实施方案中，本发明涉及治疗组合物在方法中的用途，其包括多个平均直径小于400μm的封装装置，其中所述封装装置包括封装在封装材料中的细胞，且所述组合物具有至少约500,000细胞/ml，所述方法包括将所述组合物植入需要治疗疾病或病症的动物体内的植入位点的步骤。优选地，所述植入方法是注射。
优选地，所述疾病或病症是神经疾病、心血管疾病、肝疾病、内分泌疾病、皮肤疾病、造血疾病、免疫疾病、神经内分泌疾病、代谢疾病、系统性疾病或遗传性疾病。在最优选的实施方案中，所述疾病是糖尿病。
优选地，所述动物属于兽亚纲下属的偶蹄目、食肉目、鲸目、奇蹄目、灵长目、长鼻目或兔形目。优选地，所述动物为人。
优选地，所述植入位点为皮下、肌肉内、器官内、器官的动/静脉血管、脑-脊液位点。更优选地，所述植入位点是皮下位点。在最优选的实施方案中，所述方法包括将封装的小岛植入皮下植入位点。
在优选的实施方案中，将所述组合物植入需要治疗疾病或病症的动物体内的植入位点的方法还包括将免疫抑制试剂或抗炎试剂进行给药的步骤。优选地，给药所述免疫抑制试剂或抗炎试剂少于6个月。更优选地，给药所述免疫抑制试剂或抗炎试剂少于1个月。
在另一实施方案中，本发明涉及封装生物材料的方法，其包括如下步骤向所述生物材料中加入含有第一缓冲剂的溶液；离心所述生物材料形成沉淀的生物材料；移去上清液；向所述沉淀的生物材料中加入包括与细胞吸附材料结合的光敏引发剂染料的溶液；将所述沉淀的生物材料用包括与细胞吸附材料结合的光敏引发剂染料的溶液重新悬浮和孵育足够长的时间；
离心混合物进行；移去包括与细胞吸附材料结合的光敏引发剂染料的溶液；将所述沉淀的生物材料用含有第二缓冲剂的第二溶液重新悬浮；离心并移去所述第二缓冲剂；将所述沉淀的生物材料用光敏聚合物溶液重新悬浮并混合；及使用能量源对所述用光敏聚合物溶液重新悬浮的生物材料进行照射，形成封装的生物材料。优选地，所述封装的生物材料是PEG共形包被的小岛同种移植物。
优选地，所述细胞吸附材料是聚阳离子聚合物。在优选的实施方案中，所述聚阳离子聚合物是PAMAM Dendrimer(树枝状聚合物)。在可选的优选实施方案中，所述聚阳离子聚合物是聚乙烯亚胺。
优选地，所述生物材料是器官、组织或细胞。更优选地，所述组织是胰岛素生成细胞簇。更优选地，所述细胞是胰岛素生成细胞。
在优选的实施方案中，所述第一和第二缓冲剂为1-200mM。更优选地，所述第一和第二缓冲剂为10-50mM。最优选地，所述第一和第二缓冲剂为20mM。
在优选的实施方案中，所述光敏引发剂为羧基曙红(carboxyeosin)、乙基曙红、曙红Y、荧光素、2，2-二甲氧基，2-苯基苯乙酮、2-甲氧基，2-苯基苯乙酮、樟脑醌、玫瑰红、亚甲蓝、藻红、夹竹桃红(phloxine)、硫堇、核黄素或亚甲绿。更优选地，所述光敏引发剂为羧基曙红。
在优选的实施方案中，所述光敏聚合物溶液包括可聚合的高密度烯键化不饱和PEG和磺化的共聚单体。在更优选的实施方案中，所述可聚合的高密度烯键化不饱和PEG为高密度丙烯酸化的PEG。优选地，所述可聚合的高密度丙烯酸化的PEG具有1.1kD的分子量。
在优选的实施方案中，所述磺化的共聚单体为2-丙烯酰胺基-2-甲基-1-丙磺酸、乙烯基磺酸、4-苯乙烯基磺酸、3-磺基丙基丙烯酸酯、3-磺基丙基甲基丙烯酸酯或n-乙烯基马来酰亚胺磺酸酯。在更优选的实施方案中，所述磺化的共聚单体为2-丙烯酰胺基-2-甲基-1-丙磺酸。
在优选的实施方案中，所述光敏聚合物溶液还包括助催化剂，所述助催化剂为三乙醇胺、三乙胺、乙醇胺、N-甲基二乙醇胺、N，N-二甲基苄胺、二苄基胺、N-苄基乙醇胺、N-异丙基苄胺、四甲基乙二胺、过硫酸钾、四甲基乙二胺、赖氨酸、鸟氨酸、组氨酸或精氨酸。更优选地，所述助催化剂为三乙醇胺。
在优选的实施方案中，所述光敏聚合物溶液还包括促进剂，所述促进剂为N-乙烯基吡咯烷酮、2-乙烯基吡啶、1-乙烯基咪唑、9-乙烯基缩二氨基脲、9-乙烯基-carbozol(咔唑)、丙烯酸、n-乙烯基-carpolactam(果内酰胺)、2-烯丙基-2-甲基-1，3-环戊二酮或2-羟乙基丙烯酸酯。更优选地，所述促进剂为N-乙烯基吡咯烷酮。
在优选的实施方案中，所述光敏聚合物溶液还包括选自天然和合成聚合物的粘度增强剂。在更优选的实施方案中，所述粘度增强剂为3.5kDPEG-三醇或4kD PEG-二醇。
在优选的实施方案中，所述光敏聚合物溶液还包括密度调节剂。更优选地，所述密度调节剂为Nycodenz或Ficoll。
在优选的实施方案中，所述光敏聚合物溶液还包括“Good”缓冲剂。在更优选的实施方案中，所述“Good”缓冲剂为HEPES或MOPS。在最优选的实施方案中，所述“Good”缓冲剂为MOPS。
在优选的实施方案中，所述能量源为氩激光。
在优选的实施方案中，用于所述封装方法的生物材料是神经材料、心血管材料、肝材料、内分泌材料、皮肤材料、造血材料、免疫材料、神经内分泌材料、代谢材料、系统材料或遗传材料。
在优选的实施方案中，所述生物材料来自哺乳纲兽亚纲的动物。在更优选的实施方案中，所述动物属于兽亚纲下属的偶蹄目、食肉目、鲸目、奇蹄目、灵长目、长鼻目或兔形目。在最优选的实施方案中，所述动物为人。
在另一实施方案中，本发明涉及用于封装生物材料的组合物，其包括分子量在900-3,000道尔顿之间的可聚合的高密度烯键化不饱和PEG和磺化的共聚单体。在优选的实施方案中，所述可聚合的高密度烯键化不饱和PEG为可聚合的高密度丙烯酸化的PEG。在更优选的实施方案中，所述可聚合的高密度丙烯酸化的PEG的分子量为1.1kD。
在优选的实施方案中，所述磺化的共聚单体为2-丙烯酰胺基-2-甲基-1-丙磺酸、乙烯基磺酸、4-苯乙烯基磺酸、3-磺基丙基丙烯酸酯、3-磺基丙基甲基丙烯酸酯或n-乙烯基马来酰亚胺磺酸酯。在最优选的实施方案中，所述磺化的共聚单体为2-丙烯酰胺基-2-甲基-1-丙磺酸。
在优选的实施方案中，所述用于封装生物材料的组合物还包括助催化剂，所述助催化剂为三乙醇胺、三乙胺、乙醇胺、N-甲基二乙醇胺、N，N-二甲基苄胺、二苄基胺、N-苄基乙醇胺、N-异丙基苄胺、四甲基乙二胺、过硫酸钾、四甲基乙二胺、赖氨酸、鸟氨酸、组氨酸或精氨酸。在更优选的实施方案中，所述助催化剂为三乙醇胺。
在优选的实施方案中，所述用于封装生物材料的组合物还包括促进剂，所述促进剂为N-乙烯基吡咯烷酮、2-乙烯基吡啶、1-乙烯基咪唑、9-乙烯基缩二氨基脲、9-乙烯基-carbozol、丙烯酸、n-乙烯基-carpolactam、2-烯丙基-2-甲基-1，3-环戊二酮或2-羟乙基丙烯酸酯。在更优选的实施方案中，所述促进剂为N-乙烯基吡咯烷酮。
在优选的实施方案中，所述用于封装生物材料的组合物的生物相容性分值至少约为“2”。更优选地，所述组合物在哺乳动物中、更进一步优选在亚人(sub-human)灵长目动物中、最优选在人中的生物相容性分值至少约为“2”。
在优选的实施方案中，所述用于封装生物材料的组合物具有选择通透性的特性。更优选地，所述选择通透性可通过对所述组合物进行加工来调控。
在优选的实施方案中，所述用于封装生物材料的组合物的细胞功能许可性(allowance)分值至少约为“2”。更优选地，所述组合物在哺乳动物中、更进一步优选在亚人(sub-human)灵长目动物中、最优选在人中的细胞功能许可性分值至少约为“2”。
在优选的实施方案中，所述用于封装生物材料的组合物还是生物可降解的。更优选地，所述组合物在哺乳动物中是生物可降解的。更进一步优选地，所述组合物在亚人灵长目动物中是生物可降解的。在最优选的实施方案中，所述组合物在人体中是生物可降解的。
从以下对优选实施方案的详细说明可以清楚地理解本发明的其它方面、特征和优点。
附图的简要说明

图1A所示为分离的食蟹猴(Cynomolgus)小岛的照片。
图1B所示为PEG共形包被的食蟹猴小岛的照片。
图2所示为树枝状聚合物曙红Y轭合物(conjugate)的合成。
图3所示为第二代树枝状聚合物。在实施例中，使用了第四代树枝状聚合物，其支链远多于所示的第二代树枝状聚合物。
图4所示为通过分值为1、2和4的FDA/EB测试检测的封装细胞的存活。
图5显示了通过改变形成PEG包衣时采用的变量来改变藻酸盐/PEG微胶囊选择通透性特性的能力。对藻酸盐/PEG封装的小岛进行孵育，一段时间后检测所述细胞释放的蛋白以确定分子量。在最左侧的列中显示了由未封装的小岛释放的蛋白，其后是分子量标准列。旁边的列显示的是藻酸盐/PEG封装的小岛释放的蛋白，所释放的蛋白分别为大于100kD、100kD、小于60kD、小于30kD和0kD。
图6显示了由静态葡萄糖刺激试验(Static Glucose Stimulation test)得到的封装小岛的功能性，其用不同的蛋白扩散性特性表示，开放包衣(＞200kD)记为“1”，中等的(100-200kD)记为“2”，而紧密包衣记为“3”。
图7所示为在无胸腺小鼠中检测到的血液葡萄糖水平曲线图，该小鼠在腹膜内位点植入有共形包被的小鼠小岛。
图8所示为在无胸腺小鼠中检测到的血液葡萄糖水平曲线图，该小鼠在皮下位点植入有共形包被的小鼠小岛。
图9所示为在CD1小鼠中检测到的血液葡萄糖水平曲线图，该小鼠在腹膜内位点植入有共形包被的小鼠小岛同种移植物。
图10所示为在CD1小鼠中检测到的血液葡萄糖水平曲线图，该小鼠在皮下位点大剂量地植入共形包被的小鼠小岛同种移植物。
图11所示为在两种糖尿病NOD小鼠中检测到的血液葡萄糖水平曲线图，所述小鼠植入有PEG共形包被的小鼠小岛同种移植物。
图12所示为在糖尿病无胸腺小鼠中检测到的血液葡萄糖水平曲线图，该小鼠在皮下位点植入有共形包被的亚人灵长目动物小岛。
图13所示为在糖尿病无胸腺小鼠中检测到的血液葡萄糖水平曲线图，该小鼠在腹膜内位点植入有共形包被的人小岛。
图14所示为在糖尿病无胸腺小鼠中检测到的血液葡萄糖水平曲线图，该小鼠在皮下位点植入有共形包被的人小岛。
图15所示为食蟹猴的葡萄糖水平和胰岛素需求曲线图，其中该动物在部分胰切除后皮下植入了PEG共形包被的小岛同种移植物。
图16A所示为100天后用抗胰岛素染色的封装小岛同种移植物的皮下植入物的组织学照片。
图16B所示为100天后用抗胰岛素染色的封装小岛同种移植物的皮下植入物的组织学照片。
图16C所示为用抗高血糖素染色的来自部分胰切除的食蟹猴的残余胰腺组织的组织学照片。
图16D所示为用抗高血糖素染色的来自部分胰切除的食蟹猴的残余胰腺组织的组织学照片。
图17所示为链脲佐菌素诱导糖尿病的食蟹猴的血液葡萄糖水平(mg/dL)和胰岛素需求曲线图，其中该动物皮下植入有封装小岛同种移植物而未使用免疫抑制剂[◆＝血液葡萄糖，●＝胰岛素]。
图18所示为链脲佐菌素诱导糖尿病的食蟹猴的血液葡萄糖水平(mg/dL)和胰岛素需求曲线图，其中该动物皮下植入有封装小岛同种移植物，且低剂量给药30天环孢菌素(cylcosporine)和甲福明(Metformin)[◆＝血液葡萄糖，●＝胰岛素]。
图19所示为285天时链脲佐菌素诱导糖尿病的食蟹猴的皮下植入位点的组织学照片，其中该动物植入有封装的小岛同种移植物，且低剂量给药30天环孢菌素和甲福明。
图20所示为248天时用抗胰岛素染色的链脲佐菌素诱导糖尿病的食蟹猴的皮下植入位点的组织学照片，其中该动物植入有封装的小岛同种移植物，且低剂量给药30天环孢菌素和甲福明。
图21所示为食蟹猴在诱导糖尿病之前(基线，n＝4)及移植后85天，n＝3；和114天，n＝1时的糖化血红蛋白值。
图22所示为链脲佐菌素诱导糖尿病的狒狒的血液葡萄糖水平(mg/dL)和胰岛素需求曲线图，其中该狒狒皮下植入有封装的小岛同种移植物，且低剂量给药30天环孢菌素和甲福明[◆＝血液葡萄糖，●＝胰岛素]。
图23所示为链脲佐菌素诱导糖尿病的狒狒的糖化血红蛋白Alc，其中该狒狒皮下植入有封装的小岛同种移植物，且低剂量给药30天环孢菌素和甲福明。
图24所示为链脲佐菌素诱导糖尿病的狒狒的血液葡萄糖水平(mg/dL)和胰岛素需求曲线图，其中该狒狒皮下植入有封装的小岛同种移植物，且低剂量给药30天环孢菌素[◆＝血液葡萄糖，●＝胰岛素]。
图25所示为链脲佐菌素诱导糖尿病的狒狒的糖化血红蛋白Alc，其中该狒狒皮下植入有封装的小岛同种移植物，且低剂量给药30天环孢菌素。
图26所示为植入正常食蟹猴7天后，仅用藻酸盐及用不同构成的藻酸盐/PEG微胶囊以不同选择通透性的包衣进行封装的猪小岛的存活百分率。所述的不同选择通透性的值为0kD、30-60kD、100kD和大于200kD。
图27所示为将藻酸盐/PEG微胶囊封装的猪小岛植入糖尿病食蟹猴的腹膜腔的结果，其中该动物还接受30天的抗-CD154抗体治疗。
图28A和B显示使用PEG共形包被技术可包被会产生聚集的不同胰岛瘤肿瘤细胞系(NIT)，并证明其可在组织培养物中保持存活两周。所述包被的细胞显示在常光下(图26A)以及用FDA/EB染色后显示在荧光下(图26B)。
图29A和B显示用PEG共形包被猴胎肺细胞的另一种细胞系，其在封装后保持存活。图88A所示为常光下的细胞，而图88B所示为荧光下的FDA/EB染色的细胞。
图30A-D显示用PEG共形包被由人和小鼠来源的原代肝细胞(肝细胞)形成的细胞聚集体，并使其在培养下存活两周。图28A所示为荧光下的FDA/EB染色的培养两周后的人细胞。图28B所示为常光下的培养两周后的人细胞。图28C和28D显示了荧光下的FDA/EB染色的小鼠细胞(89C)和常光下的小鼠细胞(89D)。
图31A-D所示为在不同位点植入有空白藻酸盐/PEG微胶囊的四种不同物种中的生物相容性反应(91A-IP在小鼠中、91B-PV在猪中、91C-PV在狗中及91D-PV在灵长目动物中)。该图显示了将1.1kD PEG三丙烯酸酯包被的空白藻酸盐微胶囊注射入门静脉后到达肝脏的结果。
图32显示了代表性组织学分值为1、2和3的封装细胞在小型动物中的生物相容性。
图33显示了代表性组织学分值为1、2和4的封装细胞在大型动物中的生物相容性。
图34显示了植入链脲佐菌素诱导糖尿病的无胸腺小鼠中的代表性分值为1、2和3的封装小岛的功能性。
发明的详细说明本发明的一个优选实施方案涉及在需要治疗的个体中治疗一种或多种疾病或病症的组合物和方法，其中所述疾病或病症例如神经疾病(例如帕金森氏病、阿尔兹罕默氏病、亨廷顿舞蹈病、多发性硬化、失明、周围神经损伤、脊髓损伤、疼痛和成瘾性疾病)、心血管(例如冠状动脉、血管新生移植物、瓣膜和小血管)疾病、肝病(例如急性肝衰竭、慢性肝衰竭以及影响肝脏的遗传疾病)、内分泌疾病(例如糖尿病、肥胖、应激(stress)和肾上腺、甲状旁腺、睾丸及卵巢疾病)、皮肤病(例如慢性溃疡及真皮和毛干细胞疾病)、造血系统(例如VIII因子和红细胞生成素)疾病或免疫疾病(如免疫不耐受症(intolerance)或自体免疫疾病)，所述方法包括提供诸如胰岛、肝脏组织、内分泌组织、皮肤细胞、造血细胞、骨髓干细胞、肾脏组织、肌肉细胞、神经细胞、干细胞、胚胎干细胞或器官特异的祖细胞、或遗传工程细胞的细胞或组织来生成特异因子或由其得到的细胞或组织；将所述细胞或组织封装在至少一种诸如水凝胶的封装材料中，其由可物理或化学交联的聚合物制成，所述聚合物包括多糖，例如藻酸盐、琼脂糖、壳聚糖、多氨基酸、透明质酸、硫酸软骨素、葡聚糖、葡聚糖硫酸酯、肝素、硫酸肝素、硫酸乙酰肝素、结冷胶(gellan gum)、黄原胶、瓜尔胶、水溶性纤维素衍生物、角叉菜胶；或蛋白，例如明胶、胶原、白蛋白；或具有烯键化不饱和基团的水溶性合成聚合物或其衍生物，例如聚甲基丙烯酸甲酯(PMMA)或聚(2-羟乙基甲基丙烯酸酯)(PHEMA)、聚乙二醇(PEG)、聚氧化乙烯(PEO)、聚乙烯醇(PVA)、聚乙烯吡咯烷酮(PVP)、poly(thyloxazoline)(PEOX)；或上述物质的组合物，例如藻酸盐与PEG混合，或更疏水的或水不溶性的聚合物，例如聚乙醇酸(PGA)、聚乳酸(PLA)或其共聚物(PLA-GA)、或聚四氟乙烯(PTFE)；及将治疗有效剂量的所述封装的细胞或组织对需要治疗的个体进行给药，其中通过皮下注射或植入给药，或通过直接注射入器官实质或通过注射入这些器官的血管系统来直接对器官给药。
器官可选自但不限于肝、脾、肾、肺、心、脑、脊髓、肌肉和骨髓。需要治疗的个体可选自但不限于诸如人、亚人灵长目动物、牛、羊、马、猪、狗、猫和兔子，以及诸如鸡、火鸡或鱼的其它动物。
在本发明进一步的实施方案中，可将所述封装的细胞或组织与免疫抑制剂和/或抗炎症反应试剂结合对需要治疗的个体进行给药。所述免疫抑制剂可选自但不限于环孢菌素、雷帕霉素(rapamycin)或他克莫司(tacrolimus)。所述抗炎试剂可选自但不限于阿司匹林、布洛芬、类固醇和非甾族抗炎试剂。优选地，在植入或注射所述封装的细胞或组织后将所述免疫抑制剂和/或抗炎试剂给药6个月。更优选地，在植入或注射所述封装的细胞或组织后将所述免疫抑制剂和/或抗炎试剂给药1个月。
在优选的实施方案中，将封装的小岛皮下植入或注射入肝或者脾中。本发明的一个方面中，将共形包被的小岛皮下给药。
优选地，所述封装材料包括丙烯酸化的PEG和至少一种共聚单体，例如N-乙烯基吡咯烷酮、2-乙烯基吡啶、1-乙烯基咪唑、9-乙烯基缩二氨基脲、丙烯酸和2-丙烯酸-2-甲基-1，3-环戊二酮、2-丙烯酰胺基-2-甲基-1-丙磺酸、乙烯磺酸、3-磺基丙基丙烯酸酯、3-磺基丙基甲基丙烯酸酯和2-丙烯酰胺-2-甲基-1-丙磺酸、加上N-乙烯基吡咯烷酮。最优选地，所述封装材料包括丙烯酸化的PEG，并以2-丙烯酰胺基-2-甲基-1-丙磺酸(AMPS)和/或N-乙烯基吡咯烷酮(NVP)作为共聚单体，通过诸如界面光聚合的方法进行共形包被以形成封装的细胞或组织。
在某些实施方案中，封装溶液中的成分和组合物浓度可以变化。优选浓度范围如下。
对缓冲剂溶液，优选的浓度为1-200mM，更优选为5-100mM且更进一步优选为10-50mM。
对CaCl2，优选的浓度为0.1-40mM，更优选为0.5-20mM，更进一步优选为1-5mM。
对甘露醇(Manitol)，优选的浓度为10mM到6M，更优选为50mM到3M，更进一步优选100mM到1M，且最优选200-300mM。
对CaCl2/甘露醇溶液的pH值，优选值为6-8，更优选为6.4-7.6，更进一步优选为6.6-7.4。
对DEN-EY，优选的浓度为0.005-8mg/ml，更优选为0.01-4mg/ml，更进一步优选为0.05-2mg/ml。
对DEN-EY结合水平，优选结合水平为0.15-68，更优选为1-34，更进一步优选为1.5-15。
对大分子单体溶液的pH值，优选值为6.5-9.5，更优选为7-9，更进一步优选为7.5-8.5。
对PEG TA，优选的浓度为0.1-100％，更优选为0.2-50％，更进一步优选为1-25％。
对PEG TA，优选的密度为0.05-20K，更优选为0.1-10K，更进一步优选为0.5-5K，且最优选为0.8-2.5K。
对PEG-三醇，优选的浓度为0.1-100％，更优选为1-75％，更进一步优选为2-50％。
对PEG-三醇，优选的密度为0.15-70K，更优选为0.3-35K，更进一步优选为1.5-15K，且最优选为2.3-7.5K。
对PEG-二醇，优选的浓度为0.1-100％，更优选为1-75％，更进一步优选为2-50％。
对PEG-二醇，优选的密度为0.2-80K，更优选为0.5-40K，更进一步优选为1-20K，且最优选为2-10K。
对TeoA，优选的浓度为5mM到2M，更优选为10mM到1M，更进一步优选为50-500mM，且最优选为75-125mM。
对AMPS，优选的浓度为2-640mg/ml，更优选为5-300mg/ml，更进一步优选为10-150mg/ml。
对NVP，优选的浓度为0.01-40μl/ml，更优选为0.1-20μl/ml，更进一步优选为0.5-10μl/ml。
对Nycodenz，优选的浓度为0.1-100％，更优选为l-50％，更进一步优选为5-25％。
对所述激光，优选的强度为10mW/cm2到4W/cm2，更优选为25mW/cm2到2W/cm2，更进一步优选为75mW/cm2到1W/cm2。
对所述光源，优选的时间为3秒到20分钟，更优选为6秒到10分钟，更进一步优选为12秒到3分钟。
在实施方案中，所述封装材料包括在至少一个细胞或组织周围形成球体的水凝胶。在进一步的实施方案中，所述封装材料为藻酸盐微胶囊，其与包括丙烯酸化的PEG在内的其它封装材料一起进行共形包被。在一实施方案中，将细胞或组织封装在生物相容的藻酸盐微胶囊中，其中通过将所述藻酸盐包被在诸如PEG或透明质酸的生物相容材料中，对所述藻酸盐进行纯化，和/或除去所述多熔素并用PEG对其进行替代，从而使其具有生物相容性。
最优选地，所述待治疗的疾病为糖尿病；所述细胞或组织包括胰岛素生成细胞或组织，或源自胰腺细胞或组织的细胞或组织，或源自的祖细胞或干细胞的细胞其可转化为胰岛素生成细胞；且通过皮下或肝脏注射或植入将所述封装的细胞或组织对需要治疗的个体进行给药。
根据本发明的实施方案，所述封装胰岛素生成细胞或组织的微胶囊可具有10μm到1000μm的平均直径，优选为100μm到600μm，更优选为150μm到500μm，最优选为200μm到300μm。在另一实施方案中，本发明涉及封装在微胶囊中的胰岛素生成细胞或组织，其具有至少2,000IEQ(小岛当量)/ml的浓度，优选至少9,000IEQ/ml，更优选至少200,000IEQ/ml。在本发明另一实施方案中，对每公斤个体体重所述封装在微胶囊中的胰岛素生成细胞或组织的给药体积可为0.001-10ml，优选0.01-7ml，更优选为0.05-2ml。在本发明的另一实施方案中，共形包衣的体积与胰岛素生成细胞或组织的体积比低于300∶1，优选低于100∶1，更优选低于50∶1，最优选低于20∶1。
根据本发明的实施方案，共形包被的胰岛素生成细胞或组织可具有1-400μm的平均膜厚，优选为10-200μm，更优选为10-100μm。在另一实施方案中，本发明涉及共形包被的胰岛素生成细胞或组织，其具有至少10,000IEQ/ml的浓度，优选至少70,000IEQ/ml，更优选至少125,000IEQ/ml。在本发明另一实施方案中，对每公斤个体体重所述共形包被的胰岛素生成细胞或组织的给药体积可为0.01-7ml，优选为0.01-2ml，更优选为0.04-0.5ml。在在本发明的另一实施方案中，共形包衣的体积与细胞或组织的体积比低于13∶1，优选低于8∶1，更优选低于5∶1，最优选低于2.5∶1。
根据本发明的实施方案，所述封装细胞或组织的微胶囊可具有10μm到1000μm的平均直径，优选为100μm到600μm，更优选为150μm到500μm，最优选为200μm到300μm。在本发明进一步的实施方案中，微胶囊体积与胰岛素生成细胞或组织的体积比低于300∶1，优选低于100∶1，更优选低于50∶1，最优选低于20∶1。
根据本发明的实施方案，共形包被的细胞或组织可具有1-400μm的平均膜厚，优选为10-200μm，更优选为10-100μm。在本发明的另一实施方案中，共形包衣的体积与细胞或组织的体积比低于13∶1，优选低于8∶1，更优选低于5∶1，最优选低于2.5∶1。
本发明的实施方案涉及封装的细胞或组织，其中所述细胞密度为至少约100,000细胞/ml。优选地，所述封装的细胞或组织是共形包被的。更优选地，所述细胞是用包括丙烯酸化的PEG的封装材料共形包被的。在其它实施方案中，本发明涉及治疗个体中的糖尿病的方法，包括将细胞密度至少约6,000,000细胞/ml的封装小岛给药，优选所用的治疗剂量低于每公斤个体体重约2ml。
本发明的另一实施方案涉及诸如牛、羊、马、猪、鸡、火鸡、兔子、鱼或狗和猫的农业动物或宠物；改变其生长速度，或改变所述动物的状态(例如增加肉或奶产量)，或者预防或治疗它们的各种疾病。根据该实施方案，向农业相关的动物提供细胞或组织的方法包括a)提供细胞或组织；b)将所述细胞或组织封装在至少一种诸如水凝胶的封装材料中，其由可物理或化学交联的聚合物制成，所述聚合物包括多糖，例如藻酸盐、琼脂糖、壳聚糖、多聚氨基酸、透明质酸、硫酸软骨素、葡聚糖、葡聚糖硫酸酯、肝素、硫酸肝素、硫酸乙酰肝素、结冷胶、黄原胶、瓜尔胶、水溶性纤维素衍生物、角叉菜胶；或蛋白，例如明胶、胶原、白蛋白；或水溶性合成聚合物或其衍生物，例如甲基丙烯酸甲酯(MMA)或2-羟乙基甲基丙烯酸酯(HEMA)、聚乙二醇(PEG)、聚氧化乙烯(PEO)、聚乙烯醇(PVA)、聚乙烯吡咯烷酮(PVP)、聚(thyloxazoline)(PEOX)；或上述物质的组合物(例如藻酸盐与PEG混合)，或更疏水的或水不溶性的聚合物，例如聚乙醇酸(PGA)、聚乳酸(PLA)或其共聚物(PLA-GA)、或聚四氟乙烯(PTFE)；及将所述封装的细胞或组织对需要治疗的个体进行给药，其中通过皮下注射或植入给药，或通过直接注射入器官实质或通过注射入这些器官的血管系统来直接对器官给药。
定义本申请中所使用的术语采用如下定义同种移植物-在一个或多个部位(通常与组织相容性部位有关)具有不同HLA或BLC免疫抗原构成的两个或多个个体之间的移植物。
无胸腺小鼠-具有不完全的免疫系统。
自体移植物-取自身体的一个部分而返还给同一个体的移植物。
ApoE2-在体内穿梭运送脂质的蛋白。
生物相容性-可以与活体并存而不对其产生伤害的能力。
细胞聚集体-细胞集合形成的由联接物质、基质或结构使其聚集在一起的团块、单元或细胞器。
临床适用和临床适用性-细胞或组织封装装置必须具有允许其被植入在侵入性最弱或生理性最强的位点来发挥功能的总体积或尺寸，其具有的风险/受益比例低于宿主患有当前疾病时所面对的比例。
商业适用和商业适用性-细胞封装装置必须能够满足诸如生物相容性、选择通透性、封装的细胞活力和功能、尺寸、细胞回收和替换以及治疗作用的要求，使得可不断生产该装置用于治疗其所设计的疾病过程，其在市场上被接受为成功的药物。
共形包衣-符合被包被颗粒的形状和尺寸的相对较薄的聚合物包衣。
C-肽-在胰岛素原中连接活性胰岛素的α链和β链的多肽链。胰岛素首先被合成为胰岛素原的形式。血液中每分子胰岛素对应一分子的C-肽。当存在外源胰岛素(来自注射)并与内源胰岛素(由自体产生)混合在一起时，可以检测血液中的C-肽水平并将其作为胰岛素产量的指示器。也可使用所述C-肽测试来帮助判断高血液葡萄糖水平是由胰岛素产量减少引起的还是由细胞摄取的葡萄糖减少引起的。1型糖尿病患者在血液中几乎没有或完全没有C-肽，而2型糖尿病患者可具有降低的或正常的C-肽水平。非糖尿病患者的C-肽浓度为0.5-3.0ng/ml。
食蟹猴(cynomolgus primate)-食蟹猕猴。原生东南亚的食蟹猴。
Cytodex珠-表面含有带正电的三甲基-2-羟氨基丙基基团葡聚糖(Dextran)微载体珠。
树枝状聚合物-由称作单体的支化单元构成的人工生产或合成的聚合物分子。通常情况下(defined by regular)，高度支化的单体产生单分散的、树状的或多代(generational)结构。通过逐步反应合成，每次构建所述树枝状聚合物的一个单体层或“代”。每种树枝状聚合物由多功能核心分子构成，在其每一功能位点都连有树枝状的wedge(楔形物)。
糖尿病-由遗传因素和环境因素联合引起的糖代谢变异疾病，其特征通常为胰岛素分泌或利用不足、尿量过多、血液和尿中的糖含量过高以及口渴、饥饿以及体重减轻DTZ(二苯基硫卡巴腙)-与胰岛素颗粒中的锌结合的染料曙红Y-C20H6O5Br4Na2[MW 691.914]，可溶于水(40％)并带强烈荧光的红色染料。结构类似于曙红Y ws，乙基曙红、曙红B、夹竹桃红、藻红B、荧光素、玫瑰红及汞溴红。
Evan’s蓝染色-通过染料稀释法检测血量和心输出量时采用的偶氮染料。
FicollTM-用于分离细胞的高分子量蔗糖-聚合物。
FDA/EB(二乙酸荧光素/溴化乙锭)染色-染色后，存活细胞显示为绿色细胞，而带细胞毒性的细胞以及细胞膜功能受损的细胞其细胞核显示为红色。
“Good”缓冲剂-由N.E.Good和S.Izawa开发的缓冲剂组(Hydrogen ion buffers，Methods Enzymol(1972)24，53-68)。
HbAlc试验[等同于血红蛋白AlC；糖化血红蛋白]-用于评价糖尿病患者的长期葡萄糖控制的测试。该测试的其它名称包括糖基化血红蛋白或Hgb、糖化血红蛋白或糖基化蛋白及果糖胺。HbAlc指红细胞中存在的全部糖基化血红蛋白。由于所述细胞寿命期间(约3个月)葡萄糖始终保持与其结合，因此该测试显示4-8周内的个人平均血液葡萄糖水平。这是更适合于对能够维持长期稳定控制的患者进行监测的试验方法。测试结果表示为百分比形式，其中4-6％视为正常。所述HbAlc“全景图”是对每天通过自身监测血液葡萄糖(mg/dL)获得的“截图”的补充，且这两种测试可通过以下转化公式关联起来HbAlc＝(血浆葡萄糖+77.3)/35.6。血清/血浆糖化蛋白可评价1-2周内的血糖控制。低于正常值的测试值有利于使患者在这些疾病状态中建立低血糖状态。
HEMA(2-羟乙基甲基丙烯酸酯)-用于光固化聚合物体系和高性能涂层，以在面对刮擦、溶剂和风化时保持较高的光泽。其用在可交联的涂料树脂和乳液、用于纺织品和纸张的粘结剂中。其用作用于金属涂层的粘合促进剂。
IBMX-强力的环化核苷酸磷酸二酯酶抑制剂；由于这种功能，所述化合物增加组织中的环化AMP和环化GMP，从而活化多种细胞过程。
IP(腹膜内)-在腹膜腔内，该区域含有腹部器官。
IEQ(小岛当量)-基于胰岛素含量和形态学/尺寸的定义。通常使用诸如二苯基硫卡巴腙(DTZ)的胰岛素颗粒结合染料来鉴定β细胞。由于β细胞只是构成小岛所需的几种细胞类型中的一种，因此除DTZ染色外还使用基于平均直径l50μm的形态学评价来确定小岛当量。
M199-原本配制用于鸡胚胎成纤维细胞营养分析。含有Earle’s盐、L-谷氨酰胺和2,200mg/L碳酸氢钠。
年轻人成年期发病型糖尿病(MODY)-一种糖尿病形式，其特征为发病年龄小(通常低于25岁)，父母家族中至少两代常染色体显性遗传(即父母的子女中有50％被遗传)糖尿病。其与2型糖尿病的区别在于患者在胰岛素分泌或葡萄糖代谢方面有缺陷，但对胰岛素并没有抗性。MODY占全球糖尿病患者的2％，已发现6种引起MODY的基因，但不是所有MODY患者都具有这些基因之一。由于MODY在家族中传递，因此其可用于研究糖尿病基因，并且已为研究者提供了有关胰腺如何产生及调节胰岛素的有用信息。
MDCK(Madin-Darby狗肾)细胞-从正常的狗肾建立的上皮样细胞系，对许多病毒种属敏感。
微胶囊-含有被包衣或壳层包围的活性试剂或核心材料的小颗粒。
MMA(甲基丙烯酸甲酯)-丙烯酸类单体，具有轻微刺激性气味的无色液体。
NIT(NOD胰岛瘤肿瘤)细胞系-由转基因NOD小鼠的胰腺β细胞发展而来的细胞系。
NVP(N-乙烯基吡咯烷酮)-乙炔与2-吡咯烷酮反应得到的单体。其在多种应用中作为反应稀释剂。
NycodenzTM(Nycomed Pharma.Oslo.Norway)-泛影酸，非离子的X光造影剂，用于产生密度梯度。Nycodenz溶液的有利性质是其同渗重量摩尔浓度(osmolality)和密度可很容易地在较宽范围内变化。在脊髓造影术、关节造影术、肾血管造影术(nephroangiography)、动脉造影术和其它放射造影术过程使用的有效的非离子、水溶性造影剂。其系统毒性较低是低化学毒性和低同渗重量摩尔浓度相结合的结果。
口服葡萄糖耐量试验(OGTT)-用于糖尿病患者的筛查试验，其包括在个体饮用含75克葡萄糖的溶液后测试其血浆葡萄糖水平。目前，将食用所述葡萄糖后两小时血浆葡萄糖水平达到200mg/dL或更高的人诊断为糖尿病。那些血浆葡萄糖浓度低于200mg/dL但高于或等于140mg/dL的人诊断为称作葡萄糖耐量受损的疾病状态。带有这种疾病状态的人在葡萄糖代谢方面存在困难，但该问题的严重性还不足以将其划分为糖尿病。患有葡萄糖耐量受损的个体其发展为高血压、血脂失调和2型糖尿病的风险稍有增加。
选择通透性-某些离子物质对膜的优先渗透性。
PoERV(猪内源逆转录病毒)-内源逆转录病毒作为所有哺乳动物DNA的一部分而存在，并且代代延续地遗传给后代。
餐后-餐后发生胰岛素原-由胰腺β细胞产生的蛋白，其可划分为3个单元-C-肽、α链和β链。所述α链和β链是胰岛素的功能单元。
SGS(静态葡萄糖刺激)-静态葡萄糖负荷下，评价小岛对不同葡萄糖浓度反应分泌胰岛素的能力。
链脲佐菌素-抗生素，C8H15N3O7，由放线菌(产色链霉菌)产生并对肿瘤起作用，但伤害胰岛素生成细胞并且现在也确认为致癌物。
茶碱(Theophylline)-刺激二茶酚胺的释放并减少脑血流，因此促进对葡萄糖水平下降的更迅速的感知，并促进对此产生的增强的代谢反应。
治疗有效量-细胞或组织产生的治疗剂的量，当将其对有需要的个体给药时足以有效地治疗疾病或病症，或有效地改变动物的生长速度或状态。对应于“治疗有效量”的封装细胞或组织的量会根据各种因素变化，例如疾病状态及其严重程度、有需要该治疗的个体的特征、所述细胞或组织对所述疾病或病症输送的治疗剂类型，但任何情况下都可容易地由本领域所属技术人员确定。
进行治疗和治疗-通过将所述剂量的封装细胞或组织对需要治疗的个体给药来减轻所述个体的疾病或病症，其中给药方式为通过皮下注射或植入进行，或通过直接注射入器官实质或通过注射入这些器官的血管系统来进行，其包括(a)对个体的预防性治疗，特别当发现所述个体倾向于患上所述疾病或病症但还未确诊患有该疾病或病症时。
(b)抑制所述疾病或病症，和/或(c)全部或部分消除所述疾病或病症，和/或(d)增进所述个体的体质和健康。
1型糖尿病(也称作胰岛素依赖性糖尿病、胰岛素依赖性糖尿病症)-通常在儿童期或青春期早期发展的糖尿病形式，其特征为胰岛萎缩导致胰岛素分泌严重缺乏，并导致高血糖和明显的酮酸中毒趋势。
2型糖尿病(也称作非胰岛素依赖性糖尿病、非胰岛素依赖性糖尿病症)-通常在成年人中发展的常见糖尿病形式，更多发于肥胖者，其特征为由胰岛素利用受损同时身体不能通过增加胰岛素产量进行补偿，由此导致高血糖。
异种移植-来自某一物种的组织的外科移植物，其被移植到其它物种、种属或家族个体上或体内。也称为异种移植物。
发明的优选实施方案本发明涉及通过将封装的生物材料植入需要治疗的患者体内来治疗疾病或病症的方法。特别关注的是糖尿病，因为需要预防与在胰岛素依赖的糖尿病患者中缺乏良好的糖控制相关的并发症的方法。特别地，本发明显示通过注射成功地将PEG共形包被的小岛同种移植物植入皮下位点，并在植入后使血液葡萄糖值达到相对正常的水平超过220天。通过对胰岛素依赖的糖尿病患者应用本文所述的方法，可避免目前临床小岛移植的并发症以及持续使用免疫抑制剂的严重风险和不适。此外，据判断封装的小岛植入物可保护这些胰岛素依赖的糖尿病患者并防止其产生与尽管进行了外源胰岛素治疗但血糖控制不充分相关的糖尿病并发症。
除糖尿病外，本发明方法可对多种疾病和病症产生治疗效果，其中可通过将细胞或组织植入体内来替代由疾病或病症引起缺乏的关键的细胞相关产物。本发明的优选实施方案是来自胰腺的人胰岛素生成细胞，或源自胰腺的人胰岛素生成细胞的细胞的用途，其被封装为用于植入胰岛素依赖患者的皮下位点的细胞簇。通过封装的生物材料治疗疾病需满足所述封装的材料被生物相容的包衣所包被，这样在产生治疗效果之前所治疗患者的免疫系统不会破坏该材料。
包衣的选择通透性是这类治疗的有效性的一个因素，因为其调节营养物质对所述细胞或组织的可利用性，并在防止对所述生物材料的排斥中起作用。包衣的选择通透性可影响所述封装细胞和组织可利用的营养物质，以及所述细胞或组织的功能。通过改变所述生物相容包衣的成分或通过改变使用所述成分生成细胞包衣的方法可对选择通透性进行控制。通过注射本发明的封装生物材料进行治疗可提供稳定且安全的治疗方法。植入物的尺寸和植入位点，以及所述封装材料的补充和/或替换也是本文所述方法需要考虑的。在避免与其它治疗方法相关的并发症的同时，这些方法提供的疗法通过在各种位点进行植入在疾病治疗中有广泛的应用。
可将本文所述的共形包衣制成各种孔尺寸，其被制备用来限制分子量范围较宽的蛋白接近所述细胞，包括排除抗体。这一控制使得所述封装的材料得以存活并保持功能，同时排除宿主免疫系统的成分。通过对每种细胞或组织类型及待治疗的疾病或病症进行常规试验可确定所述共形包衣的适合孔尺寸。本文所述的共形包衣提供了带少量包被材料的小型封装细胞产物，因而使得所述包被的材料可被植入身体的各种位点，包括直接注射入肝脏、脾脏、肌肉或其它器官中，通过血管注射到任意器官，注射入腹腔及植入皮下位点。
对成功进行封装细胞治疗很重要的一个因素是用于封装细胞的选择通透性包衣在引起宿主的炎性反应方面必须是惰性的。最初的封装材料是不完全细胞相容的。借助某些装置，仅作到不留下巨大的疤痕是不够的。然而，当使用包衣作为所述封装的细胞与宿主免疫系统之间的选择通透性保护时，对宿主的补体系统或巨噬细胞不能有任何的非特异性炎性反应。如果发生这种反应，则所述炎性反应和/或免疫反应足以释放细胞因子，其很容易跨过所述膜并引起所述封装细胞的损失。多数用于小岛(其难以正常工作)的封装技术都具有非特异性炎性反应，其原因是对所用包衣材料的生物相容性反应。
因为宿主对本发明方法用来封装细胞和组织的生物相容性共形包衣不产生反应，因此可显著降低诸如慢性炎症之类的问题。如本发明所述，当注射入诸如啮齿动物、狗、猪和灵长目动物时，用于生成本发明的共形包衣的成分是完全生物相容的。
我们发现由高度丙烯酸化的PEG合成的水凝胶的生物相容性出人意料地好，并比中度丙烯酸化的PEG水凝胶的相容性要好。所述高度丙烯酸化的PEG既可通过商业渠道获得，也可丙烯酸化相应的PEG来自行制造。使用界面光聚合技术将高度丙烯酸化的PEG水凝胶共形包被在藻酸盐微珠的表面。该发现也可延伸到同样关注装置或制剂的生物相容性的生物医学、生物技术和药学领域。
本文所述的某些PEG共形包衣可在一段时间内生物降解，因而使得机体可在一段时间内将所述材料安全地分解，避免需要对所述封装的材料进行回收，而回收是其它治疗所必需的。一旦先前剂量的封装的材料开始失去功能时，可对细胞进行替换。据判断，封装的小岛可维持2-5年或更长时间。在皮下注射的情况下，可简单地在所述先前剂量失效之前在不同的位点将新材料通过再次经皮注射入患者体内来实现封装的材料的替换。在封装小岛的情况下，可通过在首次剂量的小岛丧失功能之前进行替换，而无须担心低葡萄糖值，因为所述封装小岛可自动调节自身以防止低血糖。对使用无法自动调节其产物释放的细胞或组织的情况，可能必须确定用于治疗疾病和病症时的不同植入时间。
细胞源是生成封装的细胞产物的一个因素。细胞可以是原代细胞、扩增细胞、分化细胞、细胞系或遗传工程细胞。对于人小岛的情况，可从捐献的尸体胰腺分离原代小岛；然而，可获得的用于分离小岛的人胰腺数量非常有限。替代的细胞源可用来提供用于封装或注射的细胞。
一种替代的细胞源，尤其是胰岛素生成细胞源，可以是胚胎干细胞。人胚胎干细胞来自非常早期的胎儿。仅当从来自夫妇的冷冻人受精卵发育时才能获得这种细胞，所述夫妇成功地进行了体外受精但不再想使这些受精卵发育成下一代。胚胎干细胞具有无限制生长的能力，有可能避免需要移植所需的组织团的需求。将这些胚胎干细胞分化为具有临床适用性的胰岛素生成细胞需要一系列的步骤。一些研究显示用多种因子进行组织培养处理可使小鼠和人胚胎干细胞产生胰岛素。由胚胎干细胞发展的胰岛素生成细胞是可接受用于移植和封装细胞或组织植入的细胞源。
细胞源已表明，其它细胞源，如来自脑、肝和肠的器官特异祖细胞可产生胰岛素。为产生胰岛素，需用多种生长和分化因子对这些器官特异祖细胞中的每一种进行组织培养处理。来自诸如骨髓、肾、脾、肌肉、骨、软骨、血管和其它内分泌器官的许多其它器官也可用于提供胰岛素生成细胞。
根据本发明的方法可使用胰腺祖细胞。胰腺具有组织特异干细胞，其在正常或补偿条件下可在体内产生上述三种胰腺细胞类型。据信，小岛细胞是由导管细胞发生形成离散的小岛。所述胰岛素生成细胞以及其它激素生成细胞可直接由分化的导管细胞形成，或由位于导管细胞之间的胰腺祖细胞形成。这些胰腺祖细胞可用于提供本发明方法的封装和植入所用的胰岛素生成细胞。
关于在非胰岛素生成细胞中通过遗传插入基因使其产生胰岛素的研究已经有很多。能产生胰岛素的遗传工程细胞也可用于本发明方法的封装和植入。
猪细胞的使用已经被普遍接受为用于植入糖尿病患者体内的小岛细胞的来源。仅在美国每年就饲养超过9,000万头猪用于产肉。因此，通过大规模地将成年猪胰腺处理为用于封装的纯化的猪胰岛，可很容易地获得用于治疗上百万胰岛素依赖的糖尿病患者的小岛数量。限制这一选择的一种顾虑是发现猪含有内源逆转录病毒(PoERV)。已经作出努力以从猪的感染株中去除PoERV。无病毒的猪异种移植小岛可很容易地封装并可用作治疗人糖尿病的优选细胞源。
用于人植入的可选异种移植源可以来自不同于猪的其它物种的原代细胞。这些其它物种可以是诸如牛、羊甚至鱼的农业相关动物。因从胰腺来源或其它干或祖细胞具有扩增(expand)和分化为胰岛素生成细胞的能力，所以可以预料使用来自诸如灵长动物、啮齿动物、兔子、鱼、有袋类动物及其它的异种来源的胰岛素生成细胞。
疾病治疗根据本发明方法可以治疗糖尿病及局部或循环因子不足或缺乏的其它疾病。封装细胞治疗可应用于治疗神经、心血管、肝、内分泌、皮肤、造血及免疫病症和疾病。通过使用能释放治疗所需的局部和/或循环因子的封装细胞可治疗诸如帕金森氏病、阿尔兹罕默氏病、亨廷顿舞蹈病、多发性硬化、失明、周围神经损伤、脊髓损伤、疼痛和成瘾的神经疾病和损伤。可以治疗诸如冠状动脉的心血管组织，以及释放血管生长因子的细胞用于重建局部缺血的心肌、瓣膜和小血管的血管。可治疗急性肝衰竭、慢性肝衰竭以及影响肝脏的遗传疾病。可治疗诸如糖尿病、肥胖、应激和肾上腺、甲状旁腺、睾丸及卵巢疾病的内分泌病症疾病。可治疗诸如慢性溃疡及真皮和毛发干细胞疾病的皮肤病。通过将能刺激患者的造血反应的细胞给药可调节或控制诸如VIII因子和红细胞生成素的造血因子。封装的生物材料也可用于产生骨髓干细胞。封装的诸如源自原代细胞或遗传工程细胞的抗原的材料可用于产生免疫耐受性或预防自体免疫疾病。此外，这些材料可在疫苗中使用。
共形包被组分根据特定的细胞类型和所需的选择通透性可改变包衣的组分。可使用各种可聚合的单体或大分子单体、光敏引发染料、助催化剂和促进剂来产生共形包被的细胞或组织。
单体或大分子单体使用单体或大分子单体作为构筑原料来聚合本发明方法使用的生物相容的包衣。所述单体是容易聚合形成本发明的更大的聚合物膜的小分子。能够进行聚合是因为所述大分子包含碳-碳双键部分，例如丙烯酸酯、甲基丙烯酸酯、乙基丙烯酸酯、2-苯基丙烯酸酯、2-氯丙烯酸酯、2-溴丙烯酸酯、衣康酸酯、丙烯酰胺、甲基丙烯酰胺以及苯乙烯基团。所述单体或大分子单体在聚合前后对生物材料都是无毒性的。
单体的例子是甲基丙烯酸甲酯(MMA)和2-羟乙基甲基丙烯酸酯(HEMA)。大分子单体的离子是如下物质的烯键不饱和衍生物聚氧化乙烯(PEO)，聚乙二醇(PEG)，聚乙烯醇(PVA)，聚乙烯吡咯烷酮(PVP)，聚(thyloxazoline)(PEOX)，聚氨基酸，多糖，例如藻酸盐、琼脂糖、壳聚糖、多氨基酸、透明质酸、硫酸软骨素、葡聚糖、葡聚糖硫酸酯、肝素、硫酸肝素、硫酸乙酰肝素、结冷胶(gellan gum)、黄原胶、瓜尔胶、水溶性纤维素衍生物、角叉菜胶以及诸如明胶、胶原和白蛋白的蛋白。为了以组织反应最小的方式对细胞和组织进行封装，优选的原料是分子量(MW)为1.1K的PEG-三丙烯酸酯。所给出的分子量是各种长度的聚合物的平均分子量。
光敏引发染料所述光敏引发染料俘获光能并引发所述大分子单体和单体的聚合。任何符合如下条件的染料都可使用可吸收频率在320nm和900nm之间的光，可形成自由基，至少是部分水溶性的，并且在用于聚合的浓度时对生物材料无毒性。适合的染料的例子是乙基曙红、曙红Y、荧光素、2，2-二甲氧基，2-苯基苯乙酮、2-甲氧基，2-苯基苯乙酮、樟脑醌、玫瑰红、亚甲蓝、藻红、夹竹桃红、硫堇、核黄素或亚甲绿。为增强染料-细胞的表面结合能力，将本发明使用的染料和与细胞表面具有强烈相互作用的聚合物结合，所述聚合物例如聚阳离子聚合物、连有多个苯基硼酸基团的聚合物。聚阳离子聚合物的离子包括PAMAM树枝状聚合物、直链、支链或树枝状的聚乙烯亚胺(PEI)、聚乙烯基胺、聚烯丙基胺、聚赖氨酸、壳聚糖和聚组氨酸。优选的引发染料是与4代PAMAM树枝状聚合物结合的羧基曙红。
助催化剂或自由基产生剂(radical eenerator)所述助催化剂是能够刺激自由基反应的氮基(nitrogen-based)化合物。适合的助催化剂有伯胺、仲胺、叔胺及季铵盐，即任何含氮原子的富含电子的分子。助催化剂包括但不限于三乙醇胺、三乙胺、乙醇胺、N-甲基二乙醇胺、N，N-二甲基苄胺、二苄基胺、N-苄基乙醇胺、N-异丙基苄胺、四甲基乙二胺、过硫酸钾、四甲基乙二胺、赖氨酸、鸟氨酸、组氨酸或精氨酸。优选的助催化剂为三乙醇胺。
促进剂或共聚单体可任意包括在所述聚合混合物的促进剂是含烯丙基、乙烯基或丙烯酸酯基团，且能加速所述自由基反应的小分子。将磺酸基团引入所述促进剂中也可增强最终产物的生物相容性。促进剂包括但不限于N-乙烯基吡咯烷酮、2-乙烯基吡啶、1-乙烯基咪唑、9-乙烯基缩二氨基脲、9-乙烯基-咔唑、丙烯酸、2-烯丙基-2-甲基-1，3-环戊二酮、2-羟乙基丙烯酸酯、2-丙烯酰胺基-2-甲基-1-丙磺酸、乙烯基磺酸、4-苯乙烯基磺酸、3-磺基丙基丙烯酸酯、3-磺基丙基甲基丙烯酸酯、n-乙烯基-carpolactam和n-乙烯基马来酰亚胺磺酸酯(来自SurModics)，优选的促进剂组合是2-丙烯酰胺基-2-甲基-1-丙磺酸加N-乙烯基吡咯烷酮。
粘度增强剂为了产生共形包衣而不在细胞聚集体上留下长尾(long tail)，必须对所述大分子单体溶液的粘度进行优化。这可通过向所述大分子单体溶液中加入粘度增强剂来实现。优选的粘度增强剂是分子量为3.5kD的PEG-三醇和4kD的PEG-二醇。
密度调节剂为了产生共形包衣而不在细胞聚集体上留下长尾，必须对所述大分子单体溶液的密度进行优化。这可通过向所述大分子单体溶液中加入密度调节剂来实现。优选的密度调节剂是NycodenzTM和FicollTM。
照射波长用于引发聚合的照射光可以是长波UV或可见光，波长范围为320-900nm。优选地，使用350-700nm范围的光，更优选为365-550nm。这种光可用任何能产生所需照射的适当光源来提供，所述光源例如汞灯、长波UV灯、氦氖激光器、或氩离子激光器或适当滤光的氙光源。
提供以下实施例只是以对本发明进行说明为目的，而不能视为对本发明保护范围的限制。
实施例实施例1分离小鼠的小岛细胞从供应商获得约18周龄、平均大小为33克的供体小鼠[C57BL/6]。通过安乐死剖腹术暴露胰腺。用SigmaV型胶原酶使胰腺膨胀。摘除胰腺，并在转移至分离实验室的过程中将其保存在冷的胶原酶中。分离过程将30个胰腺组合用于消化过程。消化产物用含10％胎牛血清的RPMI的洗涤并离心。制备用于纯化过程的COBE，并用连续梯度的标志物来产生密度梯度。将梯度溶液加在COBE中，并将胰腺消化产物加在顶部以进行纯化过程。收集纯化的小岛并用RPMI培养液洗涤。在T75烧瓶中将所得小岛培养在含10％胎牛血清的改良ICM培养液中，直到准备进行封装。
分离灵长动物的小岛细胞将大小为2.5-4.5kg的幼年食蟹猴(Macaca fascicularis)和大小为10-30kg的成年狒狒(Papio anubis)用作胰腺供体(表1)。从尸体上摘除胰腺，在导管内插入套管并用冷却的UW溶液膨胀，放入含全氟化碳的UW溶液中通入氧气，并快速转移至用于小岛分离的设备。利用改进后的使用人游离酶(liberase)的灵长动物小岛分离方法(O’Neil.J.CellTransplantation 10539，2001)通过最少的机械损伤和COBE连续密度梯度来分离小岛。封装前，在T75烧瓶中将所纯化的小岛在含10％胎牛血清的改良CMRL培养液中于37℃培养3-7天，以使其恢复处理时造成的损伤。图1A所示为从供体胰腺获得的典型的食蟹猴小岛纯产物。
表1
实施例2共形包被材料的制备根据待封装的细胞类型，将细胞直接用共形包衣包被或密封在诸如藻酸盐的基质中，随后用选择通透性PEG胶囊包被。图2所示为树枝状聚合物曙红Y轭合物Dendrimer-EY的合成，其为这种包衣的优选实施方案并如下所述。
封装所用的树枝状聚合物为购自Dendritech的4代PAMAMDendrimer(图3)。通过5(6)-羧基荧光素的溴化来制备5(6)-羧基曙红。然后通过形成乙酸酯来对羟基基团和1-羧基基团进行保护。用N，N，N’，N’-四甲基-O-(N-丁二酰亚胺基)铀四氟硼酸盐(TSTU)对保护后的5(6)-羧基曙红进行活化。无需进一步纯化，将活化的5(6)-羧基曙红二乙酸酯与PAMAM Dendrimer混合以形成Dendrimer-EY轭合物。通过与氨水反应除去保护基团。使用5K MWCO膜并用50mM(NH4)2CO3作为洗涤缓冲剂对最终产物进行超纯化。通过改变EY和Dendrimer的化学计量比，可以得到不同共轭水平的Dendrimer-EY。用于小岛封装的最佳共轭水平为3.4EY/Dendrimer。
通过UV-Vis确定Dendrimer-EY的共轭水平。检测Dendrimer-EY溶于50mM(NH4)2CO3所得溶液在523nm的最大吸收。使用5(6)-羧基曙红的消光系数来计算共轭水平，∑＝8.4×104。
三乙醇胺(TEoA)、2-丙烯酰胺基-2-甲基-1-丙磺酸(AMPS)和N-乙烯基吡咯烷酮(NVP)购自Aldrich并且无需进一步纯化。
三甲醇丙烷乙氧基化三丙烯酸酯(PEG 1.1k-TA)购自Sartomer并无需纯化直接使用。丙烯酸化水平在高于60s到高于80s之间。分子量在1100-1300之间。
乙氧基化的三甲醇丙烷(PEG 3.5K-三醇)是在Carbotech定制的。聚乙二醇3400(PEG 4K-二醇)购自Union Carbide。将PEG 3.5K-三醇和PEG4K-二醇溶于注射用水，并在使用前冻干。
实施例3小岛的封装小鼠小岛的封装以下描述了包被小鼠小岛的优选方法。将15毫升20mM的低离子HEPES缓冲液(含1.8mM CaCl2和260mM甘露醇，pH＝7.0)加入含10μl小岛的15ml锥形管中。离心后除去上层清液。向所得沉淀中加入15mlDen-EY溶液(0.1mg/ml到0.4mg/ml溶于低离子HEPES缓冲液)，并在室温下将所述管水平放置10-30分钟。用低离子20mM HEPES缓冲液洗涤染色的小岛两次，其用氩气喷雾至少30分钟。将染色后的小岛沉淀与10ml光敏聚合物溶液混合，其也用氩气喷雾并在8℃的水浴中预先平衡至少30分钟。在20mM HEPES缓冲液中制备所述光敏聚合物溶液，pH＝8.0，其含有最高20％的PEG、100mM TeoA、32mg/ml AMPS和2μl/mlNVP和13％ Nycodenz。将所得悬浮液转移至培养皿(petri dish)中，并用氩激光器以200mW/cm2的照射密度照射1分钟。通过向该培养皿中加入1-2ml M199中止聚合。将培养皿中的内容物转移至含40ml M199的50ml的锥形瓶中。用M199洗涤后，将封装的小岛放回培养。
封装灵长动物小岛将小岛负载上光敏引发剂(曙红Y)并放入含丙烯酸化的PEG单体、TeoA和NVP的PEG封装溶液中。当用氩激光对所述小岛进行照射时，所结合的曙红Y被激发到较高的能量状态，其被TEoA俘获从而产生自由基。这些TeoA自由基从小岛表面扩散出来，破坏将所述丙烯酸化的PEG共价结合在一起的丙烯酸酯间的碳-碳双键(C＝C)，在每个小岛周围直接形成共形PEG包衣。然后，植入前在37℃将所述封装的小岛在含10％热灭活的食蟹猴同种移植血清的CMRL中培养4-21天。
无论其形状活尺寸如何，都可以很容易地在所有小岛表面周围以共形方式对分离的食蟹猴小岛进行封装。图1A所示为未封装的分离食蟹猴小岛。图1B所示为相显微镜(phase microscopy)下观测到的PEG封装的分离食蟹猴小岛，其中显示了小岛的均匀的共形包衣。
实施例4封装小岛的体外特性通过Evan’s蓝染色来评估封装小岛的包被效果。将溶于M199的15毫升0.008％Evan’s蓝加入0.5ml封装小岛的悬浮液中。孵育三分钟后，离心并通过吸引术除去上层清液。将所得小岛用M199洗涤三次。将小岛悬浮液(在M199中)放在显微镜下。PEG水凝胶呈淡蓝染色。
通过荧光黄二乙酸酯(FDA)/溴化乙锭(EB)染色来评估封装小岛的活力。将2.5ml EB储备溶液(1mg溶于50ml PBS)和12.5μl FDA储备溶液(5mg/ml溶于丙酮)加入0.5ml溶于无血清培养基的封装小岛悬浮液。加入所述染色剂十分钟后，将所得样品置于荧光显微镜下，对荧光素使用区域阻滞。死亡细胞被染为红色而存活细胞染为绿色。估计小岛细胞的存活百分比。例子如图4所示。
通过SDS-PAGE评估封装小岛的选择通透性。在放入含血清的培养基之前，将小份的封装小岛进行SDS-PAGE分析。在显微镜下选取一种或两种平均尺寸的小岛，室温下将其分别在96孔培养板中用0.1％SDS溶液孵育约14-16小时。通常最少选取8组小岛并进行孵育。此外，每次选取10个小岛并孵育。孵育后，取出上层清液并在100℃孵育5分钟。冷却后，将所述九份上清分别加载在聚丙烯酰胺凝胶上。将标准的分子量标志混合物加载到最后的孔中。对孔中的材料进行电泳后，将凝胶固化并用银染色剂染色预定的时间。通过与标准的分子量标志物比较可以确定每组封装小岛中PEG凝胶的分子量段。例子如图5所示。
通过静态葡萄糖刺激(SGS)或灌注研究来评估封装小岛的功能。对静态葡萄糖刺激，手动选取四份每份20个小岛，并置入12孔板的四个孔中。将小岛洗涤两次并用G50基础溶液(葡萄糖浓度-50mg/DL)孵育45分钟，随后用G300刺激溶液(葡萄糖浓度-300mg/DL)孵育45分钟，再用IBMX溶液孵育45分钟，再用所述G50基础溶液孵育45分钟。在每次孵育结束时收集0.5ml的上清样本。每次孵育之间将小岛洗涤两次。收集完最后的基础样本后，将所有的小岛用酸化的乙醇孵育过夜以萃取胰岛素。胰岛素萃取后收集0.5ml上清样本。对所有收集的样本，用适当的RIA或ELISA试剂盒检测胰岛素浓度。对某些封装的小岛，胰岛素的释放被延迟，用所述G300刺激培养基孵育45分钟后仅检测到微量的胰岛素。将这些小岛在所述G300刺激培养基中孵育更长的时间，并在不同的时间点收集上清的样本，例如1小时、2小时和三小时以跟踪胰岛素的释放动力学。例子如图6所示。
对灌注(perifusion)研究，将小岛制剂放置在灌注系统的过滤器上，首先暴露于G50基础溶液40分钟，随后用G300刺激溶液刺激40分钟，再用G300加上茶碱或IBMX继续刺激。通过返回基础水平的葡萄糖使对所述小岛的灌注停止。以5分钟为间隔收集样本，用适当的RIA或ELISA试剂盒评估以确定胰岛素浓度。
实施例5将共形包被的小岛植入小鼠用与实施例2中相同的方法对小鼠小岛进行共形包被。将封装的小岛植入无胸腺小鼠的腹膜内(IP)和皮下(SQ)位点，在植入前后对血液葡萄糖水平进行监控。
图7所示为在腹膜内位点植入有共形包被的小鼠小岛[2805IEQ]的两只无胸腺小鼠的血液葡萄糖水平。植入后，所植入的小岛能将血液葡萄糖水平调节至接近正常范围并维持高达130天。
图8所示为在皮下位点植入有共形包被的小鼠小岛[3300IEQ]的两只无胸腺小鼠的血液葡萄糖水平。植入后，两只小鼠的血液葡萄糖水平都显示出降低，仅在植入后20-30天之间有少量尖峰。其中一只小鼠直到植入后145天都具有稳定的接近正常的血液葡萄糖水平。另一只小鼠的血液葡萄糖显示偶发的尖峰，但所植入的小岛能够在30天后使水平降低到接近正常。
共形包衣使得小岛在IP位点可以长期存活，且根据小岛的剂量SQ移植物中所包被的小岛液可以很好地发挥功能。在无胸腺小鼠中，SQ位点显示出优良的生物相容性。
同样，将共形包被的小鼠小岛同种移植物植入CD1小鼠的IP位点和SQ位点。图9所示为在腹膜内位点植入有共形包被的小鼠小岛同种移植物[3300IEQ和2160IEQ]的两只CD1小鼠中检测到的血液葡萄糖水平。植入后，3300IEQ植入能够迅速使血液葡萄糖水平回到正常水平并在该水平维持高达90天。2160IEQ植入物使血液葡萄糖水平从600mg/dL降至100-300mg/dL，但每天的水平有缓慢的振荡。
图10所示为在皮下位点植入有高剂量的共形包被的小鼠小岛同种移植物[3623IEQ和2000IEQ]的两只CD1小鼠中检测到的血液葡萄糖水平。植入后，3623IEQ植入物能够使血液葡萄糖水平降至接近正常并使该水平维持至35天。2000IEQ植入物能够使血液葡萄糖水平降至接近正常并使该水平维持至30天。
在IP位点和SQ位点共形包衣均可保护不受同种移植物免疫排斥影响。已发现在SQ位点，一致的最低功能性封装小岛剂量是～1500IEQ/小鼠。未封装的小鼠小岛同种移植物在SQ位点不能存活。同样，将PEG共形包被的小鼠小岛同种移植物植入NOD小鼠(每个受者600-700小岛)。所述共形包衣不仅可保护不受同种移植物免疫排斥影响，并且在这个1型人糖尿病的小鼠模型中其还可保护不受糖尿病患者的自体免疫的反复的影响。图11所示为在植入有PEG共形包被的小鼠小岛同种移植物的糖尿病NOD小鼠中检测的血液葡萄糖水平。
图12所示为在皮下位点植入有共形包被的亚人灵长动物小岛[5000IEQ]的无胸腺小鼠中检测的血液葡萄糖水平。植入后，所述植入物迅速使血液葡萄糖水平从600mg/dL降至～35mg/dL，并从15天维持到105天。
图13所示为在IP位点植入有共形包被的人小岛[11,573IEQ和14,688IEQ]的两只无胸腺小鼠中检测的血液葡萄糖水平。植入后，所述植入物使血液葡萄糖水平降至正常水平，并使该水平维持高达110天。
图14所示为在SQ位点植入有共形包被的人小岛[10,000IEQ]的无胸腺小鼠中检测的血液葡萄糖水平。植入后，所述植入物使血液葡萄糖水平降至正常水平，并使该水平维持高达40天。
这些结果表面，亚人灵长动物小岛和人小岛的共形包衣均可使小岛在无胸腺小鼠的IP位点和SQ位点存活。
实施例6将封装小岛皮下植入食蟹猴受者灵长动物个体皮下植入共形包被的小岛同种移植物之间，对正常的食蟹猴进行部分胰切除(95％)。图15所示为皮下植入PEG共形包被的小岛同种移植物之前10天和之后105天所述部分胰切除的食蟹猴的葡萄糖水平和胰岛素需求。该动物开始具有正常的血液葡萄糖水平而无需任何补充的胰岛素。部分胰切除后几天，血液葡萄糖水平上升至300mg/dL，伴随使该水平降至正常的胰岛素需求。通过皮下植入PEG共形包被的小岛同种移植物，血液葡萄糖水平降低但未达到以前的正常水平。植入后几天仍需要胰岛素但数量缓慢下降，到植入后55天就不再需要胰岛素注射来维持血液葡萄糖水平。从植入后55天到105天，该灵长动物的血液葡萄糖水平稍高于部分胰切除前的基线水平；然而，通过所植入的PEG包被的小岛可以维持这种水平而无需胰岛素注射。
尸体剖检时，在皮下位点发现完好的粒状封装小岛而宿主反应极小。对含小岛组织的胶囊进行了葡萄糖和胰岛素染色(图16A-D)。许多封装的小岛没有小岛组织，推测其可能在植入后被破坏了。由外科插入和同种移植物反应产生的炎性细胞因子包围这些被宿主排斥的胶囊。年轻灵长动物的糖尿病部分胰切除模型的一个缺陷是残余的胰腺可能通过扩增残留的小岛组织而从糖尿病中恢复过来，在残留胰腺中几乎没有小岛增大形式的小岛扩增的证据。
由于可能从胰岛尖端残留的小岛自行恢复，因此部分胰切除可导致灵长动物的糖尿病模型有可变性，因而可用链脲佐菌素来诱导糖尿病。以下的四个连续受者均患有由静脉内注射链脲佐菌素诱导的糖尿病。
通过静脉内注射150mg/kg剂量溶于盐水的链脲佐菌素在其它植入动物中诱导糖尿病。通过链脲佐菌素注射诱导糖尿病前，用葡萄糖耐受测试对正常食蟹猴监测1周。患有糖尿病3-4周后，在胰岛植入前再次进行葡萄糖耐受测试。血液葡萄糖迅速失衡，水平达到500mg/dL。需要大剂量的胰岛素以使血液葡萄糖水平降至接近正常水平。所述血液葡萄糖水平由大幅的振荡，且需要进行胰岛素注射。同样也有几段时间血液葡萄糖水平很低或低血糖。即使每天注射胰岛素，所述动物也不能维持正常的、恒定的血液葡萄糖水平。注射链脲佐菌素引起β-小岛的迅速破坏，使所述动物不能维持血液葡萄糖平衡。
小岛移植物在注射氯胺酮、zylozine和阿托品(atropine)后，对食蟹猴的腹部进行刮毛、prepped、并盖上布帘以进行无菌注射。在中线两侧的皮肤下插入14-号规格的内导管。除去针头用套针替代，通过迫使套针进入皮下组织，从插入视角沿圆周方向从侧面制造4-5个小袋。小袋制作完毕后，除去套针将导管留在原位。将封装的小岛从烧瓶中取出，装入与插入皮下的导管相连的10ml synnge中。将封装的小岛注射入这些皮下位点的同时，通过将导管伸入每个位置从而达到所建立的皮下小袋。用4-0 prolene线缝合对皮肤上的注射位点进行密封。如果需要，对每一受者沿中线的两侧反复进行这种封装小岛的注射过程，直到所有封装小岛被全部注射。使所述受者康复并返回其笼中以进一步进行葡萄糖监测。
药物治疗对部分胰切除受者和链脲佐菌素受者之一不给予任何药物。从植入前-7天到植入后+30天，对接受封装小岛同种移植的四个链脲佐菌素受者中的三个给予低剂量的环孢菌素。通过在喂食时喷入食蟹猴的颊囊，每天两次经口给予低剂量的Neoral环孢菌素(10-30mg/kg/天)。通过ELISA分析12-小时的低谷浓度维持在25-100ng/ml范围。该剂量确定为不能预防食蟹猴中的肾同种移植物排斥。
代谢测试用Accucheck监测器检测每天上午(AM)禁食的血液葡萄糖和下午(PM)进食后2小时的血液葡萄糖并进行平均得到每天的值。在氯胺酮、zylozine和阿托品麻醉下，使用7kcal/kg Boost和2gm/kg葡萄糖管饲进行OGTT。在0、30、60、90和120分钟时取样进行葡萄糖和C-肽检测。
尸检在植入后100天对部分胰切除的动物进行尸检。取出所有主要组织并处理后进行组织学鉴定。
分析用Accucheck葡萄糖监测器收集每天的血液葡萄糖水平。采用Linco的ELISA分析检测C-肽，并确证人C-肽抗体与食蟹猴C-肽的相互作用水平为100％。通过放射免疫分析试验测定糖化血红蛋白。以固定时间间隔对所有糖尿病患者和受者进行例行血液化学检查。通过荧光素二乙酸酯/溴化乙锭(FDA/EB)分析进行封装小岛的活力测试。
没有任何药物治疗的链脲佐菌素诱导糖尿病受者链脲佐菌素诱导糖尿病的食蟹猴受者的糖尿病很严重(血糖150-350mg/dL)且植入前每天需16-18U胰岛素，超过部分胰切除的受者。通常有葡萄糖水平大幅变化和低血糖的时段。通过葡萄糖耐受测试在这些糖尿病对照中观测到的C-肽值很低，且对葡萄糖刺激无反应。不使用免疫抑制剂，将封装小岛植入皮下位点。对这种食蟹猴的结果如图17所示。
皮下植入后，观察到胰岛素需求下降50％持续80-90天，随后胰岛素功能有些降低。虽然没有摆脱对胰岛素的依赖性，但植入后OGTT得到的C-肽结果与前糖尿病或正常值类似，证明了植入胰岛素的功能。这一结果可代表当前进行的临床试验中糖尿病患者的观测结果，其中在全免疫抑制下进行小岛移植后所述患者有部分移植物发挥功能。
对所述受者的皮下移植物进行组织学评价显示，用胰岛素和高血糖素染色的封装小岛散布在植入位点的许多空胶囊中。这提出了如下问题为什么损失了这么多封装小岛。一种可能性是被宿主巨噬细胞破坏的封装小岛在被排斥的胶囊周围引起局部同种移植免疫反应，其也导致周围未被巨噬细胞破坏的小岛的损坏。不同地是，这些封装细胞可能是被与破裂胶囊反应的免疫细胞释放的局部细胞因子杀死的。另一种可能性是，在这一位点没有足够的血管生成，因此植入后许多小岛迅速死于缺氧。对存在许多空胶囊的第三种解释是从幼年供体获得的封装食蟹猴小岛质量太差，使得其在体内不能良好地存活及发挥功能。为了解决一部分这类问题，开发了不同方法来改进该研究中出现的这部分功能。
30天低剂量环孢菌素给药的链脲佐菌素诱导糖尿病受者以下链脲佐菌素诱导糖尿病的动物的糖尿病严重程度与前一研究相同。在所有动物的前腹壁的皮下位点植入约45,000IEQ的PEG共形包被的小岛。从-7天到+30天给予低剂量的环孢菌素，以试图降低围绕破裂胶囊发生的病灶同种移植物反应，并确定小岛功能是否改善。低剂量环孢菌素的含义是产生50-90ng/ml环孢菌素的24小时低谷血液水平的剂量，其低于100-300ng/ml的免疫抑制治疗剂量。第+30天后，中断作为给予所述受者的唯一药物的低剂量环孢菌素(除了手术后的止痛药、所需的胰岛素以及测试过程使用的氯胺酮鸡尾酒组合)。
第一受者在皮下植入的第一个10天中葡萄糖水平和胰岛素剂量下降了50％。这些值继续下降直到植入后第30天时中断胰岛素(中断环孢菌素的时间)，且血液葡萄糖水平维持在75-150mg/dL直到第220天。血液葡萄糖结果和胰岛素需求如图18所示。
在植入后第120天，检测到一些高血糖值，开始定量给予甲福明，使所述高血糖值回到正常范围。甲福明是II型糖尿病药物，其降低肝脏和肌肉的糖异生作用并常规用于II型糖尿病患者。其也用于改善I型患者的葡萄糖水平，其中所述患者被免疫抑制以进行小岛移植。这种观测结果表明植入小岛的数量减少并缓慢丧失功能。
皮下植入第二批封装小岛同种移植物，伴随再给药30天低剂量的环孢菌素。所述动物回到正常血糖水平并再次维持120天。距第一次植入235天时检测到较高的葡萄糖水平，表明血糖控制减弱，重新开始给予低剂量的胰岛素。在以后的两个月内，所述小岛缓慢丧失功能直到完全需要胰岛素治疗。假定存活的小岛剂量不足以长期维持该糖尿病受者，在植入后80天第二次植入封装移植物并用低剂量环孢菌素再治疗30天。再次植入和用低剂量环孢菌素治疗后血液葡萄糖保持在150-225mg/dL。OGTT结果的评价证明甚至恢复胰岛素治疗后植入的小岛仍然明显地释放出C-肽。
如图19所示，将所述动物在285天处死进行组织学鉴定。从该动物获得的组织学样本显示在皮下位点有许多存活的小岛。在没有破裂胶囊的证据的情况下，发现在一些小岛被局灶性淋巴细胞包围。它们的意义还不清楚，但可能表明这些胶囊在植入后9个月开始生物降解。还有明显证据表明靠近所述胶囊有许多毛细管。所述封装的小岛在皮下位点由套针产生的小袋内排成整列。虽然观测到，但对多数封装小岛不存在异物巨细胞或其它发生炎症的证据。
将封装小岛植入第三个糖尿病食蟹猴体内，并给药30天低剂量的环孢菌素。
在该动物中难以维持低剂量目标的环孢菌素24小时低谷水平，并且在第一次植入后发现环孢菌素对所述小岛具有毒性的证据。一旦在+30天中断环孢菌素，胰岛素需求量迅速下降至较低水平而观察到短时间的正常血液葡萄糖值。在第120天，胰岛素需求量开始上升，于是进行第二次植入和低剂量环孢菌素治疗，使胰岛素需求量稳定在植入前需求量的50％。约230天时胰岛素需求量开始上升表面血糖控制降低。即使恢复胰岛素质量，C-肽反应证明封装小岛移植物仍在发挥功能。在248天时将该动物处死，组织学发现如图20所示。
在低功率时，所述封装的小岛在插入时由套针产生的微袋内排成整列。在这些位点有许多存活的封装小岛同种移植物以及许多空胶囊。偶尔也发现一些封装小岛近期被宿主用一圈淋巴细胞和巨噬细胞包围。在高功率进行的测试显示，许多这些小岛具有良好的组织形态，包括该小岛的强烈胰岛素染色。一些胶囊显示为空，其在某时失去了小岛细胞。对植入位点进行的高功率测试显示，遍布整个植入位点围绕所述封装小岛普遍存在高密度的毛细管。这些毛细血管床从各个方向包围在PEG包衣的外侧，与围绕未植入位点的毛细管比，其密度显著上升。这些与封装小岛有关的新生毛细管可能是响应来自所述封装小岛移植物的信号而被刺激发展的，并解释了这些封装小岛可以长期保持小岛功能的原因。所述空胶囊可能是由于植入后所述小岛在血管发生前的头几周中不能维持自身的需要。也可能存在细胞因子对接近的这些胶囊的破坏，所述细胞因子来自对被宿主排斥的胶囊的早期免疫反应。
同样将封装小岛植入第四个糖尿病食蟹猴体内，并使用低剂量的环孢菌素。首先分开进行两次皮下植入(间隔两周)，以使该动物摆脱对胰岛素的依赖，该目标在第30天时实现。在植入后115天由于葡萄糖水平升高而重新开始胰岛素治疗。在给药低剂量环孢菌素的情况下进行另一次皮下植入。在短暂的改善后，随着胰岛素需求量的上升高血糖也重新出现。在整个非胰岛素依赖的时间段及恢复部分小岛功能后进行OGTT，从中观测到C-肽反应。该受者的组织学与其它受者类似，即存在许多含健康小岛的胶囊而其它胶囊无细胞。一些胶囊被淋巴细胞环绕。
口服葡萄糖耐受性测试结果在不同时间检测四只食蟹猴的C-肽值a]诱导糖尿病之前(基线)，b]诱导糖尿病之后(移植之前)，c]植入封装小岛后30天，d]植入封装小岛后60天，及e]植入封装小岛后90天。在管饲Boost和葡萄糖之前，给药前的C-肽值为～2.5ng/ml，与无氯胺酮受者的给药前样本中的历史值相比升高了。管饲后，虽然一些动物开始提高其外周血液C-肽反应，但其平均值基本保持相同。到管饲后120分钟，所述平均值明显上升到接近4ng/ml。链脲佐菌素给药至少3周后，四只糖尿病食蟹猴中没有一只响应OGTT刺激而升高其C-肽。在糖尿病状态期间由葡萄糖刺激得到的标准差范围很窄，这确证了这种C-肽反应缺乏。糖尿病状态期间的C-肽绝对值与文献中的某些报道不一致。这可能是由于现有的六种不同生严商的C-肽试剂盒由人C-肽到食蟹猴C-肽的交叉反应性不同，其大小可从30％交叉反应性到100％交叉反应性。Linco使用的抗体显示为100％交叉反应性。全部的四个糖尿病受者进行皮下植入后，除在30天时的胰岛素需求不同，与糖尿病状态相比每一时间点的C-肽水平都有显著上升。到植入后60天一直如此。将这四个受者的正常基线C-肽反应与皮下植入小岛移植物后30天和60天的C-肽反应相比，没有明显的区别。
糖化血红蛋白结果图21显示了诱导糖尿病前食蟹猴的糖化血红蛋白值(基线n＝4，85天后n＝3，及114天后n＝1)。由于糖化血红蛋白水平检测的是活存90天的蛋白，因此在该日期之间进行的测试几乎得不到信息。诱导糖尿病之前在这四只灵长动物中检测的基线值为30HbgAlc。在植入后85天，再次检测的糖化血红蛋白值稍微升高到3.8，但涨幅并不明显。114天时在某一动物中测得的值小幅上升至4.1。虽然对食蟹猴糖化血红蛋白值知之甚少，但85天时的结果不仅包括30天时葡萄糖值明显升高的糖尿病值，还包括没有明显高于基线值的植入后85天的值。尽管在每天的葡萄糖值中观察到的某些高血糖情况。
在食蟹猴中皮下植入封装小岛的总结将PEG共形包被的小岛同种移植物植入四只链脲佐菌素诱导糖尿病的食蟹猴的皮下位点，证明停止胰岛素治疗的条件下可得到接近正常的血液葡萄糖水平并维持高达120天，并且无需长期免疫抑制。全部三个接受环孢菌素的受者与一个未接受环孢菌素的受者(其只有植入小岛的部分功能)相比，植入后头30天使用低剂量的环孢菌素可增加皮下位点的封装小岛的存活百分率。皮下植入封装小岛同种移植物后通过OGTT刺激对受者进行代谢测试，证明与糖尿病值相比管饲后任何时间的C-肽反应都明显上升，且皮下植入同种移植小岛后的C-肽反应与其诱导糖尿病前的正常反应没有统计学差别。食蟹猴植入物研究的结果总结在表2中。
表2
实施例7将封装小岛皮下植入狒狒体内手术过程从供体摘除狒狒胰腺，插入套管并用胰腺保存溶液冲洗，然后移到Novocell进行小岛制备和封装。然后对其进行培养、转移至存放装置以备植入，然后使用与人小岛制备中类似的方案通过悬浮在培养基中进行制备以用于手术植入。将狒狒麻醉，将16号规格导管放置在前腹部的皮下位点。通过植入的导管将套针插入以在腹部皮肤下制造五个皮下管道的“扇形”区域(每个长～3”)。将测试材料(～2.5mL体积的总小岛植入物的～17％)轻轻悬浮，灌入5cc注射器中，并沿所述皮下管道(或“袋”)放置，在整个袋中要均匀放置。用4-0线缝合将针头插入位点封闭，防止从插入位点有任何泄漏。这就形成了长条的、低平躺着的测试材料和缓冲剂区域。液体部分被迅速吸收，剩下轻微颗粒状的表面纹理。总共用了6个位点来完成植入过程。将所述区域刺上花纹以标记注射位点的位置。没有发现显示炎症的局部反应。
药物治疗在-7天到植入后+30天将环孢菌素(24小时低谷水平为50-95ng/ml的亚免疫抑制剂量)进行给药。将环孢菌素给药来预防封装小岛的间接损失，该损失是由对植入物中某些封装不良的小岛的即刻局灶性同种移植物免疫反应引起的。此外，为了模拟临床的合并药物治疗，从+1天起贯穿整个研究过程进行甲福明给药。链脲佐菌素给药诱导糖尿病至少4周后给药的包被小岛的剂量为约40K IEQ/kg体重。本研究中使用的有效小岛剂量与现有的人研究中使用的剂量(15K IEQ/kg)的差别可能源于植入位点(皮下对门静脉)及植入后的小岛损失。
监测活体监测的目标是为跟踪糖尿病控制和植入活性所需的信息提供综合的评估，以及提供局部耐受性的标准指标和整体健康/安全评估的全局指标。在糖尿病前的阶段(基线)、糖尿病阶段及植入后对所述组进行监测。糖尿病前、糖尿病期间及每月的植入后检测包括OGTT和AST(精氨酸刺激试验)(用血液葡萄糖、胰岛素和C-肽分析)以及血红蛋白Alc。糖尿病期间和植入后期间每天监测包括血液葡萄糖(禁食、进食后两小时及餐前)、尿葡萄糖和酮体(早上禁食和餐前)、食物摄取(碳水化合物、脂肪和蛋白的克数)、胰岛素注射量(糖尿病控制方案)和其它药物治疗剂量。每周监测包括体重和临床观测。
尸检用苏木精和曙红(H&E)染色和免疫组织化学染色(胰岛素、高血糖素、血管生成素肌动蛋白、巨噬细胞和淋巴细胞、CD3、CD4、CD8)对皮下植入位点和非植入对照位点进行组织病理学检验。用H&E染色对所有标准器官和组织进行组织病理学检验，并由公认的兽医病理学家进行评估。对胰腺进行免疫组织化学染色以评估胰岛素和葡萄糖的存在。
在链脲佐菌素糖尿病狒狒中的封装小岛同种移植物图22显示了本研究将封装小岛同种移植物植入第一只糖尿病狒狒中的早期结果。该糖尿病狒狒受者显示出在皮下植入封装小岛同种移植物后17天内达到非胰岛素依赖的能力。与之对比的是糖尿病食蟹猴的结果，其中小岛植入后30天内没有达到非胰岛素依赖。狒狒糖尿病模型从食蟹猴模型中的经口注射给药环孢菌素变为在大狒狒中的IM注射。这消除了在食蟹猴模型中观察到的24小时低谷水平的差异。图23显示该受者在植入后60天内达到了正常的血红蛋白Alc水平，并在连续无胰岛素条件下在正常水平维持到180天。
OGTT和AST结果证明植入后所有时间均有明显的C-肽释放。正常反应在30分钟时刻显示C-肽的峰值随后该值降低，在所有时刻均产生正常的葡萄糖值。在糖尿病期间，由于C-肽水平太低不能响应葡萄糖刺激，使得葡萄糖值始终持续上升。植入后，对葡萄糖刺激有较大的C-肽反应，但这些反应延迟到在刺激后60和90分钟出现峰值。检测葡萄糖值，由于这种C-肽反应的延迟使其30和60分钟的葡萄糖值高于正常值。然而，接近90和120分钟时葡萄糖值回到接近正常的水平。目前，仍不知道这种C-肽反应的延迟是由于在皮下位点植入还是由于对小岛的封装引起的。这些结果与免疫抑制下在人糖尿病患者的门静脉植入小岛的结果非常类似。
在第二只狒狒的皮下位点进行植入并同样给予低剂量的环孢菌素。在保持基本相同的胰岛素需求量的同时出现葡萄糖值降低。胰岛素需求缓慢降低到100天时的值，但随后缓慢上升直到接近200天，但葡萄糖水平保持在低水平。血红蛋白Alc值检测表明明显实现了部分功能，其中所述水平从12％降至接近90天时的8.0％以及120天时的正常水平。在它们维持到第180天时该值缓慢上升为8％水平。这些值显示了部分功能，其与小岛移植受者达到的那些值相匹配，在这些受者中没有达到非胰岛素依赖但其在植入后保持了接近正常水平的血红蛋白Alc水平。
OGTT和AST结果的检测表明与第一受者相比整个植入后阶段的C-肽值较低而葡萄糖值较高。然而，C-肽反应明显高于在糖尿病期间观测到的值。
同样将封装的小岛同种移植物植入第三受者的皮下位点并使用低剂量的环孢菌素(图24)。植入后，该受者也表现出部分功能，与糖尿病期间相比葡萄糖和胰岛素值具有超过50％的下降。这些值保持到植入后140天。
该受者的血红蛋白Alc值(图25)显示在接近植入后60天时达到正常范围，但在接近120天时上升到糖尿病水平。这再次证明部分小岛功能可维持90天，在此后的期间反应能力下降。
对OGTT和AST的响应与前述部分功能受者中观测到的类似，所述受者在植入后C-肽值升高并在60-90分钟时达到峰值。
通过一个正常小岛移植受者和两个部分受者，理解这些结果与植入糖尿病受者门静脉后得到的结果相比的区别很重要。为了达到这一目的，本研究使用了预处理的狒狒受者，该受者第一个在狒狒小岛分离产物达到可接受水平之前在皮下位点接受封装小岛。利用这个受者来进行对植入的胰腺和封装小岛的运送补给。进行两次低量皮下封装小岛植物，得到预料的不良结果。继续对所述受者进行研究，并用于测试门静脉内注射封装小岛同种移植物的作用，该封装小岛在与头三个受者所用类似的条件下分离及封装。
头两次低剂量植入分别在第0天和第110天进行。但在第一次植入后240天，通过向门静脉直接注射的手术过程来实现向门静脉内注射封装的小岛同种移植物，而未引起明显的门静脉血压上升或肝功能检测中的任何改变。对所述植入物有强烈的反应，在几天内胰岛素需求下降超过50％。在植入后30天停止环孢菌素后，对该受者停止胰岛素治疗其维持正常葡萄糖水平至植入后290天。对该受者的血糖蛋白Alc值进行检测，所述低量皮下植入后有降低但未达到正常水平。门静脉植入后获得的唯一值是在植入后30天的时刻获得的，该时刻太早了而无法观察到所预期的改善。在狒狒中，血糖蛋白Alc水平滞后临床结果约30天。
低量皮下植入小岛后，明显保持有低水平的C-肽，其明显高于糖尿病值，尽管血红蛋白Alc水平有所下降但这种反应不能使其恢复正常。门静脉植入后，此时只能得到30天时的值。检测葡萄糖反应，与C-肽明显上升相关其显著下降。第一次门静脉植入的显著改善表明加强皮下位点从而得到改进效果的可能性。
实施例8封装在含或不含PEG的藻酸盐微胶囊中的细胞可用含藻酸盐或其它水凝胶的基质对细胞和组织进行包被。以下描述了将小岛包被在含或不含PEG的藻酸盐微胶囊中的优选方法。
用藻酸盐微胶囊包被小岛将100μl培养的小岛均匀悬浮在1.25ml用10mM HEPES缓冲液配制的16％藻酸钠溶液中。借助设定为10.5PSI[72,394.95Pa(N/m2)]的氩气压力通过注射泵/氩喷射器经21号规格针头挤出来制备含小岛的藻酸盐微胶囊，并收集在用10mM HEPES配制的100ml 80mM氯化钙溶液中。使用M199通过重力沉降15分钟并进行倾注洗涤将藻酸盐微胶囊洗涤三次。所得藻酸盐微胶囊的尺寸分布为250-350μm。
用含PEG的藻酸盐微胶囊包被小岛将15毫升20mM的低离子HEPES缓冲液(含1.8mM CaCl2和260mM甘露醇，pH＝7.0)加入含100μl含微胶囊的小岛的15ml锥形管中。将所述管离心形成沉淀，除去上层清液。向所得沉淀中加入15ml Den-EY溶液(0.1mg/ml溶于低离子HEPES缓冲液)，并在室温下将所述管水平放置10分钟。用低离子20mM HEPES缓冲液洗涤染色的小岛，其用氩气喷雾至少30分钟。将染色后的小岛沉淀与20ml光敏聚合物溶液混合，其用氩气喷雾并在水浴中预先平衡至8℃至少30分钟。在20mM HEPES缓冲液中制备所述光敏聚合物溶液，pH＝8.0，其含有5％PEG 1.1K-TA、10％PEG 3.5K-三醇或PEG 4K-二醇、100mM TeoA、32mg/ml AMPS和2μl/ml NVP和13％Nycodenz。将所得悬浮液转移至10ml烧杯中，并用氩激光器以200mW/cm2的照射密度对该烧杯照射1分钟。通过向该培养皿中加入1-2ml M199中止聚合，并将烧杯中的物质转移至含40ml M199的50ml锥形瓶中。用M199洗涤三次后，将封装的小岛放回培养中。
将含猪小岛的藻酸盐微胶囊和藻酸盐/PEG微胶囊作为异种移植物植入非糖尿病灵长动物的皮下位点在灵长动物研究中，藻酸盐和藻酸盐/PEG包被的微胶囊均被植入三只非糖尿病食蟹猴中。所述PEG包被的微胶囊在不同条件下制备，从而改变其选择通透性。所有的植入微胶囊(单独藻酸盐&藻酸盐/PEG)均含有作为灵长动物的异种移植物的猪小岛。这些受者用实验性抗CD 154单克隆抗体进行治疗。植入后7天将所述皮下植入物切除，评估这些不同胶囊中的封装猪小岛的存活百分率。
图26显示了仅用藻酸盐以及用不同构成的藻酸盐/PEG微胶囊封装的猪小岛的存活百分率，其中植入正常食蟹猴内7天后其包衣具有不同的选择通透性。所述不同的选择通透性值为0kD、30-60kD、100kD和超过200kD。仅用藻酸盐封装的猪小岛的存活百分率是55％。小岛存活百分率在所述藻酸盐/PEG包被的微胶囊之间存在差别。对具有非常紧密的选择通透性(0kD或＜30kD大小的蛋白)扩散的微胶囊，其在24小时处的存活率为37％。对30-60kD大小的蛋白具有选择通透性扩散的微胶囊，其在24小时处的存活率上升至70％。允许＜100kD大小的蛋白扩散的微胶囊在24小时处具有58％的存活率。充分张开的微胶囊(＞200kD尺寸的蛋白扩散)其24小时处的小岛存活率降至32％。
对藻酸盐/PEG封装的新生猪小岛组织中的胰岛素和高血糖素进行染色，结果证明在低剂量环孢菌素系统给药的条件下藻酸盐/PEG微胶囊具有使所述封装的新生猪小岛组织存活7天的能力，其中将所述封装的新生猪小岛组织植入正常食蟹猴的皮下位点7天。
将藻酸盐/PEG微胶囊封装的猪小岛异种移植物植入糖尿病灵长动物的腹膜腔在糖尿病灵长动物的后续研究证明，在联合使用抗-CD154系统治疗的条件下封装在藻酸盐/PEG微胶囊中的猪小岛可减少胰岛素需求30天。图27显示了将藻酸盐/PEG微胶囊封装的猪小岛植入同时接受30天抗-CD154抗体治疗的糖尿病食蟹猴的腹膜腔中的结果。所植入的小岛可在无胰岛素注射的条件下维持正常的血液葡萄糖水平。
制备具有不同蛋白选择通透性的含小岛的藻酸盐/PEG包被的微胶囊在不同的封装条件下将小岛封装在藻酸盐/PEG微胶囊中，从而改变包衣中的孔尺寸并将其放入组织培养液中。用清洁剂(SDS)处理所述封装的小岛以杀死所封装的细胞并溶解所述蛋白。将这些处理过的微胶囊放入不含蛋白的培养基中，在不同时间收集所述培养基。通过将扩散物放置在聚丙烯酰胺凝胶上并用PAGE电泳将不同大小的蛋白分离，从而测定蛋白大小。结果证明改变PEG的浓度、PEG的尺寸、共聚单体的浓度、激光的强度以及小岛的暴露时间是改变PEG包衣的选择通透性的诸多途径中的一部分。
图5显示了通过改变形成PEG包衣时采用的变量来改变藻酸盐/PEG微胶囊选择通透性的能力。对藻酸盐/PEG封装的小岛进行孵育，一段时间后检测所述细胞释放的蛋白以确定分子量。在最左侧的列中显示了由未封装的小岛释放的蛋白，其后是分子量标准列。其它列显示的是藻酸盐/PEG封装的小岛释放的蛋白。所释放的蛋白分别为大于100kD、100kD、小于60kD、小于30kD和0kD。
实施例9除小岛外的其它细胞类型的藻酸盐封装/PEG包衣除小岛外，以与实施例3中类似的方式将类似的聚集细胞封装在藻酸盐微胶囊中，在使用所述用于将小岛封装在不同尺寸的藻酸盐微胶囊中的技术之前使所述细胞形成集簇除外。这些方法能够用PEG共形包被胰岛素生成肿瘤细胞系，BHC8小鼠胰岛瘤细胞。同样，使用某些不容易聚集的细胞类型时，即使其没有聚集成细胞簇，也可以先将细胞封装在藻酸盐胶囊中。这种方法能够用PEG共形包被来自胰岛素生成肿瘤细胞系(大鼠胰岛瘤(RIN))的细胞。
使来自C-127细胞系的细胞生长在藻酸盐基质中而非生长成簇，其中所述细胞系被工程化为产生ApoE2。随后将PEG包衣应用于这些生长在藻酸盐基质中的细胞。此外，能够将非聚集的细胞(CHO)俘获在藻酸盐微胶囊中，其使得细胞可在培养液中的藻酸盐球体内部扩增，然后用PEG包衣对其进行包被，从而完成所述藻酸盐/PEG包衣。
实施例10通过使用藻酸盐和PEG聚合物混合物的共挤出在小岛或其它细胞上形成藻酸盐/PEG包衣将细胞聚集体或单独细胞混入藻酸盐溶液，将其装入注射泵/氩喷射器系统中的一个注射器中。该注射器的输出端与含有三个针头的共轴针头系统中的内侧的#21-规格针头相连接。第二注射器只含有PEG封装混合物，并与所述共轴针头系统的中间#18规格针头相连。氩气与外侧的#16-规格针头相连。所述含细胞的藻酸盐注射器和PEG注射器与同一泵相连，这样可使从这两个注射器流出的流速相同。设定形成液滴的气体量以控制液滴的尺寸。在长形玻璃柱中收集由这两个注射器/氩气喷射器形成的液滴，其中所述玻璃柱的上部的3/4体积含有诸如油的非水性溶剂，而底部的1/4体积为含钙或钡(80mM)的溶液。使氩激光透过所述收集柱的非水性部分照射，从而在所述封装胶囊通过所述收集柱的非水性部分沉降之前使所述PEG外层包衣交联。当所述含细胞的PEG交联胶囊到达收集柱的底部1/4部分时，核心处的藻酸盐开始交联。从所述柱的底部收集已交联的藻酸盐核心/PEG包被的胶囊并洗涤以除去非水性溶剂。如果需要，可在曙红Y存在下通过将这些胶囊在水相中暴露于氩激光进行进一步的PEG交联。这个实施例的结果证明1]封装单个细胞的能力，以及2]在PEG胶囊中提供生长中心，从而使被封装的细胞可以生长出新细胞。利用红细胞(RBC’s)来完成使用这类包衣的实施例。
在PEG微胶囊中封装小岛将500个小岛悬浮在含10％胎牛血清的M199培养基中，并通过在100g离心3分钟来沉淀。将所述沉淀重悬在1ml溶于M199培养基的PEG3.5KD三丙烯酸酯大分子单体的10％w/v溶液中，该溶液含有曙红Y(1mg/ml)、乙烯基吡咯烷酮(16mg/ml)和三乙醇胺(100mM)。随后向所述管中加入矿物油(20ml)，将其剧烈搅动以形成尺寸为200-500um的液滴的分散体。然后将所述分散体暴露于功率为200mW/cm2的氩离子激光，该激光发射波长514nm，持续60秒。随后通过使所述微胶囊沉降来分离矿物油，并将所得微胶囊用PBS洗涤两次、己烷洗涤一次并最后用培养基洗涤三次。
实施例11共形包被微珠上的小岛细胞或其它细胞封装不产生聚集进而妨碍形成共形包衣的细胞的一种方法是使其在微载体株上生长。这种生长后，可使用与实施例2中所述用于分离小岛的类似PEG共形包被技术，在这些含肿瘤细胞外层的微载体珠上放置PEG共形包衣。使用这种方法形成共形包衣，并显示出可接受的存活率。应该理解可用于在其表面生长各种不同细胞的各种类型的微载体珠均可成功用于本文所述的共形包被过程。
为了在其表面生长细胞的目的，制备了许多不同类型的微载体珠。工程化为产生ApoE2的C-127细胞系(如实施例7中所述)不产生聚集但可在Cytodex珠上生长。这些细胞(包括所述微载体珠)可很容易地用PEG共形包衣直接在载体珠及所附着的细胞外表面进行封装。
实施例12通过PEG共形包衣封装的其它细胞类型其它可聚集并用PEG共形包被的细胞类型包括NIT细胞系(小鼠胰岛瘤)。这种细胞的结果如图28所示，其中通过上述用于小岛细胞聚集体的技术实现了薄层共形包衣，并在组织培养液中保持存活两周。培养一周后，通过用溴化乙锭/荧光素二乙酸酯染色确定所封装的细胞明显地存活着。将所述包被的细胞显示在正常光下(图28A)及用FDA/EB染色后显示在荧光灯下(图28B)。
使猴肾细胞系在组织培养液中聚集，随后成功地用PEG共形包被。图29A显示了正常光下的细胞，而图29B显示了荧光下用FDA/EB染色的细胞。同样，通过FDA/EB染色证明了这些封装的肿瘤细胞的存活。
在另一实施例中，使其它非胰岛细胞的原代细胞形成聚集，随后成功地用PEG共形包被。图30显示了PEG共形包被的由人及小鼠来源的原代肝脏细胞(肝细胞)制备的细胞聚集体，并在培养下使其保持存活两周。图30A所示为常光下的培养两周后的人细胞。图30B所示为荧光下用FDA/EB染色的培养两周后的人细胞。图30C所示为常光下的小鼠细胞，而图30D所示为荧光下用FDA/EB染色的细胞。人和小鼠肝细胞均成功地用PEG共形包衣进行了包被，且甚至在培养两周后还保持了细胞存活。
实施例13估计封装在微胶囊中或共形包被的小岛的治疗剂量表3和4提供了指导本领域所属技术人员确定小岛对个体的治疗剂量的数据。下列数据的计算基于几个假设a]所有微胶囊为球体，b]每个小岛为1,500个细胞，c]最低治疗剂量为15,000IEG/kg体重，d]有5％的空胶囊或0％的空共形包被胶囊，e]微胶囊/共形包被胶囊的最大填充量为总体积的75％，及f]每一微胶囊/共形包被胶囊含有一个小岛微胶囊/共形包被胶囊含有一个直径为150μm的小岛。用1μm的胶囊对小岛进行共形包被可得到8.2×108细胞/ml的最大细胞密度。
所述体积不包括悬浮液体或基质的体积。本领域所属技术人员可以认识到以下数据可用于指导计算治疗剂量，但以下数据并不意于限制可使用的小岛数量和浓度范围。为进行这些计算而采用的假设并不局限于本发明。这些数据仅属于本发明的实施方案。(V小岛(ml)＝0.0264938)表3封装在微胶囊中的小岛
表4共形包被的小岛
估计封装在微胶囊中或共形包被的细胞数量图5和6提供的数据可指导本领域所属技术人员确定治疗患有各种疾病和病症的个体所需的细胞治疗剂量。下列数据的计算基于几个假设a]封装的或共形包被的细胞的平均直径为50μm，b]每一微胶囊中的细胞聚集体的总体积为1.77×10-6ml，c]有5％的空胶囊或0％的空共形包被胶囊，d]微胶囊/共形包被胶囊的最大填充量为总体积的75％，及e]每一微胶囊/共形包被胶囊含有一直径为150μm的小岛。用1μm的胶囊对小岛进行共形包被可得到1.36×107细胞/ml的最大细胞密度。
所述体积不包括悬浮液体或基质的体积。本领域所属技术人员可以认识到以下数据可用于指导计算治疗剂量，但以下数据并不意于限制可使用的细胞数量和浓度范围。为进行这些计算而采用的假设并不局限于本发明。这些数据仅属于本发明的实施方案。
表5封装在微胶囊中的细胞
表6共形包被的细胞
实施例14藻酸盐/PEG微胶囊的特性在动物中对许多不同类型、长度和大小的PEG丙烯酸酯进行了测试，以确定所述组合物的生物相容性和选择通透性，以及封装后造成的封装细胞的功能性和活力。一种所述丙烯酸化的PEG包衣是1.1kD PEG三丙烯酸酯。这种很短的PEG丙烯酸酯交联后具有独特的生物相容性。
将水凝胶封装的藻酸盐珠植入正常的小型和大型动物中维持14天，其间不采用免疫抑制。随后将所述胶囊分离，并对组织对这些胶囊的反应特性和程度进行组织学评价。对所测试的样本观察到极小的近似于无的组织反应，表明这些水凝胶组合物具有非常好的体内生物相容性。
图31所示为在小鼠、猪、狗和灵长动物中的生物相容性反应，其中将空的藻酸盐/PEG微胶囊植入在不同位点。将1.1kD PEG三丙烯酸酯包被的空藻酸盐微胶囊注射入肝脏门静脉。在猪和灵长动物中，植入两周后对这些空PEG微胶囊没有反应。狗对所有PEG注射显示出最强的反应性，但仍然几乎没有反应细胞。
对所述封装材料组合物进行评价并评分，从而评估生物相容性、选择通透性、功能性和活力。用评分体系(1到4)对所述动物对封装细胞植入的反应进行量化。
表7显示了对巨噬细胞、FB巨细胞、炎性反应、淋巴细胞和嗜伊红细胞出现的评分值。生物相容性的综合得分为这五类得分的平均值。图32通过显示评分值1、2和3的代表性组织学显示了封装细胞在小型动物中的生物相容性。图33通过显示评分值1、2和4的代表性的组织学显示了封装细胞在大型动物中的生物相容性。
表7
表8显示了如何通过改变所述组合物的成分及成分的百分比来改造选择通透性。10％3.5K-TA与10％10K-TA组合使得凝胶结构非常紧密，因而阻止了几乎所有蛋白在血液与封装细胞之间的通过。如果所述组合物变为5％3.5K-TA和5％8K-DA，则所述凝胶结构容许中等大小(100到60kD)蛋白在血液与封装细胞之间通过。20％10K-TA组合物产生的凝胶容许大分子量(＞100kD)的蛋白在血液与封装细胞之间通过。
表8
所述封装材料组合物对由其产生封装细胞地功能性和活力有很大的影响。用于制备所述凝胶的化学试剂和方法可能对细胞具有细胞毒性或造成伤害。图34所示为将封装小岛植入链脲佐菌素诱导糖尿病的无胸腺小鼠中所得的结果。分值“1”表示可消除糖尿病且血液葡萄糖水平＜150ng/ml的封装细胞。“2”表示可减轻糖尿病，但不能每天保持内环境稳定且血液葡萄糖水平在150-300ng/ml之间的封装细胞，而“3”表示不能控制糖尿病且血液葡萄糖水平＞300ng/ml的封装细胞。
可用静态葡萄糖刺激试验来评估所述封装细胞的功能性。该试验将以下三种条件下的胰岛素产量进行对比低葡萄糖浓度时的基础产量、高葡萄糖(刺激)时以及高葡萄糖加IBMX时的胰岛素产量。图6显示了静态葡萄糖刺激试验的评分结果。分值“1”代表刺激时胰岛素产量＞2倍基础产量，且IBMX胰岛素产量＞10倍基础产量。分值“2”代表刺激时胰岛素产量为1.5-2倍基础产量，且IBMX胰岛素产量为5-10倍基础产量。分值“3”代表刺激时胰岛素产量＜1.5倍基础产量，且IBMX胰岛素产量＜5倍基础产量。
对封装过程中的细胞活力进行了评估。所述评分体系将活力分级为“1”＝＞90％、“2”＝＜90％到75％、“3”＝＜50％到25％且“4”＝＜25％。图4所示为分值1、2和4的封装细胞的活力和组织学。
实施例15用PEG包衣共形包被的产生生血管生长因子的遗传工程细胞对局部缺血的肌肉进行植入许多不同的细胞类型可被遗传工程改造为产生不同的生血管生长因子。这些细胞是人或动物成纤维细胞、血管细胞或各种非致瘤细胞系。
对诸如VEGF、bFGF和PDGF的生血管生长因子进行选择，以作为用于封装的遗传工程细胞系。对肌肉局部缺血的动物模型植入前需进行效果的检测，其是所选生血管生长因子的释放量达到推测可在局部缺血的肌肉微环境中产生临床反应的水平。如果可使所述细胞聚集，则可采用与实施例2中所述类似的条件对这些细胞聚集体进行共形包被。将这些封装的生血管生长因子生成细胞植入实验诱导心肌局部缺血或实验诱导肢体肌肉局部缺血的啮齿动物模型中。效果检测结果是肌肉量上升的组织学证据以及包括心肌在内的局部缺血肌肉的力量上升的功能性证据。通过血管途径以及荧光镜控制可实现将这些生血管生长因子生成细胞植入包括人在内的大型动物中，例如可直接注射入心肌而无需任何开放性外科手术。
实施例16将PEG共形包被的小岛、肝细胞或遗传工程细胞植入脾脏用于治疗不同疾病对小岛的情况，以与肝脏内植入未封装小岛移植物类似的方式将未封装的小岛成功地植入了糖尿病狗及糖尿病人的脾脏中，并成功地使其糖尿病缓解。现在，封装小岛可在脾脏及皮下位点发挥其功能。类似地，将诸如肝细胞的遗传工程细胞植入脾脏可为其提供血管化良好的位点，且在该位点遗传工程产物首先释放到肝脏中。这对于某些疾病很重要，这些疾病中肝脏在处理和利用植入脾脏的遗传工程细胞的产物时起主要作用。对于封装细胞治疗来讲，因脾脏易于到达及其控制细胞数量的能力使得其成为有吸引力的位点。
实施例17鞘内注射封装细胞用于输送CNS试剂进行疾病或病症的治疗通过封装细胞可治疗多种不同CNS疾病。某些可能需要直接注射入患病大脑的特定部位，例如将封装的多巴胺生成细胞注射入帕金森症患者的黑质中。然而，简单地通过将产生所需CNS因子的封装细胞沿着脊髓或在其下方注射入脊髓液，使得封装细胞产物能够释放，即可治疗许多不同的CNS疾病或病症。脊髓液循环将所述产品输送到所涉及的脑或脊髓的所需位置。这种方法的另一例子是通过将封装在中空纤维中地多巴胺生成细胞插入腰椎管中来治疗慢性疼痛疾病，例如在转移性癌症患者的情况。采用这些共形包衣使得可输送大量细胞。另一种应用是将这些封装细胞包含在中空的管内，在该管外侧可系上绳索，但并不依靠这些管提供任何免疫保护。这种疾病中的一种是多发性硬化，其可通过封装少突神经胶质细胞或其它能产生其它因子的细胞来治疗，其中已知所述因子可产生修复所述疾病对髓磷脂的破坏所需的物质。另一例子是治疗疼痛，其中这种形式的封装可使产生多巴胺的细胞数量上升。使用多巴胺也可通过增加个体患者脊髓液中的循环多巴胺水平来帮助治疗不同形式的药物和酒精成瘾。使用NGF(神经生长因子)和其它试剂可帮助治疗有脊髓损伤的患者。所述NGF或其它试剂由封装细胞释放到椎管的脊髓液中。
实施例18将封装的甲状旁腺或肾上腺细胞植入由于疾病或对实际肿瘤或潜在肿瘤风险进行手术切除而使自身甲状旁腺或肾上腺细胞失去功能的患者肌肉、脾脏和肝脏中许多患者为了治疗实际肿瘤而切除了他们的甲状旁腺或肾上腺。另一批患者为了消除由遗传基因疾病导致以后形成肿瘤的风险，而将其这些器官切除。在器官捐献时借助切除这些组织来进行来自尸体器官供体的正常人甲状旁腺或肾上腺细胞的PEG封装。从这些器官制备了许多细胞制剂以进行实验研究，而本领域所属技术人员可很容易地从这些器官制备细胞。通过共形包衣或通过藻酸盐基PEG包衣实现PEG封装，以便于将这些封装的细胞植入这些患者中，其中所述患者由于实际的肿瘤或潜在的肿瘤形成而造成这些器官中的一个丧失了功能。
实施例19植入封装细胞用于治疗基因遗传疾病有许多人类或动物疾病是由基因缺陷引起的。目前开发的通过将这些基因直接注射入身体的不同组织的基因疗法的功能还不安全。许多这些遗传疾病可通过产生所缺失基因产物的封装细胞来治疗，可使用可产生所述产物的原代细胞或产生所述产物的遗传工程细胞。如果所述产物的位置不需要在特定的位点，则基本上可在任意位点植入这些封装细胞。因此，可将封装细胞皮下注射、通过门静脉注射或直接注射入肝脏、通过血管或直接注射入脾脏、通过血管或直接注射入肌肉、通过血管或直接注射入肾脏、通过血管或直接注射入心脏、通过注射进入椎管、通过血管或直接注射入脑、通过血管或直接注射入眼、通过血管或直接注射入肺、通过血管或直接注射入甲状腺、通过直接注射进入骨髓、通过直接注射进入任意关节、或通过直接注射或应用直接进入任何伤口。
实施例20在农场或生产型动物中使用封装的生长激素生成细胞来提高生长速度或产奶量生长激素被用于奶牛以提高产奶量。也有研究者认为将其注射入刚断奶的小猪有助于提高其产肉量和大小，因而缩短上市时间。封装生长激素生成细胞并将其植入这些生产型动物可得到相同的结果，而无需每天进行昂贵的注射。在猪模型情况下，可将PEG包衣改造成可使其6周内生物降解的形式，从而使所述动物在宰杀时以及人食用其肉后不含生长激素。可选择地，将所述封装细胞容纳在容易移除的插入容器中，以清除产生的生长激素。
应该理解上述描述是示范性和说明性的，且其目的只是对本发明及其优选实施方案进行说明。通过常规实验，本领域所属技术人员在不偏离本发明精神的条件下可很容易地作出修改和变化。因此，应该清楚理解本发明中的各种形式只是说明性的，且不意于限制本发明的范围。将本文明确引用的所有文献引入作为参考。
权利要求
1.用于细胞治疗的组合物，包括多个包括聚乙二醇(PEG)包衣的封装装置，所述PEG的分子量在约900到约3,000道尔顿之间；及多个封装在所述封装装置中的细胞，其中所述组合物具有至少约100,000细胞/ml的细胞密度。
2.如权利要求1所述的组合物，其中所述封装装置是微胶囊。
3.如权利要求2所述的组合物，其中所述微胶囊是共形包被的细胞聚集体。
4.如权利要求3所述的组合物，其中所述细胞聚集体是胰岛。
5.如权利要求4所述的组合物，其中所述细胞密度为至少约6,000,000细胞/ml。
6.如权利要求1所述的组合物，其中所述细胞选自神经细胞、心血管细胞、肝细胞、内分泌细胞、皮肤细胞、造血细胞、免疫细胞、神经内分泌细胞、代谢细胞、系统细胞和遗传细胞。
7.如权利要求6所述的组合物，其中所述细胞选自自体细胞、同种异体细胞、异种细胞和遗传修饰的细胞。
8.如权利要求7所述的组合物，其中所述内分泌细胞是胰岛素生成细胞。
9.治疗有效组合物，包括多个平均直径小于400μm的封装装置，所述封装装置包括封装在封装材料中的细胞，其中所述组合物包括至少约500,000细胞/ml。
10.如权利要求9所述的治疗有效组合物，其中所述封装装置的平均直径小于300微米。
11.如权利要求9所述的治疗有效组合物，其中所述封装装置的平均直径小于200微米。
12.如权利要求9所述的治疗有效组合物，其中所述封装装置的平均直径小于100微米。
13.如权利要求9所述的治疗有效组合物，其中所述封装装置的平均直径小于50微米。
14.治疗有效组合物，包括多个平均直径小于400μm的封装装置，所述封装装置包括封装在封装材料中的细胞，其中所述组合物中封装装置的体积与细胞体积的比值小于约20∶1。封装材料，其中所述组合物中封装装置的体积与细胞体积的比值小于约20∶1。
15.如权利要求14所述的治疗有效组合物，其中所述组合物中封装装置的体积与细胞体积的比值小于约10∶1。
16.如权利要求14所述的治疗有效组合物，其中所述组合物中封装装置的体积与细胞体积的比值小于约2∶1。
17.用于治疗动物的疾病或病症的如前述任一权利要求所述的组合物。
18.如权利要求17所述的组合物，其中所述疾病或病症选自神经、心血管、肝脏、内分泌、皮肤、造血、免疫、神经内分泌、代谢、系统和遗传疾病或病症。
19.如权利要求18所述的组合物，其中所述内分泌疾病是糖尿病。
20.如权利要求17所述的组合物，其中所述动物属于兽亚纲下属的目，其中所述目选自偶蹄目、食肉目、鲸目、奇蹄目、灵长目、长鼻目和兔形目。
21.如权利要求20所述的组合物，其中所述动物是人。
22.如权利要求17所述的组合物，其用作可注射的组合物。
23.如权利要求20所述的组合物，其用在选自以下位点的植入位点皮下、肌肉内、器官内、器官的动/静脉血管、脑-脊液以及淋巴液。
24.如权利要求23所述的组合物，其中所述植入位点是皮下位点。
25.如权利要求22所述的组合物，其中所述可注射组合物位于注射器中。
26.如权利要求17所述的组合物，其与免疫抑制剂或抗炎试剂结合使用。
27.如权利要求26所述的方法，其中将所述免疫抑制剂或抗炎试剂给药少于6个月。
28.如权利要求27所述的方法，其中将所述免疫抑制剂或抗炎试剂给药少于1个月。
29.权利要求1-16中任一权利要求所述的化合物在制备用于治疗疾病或病症的可植入药物中的用途。
30.如权利要求29所述的用途，其中所述疾病或病症选自神经、心血管、肝脏、内分泌、皮肤、造血、免疫、神经内分泌、代谢、系统和遗传疾病或病症。
31.如权利要求30所述的用途，其中所述内分泌疾病是糖尿病。
32.如权利要求29所述的用途，其中所述动物属于兽亚纲下属的目，其中所述目选自偶蹄目、食肉目、鲸目、奇蹄目、灵长目、长鼻目和兔形目。
33.如权利要求32所述的用途，其中所述动物是人。
34.如权利要求29所述的用途，其中所述药物是可注射的组合物。
35.如权利要求29所述的用途，其所述药物用于植入选自以下位点的位点皮下、肌肉内、器官内、器官的动/静脉血管、脑-脊液以及淋巴液。
36.如权利要求35所述的用途，其中所述植入位点是皮下位点。
37.如权利要求34所述的用途，其中所述药物是位于注射器中的可注射组合物。
38.如权利要求29所述的用途，其中所述药物用于与免疫抑制剂或抗炎试剂共给药。
39.如权利要求38所述的用途，其中所述免疫抑制剂或抗炎试剂的共给药少于6个月。
40.如权利要求39所述的用途，其中所述免疫抑制剂或抗炎试剂的共给药少于1个月。
46.如权利要求45所述的方法，其中所述组织是胰岛素生成细胞簇。
47.如权利要求46所述的方法，其中所述细胞是胰岛素生成细胞。
48.如权利要求41所述的方法，其中所述封装的生物材料是PEG共形包被的小岛同种移植物。
49.如权利要求41所述的方法，其中所述第一和第二缓冲剂为1-200mM。
50.如权利要求49所述的方法，其中所述第一和第二缓冲剂为10-50mM。
51.如权利要求50所述的方法，其中所述第一和第二缓冲剂为20mM。
52.如权利要求41所述的方法，其中所述光敏引发剂选自羧基曙红、乙基曙红、曙红Y、荧光素、2，2-二甲氧基，2-苯基苯乙酮、2-甲氧基，2-苯基苯乙酮、樟脑醌、玫瑰红、亚甲蓝、藻红、夹竹桃红、硫堇、核黄素和亚甲绿。
53.如权利要求52所述的方法，其中所述光敏引发剂为羧基曙红。
54.如权利要求41所述的方法，其中所述光敏聚合物溶液包括可聚合的高密度烯键化不饱和PEG和磺化的共聚单体。
55.如权利要求54所述的方法，其中所述可聚合的高密度烯键化不饱和PEG是可聚合的高密度丙烯酸化的PEG。
56.如权利要求55所述的方法，其中所述可聚合的高密度丙烯酸化的PEG的分子量为1.1kD。
57.如权利要求54所述的方法，其中所述磺化的共聚单体选自2-丙烯酰胺基-2-甲基-1-丙磺酸、乙烯基磺酸、4-苯乙烯基磺酸、3-磺基丙基丙烯酸酯、3-磺基丙基甲基丙烯酸酯和n-乙烯基马来酰亚胺磺酸酯。
58.如权利要求57所述的方法，其中所述磺化的共聚单体为2-丙烯酰胺基-2-甲基-1-丙磺酸。
59.如权利要求54所述的方法，其中所述光敏聚合物溶液还包括助催化剂，其中所述助催化剂选自三乙醇胺、三乙胺、乙醇胺、N-甲基二乙醇胺、N，N-二甲基苄胺、二苄基胺、N-苄基乙醇胺、N-异丙基苄胺、四甲基乙二胺、过硫酸钾、四甲基乙二胺、赖氨酸、鸟氨酸、组氨酸和精氨酸。
60.如权利要求59所述的方法，其中所述助催化剂是三乙醇胺。
61.如权利要求54所述的方法，其中所述光敏聚合物溶液还包括促进剂，其中所述促进剂选自N-乙烯基吡咯烷酮、2-乙烯基吡啶、1-乙烯基咪唑、9-乙烯基缩二氨基脲、9-乙烯基咔唑、丙烯酸、n-乙烯基果内酰胺、2-烯丙基-2-甲基-1，3-环戊二酮和2-羟乙基丙烯酸酯。
62.如权利要求61所述的方法，其中所述促进剂为N-乙烯基吡咯烷酮。
63.如权利要求54所述的方法，其中所述光敏聚合物溶液还包括选自天然和合成聚合物的粘度增强剂。
64.如权利要求63所述的方法，其中所述粘度增强剂选自3.5kDPEG-三醇和4kD PEG-二醇。
65.如权利要求54所述的方法，其中所述光敏聚合物溶液还包括密度调节剂。
66.如权利要求65所述的方法，其中所述密度调节剂选自Nycodenz和Ficoll。
67.如权利要求54所述的方法，其中所述光敏聚合物溶液还包括“Good”缓冲剂。
68.如权利要求67所述的方法，其中所述“Good”缓冲剂选自HEPES和MOPS。
69.如权利要求68所述的方法，其中所述“Good”缓冲剂为MOPS。
70.如权利要求54所述的方法，其中所述能量源为氩激光器。
71.如权利要求41所述的方法，其中所述生物材料选自神经、心血管、肝脏、内分泌、皮肤、造血、免疫、神经内分泌、代谢、系统和遗传材料。
72.如权利要求41所述的方法，其中所述生物材料来自兽亚纲哺乳类动物。
73.如权利要求72所述的方法，其中所述动物属于兽亚纲下属的目，其中所述目选自偶蹄目、食肉目、鲸目、奇蹄目、灵长目、长鼻目和兔形目。
74.如权利要求73所述的方法，其中所述灵长目动物为人。
75.用于封装生物材料的组合物，包括可聚合的高密度烯键化不饱和PEG和磺化的共聚单体，其中所述不饱和PEG的分子量在900到3,000道尔顿之间。
76.如权利要求75所述的组合物，其中所述可聚合的高密度烯键不饱和PEG是高密度丙烯酸化的PEG。
77.如权利要求76所述的组合物，其中所述可聚合的高密度丙烯酸化PEG的分子量为1.1kD。
78.如权利要求75所述的组合物，其中所述磺化的共聚单体选自2-丙烯酰胺基-2-甲基-1-丙磺酸、乙烯基磺酸、4-苯乙烯基磺酸、3-磺基丙基丙烯酸酯、3-磺基丙基甲基丙烯酸酯和n-乙烯基马来酰亚胺磺酸酯。
79.如权利要求78所述的组合物，其中所述磺化的共聚单体为2-丙烯酰胺基-2-甲基-1-丙磺酸。
80.如权利要求75所述的组合物还包括助催化剂，其中所述助催化剂选自三乙醇胺、三乙胺、乙醇胺、N-甲基二乙醇胺、N，N-二甲基苄胺、二苄基胺、N-苄基乙醇胺、N-异丙基苄胺、四甲基乙二胺、过硫酸钾、四甲基乙二胺、赖氨酸、鸟氨酸、组氨酸和精氨酸。
81.如权利要求80所述的组合物，其中所述助催化剂为三乙醇胺。
82.如权利要求75所述的组合物，还包括促进剂，其中所述促进剂选自N-乙烯基吡咯烷酮、2-乙烯基吡啶、1-乙烯基咪唑、9-乙烯基缩二氨基脲、9-乙烯基咔唑、丙烯酸、n-乙烯基果内酰胺、2-烯丙基-2-甲基-1，3-环戊二酮和2-羟乙基丙烯酸酯。
83.如权利要求82所述的组合物，其中所述促进剂为N-乙烯基吡咯烷酮。
84.如权利要求75所述的组合物，其中所述组合物的生物相容性分值至少为“2”。
85.如权利要求84所述的组合物，其中所述组合物在哺乳动物中是生物相容的。
86.如权利要求85所述的组合物，其中所述组合物在亚人灵长动物中是生物相容的。
87.如权利要求86所述的组合物，其中所述组合物在人体中是生物相容的。
88.如权利要求75所述的组合物，其中所述组合物具有选择通透性。
89.如权利要求88所述的组合物，其中所述选择通透性可通过对所述组合物进行加工来工程化。
90.如权利要求75所述的组合物，其中所述组合物具有分值至少为约“2”的细胞功能性许可性。
91.如权利要求90所述的组合物，其中所述组合物在哺乳动物中有细胞功能性许可性。
92.如权利要求91所述的组合物，其中所述组合物在亚人灵长动物中有细胞功能性许可性。
93.如权利要求92所述的组合物，其中所述组合物在人中有细胞功能性许可性。
94.如权利要求75所述的组合物，其中所述组合物是可生物降解的。
95.如权利要求94所述的组合物，其中所述组合物在哺乳动物中是可生物降解的。
96.如权利要求95所述的组合物，其中所述组合物在亚人灵长动物中是可生物降解的。
97.如权利要求96所述的组合物，其中所述组合物在人中是可生物降解的。
全文摘要
本发明涉及用于通过将封装的生物材料植入需要治疗的患者来治疗诸如糖尿病的疾病的组合物。公开了多种用于包被多种不同类型的生物材料的方法。所述包被材料可直接放置在该生物材料的表面，也可放置在其它包裹该生物材料的包被材料的表面上。制备所述包被材料的聚合反应的组成部分可包括天然和合成聚合物、大分子单体、促进剂、助催化剂、光敏引发剂及射线。通过将这些封装的生物材料植入包括皮下位点的多个体内区域，将其用于治疗多种不同的人类或动物疾病或病症。可对所述包被材料进行处理，以提供不同程度的生物相容性、蛋白扩散特性、强度和生物可降解性，从而在保护所述封装的生物材料不被宿主的炎症和免疫保护机制破坏的同时，使生物材料从所述封装的植入物向该宿主受体的传输最优化，而不需要对该宿主进行长期的抗炎或抗免疫治疗。
文档编号A61K35/12GK1703175SQ200380101267
公开日2005年11月30日 申请日期2003年10月14日 优先权日2002年10月11日
发明者戴维·沙普, 保罗·拉塔, 俞小洁, 越成云, 杰弗里·哈贝尔 申请人:诺沃塞尔公司