10% ;
[0055] 上述高压脉冲电场处理条件为电场强度25kV/cm、脉冲数40。
[0056] 实施例
[0057] -种蜂王胎保健酒，其制备方法包括W下步骤：
[0化引 1)将新鲜蜂王胎与离子溶液按质量比1:2.2混合，于-22°C冷冻30min，破碎，破碎 率为100%，破碎物粒径300WH，用乳酸调节破碎物pH值为7，升溫至50°C，向其中加入新鲜蜂 王胎质量0.18%的复合酶，混合均匀，于真空度-0.09MI^脱气脱腥15min，静置，继续酶解 15min得到酶解液；
[0059] 上述离子溶液为含有钢离子30mg/L、锋离子22mg/L、钟离子20mg/L、巧离子14mg/L 和儀离子llmg/L的水溶液；
[0060] 上述复合酶质量组成为:风味蛋白酶:酸性蛋白酶:脂肪酶=4:3:0.5;
[0061] 2)将酶解液置真空离屯、机中7000r/min真空离屯、lOmin，自上而下分离得到游离脂 肪、乳状液、水解液和残渣，将得到的乳状液控制溫度为55°C，添加乳状液质量0.12%的生 物破乳剂破乳40min,破乳后于eOOOr/min真空离屯、2次，间隔时间化，每次离屯、15min，合并 S次离屯、得到的水解液，取其质量0.4%的蛋清，放入揽拌机中于转速lOOOr/min揽拌 12min，直至蛋清全部成为泡沫得到蛋清泡沫，将蛋清泡沫加入合并得到的水解液中，常压 煮沸Smin，降至室溫，于7000r/min真空离屯、IOmin，收集水解液，依次经娃藻±过滤、超滤即 得透明、稳定的蜂王胎水解液；
[0062] 上述真空离屯、条件为溫度10°C、真空度-0.04MPa;
[0063] 上述生物破乳剂的质量组成为:糖脂类:脂肤类:胞壁结合类=6:5:3;
[0064] 3)取蜂王胎水解液质量3倍的基酒，向其中加入过氧乙酸溶液，使过氧乙酸浓度为 480ppm，均匀混合，于功率400W，频率40K化条件下进行超声波处理IOmin，经处理的基酒与 蜂王胎水解液均匀混合，控制混合料液溫度为35°C，然后通过连续式高压脉冲处理室处理， 静置、过滤即得蜂王胎保健酒；
[00化]上述基酒为60度白酒；
[0066] 上述过氧乙酸溶液的质量百分比浓度为30% ;
[0067] 上述高压脉冲电场处理条件为电场强度30kV/cm、脉冲数50。
[006引实施例四：
[0069] -种雄蜂蛹保健酒，其制备方法包括W下步骤：
[0070] 1)将新鲜雄蜂蛹与离子溶液按质量比1:2.0混合，于-19°c冷冻23min，破碎，破碎 率为98 %，破碎物粒径230WH，用乳酸调节破碎物pH值为5.5，升溫至43 °C，向其中加入新鲜 雄蜂蛹质量0.12%的复合酶，混合均匀，于真空度-0.07MPa脱气脱腥12min，静置，继续酶解 12min得到酶解液；
[0071] 上述离子溶液为含有钢离子27mg/L、锋离子19mg/L、钟离子17mg/L、巧离子12mg/L 和儀离子9mg/L的水溶液；
[0072] 上述复合酶质量组成为:风味蛋白酶:酸性蛋白酶:脂肪酶=2:1:0.3;
[0073] 2)将酶解液置真空离屯、机中5500r/min真空离屯、8min，自上而下分离得到游离脂 肪、乳状液、水解液和残渣，将得到的乳状液控制溫度为48 °C，添加乳状液质量0.09 %的生 物破乳剂破乳25min,破乳后于4500;r/min真空离屯、2次，间隔时间1.化，每次离屯、12min，合 并S次离屯、得到的水解液，取其质量0.2%的蛋清，放入揽拌机中于转速85化/min揽拌 lOmin，直至蛋清全部成为泡沫得到蛋清泡沫，将蛋清泡沫加入合并得到的水解液中，常压 煮沸6min，降至室溫，于5500r/min真空离屯、Smin，收集水解液，依次经娃藻±过滤、超滤即 得透明、稳定的雄蜂蛹水解液；
[0074] 上真空离屯、条件为溫度8°C、真空度-0.02MPa;
[0075] 上述生物破乳剂为脂肤类生物破乳剂；
[0076] 3)取雄蜂蛹水解液质量1倍的基酒，向其中加入过氧乙酸溶液，使过氧乙酸浓度为 420ppm，均匀混合，于功率250W，频率30K化条件下进行超声波处理7min，经处理的基酒与雄 蜂蛹水解液均匀混合，控制混合料液溫度为28°C，然后通过连续式高压脉冲处理室处理，静 置、过滤即得雄蜂蛹保健酒；
[0077] 上述基酒为45度白酒；
[0078] 上述过氧乙酸溶液的质量百分比浓度为15% ;
[0079] 上述高压脉冲电场处理条件为电场强度27kV/cm、脉冲数43。
[0080] 实施例五：
[0081] -种雄蜂蛹保健酒，其制备方法包括W下步骤：
[0082] 1)将新鲜雄蜂蛹与离子溶液按质量比1:1.7混合，于-21°C冷冻28min，破碎，破碎 率为99%，破碎物粒径280WH，用乳酸调节破碎物pH值为6.5,升溫至48°C，向其中加入新鲜 雄蜂蛹质量0.16%的复合酶，混合均匀，于真空度-0.09M时说气脱腥14min，静置，继续酶解 14min得到酶解液；
[0083] 上述离子溶液为含有钢离子29mg/L、锋离子21mg/L、钟离子19mg/L、巧离子14mg/L 和儀离子llmg/L的水溶液；
[0084] 上述复合酶质量组成为:风味蛋白酶:酸性蛋白酶:脂肪酶=3.5:2.5:0.4;
[0085] 2)将酶解液置真空离屯、机中6500r/min真空离屯、lOmin，自上而下分离得到游离脂 肪、乳状液、水解液和残渣，将得到的乳状液控制溫度为53°C，添加乳状液质量0.11%的生 物破乳剂破乳35min,破乳后于5500;r/min真空离屯、2次，间隔时间2.化，每次离屯、14min，合 并S次离屯、得到的水解液，取其质量0.4%的蛋清，放入揽拌机中于转速95化/min揽拌 12min，直至蛋清全部成为泡沫得到蛋清泡沫，将蛋清泡沫加入合并得到的水解液中，常压 煮沸7min，降至室溫，于6500r/min真空离屯、IOmin，收集水解液，依次经娃藻±过滤、超滤即 得透明、稳定的雄蜂蛹水解液；
[0086] 上述真空离屯、条件为溫度9°C、真空度-0.04MPa;
[0087] 上述生物破乳剂为胞壁结合类生物破乳剂；
[0088] 3)取雄蜂蛹水解液质量3倍的基酒，向其中加入过氧乙酸溶液，使过氧乙酸浓度为 460ppm，均匀混合，于功率350W，频率40K化条件下进行超声波处理9min，经处理的基酒与雄 蜂蛹水解液均匀混合，控制混合料液溫度为33°C，然后通过连续式高压脉冲处理室处理，静 置、过滤即得雄蜂蛹保健酒；
[0089] 上述基酒为55度白酒；
[0090] 上述过氧乙酸溶液的质量百分比浓度为25% ;
[0091] 上述高压脉冲电场处理条件为电场强度29kV/cm、脉冲数48。
[0092] 实施例六本发明蜂王胎保健酒的感官品评试验
[0093] 邀请24名人员对本发明实施例1制备的蜂王胎保健酒与市售两种同类相同生产日 期的蜂王胎保健酒进行品评，感官打分，其中专业和非专业人员各12名，专业人员青年、中 年、老年各4名，男女各半，非专业人员少年、青年、中年、老年各3名，男女各半;打分包括外 观（20分）、质地(25分）、风味（30分）、口感(25分）四个方面，打分人员独立进行，互不影响， W保证品评结果准确。对品评结果进行了统计，均分值取近似值，保留整数，具体见表1:
[0094] 表1:感官品评统计结果
[0095]
[0
[0097J 注：问一打内称小问小与芋巧表不羞弁显者（P<0.05)，称小问大与芋巧表不羞弁 极显著(P<0.01)，标有相同字母表示差异不显著(P>0.05)。
[0098] W上结果表明，本发明制备的蜂王胎保健酒从外观、质地、风味和口感任何一方面 都要明显优于市售蜂王胎保健酒，特别是外观澄明度、风味和口感极好，同时也适合不同年 龄段、不同消费层次的消费者食用。
[0099] 需要说明的是:本发明实施例2-3制备的蜂王胎保健酒同样具有上述实验效果，各 实施例之间及与上述实验效果差异性不大。
[0100] 实施例屯本发明蜂王胎保健酒对机体免疫力的影响
[0101] 1实验目的
[0102] 通过运动耐力测试(小鼠游泳试验），验证本发明蜂王胎保健酒的提高免疫力、抗 疲劳作用。
[0103] 2实验材料与试剂
[0104] 2.1供试药物：
[0105] 市售蜂王胎保健酒(Gl);市售蜂王胎保健酒(G2);本发明实施例1-3制备的蜂王胎 保健酒(G3-G5)。
[0106] 2.2 试剂：
[0107] 肝/肌糖原测试盒，购自南京建成生物制品研究所;浓硫酸(AR),南京化学试剂有 限公司；生理盐水，山东长富洁晶药业有限公司。
[0108] 3.实验动物
[0109] ICR小鼠，方，清洁级，体重18-22g，由宁夏医科大学比较医学中屯、提供，实验期间小 鼠自由饮食。
[0110] 4.主要仪器
[0111] 侣制游泳箱（50cm X 50cm X 40cm)，铅丝，低溫高速离屯、机：5804R型，Eppen化of公 司；水浴锅:DK-S26型，上海精宏实验设备有限公司；电子称:BS224S型，Sartorius公司；秒 表，溫度计
[0112] 5.实验分组
[0113] 5.1剂量分组及受试样品给予时间随机将小鼠分为6组，每组10只，第1组至第5组 分别给Gl~G5的药物，第6组为空白对照组，给予等体积的双蒸水，每组每日均灌胃1次，灌 胃体积为0.2ml/10g，连续给予受试样品30天。
[0114] 5.2样品配制第1组至第7组:称取2.25g药物样品，用蒸馈水配至150ml;空白对照 组:双蒸水150ml。
[0115] 6.实验方法
[0116] 6.1负重游泳实验末次给药30min后，置小鼠于游泳箱中，水深不少于30cm，水溫25 ± TC,鼠尾根部负荷5%体重的铅皮，记录小鼠游泳开始至死亡的时间，作为小鼠游泳时 间。
[0117] 6.2小鼠血清尿素测定末次给药3〇111