三结构域蛋白8(trim8)抑制剂在抑制心肌肥厚中的功能及应用

文档序号:9430825阅读:938来源:国知局
三结构域蛋白8(trim8)抑制剂在抑制心肌肥厚中的功能及应用
【专利说明】H结构域蛋白8 (TRIM8)抑制剂在抑制心肌肥厚中的功能 及应用
[0001]
技术领域
[0002] 本发明属于基因的功能与应用领域,特别设及一种S结构域蛋白8 (TRIMS)抑制 剂在抑制屯、肌肥厚中的功能及应用。
【背景技术】
[0003] 屯、肌肥厚是屯、脏为适应各种长期过度的压力和/或容积负荷刺激而产生的屯、肌 细胞体积增大,重量增加。屯、肌肥厚中屯、肌细胞由于蛋白合成增加,引起体积增大、直径或 长度增加,肌节数量增多。同时,屯、肌细胞表型也由成熟型向胚胎型转化,并伴随屯、肌间质 细胞增殖和屯、脏细胞外基质改建,引起屯、肌重构[1,2]。临床上许多屯、脏疾病可W引起屯、 肌肥厚,常见病因包括原发性或继发性高血压病、屯、脏瓣膜病、冠屯、病,W及先天性屯、脏病 等巧]。尽管W屯、肌细胞增大、屯、肌收缩力增强为特点的早期屯、肌肥厚表现为一种维持正常 屯、输出量的代偿机制,但是由于长期屯、肌肥厚会增加屯、肌耗氧量,引起屯、肌缺血和屯、肌细 胞调亡,同时屯、肌肥厚降低屯、室顺应性,导致代偿机制失衡[4]。研究表明随着屯、肌肥厚重 构的进展,缺血性屯、脏病、恶性屯、律失常、充血性屯、衰、巧死等严重屯、血管事件的发生率增 加6~10倍[5]。
[0004] 在细胞和分子水平上,屯、肌细胞肥大过程主要涵盖3个环节:胞外肥大信号刺激、 胞内信号通路转导及核内基因转录活化[6]。不同的肥大信号诱发特异的基因表达模式, 信号转导通路在运一过程中扮演重要角色[7]。目前,明确与屯、肌肥厚相关的信号通路主 要包括:巧调素依赖性蛋白激酶(CaMK)、巧调神经憐酸酶(calcineurin)、丝裂原活化蛋 白激酶(MAPK)、憐酸脂酷肌醇-3激酶(PI3K) /丝-苏氨酸蛋白激酶(Akt)和两面神激酶 (JAKV信号传导及转录激活因子(STAT)信号转导通路。其中MAPK由细胞外信号调节激酶 (E服s),c-junN末端激酶9JNKS)和P38-MAPKS个亚家族组成巧]。PI3K活化后激活下游 重要祀点Akt,Akt可进一步作用于下游底物引起雷帕霉素祀体蛋白(mTOR)和糖原合成激 酶(GSK3P)的激活W及化xO的失活巧]。尽管目前对于屯、肌肥厚发生发展的病理生理机 制有了初步认识,但是其具体分子的调控网络仍未完全明确,临床防治手段仍然十分有限。
[0005]S结构域蛋白8(TRIM(Tripartitemotif) 8)属于环指蛋白家族的TRIM亚家 族成员,其编码基因定位于10号染色体长臂2区4带3亚带(10q24. 3) [10]。TRIMS蛋白 由551个氨基酸组成,在人体及小鼠各组织器官中广泛表达,其中屯、脏表达水平较高[11]。 TRIMS从N端到C端具有5个结构域,分别是RING结构域、B-boxl结构域、B-box2结构域、 卷曲螺旋结构域和具有细胞核定位功能的C末端[12]。研究发现,TRIMS可W通过调控 S0CS1、TAK1、PIAS3和P53等关键信号通路分子,参与包括固有免疫反应和肿瘤发生在内的 多种病理生理过程[11-15],但目前仍没有TRIMS在屯、血管系统疾病中作用的相关研究报 道。
[000引 参考文献:
[1] .民ohini A, Agrawal N, Koyani CN, Singh民.Molecular targets and regulators of cardiac hypertrophy. Pharmacol Res, 2010. 61(4): p. 269-80.
[2] . Gupta S, Das B, Sen S. Cardiac hypertrophy: mechanisms and therapeutic opportunities. Antioxid民edox Signal, 2007. 9(6): p. 623-52.
[3] . Bui AL, Horwich TB, Fonarow GC. Epidemiology and risk profile of heart failure. Nat Rev Cardiol, 2011. 8(1): p. 30-41.
[4] . Oka T, Akazawa H, Naito AT, Komuro I. Angiogenesis and cardiac hypertrophy: maintenance of cardiac function and causative roles in heart failure. Circ Res,2014. 114(3): p. 565-71. 巧]? Zile MR, Gottdiener JS, Hetzel SJ, McMurray JJ, Komajda M, McKelvie R, Baicu CF, lassie BM, Carson PE. Prevalence and significance of alterations in c过rdi过c structure过nd function in p过tients with he过rt failure过nd过preserved ejection fraction. Circulation,2011. 124(23): p. 2491-501.
[6] . Balakumar P, Jagadeesh G. Multifarious molecular signaling cascades of cardiac hypertrophy: can the muddy waters be cleared Pharmacol Res, 2010. 62巧):p. 365-83.
[7] . Heineke J, Molkentin JD. Regulation of cardiac hypertrophy by intracellular signalling pathways. Nat Rev Mol Cell Biol, 2006. 7(8): p. 589-600.
[8] . Rose BA, Force T, Wang Y. Mitogen-activated protein kinase signaling in the heart: angels versus demons in a heart-breaking tale. Physiol Rev, 2010. 90(4): p. 1507-46.
[9] . Aoyagi T,Matsui T. Phosphoinositide-3 kinase signaling in cardiac hypertrophy and heart failure. Curr Pharm Des,2011. 17(18): p. 1818-24.
[10] . Vincent SR, Kwasnicka DA, Fretier P. A novel RING finger-B box-coiled-coil protein, GERP. Biochem Biophys Res Commun, 2000. 279(2): p. 482-6.
[11] . Toniato E, Chen XP, Losman J, Flati V,Donahue L,民othman P. TRIMS/ GERP RING finger protein interacts with SOCS-L J Biol Qiem,2002. 277(40): p. 37315-22.
[12]民eymond A, Meroni G, Fantozzi A, et al. The tripartite motif family identifies cell compartments[J]. EMBO J, 2001,20巧):2140-2151
[1引.Li Q,Yan J,Mao AP,Li C,民an Y,Shu皿,Wang YY. Tripa^ite motif 8 (TRIMS) modulates TNFalpha- and IL-lbeta-triggered NF-kappaB activation by targeting TAKl for K63-linked polyubiquitination. Proc Natl Acad Sci USA, 2011. 108(48): p. 19341-6.
[14]. Okumura F, Matsunaga Y, Katayama Y, Nakayama KI, Hatakeyama S. TRIMS modulates STATS activity through negative regulation of PIAS3. J Cell Sci, 2010. 123(Pt13):p. 2238-45.
[15].CaratozzoloMF,VallettiA,GiganteM,AielloI,MastropasquaF,MarzanoF,DitonnoP,Carrier!G,SimonnetH,D'ErchiaAM,RanieriE,PesoleG, SbisaE,TulloA.TRIMSanti-proliferativeactionagainstchemo-resistantrenal cellcarcinoma.Oncotarget, 2014. 5(17):p. 7446-57。

【发明内容】

[0007] 为解决上述现有技术的缺陷和不足,本发明的目的在于确定TRIMS的表达和屯、肌 肥厚的相互关系,提供一种TRIMS作为药物祀标在筛选保护屯、脏功能和/或预防、缓解和/ 治疗屯、肌肥厚及其纤维化的药物中的应用,提供一个用于保护屯、脏功能和/或预防、缓解 和/或治疗屯、肌肥厚和纤维化的祀基因TRIMS的新用途。
[0008] 本发明的目的通过下述技术方案实现: 本发明通过试验确定了TRIMS表达与屯、肌肥厚之间的关系: 1、发生屯、肌肥厚时屯、肌细胞肥大标志物ANP、Myh7表达明显上调,TRIMS表达明显上调 本发明分别选用正常人和扩屯、患者屯、脏,正常假手术(化am)小鼠和通过主动脉弓缩窄 手术(AB)造成屯、肌肥厚的小鼠屯、脏,W及分别通过对照组(PBS)或血管紧张素2(AngII) 或苯肾上腺素(PE)刺激后的屯、肌细胞,分别检测了ANP、Myh7、TRIMS的蛋白表达情况。结 果表明,扩张型屯、肌病患者和发生屯、肌肥厚的小鼠屯、脏中的屯、肌细胞肥大标志物ANP、Myh7 的表达明显上调,TRIMS的表达明显上调,同样在经血管紧张素II(Angll)或苯肾上腺素 (PE)刺激后的屯、肌细胞中ANP、Myh7的表达也明显上调,TRIMS的表达明显上调(图1、图2、 图3)。
[0009] 2、TRIM8干扰(AdshTRIMS)及过表达(AdTRIMS)腺病毒对经AngII诱导的屯、肌 细胞肥大模型的影响 本发明发现在经血管紧张素II(AngII)诱导的体外屯、肌肥厚模型中,TRIMS过表达 屯、肌细胞出现明显肥大,TRIMS不表达屯、肌细胞的肥大明显被抑制(图4)。
[0010] 3、TRIMS基因敲除显著抑制了屯、肌肥厚、纤维化的程度,保护屯、功能;TRIMS基因 过表达显著促进了屯、肌肥厚及其纤维化的程度,恶化屯、功能 本发明选用野生型小鼠、TRIMS基因敲除小鼠及屯、脏特异性TRIMS转基因小鼠和非转 基因小鼠进行试验,并将每种小鼠分成假手术组和手术组,每组10只小鼠。手术组给予主 动脉弓缩窄手术,假手术组不予主动脉弓缩窄,
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