一种化合物的应用
【技术领域】
[0001] 本发明涉及医药技术领域，尤其涉及一种化合物的应用。
【背景技术】
[0002] 炎症是机体对损伤因子所发生的以防御为主的反应，炎症不仅具有抗癌作用，能 帮助机体识别并杀死癌肿细胞，炎症也可能促进癌肿发生、发展和转移。
[0003] 淫羊藿为小檗科植物淫羊藿属的植物，具有补肝肾、健筋骨、助阳益精等功效，目 前，关于淫羊藿的基础研究报道比较少。
【发明内容】
[0004] 有鉴于此，本发明所要解决的技术问题在于提供一种化合物在制备抗炎药物中的 应用；
[0005] 本发明提供了一种式（I)所示的化合物在制备抗炎的药物中的应用，
[0007] 优选的，所述式（I)所示化合物的制备方法，包括：
[0008] 1)对淫羊藿属的植物进行提取，得到清膏；
[0009] 2)将得到的清膏进行分离，得到式⑴所示化合物。
[0010] 优选的，所述步骤1)所述的提取为采用水提醇沉法提取或醇提。
[0011] 优选的，所述步骤2)具体为：
[0012] 将得到的清膏依次通过大孔吸附树脂柱色谱、硅胶柱色谱、凝胶柱色谱和制备液 相色谱分离得到式（I)所示化合物。
[0013] 优选的，所述大孔吸附树脂柱色谱中的大孔吸附树脂为D101型大孔吸附树脂、 HPD-100型大孔吸附树脂、HPD-100A型大孔吸附树脂和HPD-300型大孔吸附树脂中的一种 或几种。
[0014] 优选的，所述通过大孔吸附树脂柱色谱中色谱分离所用洗脱液为水和乙醇水溶 液。
[0015] 优选的，所述通过硅胶柱色谱中色谱分离的洗脱液为二氯甲烷和甲醇的混合液。
[0016] 优选的，所述通过凝胶柱色谱中色谱分离的洗脱液为甲醇。
[0017] 优选的，所述通过制备液相色谱分离中色谱分离的洗脱液为乙腈和水的混合溶 液。
[0018] 优选的，所述抗炎药物中的炎症为对LPS刺激RAW264. 7细胞释放IL-6引起的炎 症或对LPS刺激RAW264. 7细胞释放N0引起的炎症。
[0019] 与现有技术相比，本发明提供了一种式（I)所示结构的化合物在制备抗炎药物中 的应用，且通过细胞实验发现，本发明所述的化合物对LPS刺激RAW264. 7细胞释放IL-6以 及对LPS刺激RAW264. 7细胞释放N0具有抑制作用。
【附图说明】
[0020] 图1为本发明实施例1制得的式⑴结构的化合物的HRESI⑴MS谱图；
[0021] 图2为本发明实施例1制得的式（I)结构的化合物的1H NMR谱图；
[0022] 图3为本发明实施例1制得的式（I)结构的化合物的13C NMR谱图；
[0023] 图4为本发明实施例1制得的式⑴结构的化合物的DEPT135谱图；
[0024] 图5为本发明实施例1制得的式⑴结构的化合物的HMQC谱图；
[0025] 图6为本发明实施例1制得的式⑴结构的化合物的HMBC谱图。
【具体实施方式】
[0026] 本发明提供了一种式（I)所示化合物在制备抗炎的药物中的应用，所述抗炎药物 对LPS刺激RAW264. 7细胞释放IL-6、N0有抑制作用。
[0028] 本发明提供的式（I)所示化合物在制备抗炎药物中的应用，且通过细胞实验发 现，本发明所述的化合物对LPS刺激RAW264. 7细胞释放IL-6以及对LPS刺激RAW264. 7细 胞释放N0具有抑制作用。
[0029] 本发明还提供了一种式（I)所示化合物的制备方法，包括：
[0030] 1)对淫羊藿属的植物进行提取，得到清膏；
[0031] 2)将得到的清膏进行分离，得到式⑴所示化合物。
[0032] 按照本发明，本发明对淫羊藿属的植物进行提取，得到清膏；所述淫羊藿属的植物 优选为淫羊藿，在本发明的提取中，优选采用淫羊藿的叶；本发明对提取的方法没有特殊限 制，本领域公知的用于溶剂提取中草药成分的方法均可，本发明优选采用水体醇沉法或醇 提；
[0033] 具体的，本发明将淫羊藿属的植物粉碎过筛后与水混合，提取，将提取液浓缩得 到清膏，向得到的清膏中加入乙醇，静置，浓缩，得到醇沉清膏；其中，淫羊藿属的植物与水 的质量比为1:20,所述提取的次数为2~4次，优选为3次；所述提取的时间优选为1~ 3小时，更优选为1. 5~2小时；所述加入乙醇优选为使醇沉清膏中醇的含量为60wt%~ 90wt %，更优选为70wt %。
[0034] 按照本发明，本发明将得到的清膏进行分离，得到式（I)所示化合物；所述分离步 骤优选为：将得到的清膏依次通过大孔吸附树脂柱色谱、硅胶柱色谱、凝胶柱色谱和制备液 相色谱分离得到式（I)所示化合物；即：
[0035] 2-1)将得到的清膏通过大孔吸附树脂柱色谱分离，得到大孔树脂分离后的粗品；
[0036] 2-2)将大孔树脂分离后的粗品通过硅胶柱色谱分离，得到硅胶分离后的粗品；
[0037] 2-3)将硅胶分离后的粗品通过凝胶柱色谱分离，得到凝胶分离后的粗品；
[0038] 2-4)将凝胶分离后的粗品通过制备液相色谱分离，得到式（I)所示化合物。
[0039] 具体的，本发明中，将得到的清膏通过大孔吸附树脂柱色谱分离，得到大孔树脂分 离后的粗品；其中，所述大孔吸附树脂优选为D101型大孔吸附树脂、HPD-100型大孔吸附树 月旨、HPD-100A型大孔吸附树脂和HPD-300型大孔吸附树脂中的一种或几种，更优选为D101 型大孔吸附树脂、HPD-100型大孔吸附树脂、HPD-100A型大孔吸附树脂或HPD-300型大孔吸 附树脂；所述洗脱液优选为水和乙醇水溶液；且为了充分的分离杂质与所需化合物，本发 明优选依次采用水和乙醇与水的体积比为（65~90) : (35~10)的溶液洗脱，更优选为依 次采用水和乙醇与水的体积比为（70~85) : (30~15)的溶液洗脱；其中，水的用量优选 为3~6倍柱体积的用量，更优选为4~5倍柱体积的用量；所述乙醇水溶液的用量优选为 3~6倍柱体积的用量，更优选为4~5倍柱体积的用量；
[0040] 且为了使大孔树脂分离后的粗品纯度更高，本发明优选将依次用水和乙醇水溶液 分离后得到的粗品再次用大孔吸附树脂柱色谱分离，其中，所述大孔吸附树脂优选为D101 型大孔吸附树脂、HPD-100型大孔吸附树脂、HPD-100A型大孔吸附树脂和HPD-300型大 孔吸附树脂中的一种或几种，更优选为D101型大孔吸附树脂、HPD-100型大孔吸附树脂、 HPD-100A型大孔吸附树脂或HPD-300型大孔吸附树脂；所述分离过程采用梯度洗脱，所述 梯度洗脱的洗脱液优选为乙醇与水的体积比为（X) :(1〇〇-χ)的溶液，其中，〇<χ<95,更 优选为依次采用水，（5~10) %的乙醇水溶液，（15~20) %的乙醇水溶液、（25~30) %的 乙醇水溶液、（35~40) %的乙醇水溶液、（45~50) %的乙醇水溶液、（55~60) %的乙醇 水溶液、（65~70) %的乙醇水溶液、（75~80) %的乙醇水溶液和（90~95) %的乙醇水溶 液溶液洗脱，得到大孔树脂分离后的粗品；其中，每种洗脱液的用量均为1. 5~4倍柱体积， 更优选为2~3倍柱体积。另外需要指出的是，5%的乙醇水溶液是指，乙醇水溶液中乙醇 与水的体积比为5:95,其它百分含量的乙醇水溶液表示的含义与该解释相同。
[0041] 本发明中，将硅胶分离后的粗品通过硅胶柱色谱分离，得到硅胶分离后的粗品；其 中，所述硅胶优选为100~200目的硅胶；所述洗脱剂优选二氯甲烷甲醇溶液，其中，二氯 甲烷与甲醇的体积比优选为（0~30) :1;且为了能够更好分离杂质和所需化合物，本发明 优选依次采用二氯甲烷与甲醇的体积比为（30~20) :1、（15~10) :1、（10~5) :1、（3~ 2) :1以及0:1洗脱。
[0042] 本发明中，将大孔树脂分离后的粗品通过凝胶柱色谱分离，得到凝胶分离后的粗 品；所述凝胶柱色谱分离用凝胶优选为Sephadex LH-20 ;所述洗脱液优选为甲醇。
[0043] 本发明中，将凝胶分离后的粗品通过制备液相色谱分离，得到式（I)所示化合 物；其中，分离的流动相优选为乙腈水溶液；所述乙腈水溶液中乙腈与水的体积比优选为 (10~30) : (70~90)，更优选为（15~20) : (80~85)，最优选为18:82 ;所述流速优选为 10~30mL/min，更优选为15~25mL/min，最优选为17~20mL/min ;检测的波长优选为210 和280nm，得到化合物。
[0044] 本发明对得到的化合物进行了结构鉴定，其检测结果见图1~图6,其中，图1为 本发明实施例1制得的式（I)结构的化合物的HRESI (+)MS谱图；图2为本发明实施例1制 得的式⑴结构的化合物的1H NMR谱图；图3为本发明实施例1制得的式⑴结构的化合 物的13C NMR谱图；图4为本发明实施例1制得的式⑴结构的化合物的DEPT135谱图；图 5为本发明实施例1制得的式（I)结构的化合物的HMQC谱图；图6为本发明实施例1制得 的式（I)结构的化合物的HMBC谱图；从图可以看出，由图1可知，得到的化合物的高分辨质 谱 HR-ESI-MS m/z 为 68L 2384[M+H]+，（计算值 68L 2389, C32H41016+)，提示化合物分子量为 680;且通过图2~图6的核磁数据分析，结合4 NMR和13C NMR谱可判断该化合物为黄酮 类化合物，具体的：
[0045] 4 N