一种普鲁兰酶产酶菌株及提高其产酶能力的方法

文档序号:8407537阅读:1016来源:国知局
一种普鲁兰酶产酶菌株及提高其产酶能力的方法
【技术领域】
[0001] 本发明属于生物工程技术领域,具体涉及一种普鲁兰酶产酶菌株、提高其产酶能 力的方法及所构建的新的高产普鲁兰酶工程菌株。
【背景技术】
[0002] 自然界和农业生产形成的糖质原料绝大多数是以多糖形式存在的,包括淀粉质原 料(玉米、小麦、薯类等)、木质纤维素(秸杆、林木等)和壳聚糖(昆虫、虾蟹外壳)等。由于种 种原因,目前能够被有效利用的主要是淀粉质原料。我国食品和发酵行业每年耗用玉米、大 米、小麦和薯类等淀粉质原料达5000余万吨。
[0003] 淀粉质原料用于食品与发酵生产时往往需要经过酶解生成葡萄糖。淀粉酶解所用 的酶有α -淀粉酶、糖化酶、普鲁兰酶、β -淀粉酶和异淀粉酶等。其中α -淀粉酶、糖化酶只 能水解淀粉中直链部分的α -1,4糖苷键,不能水解淀粉中支链淀粉分支点中的α -1,6-糖 苷键。异淀粉酶虽然能水解分支淀粉分支点的α-1,6糖苷键,但是不能水解由2~3个葡 萄糖残基构成的侧枝。普鲁兰酶不仅能够专一性地水解支链淀粉分支点中的α-1,6糖苷 键,并能将最小单位的支链分解,最大限度的利用淀粉原料。因此,在淀粉糖化阶段普鲁兰 酶与糖化酶一起使用,可大幅度提高液化后淀粉的水解速度,降低糖化酶用量,缩短糖化时 间,提高淀粉原料利用率,节能减排,减污增效,对提高食品和发酵工业生产技术水平和经 济社会效益具有非常重要的意义。
[0004] 现有技术中,我国普鲁兰酶市场被少数大型跨国公司所垄断,酶的价格昂贵,难以 满足国内食品与发酵等行业的迫切需要。尽管我国在普鲁兰酶产生菌资源筛选和分子改 造及基因工程等方面的研宄取得了一定的进展,但无论是从自然界筛选的菌株还是工程菌 株,均存在酶活力低、酶学性质差等问题,至今尚未实现工业化生产,因而尚需进一步探索 研宄。

【发明内容】

[0005] 本发明主要目的在于提供一种普鲁兰酶产酶菌株,同时提供了一种提高普鲁兰酶 产酶菌株产酶能力的方法,该方法通过将枯草芽孢杆菌Ρ43启动子转化进入普鲁兰酶产酶 原始菌株,即可实现普鲁兰酶酶活和相关基因表达量的大幅提高。
[0006] 本发明的技术方案如下。
[0007] -种鲁兰酶产酶菌株,该菌株名称为变栖克雷伯氏菌ΗΝ7, variicola HN7,已于2015年1月14日保藏于中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心,地址: 北京市朝阳区北辰西路1号院3号,保藏编号为:CGMCC NO. 10357。
[0008] -种提高鲁兰酶产酶菌株产酶能力的方法,通过在菌株中转入枯草芽孢杆菌P43 启动子以提高其产酶能力,具体包括以下步骤: (1)提取DNA,将枯草芽孢杆菌进行扩增培养,然后离心收集菌体,按照Ezup柱式细菌 基因组DNA提取试剂盒的说明书提取所培养菌体的DNA ; (2) PCR扩增,PCR分别扩增四环素抗性基因 Tfei上游片段、四环素抗性基因 Tfei下游 片段、枯草芽孢杆菌P43启动子,具体如下: PCR扩增四环素抗性基因 Tfei上游片段时,引物序列设计如下: 上游片段的引物 Tet-Fl :5' -GGGGGATGATTGCGCCCCGGAAAGCAAAAATATCTAATTAAATTCTCA TGTTTGACAGCTTATCATCG-3', 引物 Tet-Rl :5' -GCCGAAAATGACCCAGAGCGCTGCCGGCACCTGTCCTACGAGTTGCATGATAAAGAAG ACAGTC-3' ; PCR扩增时,以pBR322质粒为模板,扩增产物记录为第一片段,4°C保存备用; PCR扩增四环素抗性基因 Tfei下游片段时,引物序列设计如下: 下游片段引物 Tet-F2 : 5' -CGTAGGACAGGTGCCGGCAGCGCTCTGGGTCAITTTCGGCGAGGACCGC TTTCGCTGGAG-3', 引物 Tet-R2 :5' -CCTGCATGCACGTCGACACGAGATGCGCCGCGT-3' ; PCR扩增时,以pBR322质粒为模板,扩增产物记录为第二片段,4°C保存备用; PCR扩增枯草芽孢杆菌P43启动子时,引物序列设计如下: 上游引物为 PF3 :5' -ACGCGGCGCATCTCGTGTCGACGTGCATGCAGG-3', 下游引物为 PR3 :5' -TCCAAGGTAATAGGGCATGACAGGTATATCTGAGCATCGATATAATGGTACCGCT ATCACTT-3' ; PCR扩增时,以枯草芽孢杆菌基因组DNA为模板,扩增产物记录为第三片段,4°C保存备 用; (3) PCR融合,将步骤(2)中分别扩增的序列片段采用融合PCR技术进行融合,具体顺序 为:第一轮PCR将第一片段与第二片段进行融合,第二轮PCR时加入第三片段,第三轮PCR 以步骤(2)中的Tet-Fl与pR3作为引物序列进行整体扩增; 切胶纯化后获得同源重组片段; (4) 电击转化,将步骤(3)纯化并验证序列正确的同源重组片段采用电击转化方式转化 普鲁兰酶产酶原始菌株,例如变栖克雷伯氏菌HN7 rariicoh HN7),电击转 化液转移至新鲜的LB培养基,复苏后均匀的涂在含有四环素的抗性LB平板中培养过夜; (5) 转化子筛选鉴定,挑选步骤(4)中四环素抗性LB平板中阳性单克隆菌落,提取DNA, PCR鉴定,鉴定正确菌株即可用于普鲁兰酶发酵生产。
[0009] 采用上述方法所构建的高产普鲁兰酶工程菌,普鲁兰酶产酶原始菌株为变栖克雷 伯氏菌 HN7 (HN7 )。
[0010] 现有技术中,针对普鲁兰酶工程菌筛选工作,已有较多实践,例如克雷伯氏菌Z-13 rariico/a)(王明道等,一株产普鲁兰酶细菌的分离鉴定及其发酵条件优 化,信阳师范学院学报:自然科学版,2014, 27 (4) :569~573),其原始产酶能力仅为5. 7 U/ mL,尚不能用于生产实践;而本发明所提供的变栖克雷伯氏菌HN7 HN7),其原始产酶能力已可达7. 2 U/mL,进一步改进提高其产酶能力后即可用于生产实践。 [0011] 现有技术中,采用基因工程构建高产普鲁兰酶工程菌株时,一般通过质粒载体方 式将普鲁兰酶转化进入新的微生物表达系统,然后通过诱导表达、纯化等方式获得普鲁兰 酶,这种方法存在外源表达、提取、纯化操作复杂等弊端。而本发明通过基因工程技术将枯 草芽孢杆菌P43启动子转化进入产普鲁兰酶原始菌株,操作方式易于实现。由于普鲁兰酶 得以在本体内得到表达,合成和分泌途径没有发生改变,不会发生质粒丢失现象,因而遗传 稳定性高;而且本发明通过以变栖克雷伯氏菌HN7 (Z/e/wieBa rariicoh HN7)作为原 始出发菌株进行了具体验证,表明普鲁兰酶的酶活和酶表达量具有较好的提高,因而具有 较好的推广应用价值。
【附图说明】
[0012] 图1为初步筛选过程中所筛选出的变栖克雷伯氏菌HN7 (菌种鉴定后命名为变栖 克雷伯氏菌HN7,鉴定前仅标记为代号HN7)的培养图; 图2所筛选出的变栖克雷伯氏菌HN7 (菌种鉴定后命名为变栖克雷伯氏菌HN7,鉴定前 仅标记为代号HN7)的HN 7菌落形态(图A)及革兰氏染色图(图B); 图3为PCR扩增四环素抗性基因 Tfei的上、下游片段和枯草芽孢杆菌P43启动子片段 产物电泳图谱,其中1为四环素抗性基因 Tfei的上游片段;2为四环素抗性基因 Tfei的下游 片段;3为枯草芽孢杆菌P43启动子片段; 图4为PCR融合后同源重组片段,其中1为同源重组片段; 图5为同源重组片段转化克雷伯氏菌后重新PCR扩增出的同源重组片段的PCR电泳检 测结果; 图6为同源重组片段转化克雷伯氏菌后重新PCR扩增出同源重组片段部分序列及变栖 克雷伯氏菌上游基因组序列的PCR检测结果; 图7为同源重组片段转化克雷伯氏菌后重新PCR扩增出同源重组片段部分序列及变栖 克雷伯氏菌下游基因组序列的PCR检测结果。
【具体实施方式】
[0013] 在介绍具体实施例前,首先对实施例中所用到的部分原料和试剂简要介绍说明如 下,未说明内容以现有技术中常用原料和试剂为准。
[0014] 菌株与质粒载体 本发明所构建的普鲁兰酶工程菌以变栖克雷伯氏菌HN7 (Klebsiella variicola HN7)为基础,该菌从淀粉生产厂附近土壤中筛选获得,目前已于2015年1月14日保藏于中 国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心(北京),保藏编号为:CGMCC NO. 10357。
[0015] 枯草芽孢杆菌1. 4255,来自于中国普通微生物菌种保藏管理中心。
[0016] PBR322质粒,购自于宝生物工程(大连)有限公司。
[0017] 微生物培养所用培养基 变栖克雷伯氏菌HN7 (Klebsiella variicola HN7)保藏米用斜面保藏方式,斜面 保藏培养基(w/v)配方如下:糯米粉1.0%,蛋白胨0.5%,酵母膏0.5%,KH2PO4 0.05%, MgSO4. 7H20 0· 01%,KH2PO4 0· 05%,琼脂 2. 0%,pH 6. 0。
[0018] 变栖克雷伯氏菌HN7 (Klebsiella variicola HN7)及改造后菌株扩增采用种 子培养基进行扩增,种子培养基(w/v)配方如下:蛋白胨1. 0%,牛肉膏0. 3%,NaCl 0. 5%,pH 6. 0〇
[0019] 所构建的新的高产普鲁兰酶工程菌及对照菌株(即原始出发菌株)产酶采用产 酶培养基,产酶培养基(w/v)配方如下:糯米粉0. 5%,蛋白胨0. 5%,KH2PO4 0. 05%,MgSO4 ? 7H20 0· 01%,pH 自然。
[0020] 筛选菌株时采用LB培养基,LB培养基(w/v)配方如下:胰蛋白胨1%,酵母提取物 0. 5 %,NaCl 1 % (固体培养基含1.5%琼脂粉)。
[0021] 部分试剂与酶 四环素、3, 5-二硝基水杨酸(DNS)、DNA凝胶回收试剂盒、Ezup柱式细菌基因组DNA提 取试剂盒购自上海生工生物工程有限公司; 普鲁兰多糖为东京化成工业株式会社产品。
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