一种含有芽孢杆菌菌株的对虾饲料及其应用
【专利摘要】本发明公开了一种含有芽孢杆菌菌株的对虾饲料，其特征在于它是由对虾饲料、芽孢杆菌菌株发酵液、海藻酸钠组成，其中每100g对虾饲料中添加10g海藻酸钠，添加芽孢杆菌菌株发酵液20mL，至菌体终浓度为3~6×107个/g；所述的芽孢杆菌菌株为Bacillus sp.B1菌株，保藏编号为CGMCC No：11752。本发明利用芽孢杆菌为饲料添加剂制作对虾食用饲料，饲喂结果显示食用添加芽孢杆菌饲料的对虾相对于食用普通饲料的对虾生长速度大幅提高且免疫力增加明显，利用芽孢杆菌制作饲料，生产周期短，生产成本低，易于控制生长条件，抗菌活性高且可明显增强免疫力等诸多优点，完全具有工业化生产的潜力，具有较好的生产应用前景。CGMCC No：1175220151127
【专利说明】
一种含有芽孢杆菌菌株的对虾饲料及其应用
[0001] 本发明得到973项目"对虾白斑综合征防治的免疫学途径和关键技术原理"，项目 号2012CB114405以及天津师范大学生物学优秀青年教师资助项目，项目号ZX110QN008的资 助。
技术领域
[0002] 本发明涉及一种含有芽孢杆菌菌株的对虾饲料及其应用，属于生物工程技术领 域。
【背景技术】
[0003] 凡纳滨对奸(/^(〇/7&〇3郎5 ra/ioa?ei)，又称南美白对奸（/fAiie Prar/?)，凡纳滨对 虾肉质鲜美，并且与中国明对虾和斑节对虾并称为世界三大虾，在我国的对虾养殖业中占 有极其重要的作用。但是随着凡纳滨对虾集约化养殖的发展，对虾疾病的爆发已经对凡纳 滨对虾的养殖构成严重的危害。为解决这一问题，人们最初采用抗生素来控制对虾疾病，但 是抗生素的使用只能起到暂时控制，随着使用时间的增长，大量病原菌产生了抗药性，更加 难以控制。抗生素的使用还会对凡纳滨对虾肠道及周围水环境中的的有些微生物造成损 害，破环微生态的平衡，而且会产生由抗生素残留导致的食品安全问题，从而对人类造成潜 在的危害。鉴于细菌在自然界生物类群中的地位和作用，许多学者开始相关的研究，将细菌 以活的微生物添加剂即益生菌添加到饲料中，通过改善与动物相关的或其周围的微生物群 落，确保增加饲料的利用或增强其营养价值，增强动物对疾病的应答或改善其周围环境的 水质从而有益于动物生长，并有望替代抗生素成为一个重要的研究方向。
【发明内容】
[0004] 本发明为了解决现有的水产高密度养殖模式容易导致养殖病害频发及养殖水体 严重恶化等诸多问题，提供一株具有产消化酶活性的菌株及其筛选方法和应用，该菌株是 从凡纳宾对虾肠道分离筛选的一株新的菌株，具有抗菌活性及产生蛋白酶、淀粉酶及脂肪 酶活性，可用于改善水产动物的生长性能。
[0005] 本发明的目的是通过以下技术方案得以实现： 一种含有芽孢杆菌菌株的对虾饲料，其特征在于它是由对虾饲料、芽孢杆菌菌株发酵 液、海藻酸钠组成，其中每l〇〇g对虾饲料中添加 l〇g海藻酸钠，添加芽孢杆菌菌株发酵液 20ml，至终浓度为3~6 X 107CFU/g;所述的芽孢杆菌菌株为邓.扮菌株，保藏编号 为CGMCC No:11752〇
[0006] 本发明进一步公开了含有芽孢杆菌菌株的对虾饲料在提高对虾生长速度方面的 应用。特别是对虾饲料在增强对虾免疫力方面的应用。所述的增强对虾免疫力指的是:对虾 受到病原菌鳗弧菌感染72h内的累计死亡率。
[0007] 本发明的菌株为属的芽孢杆菌)，命名为 SjO. A/，已于2015年11月27日保藏于中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心，保藏 编号为CGMCC No: 11752。保藏单位地址:北京市朝阳区北辰西路1号院3号，中国科学院微生 物研究所。
[0008] 本发明的扮菌株的生物学特性如下： 芽孢杆菌(feciWtAS印.），命名为印.扮的菌落不透明且有皱褶和隆起，表 面湿润，呈灰白色，菌落轮廓清晰，菌体易挑起，其菌落形态见图1，显微镜下菌体呈杆状，芽 孢着生于营养体细胞中间，细胞形态见图2 JaciDus S/7.B1菌株属于革兰氏阳性菌，最适 生长温度28 °C，最适生长pH值为7。其生理生化特性如下：能分解葡萄糖、果糖、蔗糖，不分解 木糖、甘露醇、阿拉伯糖，不利用尿素、丙二酸盐，能液化明胶，硝酸盐还原酶及过氧化氢酶 阳性，鸟氨酸脱羧酶、赖氨酸脱羧酶、氧化酶、吲哚试验均为阴性。不产溶血毒素，对常用抗 生素美洛西林、阿洛西林、头孢噻肟、头孢吡肟、杆菌肽、庆大霉素、红霉素、麦迪霉素、四环 素、氯霉素等敏感，药敏试验采用纸片琼脂扩散法，抗菌药物纸片购于杭州微生物试剂有 限公司。
[0009] 另外，本发明所述菌株5aciDus S/7.扮还具有较强的产消化酶的活性，其中蛋白 酶、淀粉酶及脂肪酶的活性菌较高，其三种消化酶活性见图3。
[0010] 本发明所述ifeciDus SjO.Bl菌株的16S rRNA序列如SEQ. N01所示。
另外，本发明所述菌株具有较强的产消化酶的活性，其中蛋白酶、淀 粉酶及脂肪酶的活性均较高，其三种消化酶活性见图3。
[0012]本发明进一步公开了具有产消化酶活性的菌株的筛选方法，所述的菌株为 5aciDus S/7. 菌株，该方法包括以下步骤： A、无菌条件下取对虾的全肠于匀浆器中，冰浴研磨，用九盐溶液进行梯度稀释，将各稀 释液取O.lmL涂布在芽孢杆菌分离培养基上，28 °C恒温培养后，挑取单菌落于芽孢杆菌固体 培养基上反复划线进行纯化获得单菌落纯培养物。
[0013] B、在上述的具有抗菌活性的菌株的筛选方法中，所述的芽孢杆菌分离培养基采用 海水配制。采用海水配置培养基因渗透压没有发生变化，从而保证了海源微生物菌株在筛 选中不会丢失。
[0014] D、将得到的单菌落分别点种于脂肪培养基、脱脂牛乳琼脂培养基和淀粉培养基 上，根据菌落能否产生红斑、蛋白水解圈以及淀粉水解圈筛选能分泌脂肪酶、蛋白酶及淀粉 酶的菌株。
[0015] E、在上述的具有产消化酶活性的菌株的筛选方法中，所述的脂肪培养基、脱脂牛 乳琼脂培养基和淀粉培养基均采用九盐溶液配制。采用海水配制培养基因渗透压没有发生 变化，从而保证了海源微生物菌株在筛选中不会丢失。
[0016] 在上述的具有抗菌及消化酶活性的菌株的筛选方法中，所述的芽孢杆菌分离培养 基采用常规的培养基即可。作为优选，所述芽孢杆菌分离培养基采用九盐溶液配制，且所述 芽孢杆菌分离培养基包括以下成分的重量配比：蛋白胨l〇g/L，酵母膏5g/L，葡萄糖3.5g/L， NaCl 5g/L，K2HP〇4 0.5g/L，MgS〇4 3g/L，MnS〇4 0.025g/L,琼脂 15g/L ρΗ7·4~7.6。
[0017] 在上述的具有抗菌活性的菌株的筛选方法中，作为优选，步骤B中所述指示菌为 Vibrio anguillarum (暢弧菌，购买于中国科学院微生物研究所，在天津师范大学水生生 物实验室保存）。
[0018] 在上述的具有抗菌及消化酶活性的菌株的筛选方法中，步骤E中所述脂肪培养基 采用本领域常规的原料配比即可。作为优选，所述的脂肪培养基采用九盐溶液配制，且所述 脂肪培养基包括以下成分的重量配比：营养琼脂l〇〇〇ml，花生油10g，l.6%的中性红lml。
[0019] 在上述的具有抗菌及消化酶活性的菌株的筛选方法中，步骤E中所述脱脂牛乳琼 脂培养基采用本领域常规的原料配比即可。作为优选，所述的脱脂牛乳琼脂培养基采用九 盐溶液配制，且所述脱脂牛乳琼脂培养基包括以下成分的重量配比：营养琼脂l〇〇〇ml，脱脂 牛乳 100ml，pH7.4。
[0020] 在上述的具有抗菌及消化酶活性的菌株的筛选方法中，步骤E中所述淀粉培养基 采用本领域常规的原料配比即可。作为优选，所述的淀粉培养基采用九盐溶液配制，且所述 淀粉培养基包括以下成分的重量配比：可溶性淀粉l〇g/L，蛋白胨10g/L，酵母提取物5g/L， K2HPO4 lg/L，MgS〇4*7H20 0.2g/L，NaCl 10g/L，琼月旨 18g/L〇
[0021] 本发明更进一步公开了芽孢杆菌菌株在制备抑菌活性方面的应用;所述的抑菌活 性指的是对暢弧菌（Ki/?rio a/^uiDar?)的抑制。以及芽孢杆菌菌株在制备产消化酶活性 方面的应用，其中所述的消化酶指的是:蛋白酶、淀粉酶及脂肪酶。实验结果显示:本发明的 菌株为feciDus SjO.iL/菌株，所述ifeciDus SjO.iL/菌株用于制备水产动物的微生物制剂。 由于扮菌株具有较强的抗菌活性及产脂肪酶、蛋白酶、淀粉酶的活性。因此， 可以用于制备水产动物养殖的饲料添加剂及改善养殖水体的微生态制剂。
[0022] 本发明公开的芽孢杆菌菌株与现有技术相比所具有的积极效果在于： 本发明的具有抗菌活性的菌株，是本发明人从对虾肠道中筛选的一株新的菌株，该菌 株为扮菌株，具有较强的产消化酶活性，提供了一种新的海源动物肠道微生 物，为利用动物内源性活性菌株用于水产动物养殖中的病害防治、提高水产动物对饲料的 消化吸收率以及改善水质等方面提供新方法，促进水产养殖业的良性发展。
[0023]
【附图说明】： 图1是本发明芽孢杆菌菌株的菌落形态图； 图2是本发明芽孢杆菌菌株的显微(100X)照片图； 图3是本发明芽孢杆菌菌株的3种消化酶活性图；其中(a)蛋白酶阳性，（b)淀粉酶阳性， (c)脂肪酶阳性； 图4 (a-e)是对虾血细胞中相关免疫基因的的定量测定结果;其中（a)超氧化物歧化酶 基因相对表达量图，（b)酚氧化酶原基因相对表达量图，（c)抗菌肽基因相对表达量图，（d) 溶菌酶基因相对表达量图，（e)细胞粘附因子基因相对表达量图； 图5(a_f)是对虾血浆相关免疫相关酶活力测定结果;其中（a)酸性磷酸酶活力图，（b) 过氧化氢酶活力图，（c)溶菌酶活力图，（d)过氧化物酶活力图，（e)超氧化物歧化酶活力 图，（f)酚氧化酶活力图； 图6(a_c)是对虾肠道消化酶活力的测定结果;其中（a)蛋白酶活力图，（b)淀粉酶活 力图，（c)脂肪酶活力图； 图7对虾体重增加率图； 图8是攻毒试验后对虾死亡率统计结果。
【具体实施方式】
[0024] 下面通过具体的实施方案叙述本发明。除非特别说明，本发明中所用的技术手段 均为本领域技术人员所公知的方法。另外，实施方案应理解为说明性的，而非限制本发明的 范围，本发明的实质和范围仅由权利要求书所限定。对于本领域技术人员而言，在不背离本 发明实质和范围的前提下，对这些实施方案中的物料成分和用量进行的各种改变或改动也 属于本发明的保护范围。
[0025]本发明所用到的原料来源如下：
实施例1 本实施例中所用的凡纳滨对虾取自天津市汉沽区鑫永丰对虾养殖场； 本实施例中所用的芽孢杆菌分离培养基采用九盐溶液配制； 本实施例中所用的芽孢杆菌分离培养基包括以下成分的重量配比:蛋白胨l〇g/L，酵母 膏5g/L，葡萄糖3.5g/L，NaCl 5g/L，K2HP〇4 〇.5g/L，MgS〇4 3g/L，MnS〇4 〇.〇25g/L，琼脂 15g/L ρΗ7·4~7·6〇
[0026] 本实施例的印.扮菌株的筛选方法： 菌株的分离纯化:无菌条件下取对虾的全肠于匀浆器中，冰浴研磨，用九盐溶液对研磨 液进行ΠΓ1~10-8的梯度稀释;选取梯度为10-3~10-7的稀释液各O.lmL涂布在芽孢杆菌分 离培养基上;28 °C恒温培养24~48h;取单菌落在芽孢杆菌分离培养基上进行3~5次连续划 线分离纯化，获得的纯化后的菌株分别在4°C及_80°C下进行短期及长期保存。
[0027] 对纯化后的菌株进行消化酶活性试验： A、将纯化后的菌株转接液体培养基中28 °C恒温振荡培养过夜，用无菌的镊子夹取无菌 滤纸片置于培养液中浸透菌液，放置在制备好的脱脂牛乳培养基的对应位置上，28°C恒温 培养24h，对能分解蛋白质而产生透明圈的菌株进行筛选。
[0028] B、将纯化后的菌株转接液体培养基中28°C恒温振荡培养过夜，用无菌的镊子夹取 无菌滤纸片置于培养液中浸透菌液，放置在制备好的淀粉培养基的对应位置上，28°C恒温 培养24h，碘液覆盖后对能分解淀粉而产生透明圈的菌株进行筛选。
[0029] C、将纯化后的菌株转接液体培养基中28°C恒温振荡培养过夜，用无菌的镊子夹取 无菌滤纸片置于培养液中浸透菌液，放置在制备好的脂肪培养基的对应位置上，28°C恒温 培养24h，对能分解脂肪而形成红色的菌株进行筛选。
[0030] 本实施例中所用的脱脂牛乳培养基包括以下成分的重量配比：营养琼脂1000ml， 脱脂牛乳100ml，pH7.4。
[0031] 本实施例中所用的淀粉培养基包括以下成分的重量配比：可溶性淀粉10g/L，蛋白 胨 10g/L，酵母提取物5g/L，K2HP〇4 lg/L，MgS〇4.7H20 0.2g/L，NaCl 10g/L，琼脂 18g/L。
[0032] 本实施例中所用的脂肪培养基包括以下成分的重量配比：营养琼脂1000ml，花生 油10g，l.6%的中性红lml。经上述方法筛选，最终得到具有产三种消化酶活性的菌株 53(^2仏5 5/7.扮，该菌株已于2015年11月27日保藏于中国微生物菌种保藏管理委员会普通 微生物中心，保藏编号为CGMCC No:11752。
[0033] 实施例2 选取上述实施例得到的本发明具有产消化酶活性的feciDus SjO.jW菌株进行鉴定和 分析，具体鉴定和分析方法以及相应的鉴定结果如下所示。
[0034]采用上述实施例的方法筛选得到的具有产消化酶活性的feciDus SjO.iL/菌株接 种到芽孢杆菌分离培养基平板上，在28°C条件下倒置培养24h，观察其菌落的生长状态，菌 株形态及生理生化试验参照工业微生物试验技术手册(诸葛健、王正祥，工业微生物试验技 术手册[M]，中国轻工业出版社，1994年)和伯杰氏细菌鉴定手册(R.E布坎南，N.E吉本斯，伯 杰氏细菌鉴定手册[M]，科学出版社，北京，1984年）。在恒温培养箱中观察其在4°C~50°C间 的生长情况。
[0035] 上述ifeciDus S/7.菌株形态学及生理生化特征的鉴定结果表明： 如图1所示，本发明的扮菌株的菌落不透明且有皱褶和隆起，表面湿润， 呈灰白色，菌落轮廓清晰，菌体易挑起，显微镜下菌体呈杆状，芽孢着生于营养体细胞中间 细胞形态见图2 JaciDus S/7.B1菌株属于革兰氏阳性菌，最适生长温度28°C，最适生长pH 值为7。能分解葡萄糖、果糖、蔗糖，不分解木糖、甘露醇、阿拉伯糖，不利用尿素、丙二酸盐， 能液化明胶，硝酸盐还原酶及过氧化氢酶阳性，鸟氨酸脱羧酶、赖氨酸脱羧酶、氧化酶、吲哚 试验均为阴性。不产溶血毒素，对常用抗生素美洛西林、阿洛西林、头孢噻肟、头孢吡肟、杆 菌肽、庆大霉素、红霉素、麦迪霉素、四环素、氯霉素等敏感。
[0036] 实施例3 本发明的邓.扮菌株的分子生物学研究，即本发明菌株的16s rRNA的PCR扩 增采用本领域常规的方法即可，需要说明的是PCR反应模版的获得。
[0037] 模板的获取：采用上述实施例的方法筛选得到的具有抗菌活性和消化酶活性的 扮菌株的纯化培养物接种到芽孢杆菌分离液体培养基中，28°C振荡培养24h， 制备菌悬液。取30yL的菌悬液与70yL的超纯水混勾，100°C加热5min，2000rpm离心10min，取 上清作为PCR反应的模板。
[0038] 上述实施例中PCR扩增采用的引物为通用引物，由华大基因公司合成，引序列如 下： 5，-ACAAGCCCTGGAAACGGGGT-3，； 5 '-CACCAGGAATTCCGATCT-3 '； PCR扩增反应的条件为:94°C预变性4min，进入循环，94°C变性30s，50 °C退火lmin，72 °C 延伸2min，30个循环，72°C延伸lOmin后保存4°C状态。PCR产物由华大基因公司完成测序，测 序结果如SEQ ID NO: 1所示。将本发明的芽孢杆菌菌株的16s rRNA基因序列进行同源性分 析，该菌株与ifeciDus S/7.同源性最高，同源性可达100%。
[0039] 实施例4 本发明的印.扮菌株的生产应用研究。
[0040] 所述feciWus 菌株在生产中的应用是feciWus 菌株添加到饲料原 粉中，喂食给凡纳滨对虾一定时期，观察并测定其生长状态和自身免疫力的相对变化。具体 方法如下： 本发明的ifeciWtAS 扮菌株于液体芽孢杆菌分离培养基中进行逐级扩大培养，制备 大量菌株的发酵液，同时测定发酵液的细胞浓度。
[0041 ]将扩大培养的发酵液添加到对虾饲料原粉中制作饲料，制作饲料的方法如下： 将制备的菌株的发酵液按照比例添加到饲料原粉中，使饲料中细菌的浓度为3~6 X 107CFU/g，在饲料的制备过程中按照每100g饲料中添加10g海藻酸钠的比例添加海藻酸钠， 利于饲料成型。使饲料原粉与菌液和海藻酸钠充分混合均匀。饲料加工。将混合好的饲料揉 成团状，用颗粒剂机制直径为2mm的颗粒。饲料每7天制备一次，制备量随凡纳滨对虾的生长 而不断增加。
[0042]饲喂： 将制备好的饲料喂食对虾，分为试验组和对照组，每组投放600尾重约3.5g的凡纳滨对 虾。按凡纳滨对虾体重的5%投放饲料，每天投喂4次。记录水质的变化，并及时换水，防治残 饵在水中时间过长引起水质变化影响凡纳滨对虾的生长和健康。
[0043] 取样与处理:每7天为一个周期，进行一次取样，取样时每组随机取30~40尾凡纳滨 对虾并记录凡纳滨对虾的体重;从凡纳滨对虾围心腔处抽取血淋巴，按照1:1的比例加入抗 凝剂，并在4°C，800g离心10min，获得血细胞和血清。将血细胞中加入lmL Trizol置于-80°C 保存，血清置于4°C待用;取凡纳滨对虾的肠道，去除粪便后用试剂盒中的酶提取缓冲液，研 磨制备组织样品。
[0044] 本实施例中所用的抗凝剂包括以下成分的配比： KC1:10 mM;NaCl:450 mM;HEPES:10 mM;EDTA(Na2):10 mM;PH:7.45。
[0045] 喂食印.价菌株对虾各项生理指标的测定：用取样所得的血细胞提取 RNA，反转为cDNA，以其为模板运用实时荧光定量的方法测定对虾相关免疫基因酚氧化酶原 基因、超氧化物歧化酶基因、溶菌酶基因、细胞黏附因子基因和抗菌肽基因的定量表达，具 体测定方法见实施例5。对喂食邓.扮菌株组对虾及对照组对虾的血液及肠道进 行取样，所得的血清和肠道组织研磨液，用试剂盒(苏州科铭试生物试剂有限公司）测定试 验组对虾非特异性免疫相关酶活性，具体包括:酚氧化酶、过氧化物酶、酸性磷酸酶、超氧化 物歧化酶S0D、过氧化氢酶及溶菌酶活力的测定，测定方法见实施例6。对喂食feciWt/s 句7.扮菌株组对虾及对照组对虾的肠道进行取样，所得的肠道组织研磨液，用试剂盒(苏州 科铭试生物试剂有限公司）测定试验组对虾肠道蛋白酶、淀粉酶及脂肪酶活力的变化，具体 测定方法见实施例7。此外，还测定了喂食ifeciDus SjO.iL/菌株组对奸及对照组对奸的体重 变化差异，以及在受到病原菌刺激的情况下死亡率的差异，具体测定方法分别见实施例8和 实施例9。
[0046] 实施例5 喂食印.扮菌株后，对虾相关免疫基因表达量的变化： RNA的提取:将上述取样的对虾血细胞，加入lmL Trizol; 4°C，12000g离心10 min;取 上清，静置5分钟，使其完全裂解。然后加200yL氯仿，剧烈振荡15s，室温静置 12000g，离心15min，离心后分三相：下层浅红色酸，氯仿相是蛋白质，中间相是DNA，上层无 色水相是RNA。取无色水相，加500yL异丙醇，轻轻混匀，静置15min，沉淀1?祖。4°(：，12000 8离 心10 min，弃上清倒置控干；加入lmL75%的乙醇，用枪头轻揉吹打使RNA漂浮起来；4°C、 7500g离心6 min，弃上清倒置控干约15 min;加入适量的DEPC水，在55°C中水浴5 min后置 于-80°C冰箱中保存。提取的血细胞总RNA经1%甲醛琼脂糖凝胶电泳与NAN0Drop2000进行定 性和定量检测，确认RNA完整性后用于cDNA的合成。
[0047] 第一链cDNA的合成：以2yg凡纳滨对虾血细胞总RNA为反转录模板401^(5'_ GGCCACGCGTCGACTAGTAC(T) 16-3 '）为反转引物，根据以下反应合成第一链cDNA: 表1第一链cDNA反应体系
相关免疫基因的定量测定:将上述得到的cDNA作为Real-time PCR的模板，以#actin 作为内参引物，Real-time PCR的反应体系为:95°C预变性30s，一个循环；95°C变性5s，60 °C退火30s，40个循环;最后经60°C升温到95°C，每个循环上升0.5°C进行融解曲线分析。所 获得的数据经统计分析后使用2_AACt法计算，采用t检验分析目的基因显著性差异所用 不同免疫基因的引物序列如下。
[0048]表2实验用引物
试验结果显示，喂食添加本发明的ifeciWtAS印.扮菌株饲料的对虾的免疫基因的表达 量呈上调趋势，同时试验组比对照组的免疫基因表达量明显增加，具体结果见图4,从分子 的水平证明了喂食添加本发明的菌株饲料的对虾的免疫力明显提高。
[0049] 实施例6 养殖对虾相关免疫酶活的测定:所取样本中蛋白含量测定用购于苏州科铭试生物试剂 有限公司的考马斯亮蓝试剂盒。
[0050] 蛋白质含量(yg/mL)=标准蛋白质浓度X (A测定-A空白）/(A标准-A空白）。
[0051]酚氧化酶活力的测定：酚氧化酶活力的测定使用苏州科铭生物有限公司的试剂 盒，按照试剂盒说明书进行操作。本试验定义每mg蛋白在反应体系中使525nm处吸光值变化 0.01为一个酶活力单位。
[0052] 酸氧化酶活力(U/mg prot)=反应总体积/样本体积/反应时间/0.01 X (A测定-A对 照)/蛋白质浓度(mg/mL )。
[0053]过氧化物酶活力的测定:过氧化物酶活力的测定使用苏州科铭生物有限公司的试 剂盒，按照试剂盒说明书进行操作。本试验定义每mL血清在反应体系中没分钟A470变化 0.01为一个酶活力单位。
[0054]过氧化物酶活力(U/mL)=反应总体积/样本体积/0.01 X Δ A 酸性磷酸酶活力的测定：酸性磷酸酶活力的测定使用苏州科铭生物有限公司的试剂 盒，按照试剂盒说明书进行操作。本试验定义37°C中每毫升血液每分钟催化产生Ιμπιο?酚为 一个酶活力单位。
[0055] 酸性磷酸酶活力(U/mL)= [C标准品X (Α测定管-Α对照管）+ (Α标准管-Α空白管） ><￥反总]+￥样><￥样总+ 1'。
[0056]超氧化物歧化酶S0D活力的测定:超氧化物歧化酶活力的测定使用苏州科铭生物 有限公司的试剂盒，按照试剂盒说明书进行操作。本试验定义在黄嘌呤氧化酶偶联反应体 系中抑制率为50%时，反应中的S0D酶活力为一个酶活力单位。
[0057] 抑制百分率=(A对照管-A测定管)/A对照管X 100% S0D活性(U/mL )=抑制百分率八1 -抑制百分率） 过氧化氢酶活力的测定:过氧化氢酶活力的测定使用苏州科铭生物有限公司的试剂 盒，按照试剂盒说明书进行操作。本试验定义每毫升血清每秒分解lymol的过氧化氢的量为 一个活力单位。
[0058] 过氧化氢酶活力(U/mL)=(A对照-Α测定）Χ271/(60Χ取样量）Χ样本测试前稀释 倍数。
[0059] 溶菌酶活力的测定：以溶壁微球菌(Micrococcus lysoleikticus)冻干粉(南京建 成生物工程研究所生产）为底物，用0.1M pH6.4的磷酸钾缓冲液配制底物悬液，使0D570nm ~0.3~0.5。在96孔板中加入血清和菌悬液，血清：均血液=1:10，测定570nm出的吸光值即 为初始吸光值A0。37 °C水浴15min，冰浴3min，测定570nm出的吸光值即为A。溶菌酶活力(U/ mL)=(A0_A)/A〇
[0060] 试验结果显示，喂食添加本发明的邓.价菌株饲料对虾的酚氧化酶、过 氧化物酶、酸性磷酸酶、超氧化物歧化酶S0D、过氧化氢酶及溶菌酶活力等特异及非特异免 疫酶活相对于对照组对虾均有不同程度的提高，具体结果见图5,从酶活的水平证明了喂食 添加本发明的#.Β1菌株饲料的对虾的免疫力明显提高。
[0061] 实施例7 养殖对虾肠道消化酶活力的测定方法如下： A、蛋白酶活力的测定:蛋白酶活力的测定使用苏州科铭生物有限公司的试剂盒，按照 试剂盒说明书进行操作。本试验定义30°C每毫克蛋白每分钟水解产生lwnol酪氨酸为一个 活力单位。
[0062] 蛋白酶活力(U/mg prot)=C标准品X (A测定-A空白）/(A标准-A空白）X稀释倍数/ (蛋白质含量X待测物的体积）。
[0063] B、淀粉酶活力的测定:淀粉酶活力的测定使用苏州科铭生物有限公司的试剂盒， 按照试剂盒说明书进行操作。本试验定义每mg组织蛋白每分钟催化产生lmg还原糖为一个 酶活力单位。
[0064] 淀粉酶活力(U/mg prot)=89.4X(A测定管-A对照管+0.022)/蛋白质含量 C、脂肪酶活力的测定:脂肪酶活力的测定使用苏州科铭生物有限公司的试剂盒，按照 试剂盒说明书进行操作。本试验定义37°c中每毫克蛋白每分钟水解橄榄油生成Ιμπιο?脂肪 酸为一个酶活力单位。
[0065] 脂肪酶活力(U/mg prot)=[C标准品XV标准品X (Α测定管-Α空白管)/(Α标准关-Α 空白管）V(蛋白含量X上清总体积/加入到反应体系的上清体积)/反应时间. 试验结果显示，喂食添加本发明的扮菌株饲料对虾肠道的蛋白酶、淀粉 酶及脂肪酶活力相对于对照组对虾均有不同程度的提高，具体结果见图6,表明喂食添加本 发明的5a c i ? us s/7. B1菌株饲料的对奸对饲料的消化吸收能力明显提高。
[0066] 实施例8 养殖对虾体重增加率的测定:试验开始前，每组养殖池中随机取出50尾凡纳滨对虾，测 定其体重，并进行记录Μ0，饲喂试验结束后，每组养殖池中随机取50尾测定其体并进行记录 Μ。通过计算得出每组对虾的体重增加率:体重增加率(WGR，％)=(M-M0)/M0X100%。
[0067] 试验结果显示，喂食添加本发明的feciDus s/7.扮菌株饲料的对虾的体重与比对 照组相比较显著增加，具体结果见图7。
[0068] 实施例9 养殖对虾攻毒试验后死亡率的测定:在饲喂试验结束后，每组取90尾大小均匀的凡纳 滨对虾进行攻毒试验，每组的90尾对虾随机分成三个平行。将制备好的致病菌鳗弧菌，通过 在对虾的第二腹节进行肌肉注射进行攻毒试验，注射菌的浓度为3.58X 107 cell/mL，注射 量为15yL。攻毒完成后，观察对虾存活情况，记录对虾的死亡数量，计算出72h内的对虾死亡 率。
[0069] 试验结果显示:对经过饲喂的对虾随机取样测定其在受到病原菌鳗弧菌感染72h 内的累计死亡率，结果见图8所示，可以得出添加本发明的印.扮菌株后，试验组 对虾的累计死亡率明显低于空白组，说明添加的扮菌株在提高对虾免疫力进 而提高其对致病菌的抵抗能力起到一定的作用。
[0070] 实施例10 一种含有芽孢杆菌菌株的对虾饲料，它是由对虾饲料、芽孢杆菌菌株发酵液、海藻酸钠 组成，其中每l〇〇g对虾饲料中添加 l〇g海藻酸钠，添加芽孢杆菌菌株发酵液20mL，至终浓度 为3X107CFU/g;所述的芽孢杆菌菌株为feciDus sp.Bl菌株，保藏编号为CGMCC No: 11752。
[0071] 实施例11 一种含有芽孢杆菌菌株的对虾饲料，它是由对虾饲料、芽孢杆菌菌株发酵液、海藻酸钠 组成，其中每l〇〇g对虾饲料中添加 l〇g海藻酸钠，添加芽孢杆菌菌株发酵液20mL，至终浓度 为6X107CFU/g;所述的芽孢杆菌菌株为feciDus sp.Bl菌株，保藏编号为CGMCC No: 11752。
[0072] 本发明中所描述的具体实施例仅是对本发明精神做举例说明，本发明所属技术领域的 技术人员可以对所描述的具体实施例做相应的修改和补充或采用类似的方式替代，但并不 会偏离本发明的精神或者超越所者所附权利要求书所定义的范围。尽管本发明已作出详细 的说明书并引证了一些具体实施例，但是对本领域所熟练技术人员来说，只要不离开本发 明的精神和范围可做相应变化或修正是显然的。
【主权项】
1. 一种含有芽孢杆菌菌株的对虾饲料，其特征在于它是由对虾饲料、芽孢杆菌菌株发 酵液、海藻酸钠组成，其中每100g对虾饲料中添加 IOg海藻酸钠，添加芽孢杆菌菌株发酵液 20ml，至终浓度为3~6 X IO7个/g;所述的芽孢杆菌菌株为BaciDtAS印.扮菌株，保藏编号为 CGMCC No:11752。2. 权利要求1所述含有芽孢杆菌菌株的对虾饲料在提高对虾生长速度方面的应用。3. 权利要求1所述含有芽孢杆菌菌株的对虾饲料在增强对虾免疫力方面的应用。4. 权利要求3所述的应用，其中的增强对虾免疫力指的是:对虾受到病原菌鳗弧菌感染 72h内的累计死亡率。
【文档编号】A23K20/10GK105901429SQ201610363253
【公开日】2016年8月31日
【申请日】2016年5月30日
【发明人】左志晗, 孙金生, 邵迎春
【申请人】天津师范大学