一种表达盒及其在培育种子油脂含量增高的转基因植物中的应用的制作方法
【专利摘要】本发明公开了一种表达盒及其在培育种子油脂含量增高的转基因植物中的应用。本发明提供的表达盒，包括植物胚特异性启动子和油体蛋白的编码基因。所述油体蛋白可为植物油体蛋白。所述植物油体蛋白可为大豆油体蛋白，具体可为GM-A蛋白或GM-B蛋白。所述植物胚特异性启动子可为REG-2启动子。本发明的方法及其应用为利用生物技术提高种子油脂含量、改良种子品质以及生物能源等研究奠定基础，具有极大的应用前景。
【专利说明】一种表达盒及其在培育种子油脂含量增高的转基因植物中 的应用
【技术领域】
[0001] 本发明涉及一种表达盒及其在培育种子油脂含量增高的转基因植物中的应用。
【背景技术】
[0002] 植物油脂由碳水化合物转化而来，其主要成分为长链脂肪酸与甘油结合形成的甘 油三酯（triacylglycerol, TAG)。植物油脂作为食用油和一种重要的可再生能源物质，不仅 可为人体提供一些必需的不饱和脂肪酸，也是用于转化生物柴油的主要成分及一些工业产 品的重要原料，长期以来备受关注。
[0003] 水稻是世界上最重要的粮食作物之一，为世界上超过半数的人口提供食物。其中， 米胚(稻米胚)是稻米的重要组成部分，全国每年米胚的产量估计可达400?440万吨以上。 米胚富含多种营养元素，蛋白质和脂类均在20%以上，亚油酸和维生素 E含量丰富，且植物 固醇和谷维素共存。大量实验表明，经常食用米胚油对心脏疾病、血栓性静脉炎、生殖机能 障碍、肌肉萎缩等疾病均有明显疗效。另外，米胚油还是生物柴油的理想原料来源。因此， 积极开发、利用米胚，对于充分利用稻米资源、改善人体膳食结构以及缓解能源危机都有着 重要的现实意义。
【发明内容】
[0004] 本发明的目的是提供一种表达盒及其在培育种子油脂含量增高的转基因植物中 的应用。
[0005] 本发明提供的表达盒，包括植物胚特异性启动子和油体蛋白的编码基因。
[0006] 所述油体蛋白可为植物油体蛋白。所述植物油体蛋白可为大豆油体蛋白，具体可 为GM-A蛋白或GM-B蛋白。
[0007] 所述GM-A蛋白具体为如下（a)或（b):
[0008] (a)由序列表中序列1所示的氨基酸序列组成的蛋白质；
[0009] (b)将序列表中序列1所示的氨基酸序列经过一个或几个氨基酸残基的取代和/ 或缺失和/或添加且与植物种子含油量相关的由序列1衍生的蛋白质。
[0010] 所述GM-B蛋白具体为如下（C)或（d):
[0011] (C)由序列表中序列3所示的氨基酸序列组成的蛋白质；
[0012] (d)将序列表中序列3所示的氨基酸序列经过一个或几个氨基酸残基的取代和/ 或缺失和/或添加且与植物种子含油量相关的由序列1衍生的蛋白质。
[0013] 所述油体蛋白的编码基因具体可为GM-A基因或GM-B基因。
[0014] 所述GM-A基因具体为如下（1)或（2)或（3)所述的DNA分子：
[0015] (1)序列表中序列2所示的DNA分子；
[0016] (2)在严格条件下与（1)限定的DNA序列杂交且编码与植物种子含油量相关的蛋 白的DNA分子；
[0017] (3)与（1)限定的DNA序列至少具有90%以上同源性且编码与植物种子含油量相 关的蛋白的DNA分子。
[0018] 上述严格条件可为在6XSSC，0. 5%SDS的溶液中，在65° C下杂交，然后用 2XSSC、0. 1%SDS 和 1XSSC、0. 1%SDS 各洗膜一次。
[0019] 所述GM-B基因具体为如下（4)或（5)或（6)所述的DNA分子：
[0020] (4)序列表中序列4所示的DNA分子；
[0021] (5)在严格条件下与（4)限定的DNA序列杂交且编码与植物种子含油量相关的蛋 白的DNA分子；
[0022] (6)与（4)限定的DNA序列至少具有90%以上同源性且编码与植物种子含油量相 关的蛋白的DNA分子。
[0023] 上述严格条件可为在6XSSC，0. 5%SDS的溶液中，在65° C下杂交，然后用 2XSSC、0. 1%SDS 和 1XSSC、0. 1%SDS 各洗膜一次。
[0024] 所述植物胚特异性启动子为REG-2启动子，具体可为如下（7)或（8)或（9)所述的 DNA分子：
[0025] (7)序列表中序列5所示的DNA分子；
[0026] (8)在严格条件下与（7)限定的DNA序列杂交且具有启动子功能的DNA分子；
[0027] (9)与（7)限定的DNA序列至少具有90%以上同源性且具有启动子功能的DNA分 子。
[0028] 上述严格条件可为在6XSSC，0. 5%SDS的溶液中，在65° C下杂交，然后用 2XSSC、0. 1%SDS 和 1XSSC、0. 1%SDS 各洗膜一次。
[0029] 含有以上任一所述表达盒的重组载体、转基因细胞系或重组菌均属于本发明的保 护范围。
[0030] 所述重组载体具体可为将所述植物胚特异性启动子和所述植物油体蛋白的编码 基因插入载体PGPTV-35S-HPT的不同多克隆位点得到的重组质粒。
[0031] 本发明还保护以上任一所述的表达盒，或以上任一所述重组载体在培育种子油脂 含量增高的转基因植物中的应用。所述植物为单子叶植物或双子叶植物。所述单子叶植物 具体可为水稻，如野生型水稻Kitaake。
[0032] 本发明还保护一种培育转基因植物的方法，包括如下步骤：将以上任一所述的表 达盒导入出发植物，得到种子油脂含量高于所述出发植物的转基因植物。所述表达盒可通 过所述重组载体导入所述出发植物。所述重组载体可通过使用Ti质粒、Ri质粒、植物病毒 载体、直接DNA转化、显微注射、电导、农杆菌介导或基因枪等常规生物学方法转化植物细 胞或组织或器官，得到转基因植物细胞或组织或器官及由此分化、再生的完整植株及其无 性系或其后代。所述植物为单子叶植物或双子叶植物。所述单子叶植物具体可为水稻，如 野生型水稻Ki taake。
[0033] 本发明创造性地利用胚特异性启动子驱动油体蛋白基因在转基因植物种子胚中 特异性地表达，可以提高转基因植物种子油脂的含量，并可获得种子油脂含量高且稳定遗 传的转基因植株。本发明的方法及其应用为利用生物技术提高种子油脂含量、改良种子品 质以及生物能源等研究奠定基础，具有极大的应用前景。
【专利附图】
【附图说明】
[0034] 图1为从大豆cDNA中PCR扩增GM-A基因和GM-B基因的电泳图谱。
[0035] 图2为重组质粒的结构示意图。
[0036] 图3为?；代转基因植株的PCR鉴定电泳图。
[0037] 图4为TQ代转基因植株的Southern杂交结果。
[0038] 图5为?\代转基因植株的RT-PCR鉴定电泳图。
[0039] 图6为?\代转基因植株的的Western杂交结果。
[0040] 图7为?\代转基因植株的in situ Western杂交结果。
[0041] 图8为T2代转基因植株的PCR分析的电泳图谱。
[0042] 图9为T2代水稻种子和T3代水稻种子的油脂含量测定结果。
【具体实施方式】
[0043] 以下的实施例便于更好地理解本发明，但并不限定本发明。下述实施例中的实验 方法，如无特殊说明，均为常规方法。下述实施例中所用的试验材料，如无特殊说明，均为自 常规生化试剂商店购买得到的。以下实施例中的定量试验，均设置三次重复实验，结果取平 均值。
[0044] 载体REG-2-pGPTV-35S-HPT :将序列表的序列5所示的REG-2启动子插入载 体 PGPTV-35S-HPT (提及载体 pGPTV-35S-HPT 的参考文献：Qu and Takaiwa，2004.Plant Biotechnol J. 2(2) : 113-125)的Sal I和Sma I酶切位点之间得到的重组质粒。
[0045] 农杆菌 EHA105，参考文献：Qu and Takaiwa, 2004. Plant Biotechnol J. 2(2) : 113-125。
[0046] 野生型水稻 Kitaake (用 WT表不），参考文献：Qu and Takaiwa. Plant Biotechnol J. 2(2) : 113-125。
[0047] 大豆品种"沈农25104" ：辽宁东亚种子有限公司。
[0048] 实施例1、重组质粒的构建
[0049] 1、提取大豆品种"沈农25104"的总RNA并反转录为cDNA。
[0050] 2、以步骤1提取的cDNA为模板，用F1和R1组成的引物对进行PCR扩增，得到PCR 扩增产物（PCR扩增产物的琼脂糖凝胶电泳图见图1A)。
[0051] F1 :5, -AACCCGGG ATGACCACACAAGTACCACCAC-3，；
[0052] R1 :5' -AGAGCTCGAA TCATGCGGTTGCGGTTGTTGC-3'。
[0053] 3、用限制性内切酶Sma I和Sac I双酶切步骤3的PCR扩增产物，回收酶切产物。
[0054] 4、用限制性内切酶Sma I和Sac I双酶切载体REG-2-pGPTV-35S-HPT，回收约13kb 的载体骨架。
[0055] 5、将步骤3的酶切产物和步骤4的载体骨架连接，得到重组质粒 pGPTV-REG-2-GM-A。根据测序结果，对重组质粒pGPTV-REG-2-GM-A进行结构描述如下：在 载体REG-2-pGPTV-35S-HPT的Sma I和Sac I酶切位点之间插入了序列表的序列2所示的 GM-A基因，由REG-2启动子驱动GM-A基因表达序列表的序列1所示的GM-A蛋白。重组质 粒pGPTV-REG-2-GM-A的结构示意图见图2。
[0056] 6、以步骤1提取的cDNA为模板，用F2和R1组成的引物对进行PCR扩增，得到PCR 扩增产物（PCR扩增产物的琼脂糖凝胶电泳图见图IB )。
[0057] F2 :5, -AAGCCCGGG ACTATGACCACAGTGCCACCACA-3，；
[0058] R1 :5' -AGAGCTCGAA TCATGCGGTTGCGGTTGTTGC-3'。
[0059] 7、用限制性内切酶Sma I和Sac I双酶切步骤6的PCR扩增产物，回收酶切产物。
[0060] 8、用限制性内切酶Sma I和Sac I双酶切载体REG-2-pGPTV-35S-HPT，回收约13kb 的载体骨架。
[0061] 9、将步骤7的酶切产物和步骤8的载体骨架连接，得到重组质粒 pGPTV-REG-2-GM-B。根据测序结果，对重组质粒pGPTV-REG-2-GM-B进行结构描述如下：在 载体REG-2-pGPTV-35S-HPT的Sma I和Sac I酶切位点之间插入了序列表的序列4所示的 GM-B基因，由REG-2启动子驱动GM-B基因表达序列表的序列3所示的GM-B蛋白。重组质 粒pGPTV-REG-2-GM-B的结构示意图见图2。
[0062] 实施例2、转基因水稻的获得
[0063] 一、转基因水稻甲的获得
[0064] 1、将重组质粒pGPTV-REG-2-GM-A导入农杆菌EHA105,得到重组农杆菌。
[0065] 2、将步骤1得到的重组农杆菌转化野生型水稻Kitaake的胚性愈伤组织，利用潮 霉素筛选获得阳性植株(具体步骤参见文献：Hiei et al. 1994. Plant J. 6:271-282)。
[0066] 3、TQ代植株的鉴定
[0067] 分别将步骤2获得的各个阳性植株提取基因组DNA，用F3和R1组成的引物对进 行PCR鉴定，靶序列约为l.Okb。9株植株为PCR鉴定阳性，即获得了 9株?；代转基因植 株。9株?；代转基因植株的PCR鉴定电泳图见图3A (M为分子量标准，第1泳道为重组质 粒pGPTV-REG-2-GM-A，第2泳道为野生型水稻Kitaake，第3-11泳道为9株T Q代转基因植 株)。
[0068] F3 :5, -TTGCAACAACCCAGGAAAACACGGC-3，。
[0069] 分别提取各个?；代转基因植株的基因组DNA，用限制性内切酶EcoR I充分酶切后 进行琼脂糖凝胶电泳，然后进行Southern杂交(用于杂交的探针为序列表的序列6自5'末 端第417-972位核苷酸所示的HPT基因片段)。部分结果见图4。0GA3和0GA4代表不同的 L代转基因植株，可以观察到，两个植株中均能检测出杂交条带，并且杂交条带的数目和出 现的位置不完全相同，这表明GM-A基因已经成功整合到水稻基因组中，并且各个转基因植 株是相互独立的转化个体。
[0070] 4、?\代植株的获得和鉴定
[0071] 将?；代转基因植株（0GA3或0GA4)自交收获?\代种子，培育?\代种子得到?\代 植株。
[0072] 提取?\代种子的总RNA并反转录为cDNA，PCR鉴定GM-A基因的表达量(采用F1 和R1组成的引物对)，采用水稻OsActin-Ι基因为内参(采用的F4和R2组成的引物对；F4 : 5' -TCCATCTTGGCATCTCTCAG-3' ；R2 :5' -GTACCCGCATCAGGCATCTG-3'），PCR 鉴定电泳图见图 5。在转基因植株的?\代种子中，GM-A基因得到表达，而在野生型水稻Kitaake中未检测到 该基因的表达，这表明在转基因植株种子胚中，REG-2启动子可以有效、特异地驱动GM-A基 因的转录起始。
[0073] 提取?\代种子的总蛋白并进行Western杂交，见图6A。结果表明，GM-A基因得到 表达，而在野生型水稻Kitaake中未检测到该基因的表达。
[0074] 取!\代种子，进行in situ Western杂交检测(用刀片纵切为两半，依次进行封闭、 漂洗、一抗、漂洗、二抗、漂洗、BCIP/NBT显色反应、体视镜系统扫描照像)。照片见图7A。in situ Western杂交结果显示，GM-A基因在转基因植株中特异地在种子的胚和糊粉层部位表 达，而在野生型水稻Kitaake种子中未检测到GM-A基因的表达。
[0075] 5、T2代植株的获得和鉴定
[0076] 将?\代转基因植株自交收获Τ2代种子，培育Τ2代种子得到Τ 2代植株。
[0077] 提取Τ2代植株的总RNA并反转录为cDNA，用F1和R1组成的引物对进行PCR鉴定。 对于某一 ?\代植株，如果其抽样检测的T2代植株均PCR鉴定为阳性，则该植株为纯合的转 基因植株，该植株及其后代即为1个纯合的转基因株系（0GA3和0GA4代表不同的转基因株 系)。部分结果见图8Α (Μ为分子量标准，第1?6泳道为Τ2代植株)。
[0078] 6、将Τ2代转基因植株自交收获Τ3代种子，培育Τ 3代种子得到Τ3代植株。
[0079] 二、转基因水稻乙的获得
[0080] 1、将重组质粒pGPTV-REG-2-GM-B导入农杆菌ΕΗΑ105,得到重组农杆菌。
[0081] 2、将步骤1得到的重组农杆菌转化野生型水稻Kitaake的胚性愈伤组织，利用潮 霉素筛选获得阳性植株(具体步骤参见文献：Hiei et al. 1994. Plant J. 6:271-282)。
[0082] 3、TQ代植株的鉴定
[0083] 分别将步骤2获得的各个阳性植株提取总RNA并反转录为cDNA，用F3和R1组成 的引物对进行PCR鉴定，靶序列约为1. Okb。8株植株为PCR鉴定阳性，即获得了 8株?；代 转基因植株。8株?；代转基因植株的PCR鉴定电泳图见图3B(M为分子量标准，第1泳道为 重组质粒pGPTV-REG-2-GM-B，第2泳道为出发植株，第3-10泳道为8株?；代转基因植株)。
[0084] 分别提取各个?；代转基因植株的基因组DNA，用限制性内切酶EcoR I充分酶切后 进行琼脂糖凝胶电泳，然后进行Southern杂交(用于杂交的探针为序列表的序列6自5'末 端第417-972位核苷酸所示的HPT基因片段)。部分结果见图4。0GB6和0GB7代表不同的 L代转基因植株，可以观察到，两个植株中均能检测出杂交条带，并且杂交条带出现的位置 不完全相同，这表明GM-B基因已经成功整合到水稻基因组中，并且各个转基因植株是相互 独立的转化个体。
[0085] 4、?\代植株的获得和鉴定
[0086] 将?；代转基因植株（0GB6或0GB7)自交收获?\代种子，培育?\代种子得到?\代 植株。
[0087] 提取?\代种子的总RNA并反转录为cDNA，PCR鉴定GM-B基因的表达量(采用F2 和R1组成的引物对)，采用水稻OsActin-Ι基因为内参(采用的F4和R2组成的引物对)， PCR鉴定电泳图见图5。在转基因植株的?\代种子中，GM-B基因得到表达，而在野生型水 稻Kitaake中未检测到该基因的表达，这表明在转基因植株种子胚中，REG-2启动子可以有 效、特异地驱动GM-B基因的转录起始。
[0088] 提取1\代种子的总蛋白并进行Western杂交，见图6B。结果表明，GM-B基因得到 表达，而在野生型水稻Kitaake中未检测到该基因的表达。
[0089] 取!\代种子，进行in situ Western杂交检测(用刀片纵切为两半，依次进行封闭、 漂洗、一抗、漂洗、二抗、漂洗、BCIP/NBT显色反应、体视镜系统扫描照像)。照片见图7B。in situ Western杂交结果显示，GM-B基因在转基因植株中特异地在种子的胚和糊粉层部位表 达，而在野生型水稻Kitaake种子中未检测到GM-B基因的表达。
[0090] 5、T2代植株的获得和鉴定
[0091] 将?\代转基因植株自交收获Τ2代种子，将Τ2代种子培育得到Τ2代植株。提取Τ 2 代植株的总RNA并反转录为cDNA，用F2和R1组成的引物对进行PCR鉴定。对于某一 ?\代 植株，如果其抽样检测的Τ2代植株均PCR鉴定为阳性，则该植株为纯合的转基因植株，该植 株及其后代即为1个纯合的转基因株系（0GB6和0GB7代表不同的转基因株系)。部分结果 见图8Β (Μ为分子量标准，第1?5泳道为Τ2代植株)。
[0092] 6、将Τ2代转基因植株自交收获Τ3代种子，将Τ3代种子培育得到Τ 3代植株。
[0093] 三、转空载体对照植株的获得
[0094] 用载体REG-2-pGPTV-35S-HPT代替重组质粒pGPTV-REG-2-GM-A，按照步骤一的方 法进行，得到转空载体对照植株。
[0095] 实施例3、转基因植株的鉴定
[0096] 一、Τ2代转基因水稻种子油脂含量分析
[0097] 将转基因植株甲（0GA3或0GA4 )的Τ2代种子、转基因植株乙（0GB6或0GB7 )的Τ2代 种子、转空载体对照植株的Τ2代种子和野生型水稻Kitaake的种子分别进行如下操作：（1) 将种子用研钵研磨成细粉，称取约3g粉末(称重，W1)加入事先装有5mL异丙醇的带塞玻璃 试管中，充氮气后密封；（2)将试管放在70°C水浴30分钟，氮气吹干后加入5. 8mL甲醇-氯 仿-水的混合液（甲醇：氯仿：水=2 :2 :1. 8 ;体积比)，充分振荡5分钟，室温下10, OOOrpm离 心10分钟，将下相溶液小心移至新的玻璃试管中；（3)在上相溶液中加入2. OmL甲醇-氯 仿-水的混合液（甲醇：氯仿：水=1 :2 :0.8 ;体积比)，充分振荡5分钟，室温下10,000rpm离 心10分钟，将下相溶液小心移至新的玻璃试管中；（4)在上相溶液中加入2. OmL甲醇-氯 仿-水的混合液（甲醇：氯仿：水=1 :2 :0. 8 ;体积比)，充分振荡5分钟，室温下10, OOOrpm 离心10分钟，将下相溶液小心移至新的玻璃试管中；（5)将步骤（2)得到的下相溶液、步骤 (3)得到的下相溶液和步骤（4)得到的下相溶液混合于试管中（预先对试管称重，为W2)，氮 气吹干，干燥24小时后称重(试管和试管内残余物的总重为W3)。
[0098] 油脂含量（％) = (W3-W2) /W1 X 100%。
[0099] 0GA3的T2代种子中的油脂含量为2. 91%。
[0100] 0GA4的Τ2代种子中的油脂含量为3. 24%。
[0101] 0GB6的Τ2代种子中的油脂含量为2. 82%。
[0102] 0GB7的Τ2代种子中的油脂含量为3. 44%。
[0103] 野生型水稻Kitaake的种子中的油脂含量为2. 54%。
[0104] 转空载体对照植株的T2代种子中的油脂含量为2. 55%。
[0105] 各个株系的油脂含量比较见图9Α。较之野生型水稻Kitaake种子中的油脂含量， 0GA3、0GA4、0GB6和0GB7的T 2代种子中的油脂含量分别增加了 14. 57%、27. 56%、11. 02%和 35. 43%。
[0106] 二、Τ3代转基因水稻种子油脂含量分析
[0107] 将转基因植株甲（0GA3或0GA4)的Τ3代种子、转基因植株乙（0GB6或0GB7)的Τ 3 代种子、转空载体对照植株的Τ3代种子和野生型水稻Kitaake的种子分别进行步骤一的操 作。
[0108] 0GA3的T3代种子中的油脂含量为3. 13%。
[0109] 0GA4的Τ3代种子中的油脂含量为3. 30%。
[0110] 0GB6的Τ3代种子中的油脂含量为2. 88%。
[0111] 0GB7的Τ3代种子中的油脂含量为3. 52%。
[0112] 野生型水稻Kitaake的种子中的油脂含量为2. 41%。
[0113] 转空载体对照植株的T2代种子中的油脂含量为2. 43%。
[0114] 各个株系的油脂含量比较见图9Β。较之野生型水稻Kitaake种子中的油脂含量， 0GA3、0GA4、0GB6和0GB7的T 3代种子中的油脂含量分别增加了 29. 88%、36. 93%、19. 50%和 46.06%。
【权利要求】
1. 一种表达盒，包括植物胚特异性启动子和油体蛋白的编码基因。
2. 如权利要求1所述的表达盒，其特征在于：所述油体蛋白为植物油体蛋白。
3. 如权利要求2所述的表达盒，其特征在于：所述植物油体蛋白为GM-A蛋白或GM-B蛋 白； 所述GM-A蛋白为如下（a)或（b): (a) 由序列表中序列1所示的氨基酸序列组成的蛋白质； (b) 将序列表中序列1所示的氨基酸序列经过一个或几个氨基酸残基的取代和/或缺 失和/或添加且与植物种子含油量相关的由序列1衍生的蛋白质； 所述GM-B蛋白为如下（c)或（d): (c) 由序列表中序列3所示的氨基酸序列组成的蛋白质； (d) 将序列表中序列3所示的氨基酸序列经过一个或几个氨基酸残基的取代和/或缺 失和/或添加且与植物种子含油量相关的由序列1衍生的蛋白质。
4. 如权利要求3所述的表达盒，其特征在于：所述油体蛋白的编码基因为GM-A基因或 GM-B基因； 所述GM-A基因为如下（1)或（2)或（3)所述的DNA分子： (1) 序列表中序列2所不的DNA分子； (2) 在严格条件下与（1)限定的DNA序列杂交且编码与植物种子含油量相关的蛋白的 DNA分子； (3) 与（1)限定的DNA序列至少具有90%以上同源性且编码与植物种子含油量相关的 蛋白的DNA分子； 所述GM-B基因为如下（4)或（5)或（6)所述的DNA分子： (4) 序列表中序列4所示的DNA分子； (5) 在严格条件下与（4)限定的DNA序列杂交且编码与植物种子含油量相关的蛋白的 DNA分子； (6) 与（4)限定的DNA序列至少具有90%以上同源性且编码与植物种子含油量相关的 蛋白的DNA分子。
5. 如权利要求1至4中任一所述的方法，其特征在于：所述植物胚特异性启动子为 REG-2启动子，具体为如下（7)或（8)或（9)所述的DNA分子： (7) 序列表中序列5所示的DNA分子； (8) 在严格条件下与（7)限定的DNA序列杂交且具有启动子功能的DNA分子； (9) 与（7)限定的DNA序列至少具有90%以上同源性且具有启动子功能的DNA分子。
6. 含有权利要求1至5中任一所述表达盒的重组载体、转基因细胞系或重组菌。
7. 权利要求1至5中任一所述的表达盒，或权利要求6所述的重组载体在培育种子油 脂含量增高的转基因植物中的应用。
8. 如权利要求7所述的应用，其特征在于：所述植物为单子叶植物或双子叶植物。
9. 一种培育转基因植物的方法，包括如下步骤：将权利要求1至5中任一所述的表达 盒导入出发植物，得到种子油脂含量高于所述出发植物的转基因植物。
10. 如权利要求9所述的方法，其特征在于：所述出发植物为单子叶植物或双子叶植 物。
【文档编号】C12N15/82GK104232654SQ201310226002
【公开日】2014年12月24日 申请日期:2013年6月7日 优先权日:2013年6月7日
【发明者】曲乐庆, 刘文献 申请人:中国科学院植物研究所