一种微生物生产氧代色烯苯甲酸的方法
【专利摘要】一种微生物生产氧代色烯苯甲酸的方法，具体是一种解脂假丝酵母生物催化制备医药中间体2?羟基?5?（3,5,7?3羟基?4?氧代?4H?色烯）?2?苯甲酸的方法，微生物发酵液中加入底物，进行生物催化反应，产品收率高，反应条件温和，常温、常压操作，解决了现有方法生产条件苛刻的困难。
【专利说明】
一种微生物生产氧代色烯苯甲酸的方法
技术领域
[0001] 本发明属于制药工程技术领域，特别涉及到解脂假丝酵母生物催化制备医药中间 体2-羟基-5-(3，5，7-3羟基-4-氧代-4H-色烯)-2-苯甲酸的技术。
【背景技术】
[0002] 生物催化具有催化效率高、选择性强、条件温和、环境友好等突出优点，是可持续 发展过程中替代和拓展传统有机化学合成的重要方法。其中微生物催化是生物催化最具吸 引力的应用领域之一，在工业生物催化中一直扮演着重要角色。
[0003] 芳烃的羧化反应是一类重要的反应，其产物为芳烃羟基羧酸，是重要的药物合成 起始原料。但是，现在的生产采用传统的化学合成，用芳烃与C0 2反应，反应压力高达lOMPa， 温度高达140-380°C，反应选择性差，副产物多。采用微生物催化，则可能改变这种状况。采 用微生物催化，可以在常温、常压下反应生产芳烃羟基羧酸，条件温和，选择性高，副反应 少，产率高。
[0004] 本发明将采用微生物催化反应，生产芳烃羟基羧酸:2-羟基-5-(3，5，7-3羟基-4-氧代-4H-色烯)-2-苯甲酸。
【发明内容】
[0005] 本发明采用解脂假丝酵母催化制备2-羟基-5-(3,5,7-3羟基-4-氧代-4H-色烯)-2_苯甲酸，反应式如下：
底物3，5，7-3羟基-2-(4-酚)-4-酮（1)经解脂假丝酵母催化反应，得到产物2-羟基-5_ (3，5，7-3羟基-4-氧代-4H-色烯)-2-苯甲酸（2)。有多种微生物可以催化此反应，经过大量 实验筛选，最终确定采用解脂假丝酵母作为催化剂，因为其催化反应的效果最好，副产物极 少，反应收率高。
[0006] 许多酵母都可以进行生物催化此反应，然而，其效果不同，相差很大，经实验，本发 明选用解脂假丝酵母菌株为DSM-70561，其催化反应效果最佳。
[0007] 由于底物溶解度较低，所以，加入表面活性剂以增加底物的溶解度。尽管表面活性 剂增加了底物溶解度，底物仍然不能很好溶解，属于液-液2相反应，底物、产物的相间传质 为反应的限制环节，所以，还需采取措施，以提高反应速度。增加非均相反应的反应界面，是 提高非均相反应的有效措施之一。加入表面活性剂后，在强烈搅拌下，反应液成为乳液，使 得催化反应界面大幅度增加，从而大幅度提高反应速度。特别是，加入的表面活性剂，必须 生物相容，不抑制微生物的催化活性，所以，表面活性剂种类和浓度的选择，是非常重要的。 大量实验表明，对于本反应，加入山梨坦单月桂酸酯22-25g/L是最佳的。
[0008] 反应结束后，用有机溶剂萃取产物。需要破乳，有多种方法可以破乳，包括盐析法： 加入氯化钠、硫酸铵或氯化钙、氯化镁、硫酸钙、硫酸镁;凝聚法:加入聚合氯化铝、明矾等； 或者将上述2类混合加入;加热等。不同产物，所用的方法不同，实验表明，对于本反应，加入 1.2%的硫酸镁+0.13%的明矾是最佳的。
[0009] 羧化反应中，采用NaHC〇3提供C02,实际上，有多种物质可以提供C02,但是，通过大 量实验，结果表明，对于本发明，使用NaHC0 3是最佳的。由于加入NaHC03会使反应液的pH升 高，而适宜的PH，对微生物催化反应致关重要，所以，不能一次加入，必须采用流加方式加入 NaHC03。然而，即使流加 NaHC03，反应液的pH仍然升高，所以，还必须采取措施，维持反应液处 于适宜的PH，使微生物能够正常发挥生物催化作用。通过大量实验表明，流加盐酸水溶液是 适宜的方法，调节NaHC0 3与盐酸水溶液的流加速率，可以使溶液的pH处于最佳范围，使生物 催化反应正常进行。
[0010] 可以明显看出，本发明所涉及的微生物菌株选择、表面活性剂选择、破乳剂选择、 C02供体选择，还有反应温度，反应时间，反应pH，底物浓度，生物催化反应液成分确定等，众 多因素均需考虑，并且，它们相互影响。特别是，需要从实验室小试、中试，直到工业规模反 应，更是大幅度增加了工作难度、工作量。所以，实验设计至管重要，如此多的因素，生物催 化反应动力学理论分析和实验工作量巨大。
[0011] 培养介质： 1、种子培养基成份为：酵母提取物10 g/L，葡萄糖20 g/L，蛋白胨20 g/L，pH6.5;配 制固体培养基时添加15g/L的琼脂粉。
[0012] 2、培养液成份：酵母浸膏8-9g/L，葡萄糖22-25 g/L，麦芽浸膏28-31 g/L，豆油8-9g/L，硫酸铵0.2-0.25g/L，硫酸镁0.3-0.4g/L，磷酸二氧钾1.8-2.3g/L;固体培养基成份： 在液体培养基中加入2%的琼脂粉；pH6.0。
[0013] 3、固体培养基成份：在液体培养基中加入2%的琼脂粉。
[0014]微生物发酵液制备。解脂假丝酵母DSM-70561经斜面、摇瓶、种子罐培养得到种子 液;发酵罐加入培养液，121°C高压灭菌30分钟，冷却至35-36Γ，将解脂假丝酵母种子液接 种至发酵罐，接种比例为9.5-10%，通气比为1.1-1.3VAV·分钟），35-36°C培养37-40小时， 发酵液中湿酵母细胞浓度为90-95g/L，此发酵液用作生物催化反应催化剂。
[0015] 用HPLC测产品收率及纯度，C18柱，紫外检测器，波长254nm，流动相为pH3的磷酸缓 冲液：甲醇=90:10。
[0016] 生物催化反应:发酵罐，即制备微生物发酵液发酵罐，在其发酵液中加入底物3，5， 7-3羟基-2-(4-酸)-4-酮，使浓度为100-105g/L，补加以下成份，使浓度为：山梨坦单月桂 酸酯 22-25g/L，蔗糖 25-28g/L、麦芽糖 30-35g/L、燕麦粉20-22g/L、豆油 10-12g/L，121°C 高 压灭菌30分钟;冷却至37-38 °C时，搅拌乳化，进行生物催化反应，反应时间为42-46小时;反 应开始时，立即流加浓度为4.5 %的NaHC03水溶液，同时流加浓度为0.9 %的盐酸水溶液，调 节NaHC03与盐酸水溶液的流加速率，维持pH6.1-6.3，所加入的物料均经过灭菌处理;通气 比为0.5-0.55V/V·分钟，即每分钟通气量为0.5-0.55倍反应液体积，反应结束后，破乳，用 0.2倍反应液体积乙酸乙酯萃取反应液萃取3次，合并有机相，有机相蒸出乙酸乙酯，得到产 物2-羟基-5-(3，5，7-3羟基-4-氧代-4H-色烯)-2-苯甲酸，反应转化率98.2-99.3%，产品收 率96.1-97.3%。
[0017] 实施例！ 培养液成份:酵母浸膏8_9g/L，葡萄糖22-25 g/L，麦芽浸膏28-31 g/L，豆油8-9g/L，硫 酸铵0.2-0.25g/L，硫酸镁0.3-0.4g/L，磷酸二氧钾1.8-2.3g/L;固体培养基成份：在液体 培养基中加入2%的琼脂粉；pH6.0。
[0018] 微生物发酵液制备。解脂假丝酵母DSM-70561经斜面、摇瓶、种子罐培养得到种子 液;发酵罐加入培养液，121°C高压灭菌30分钟，冷却至35-36Γ，将解脂假丝酵母种子液接 种至发酵罐，接种比例为9.5-10%，通气比为1.1-1.3VAV·分钟），35-36°C培养37-40小时， 发酵液中湿酵母细胞浓度为90-95g/L，此发酵液用作生物催化反应催化剂。
[0019] 生物催化反应：15L发酵罐，即制备微生物发酵液发酵罐，在其发酵液中加入底物 3，5，7-3羟基-2-(4-酚)-4-酮，使浓度为100-105g/L，补加以下成份，使浓度为：山梨坦单 月桂酸酯 22-25g/L，蔗糖 25-28g/L、麦芽糖 30-35g/L、燕麦粉 20-22g/L、豆油 10-12g/L，121 °C高压灭菌30分钟；冷却至37-38 °C时，搅拌乳化，进行生物催化反应，反应时间为42-46小 时;反应开始时，立即流加浓度为4.5 %的NaHC03水溶液，同时流加浓度为0.9 %的盐酸水溶 液，调节NaHC03与盐酸水溶液的流加速率，维持pH6.1-6.3，所加入的物料均经过灭菌处理； 通气比为0.5-0.55V/V ·分钟，即每分钟通气量为0.5-0.55倍反应液体积，反应结束后，破 乳，用0.2倍反应液体积乙酸乙酯萃取反应液萃取3次，合并有机相，有机相蒸出乙酸乙酯， 得到产物2-羟基-5-(3，5，7-3羟基-4-氧代-4H-色烯)-2-苯甲酸，反应转化率98.2-99.3 %， 产品收率96.1-97.3%。
[0020] 实施例2 培养液成份及微生物发酵液制备同实施例1。
[0021 ]生物催化反应:150L发酵罐，即制备微生物发酵液发酵罐，在其发酵液中加入底物 3，5，7-3羟基-2-(4-酚)-4-酮，使浓度为100-105g/L，补加以下成份，使浓度为：山梨坦单 月桂酸酯 22-25g/L，蔗糖 25-28g/L、麦芽糖 30-35g/L、燕麦粉 20-22g/L、豆油 10-12g/L，121 °C高压灭菌30分钟；冷却至37-38 °C时，搅拌乳化，进行生物催化反应，反应时间为42-46小 时;反应开始时，立即流加浓度为4.5 %的NaHC03水溶液，同时流加浓度为0.9 %的盐酸水溶 液，调节NaHC03与盐酸水溶液的流加速率，维持pH6.1-6.3，所加入的物料均经过灭菌处理； 通气比为0.5-0.55V/V ·分钟，即每分钟通气量为0.5-0.55倍反应液体积，反应结束后，破 乳，分别用0.2倍、0.15倍、0.1倍反应液体积的乙酸乙酯萃取反应液各萃取1次，合并有机 相，蒸出乙酸乙酯，得到产物2-羟基-5-(3,5,7-3羟基-4-氧代-4H-色烯)-2-苯甲酸，反应转 化率98.2 %，产品收率96.1 %。
[0022] 实施例3 培养液成份及微生物发酵液制备同实施例1。
[0023]生物催化反应：1000L发酵罐，即制备微生物发酵液发酵罐，在其发酵液中加入底 物3,5,7-3羟基-2-(4-酚)-4-酮，使浓度为100-105g/L，补加以下成份，使浓度为：山梨坦 单月桂酸酯22-25g/L，蔗糖25-28g/L、麦芽糖30-35g/L、燕麦粉20-22g/L、豆油10-12g/L， 121°C高压灭菌30分钟;冷却至37-38 °C时，搅拌乳化，进行生物催化反应，反应时间为42-46 小时；反应开始时，立即流加浓度为4.5 %的NaHC03水溶液，同时流加浓度为0.9 %的盐酸水 溶液，调节NaHC03与盐酸水溶液的流加速率，维持pH6.1-6.3，所加入的物料均经过灭菌处 理;通气比为0.5-0.55V/V·分钟，即每分钟通气量为0.5-0.55倍反应液体积，反应结束后， 破乳，分别用0.2倍、0.15倍、0.1倍反应液体积的乙酸乙酯萃取反应液各萃取1次，合并有机 相，蒸出乙酸乙酯，得到产物2-羟基-5-(3,5,7-3羟基-4-氧代-4H-色烯)-2-苯甲酸，反应转 化率98.9 %，产品收率96.7 %。
[0024] 实施例4 培养液成份及微生物发酵液制备同实施例1。
[0025]生物催化反应:15000L发酵罐，即制备微生物发酵液发酵罐，在其发酵液中加入底 物3,5,7-3羟基-2-(4-酚)-4-酮，使浓度为100-105g/L，补加以下成份，使浓度为：山梨坦 单月桂酸酯22-25g/L，蔗糖25-28g/L、麦芽糖30-35g/L、燕麦粉20-22g/L、豆油10-12g/L， 121°C高压灭菌30分钟;冷却至37-38 °C时，搅拌乳化，进行生物催化反应，反应时间为42-46 小时；反应开始时，立即流加浓度为4.5 %的NaHC03水溶液，同时流加浓度为0.9 %的盐酸水 溶液，调节NaHC03与盐酸水溶液的流加速率，维持pH6.1-6.3，所加入的物料均经过灭菌处 理;通气比为0.5-0.55V/V·分钟，即每分钟通气量为0.5-0.55倍反应液体积，反应结束后， 破乳，破乳，用逆流萃取机萃取，萃取液为乙酸乙酯，蒸出有机相的乙酸乙酯，蒸出乙酸乙 酯，得到产物2-羟基-5-(3，5，7-3羟基-4-氧代-4H-色烯)-2-苯甲酸，反应转化率99.3 %，产 品收率97.3%。
【主权项】
1. 一种解脂假丝酵母生物催化制备2-羟基-5-( 3，5，7-3羟基-4-氧代-4H-色烯)-2-苯 甲酸的方法，其特征在于解脂假丝酵母发酵液中加入底物3，5，7-3羟基-2-(4-酚)-4-酮， 使浓度为l〇〇_l〇5g/L，补加以下成份，使浓度为：山梨坦单月桂酸酯22-25g/L，蔗糖25-28g/ L、麦芽糖30-35g/L、燕麦粉20-22g/L、豆油10-12g/L，121°C高压灭菌30分钟;冷却至37-38 °(：时，搅拌乳化，进行生物催化反应，反应时间为42-46小时;反应开始时，立即流加浓度为 4.5 %的NaHCO3水溶液，同时流加浓度为0.9 %的盐酸水溶液，调节NaHCO3与盐酸水溶液的流 加速率，维持PH6.1-6.3，所加入的物料均经过灭菌处理;通气比为0.5-0.55V/V ·分钟，即每 分钟通气量为0.5-0.55倍反应液体积，反应结束后，破乳，用乙酸乙酯萃取反应液，有机相 蒸出乙酸乙酯，得到产物2-羟基-5-(3,5,7-3羟基-4-氧代-4H-色烯)-2-苯甲酸，反应转化 率98.2-99.3%，产品收率96.1-97.3% ;所述发酵液由培养液发酵微生物得到。2. 权利要求1所述的方法，其特征在于解脂假丝酵母发酵液制备过程如下:解脂假丝酵 母经斜面、摇瓶、种子罐培养得到种子液;发酵罐加入培养液，121°C高压灭菌30分钟，冷却 至35-36Γ，将解脂假丝酵母种子液接种至发酵罐，接种比例为9.5-10%，通气比为1.1-1.3VAV·分钟），35-36°C培养37-40小时，发酵液中湿酵母细胞浓度为90-95g/L，此发酵液 用作生物催化反应催化剂;培养液成份:酵母浸膏8-9g/L，葡萄糖22-25 g/L，麦芽浸膏28-31 g/L，豆油8-9g/L，硫酸铵0.2-0.25g/L，硫酸镁0.3-0.4g/L，磷酸二氧钾 1.8-2.3g/L;固 体培养基成份：在液体培养基中加入2%的琼脂粉；pH6.0。
【文档编号】C12R1/73GK105950680SQ201610464848
【公开日】2016年9月21日
【申请日】2016年6月24日
【发明人】秦敬如, 张媛媛, 刘均洪
【申请人】青岛科技大学