专利名称：中药复方药物组合物的新用途的制作方法
技术领域：
本发明涉及一种中药复方药物组合物的新用途，具体地，是在制备用于辅助生殖的药物中的用途。
背景技术：
近年来，由于环境污染严重、工作压力加大、饮食习惯改变、生殖系统疾病等因素对正常受孕造成不利影响，不孕症患者数量呈上升势头，发病率约为12. 5% 15%，且有逐年增加趋势。因此世界卫生组织(WHO)宣布将不孕症与心血管病、肿瘤并列为当今影响人类生活和健康的三大主要疾病。自1978年全球首例试管婴儿诞生以来，以体外授精-胚胎移植(IVF-ET)为代表的辅助生殖技术(ART)的引入给不孕不育症的成功治疗提供了更大的可能。助孕的相关·研究对于解决不孕不育患者的实际问题具有现实的意义。IVF-ET俗称试管婴儿，其成功率(指临床妊娠率)还不太令人满意，一般为30% 40%[1]，并且容易造成卵巢过度刺激综合征(0HSS)。此外，一些卵巢反应低下或卵子成熟障碍的患者如多囊卵巢综合征(PC0S)、卵巢早衰(P0F)，还有一些不能接受超排卵治疗如乳腺癌、卵巢癌术后的患者，仍无法解决生育问题。因而，卵母细胞的体外成熟(IVM)作为IVF-ET的衍生新兴技术之一日益受到关注。与传统的IVF相比，IVM避免了 OHSS的发生。此外，容易获得的未成熟卵母细胞，还可为卵母细胞捐供提供来源。然而IVM目前仍存在很多亟待解决的问题，包括卵母细胞成熟率低、受精率低等。ICSI (Intracytoplasmic sperm injection)即卵胞衆内单精子注射技术,也就是第二代“试管婴儿”，该技术是借助显微操作系统将单一精子注射入卵子内使其受精。该技术仅需数条精子可以达到受精、妊娠，是严重男性因素不育患者的最有效治疗方法。补肾中药介入辅助生殖技术，具有调经、助孕、促卵泡发育及排卵、提高卵细胞质量以及提高卵子受精率、促进早期胚胎发育的作用[2_5]，已得到证实。补肾中药的上述作用与激素、细胞因子等因素有关[6_9]。目前在辅助生殖技术中与补肾中药联系较为紧密的环节主要是超促排卵和胚胎移植。研究主要以卵细胞质量体外受精及胚胎发育[5，11]、子宫内膜容受性[I15]为切入点。补肾中药对卵母细胞体外成熟的影响研究尚未见报道。生殖激素是哺乳动物卵母细胞成熟的基本调节物。卵泡刺激素(FSH)、黄体生成素(LH)和雌二醇(E2)是常用激素。孕马血清促性腺激素(PMSG)也能使卵母细胞体外成熟。哺乳动物卵母细胞成熟通常分为核和胞质的成熟核成熟通常以卵母细胞的第一极体排出为代表而胞质成熟则主要指卵母细胞具有受精能力及相应的早期胚胎发育能力。(I) FSH0FSH在早期卵泡体外发育中起到了关键作用，在卵母细胞体外成熟中促进核及胞质的成熟，对于卵裂及囊胚的发育有积极作用。人未成熟卵-冠-丘复合物(OCCCs)中的颗粒细胞上可以检测到FSH受体mRNA的存在。FSH和LH对在不含血清的TCM199中的卵母细胞体外成熟有显著影响，卵丘细胞的扩张受剂量依赖的FSH和LH的浓度的影响，在体内卵丘细胞的扩张有利于精子穿透、受精和合子发育。FSH以环腺苷酸(cAMP)作为细胞内第二信使，通过影响卵母细胞和卵泡中cAMP的浓度控制未成熟卵母细胞的核成熟和减数分裂的恢复。FSH对哺乳动物卵母细胞核和胞质的成熟均有作用，主要调节卵母细胞核成熟。FSH的最佳作用剂量为100IU/L。(2)E2。研究证实，卵泡液中留体类激素的存在对卵母细胞成熟至关重要。雌激素在多种哺乳动物中能促进卵母细胞的体外成熟。一定浓度的17 P-E2有促进卵细胞胞质成熟的作用，有利于受精和胚胎进一步发育，但浓度过高则会降低受精及卵裂能力。E2可保持卵母细胞减数分裂停滞，从而使细胞核及胞浆成熟同步化，有利于卵母细胞的发育。另外，在卵母细胞内有E2受体，说明E2可以直接与卵母细胞结合，调节卵母细胞胞质成熟。E2的最佳作用剂量为lmg/L或I. 5mg/L。但E2是类固醇激素，一般须要溶于特殊溶剂如二甲基亚砜(DMSO)或乙醇。考虑到DMSO有一定的细胞毒性，卵细胞对乙醇比较敏感，这两种溶剂的浓度不易控制，加之前期预实验也证实了这一点，故不采用E2作为阳性对照品。(3)PMSG。孕马血清促性腺激素(pregnant mare serum gonadotrophin, PMSG)是取自早期妊娠马血清中的糖蛋白促性腺激素，是由孕马子宫内膜杯状细胞合成分泌到血液中的糖蛋白性激素，兼有卵泡刺激素(FSH)和黄体生成素(LH)的作用，类似于人绝经期促性腺激素(HMG)。孕马血清促性腺激素(PMSG)能使卵母细胞体外成熟。其最佳作用剂量在牛为40和50IU/mL，在狗为100IU/mL。目前还未见PMSG在小鼠卵母细胞体外成熟中的应用报道。(4)目前尚无其它公认的促卵母细胞体外成熟的药物面世。
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左、右归丸出自明代温补名家张景岳的《景岳全书 新方八阵》，为补益肾阴、肾阳的经典方，临床上均可用于治疗女性绝经前后诸症。左归丸治疗围绝经期综合征，可消除烘热汗出、烦躁易怒、口干咽燥等症状，能增加阴道分泌物，改善外阴、阴道干涩症状，对雌激素不足的闭经也有较好的疗效(朱玲，陈彬彬，黄泉智，等.左归丸临床与实验研究进展[J].国医论坛，2003，18(2) :51-53。)“左归丸”治真阴肾水不足，不能滋养营卫，渐至衰弱，或虚热往来，自汗盗汗，或神不守舍，血不归原，或虚损伤阴，或遗淋不禁，或气虚昏运，或眼花耳聋，或口燥舌干，或腰酸腿软，凡精髓内亏，津液枯涸等证，俱速宜壮水之主，以培左肾之元阴，而精血自充矣,宜此方主之。“右归丸”治元阳不足，或先天禀衰，或劳伤过度，以致命门火衰，不能生土，而为脾胃虚寒，饮食少进，或呕恶膨胀，或番胃噎膈，或怯寒畏冷，或脐腹多痛，或大便不实，泻痢频作，或小水自遗，虚淋寒疝，或寒侵溪谷而肢节痹痛，或寒在下焦而水邪浮肿。总之，真阳不足者，必神疲气怯，或心跳不宁，或四体不收，或眼见邪祟，或阳衰无子等证，俱速宜益火之原，以培右肾之元阳，而神气自强矣，此方主之。目前，有文献报道左、右归丸用于治疗不孕症，如杨丽影，右归丸在妇科疾病中的应用体会，《河北中医》，2001年23卷8期，张君满，左归丸加减在妇科疾病中的应用，《四川中医》，2007年25卷5期；韦艳萍，等，左归丸治疗黄体功能不健不孕症的临床研究，《现代中西医结合杂志》，2010年19卷32期，方云芸，等，右归丸对雄激素致排卵障碍型不孕大鼠血清E2、T和IGF-I的水平影响，《环球中医药》，2010年3卷3期等。但是将左右归丸用于辅助生殖，如卵母细胞的体外成熟(IVM)技术方面，目前尚无相关文献报道。
发明内容
本发明的技术方案是提供了一种中药复方药物组合物的新用途。具体地，是在制备用于辅助生殖的药物中的用途。本发明提供了含有下述重量配比的原料药在制备用于辅助生殖的药物中的用途熟地18-30份、山茱萸9-12份、山药8-16份、枸杞子9-12份、菟丝子8_16份、鹿角胶8_16份。本发明还提供了含有下述重量配比的原料药在制备用于辅助生殖的药物中的用途川牛膝1-16份、龟板胶1-16份。进一步优选地，所述的原料药的重量配比为川牛膝9份、龟板胶12份。本发明还提供了含有下述重量配比的原料药在制备用于辅助生殖的药物中的用途杜仲1-16份、肉桂1-9份、当归1-16份、制附子1-16份。 进一步优选地，所述的原料药的重量配比为杜仲12份、肉桂6份、当归9份、制附子6份。其中，所述的药物是促卵母细胞体外成熟的药物。其中，所述的药物是治疗不孕症的药物。·其中，所述的药物是提高精子活力或精子受精能力的药物。其中，所述药物是由下述重量配比的原料药制备而成的药剂熟地24份、山茱萸9-12份、山药12份、枸杞子9_12份、菟丝子12份、鹿角胶12份。其中，所述的原料药中还含有川牛膝9份、龟板胶12份。进一步优选地，所述的药物是由下述重量配比的原料药制备而成熟地24份、山茱萸12份、山药12份、枸杞子12份、菟丝子12份、鹿角胶12份、川牛膝9份、龟板胶12份。其中，所述的原料药中还含有杜仲12份、肉桂6份、当归9份、制附子6份。进一步优选地，所述的药物是由下述重量配比的原料药制备而成熟地24份、山茱萸9份、山药12份、枸杞子9份、菟丝子12份、鹿角胶12份、杜仲12份、肉桂6份、当归9份、制附子6份。本发明还提供了一种促卵母细胞体外成熟的方法，它包括如下步骤a、取未成熟卵母细胞；b、置于含药血清的M199培养液中培养24h，即得成熟卵母细胞；其中血清中含有2%的权利要求1-13任意一项所述的药物。体外受精-胚胎移植(IVF-ET)技术中获得适当多数目、高质量的卵子是达到妊娠的关键环节之一，通常需要采用控制性超排卵(COH)来实现。但是，COH始终存在不可忽视的安全性问题，容易造成卵巢过度刺激综合征(0HSS)。一些卵巢反应不良、卵子成熟障碍或不能接受COH的患者仍无法解决生育问题，可通过IVF-ET的衍生新兴技术之一一卵母细胞的体外成熟(IVM)技术获得妊娠。本发明是将补肾中药复方左右归丸及其拆方组份用于促进卵母细胞体外成熟，具有重要意义，可以从一个侧面反应中医调经种子理论在辅助生殖技术中的指导价值，进而为试管婴儿领域开拓新思路、新途径，用于配合卵母细胞IVM技术治疗不孕症，有助于拓展ART的应用空间。本发明药物体外可以促进未成熟卵母细胞生长发育，主要是促进卵母细胞核成熟，并且不增加成熟卵母细胞细胞骨架的异常几率。本发明药物对精子穿卵能力产生影响，为临床应用防治男性精子功能障碍，提高IVF成功率，减少ICSI的使用率，提供可靠的实验室依据。
图I :含药鼠血清对体外成熟卵母细胞Cyclin BI mRNA表达的影响图2 :图2A体内受精百分率；图2B体外培养3天后囊胚生成百分率图3:体外受精百分率图4 :图4A两组完整顶体百分率图4B顶体酶活性检测
具体实施例方式实施例I本发明药物组合物I的制备(左归丸)称取原料熟地黄200g、菟丝子100g、牛膝75g、龟板胶100g、鹿角胶100g、山药100g、山茱萸100g、枸杞子IOOg ；制备方法以上八味，除鹿角胶、龟板胶外，其余熟地黄等六味粉碎成细粉，过筛混匀。取鹿角胶、龟板胶烊化，与上述细粉混匀。每IOOg粉末加炼蜜IOg与适量的水，泛丸，·干燥，即得；或不加蜜，仅为粉末散剂。实施例2本发明药物组合物2的制备(右归丸)称取原料熟地黄24g、山药12g、山茱萸9g、枸杞子9g、菟丝子12g、鹿角胶12g、杜仲12g、肉桂6g、当归9g、制附子6g。制备方法将熟地蒸烂杵膏，余为细末，烘干密封保存，兑水服用，或加炼蜜为丸，如弹子大。每嚼服二三丸(6 9g)，以滚白汤送下。实施例3本发明药物的制备称取原料熟地24g、山茱萸12g、山药12g、枸杞子12g、菟丝子12g、鹿角胶12g ；制备方法以上六味，除鹿角胶外，其余熟地黄等六味粉碎成细粉，过筛混匀。取鹿角胶烊化，与上述细粉混匀，烘干密封保存，兑水服用，或每IOOg粉末加炼蜜IOg与适量的水。实施例4本发明药物的制备称取原料熟地24g、山茱萸9g、山药12g、枸杞子9g、菟丝子12g、鹿角胶12g ；按实施例3方法制备。实施例5本发明药物的制备称取原料熟地18g、山茱萸9g、山药8g、枸杞子9g、英丝子8g、鹿角胶8g ;按实施例3方法制备。实施例6本发明药物的制备熟地30g、山茱萸12g、山药16g、枸杞子12g、英丝子16g、鹿角胶16g,按实施例3
的方法制备。实施例7本发明药物的制备取川牛膝9g、龟板胶12g，按实施例I的方法制备。实施例8本发明药物制备取杜仲12g、肉桂6g、当归9g、制附子6g，按实施例3的方法制备。上述原料可以用原生药,也可以用原生药的炮制品。以下是通过药效实验及临床实验证明本发明的有益效果。试验例I本发明药物促卵母细胞体外成熟实验I、材料与方法
I. I实验材料I. I. I实验动物清洁级ICR雌性小白鼠，6 8周龄，体重22 26g，90只，清洁级ICR雄性小白鼠，8 10周龄，体重30 35g，6只，分批次购自四川省医学科学院四川省人民医院实验动物研究所，许可证号SCXK(川)2006-18。二级实验室，室温为22 250C，湿度为45 65%，照明昼夜明暗交替时间为12 :12，分笼喂养。I. I. 2实验药物高效液相色谱(HPLC)监测制备含左右归丸及其拆方组份的鼠血清1#、2#、3# (其中1#组为实施例3、2#组为实施例7、3#组为实施例8)。阳性对照品r-hFSH:75IU, Laboratoires Serono S. A. , Y11A9874·主要试剂孕马血清促性腺激素(PMSG)宁波市三生药业有限公司兽药字(2007)110044564 ；M199GIBC0 Lot: no. 507765 ;牛血清白蛋白(BSA) Sigma2039B054、透明质酸酶Sigma H3506、无水乙醇、三氯甲烧、异丙醇、琼脂糖、Tris-醋酸(Tris-acetate, TAE)、GoldView、焦憐酸二乙酯(diethyl pyrophosphate, DEPC)处理水等。含药鼠血清的制备分别取实施例I和实施例2制备的左归丸、右归丸原料药，按标准方法加水煎煮，于4°C贮存。将制备的汤剂喂服小鼠14天，取血；血清通过HPLC检测含有左归丸或右归丸的活性成分。含药血清贮存于_80°C备用。I. I. 3主要仪器设备与耗材AIR-TECH 超净工作台、MiIIipore 纯水仪、HERAEUS BB5060 培养箱、Olymbus SZX9体视显微镜、TOKAI HIT体视镜用玻璃恒温板、Olymbus CK40倒置显微镜、Olymbus BX51反射荧光显微镜等。I. 2实验方法I. 2. I小鼠未成熟卵母细胞的采集小鼠处死前46 48h腹腔注射IOIU PMSG / 0. ImL /只，颈椎脱臼处死后，置于清洁托盘中，75%乙醇棉球擦拭消毒腹部，打开腹腔，取出卵巢，去除脂肪、输卵管组织等附着物后放入盛有操作液的培养皿中，立即送至超净工作台。在解剖显微镜下，用Iml注射器针头剔除卵巢周围的脂肪结缔组织，用操作液洗涤卵巢3次。用Iml注射器针头刺破卵巢表面的卵泡，轻轻挤压使丘细胞一卵母细胞复合体(COCs)溢出，并用吸卵管吸取。最后移入覆盖石蜡油经预平衡后的微滴培养液中，准备体外成熟培养(IVM)。I. 2. 2实验分组及观测指标245个未成熟COCs体外成熟培养，分为空白组(在M199培养液中未添加鼠血清)、空白鼠血清组(在M199培养液中添加了 2%空白鼠血清)、含药鼠血清1#、2#、3# (在M199培养液中分别添加了 2%含本发明药物鼠血清1#、2#、3#)，共五组，体视显微镜和倒置显微镜下计数观察本发明药物对小鼠卵母细胞体外成熟的影响。约238个未成熟COCs体外成熟培养，分为空白组、FSH组(在M199培养液中添加了100IU/L FSH)、空白鼠血清组、含药鼠血清1#组四组，实验分四批进行，第一批，显微镜计数观察本发明药物对小鼠卵母细胞体外成熟、受精及卵裂的影响，重复3次实验。第二批，免疫荧光标记法结合荧光检测仪观察并定量分析本发明药物对体外培养小鼠卵母细胞MPF调节亚基Cyclin BI表达的影响。第三批，免疫荧光标记法结合反射荧光显微镜观察本发明药物对体外培养小鼠卵母细胞细胞骨架(纺锤体、染色体)的影响。第四批，半定量RT-PCR法观察本发明药物对体外培养小鼠卵母细胞MPF调节亚基Cyclin BI mRNA的表达的影响。上述未成熟卵母细胞即为初级卵母细胞。I. 2. 3卵母细胞成熟率的测定将矿物液滴入培养液上，各组丘细胞一卵母细胞复合体(COCs)于37°C、5%C02下微滴法培养24h后，用100IU / ml透明质酸酶溶液处理5min，用口径略大于卵母细胞直径的吹卵管反复吹打卵丘细胞-卵母细胞复合体(cumulus oocyte complexes, COCs) Imin去除颗粒细胞，使之成为裸卵(denuded oocyte, DO)。显微镜下观察卵母细胞形态，以生发泡破裂(GVBD)作为减数分裂启动的标志，第一极体排出(PBl)作为第一次减数分裂完成的标志即卵母细胞核成熟标志。分别计算GVBD发生率、PBl排出率和GVBD+PB1发生率。GVBD发生率=GVBD个数/卵母细胞总数·PBl排出率=PBl个数/卵母细胞总数GVBD+PB1发生率=GVBD+PB1个数/卵母细胞总数所述的成熟卵母细胞即为次级卵母细胞。L 2. 4小鼠精子的采集及处理ICR雄性小白鼠，周龄8 10周，体重30 35g，颈椎脱臼法处死，取附睾置于培养液中，用眼科剪剪开或注射针针头刺破附睾并轻轻挤压使精子释出，将精子连同培养液一起转移至培养板内，置37°C、5%C02培养箱内培养I 2h。将培养获能后的精子计数并调整浓度至I X IO6个/ mL 5 X IO6个/ mL。按精卵比约为10000:1的比例将精子加入含有卵母细胞的培养液中继续孵育5 6h。显微镜下观察卵母细胞的形态，以出现2个原核(2PN)和第二极体为正常受精标志，计算受精率。24h后观察受精卵卵裂及早期胚胎发育情况。受精率=受精卵个数/PBI个数卵裂率=卵裂球个数/受精卵个数I. 2. 5免疫突光标记法免疫染色前将卵母细胞在0. 3%B-PBS液中洗涤3次，每次5min，4%多聚甲醛37°C固定Ih ;固定好的卵母细胞在0. 3%B-PBS液中洗涤3次，0. 5%Triton-10037°C下作用15min后，0. 3%B-PBS液洗涤3次，P/oB-PBS液封闭Ih ;再在0. 3%B-PBS液洗涤3次，在清洗间隙即可用0. 3%B-PBS稀释一抗(I: 100)，并做成液滴，清洗好卵母细胞之后，将其置于加入一抗的PBS液滴中，放入暗湿盒，然后4°C孵育过夜；第二天用0. 3%B-PBS液滴清洗卵母细胞3次，每次5min，同样在清洗间隙用0. 3%B-PBS稀释二抗(FITC-山羊抗兔IgG) (1:100)，并做滴，然后将卵母细胞置于加入二抗的PBS液滴中，放入暗湿盒，37°C下孵育lh。二抗染色完成后，若要观察染色体则用含0. 3%B-PBS清洗3次，用PI复染。用0. 3%B-PBS液洗涤3次，将卵母细胞在体视镜下吸出，滴在载玻片上，吸去多余液体，再用甘油与PBS(9:1)及含抗荧光淬灭剂的混合液封片，反射荧光显微镜下观察卵母细胞的荧光着色情况。上述所有的清洗环节、抗体孵育和染色步骤均是在液滴中完成的，液滴做在培养皿中。
I. 2. 6荧光定量分析MPF调节蛋白B的表达强度免疫荧光染色步骤同I. 2. 5，二抗染色完成后，用PBS液洗涤3次，将卵母细胞在体视镜下吸出，移至每孔预先滴有500 u I PBS液的24孔板内，每组6孔，每孔8个卵母细胞，荧光定量检测仪分析MPF调节蛋白BI的表达强度。I. 2. 7卵母细胞细胞骨架的观察方法应用免疫荧光标记法，在OLYMPUS BX51反射荧光显微镜下进行观察。卵母细胞纺锤体分型正常纺锤体纺锤体呈对称的桶型，且极性存在；异常纺锤体纺锤体极性消失、纵轴上微管减少或断裂、纺锤体消失、微管消散。卵母细胞染色体分型正常染色体染色体紧密排列在赤道板；异常染色体染色体结构松散或凝结成团，从赤道板中脱落。I. 2. 8RT-PCR检测卵母细胞MPF调节亚基Cyclin BI mRNA的表达·(I)卵母细胞总RNA的提取未成熟卵母细胞200个，分为含药鼠血清1#组和空白鼠血清组，每组100个，体外培养24h后，分别从对照组和含药鼠血清1#组取出卵母细胞，透明质酸酶去除卵丘细胞后，PBS洗两次，采用Trizol法提取总RNA。(2)引物JhIiCyclin BI的特异片段为417bp，其引物序列参照文献以Primer5. 0软件设计，其序列为5， -GTAATCCTTGCAGTGAGTGACG(525-546)；5’ -CATCTCCATCTGTCTGATCTGG(920-941)。以广泛存在于细胞中的甘油醒-3-磷酸脱氢酶(glyceraldehyde-3-phosphatedehydrogease, GAPDH)作为内参照，其特异片段为321bp。(3)反应体系DEPC H2Ol. 75 u I, Bufferl. 25 u I, dNTPl. 25 u l,MgCl22. 5u I, AMV逆转录酶0. 25 u IjRAN酶抑制剂0. 25111，了&9酶0. 25 yl，正向及反向引物各0. 5 yl，RNA样品 1，总体积 12. I。反应条件50°C 30min,94°C 2min,随后 94 °C 10s, 55 °C 10s,70°C 20s 重复 20 个循环，72°C 5min,扩增 GAPDH片段。50°C 30min, 90°C 2min,随后 94°C 30s,56°C 30s, 68°C Imin 重复 40 个循环，72°C lOmin，扩增 Cyclin BI 片段。4°C保存。(4)结果检测PCR产物通过1%琼脂糖凝胶电泳后，紫外图象扫描仪扫描并采用KODAK ID图像分析软件分析电泳带的平均灰度并照相。结果以特异泳带与GAPDH泳带平均灰度的比值表示。I. 2. 9 血清 FSH、E2 的测定采用酶联免疫法测定大鼠血清FSH、E2水平。严格按照酶联免疫试剂盒说明操作，于酶标仪450nm吸光度,读取吸光度值(optical denstiy, 0D),根据标准品的浓度和OD值做出标准曲线，计算得出样品中FSH、E2的浓度。I. 3统计学处理以下所有实验数据均采用SPSS17. 0统计软件处理，均数比较采用t检验，率的比较采用卡方检验，P < 0. 05为差异有统计学意义。2、结果2. I不同含药鼠血清对卵母细胞体外成熟的影响表I不同含药鼠血清对卵母细胞体外成熟的影响卵母
U1(验H.m iiti PB! PB1% GVBD GVBD% GVBD+PB1 (GVBD+PBli%
_S_
空白组48816.672450.003266.67
空 Ii 鼠血淸组481122.922450.003572.92
本发明含药血Ifi I 组522242.3K2242.314484.62*
本发明含药血清 2 组471736.17*2144.683880.85
本发明含药血清 3 组501326.002652.0039_78.00_注与空白组比，*P < 0. 05，**P < 0. 01 ;与空白鼠血清组比，☆ P < 0. 05结果显示，空白鼠血清、含药鼠血清1#、2#、3#组均较空白组成熟率高；含药鼠血清1#、2#、3#组均较空白鼠血清组成熟率高。GVBD+PB1，空白鼠血清、含药鼠血清1#、2#、3#
组均较空白组高。2. 2含药鼠血清对卵母细胞体外成熟的影响(重复3次实验)结果见表2。表2含药鼠血清对卵母细胞体外成熟的影响
受 m
试验组卵母细胞数 PBl PBi% GVBD GVBD% GVBD+PB1 (GVBD+PB1)% 灶 __Th 裂
空内组58 813.792746.5535 60.34I0
空 ft 鼠 LflL清组60 1423.333151.6745 75.004I
FSH 组69 2028.99*3449.2854 78.26*II
本发明含药血清 I 组59_2440.68*^2542.3749_83.05**9I注与空白组比，*P < 0. 05, **P < 0.01 ;与空白鼠血清组比，< 0. 05结果显示，空白鼠血清、FSH、含药鼠血清1#组均较空白组成熟率高。FSH、含药鼠血清1#组均较空白鼠血清组成熟率高，空白鼠血清、FSH、含药鼠血清1#组均较空白组高。2. 3含药鼠血清对卵母细胞体外成熟的影响，结果见表3。表3含药鼠血清对卵母细胞体外成熟的影响
受
空白组 _母细胞数 Pm PB1% CVBD GVBD% GVBD+PB1 (GVBD+PB1)% _ _裂
_Jg_
~ ft 阐
,' ^58 11 18.97 27 46.553865.22 2 0
血_组
FSH 组56 12 21.43 27 48.213969.64 4 I
本发明
含药血5620 35.71* 26 46.434682.14* 6 I
清丨组
空白组_62 24 38.71*1^ 28 45.16_52_83.87* 9 3注与空白组比，*P < 0. 05 ;与空白鼠血清组比，< 0. 05结果显示，空白鼠血清、FSH、含药鼠血清1#组均较空白组成熟率高。FSH、含药鼠血清1#组均较空白鼠血清组成熟率高。GVBD+PB1，空白鼠血清、FSH、含药鼠血清1#组均较空白组闻。2. 4含药鼠血清对卵母细胞体外成熟的影响，结果见表4。表4含药鼠血清对卵母细胞体外成熟的影响3-1
权利要求
1.含有下述重量配比的原料药在制备用于辅助生殖的药物中的用途 熟地18-30份、山茱萸9-12份、山药8-16份、枸杞子9-12份、菟丝子8_16份、鹿角胶8-16 份。
2.含有下述重量配比的原料药在制备用于辅助生殖的药物中的用途川牛膝1-16份、龟板胶1-16份。
3.根据权利要求2所述的用途，其特征在于所述的原料药的重量配比为川牛膝9份、龟板胶12份。
4.含有下述重量配比的原料药在制备用于辅助生殖的药物中的用途杜仲1-16份、肉桂1-9份、当归1-16份、制附子1-16份。
5.根据权利要求4所述的用途，其特征在于所述的原料药的重量配比为杜仲12份、肉桂6份、当归9份、制附子6份。
6.根据权利要求1-5任意一项所述的用途，其特征在于所述的药物是促卵母细胞体外成熟的药物。
7.根据权利要求1-5任意一项所述的用途，其特征在于所述的药物是治疗不孕症的药物。
8.根据权利要求1-5任意一项所述的用途，其特征在于所述的药物是提高精子活力或精子受精能力的药物。
9.根据权利要求I所述的用途，其特征在于所述药物是由下述重量配比的原料药制备而成的药剂 熟地24份、山茱萸9-12份、山药12份、枸杞子9-12份、菟丝子12份、鹿角胶12份。
10.根据权利要求I所述的用途，其特征在于所述的原料药中还含有川牛膝9份、龟板胶12份。
11.根据权利要求10所述的用途，其特征在于所述的药物是由下述重量配比的原料药制备而成 熟地24份、山茱萸12份、山药12份、枸杞子12份、菟丝子12份、鹿角胶12份、川牛膝9份、龟板胶12份。
12.根据权利要求I所述的用途，其特征在于所述的原料药中还含有杜仲12份、肉桂6份、当归9份、制附子6份。
13.根据权利要求12所述的用途，其特征在于所述的药物是由下述重量配比的原料药制备而成 熟地24份、山茱萸9份、山药12份、枸杞子9份、菟丝子12份、鹿角胶12份、杜仲12份、肉桂6份、当归9份、制附子6份。
14.一种促卵母细胞体外成熟的方法，它包括如下步骤 a、取未成熟卵母细胞； b、置于含药血清的M199培养液中培养24h，即得成熟卵母细胞；其中血清中含有2%的权利要求1_13任意一项所述的药物。
全文摘要
本发明提供了含有下述重量配比的原料药在制备用于辅助生殖的药物中的用途熟地18-30份、山茱萸9-12份、山药8-16份、枸杞子9-12份、菟丝子8-16份、鹿角胶8-16份。本发明还提供了一种促卵母细胞体外成熟的方法，它包括如下步骤a、取未成熟卵母细胞；b、置于M199培养液中，采用微滴法培养24h，即得成熟卵母细胞；其中培养液中含有2%的药物。本发明药物体外可以促进未成熟卵母细胞生长发育，主要是促进卵母细胞核成熟，并且不增加成熟卵母细胞的细胞骨架异常的几率。本发明药物还可以对精子穿卵能力产生影响，为临床防治男性精子功能障碍，提高IVF成功率，减少ICSI的使用率，提供可靠的依据。
文档编号C12N5/075GK102784267SQ20121029219
公开日2012年11月21日 申请日期2012年8月16日 优先权日2011年8月23日
发明者刘志斌, 陆华, 高小平 申请人:成都中医药大学