丙型肝炎病毒的检测方法

专利名称：丙型肝炎病毒的检测方法
技术领域：
本发明涉及对血清中的丙型肝炎病毒(HCV)相关抗原进行检测或定量的方法、以 及在这些检测和定量中使用的极简易且操作性高的样品处理法。
背景技术：
由于HCV在体内的病毒量少以及在体外的增殖体系还未确立，现在还不能使用天 然的病毒粒子和纯化病毒蛋白得到免疫血清。在人血清中，由于个体差异针对抗原的抗体 产生也不同，也存在着含有针对某区域的抗原的抗体，但完全不含有针对其它区域的抗原 的抗体的个体。另外由于是多克隆抗体，也含有针对HCV以外的物质的抗体，所以必须充分 考虑到交叉反应等后再对HCV抗体检查的结果进行判定。由于刚感染HCV后不能产生抗体，所以在直至抗体出现在血中之前的称为窗口期 的期间检查抗体时，完全不能检测到。另外对于丙型肝炎患者的治疗，虽然多种干扰素和病 毒唑(ribavirin)有效，但在该治疗方法的选择和过程观察中仅测定抗体是不充分的。在 这样的状况下，包括确定诊断在内的检测病毒抗原和基因的方法引人注目。HCV基因的检测方法中有NAT (核酸扩增法)和DNA探针法，现在广泛运用于临床 现场。在NAT检查法中，虽然具有灵敏度高特点，但另一方面还存在着几个困难问题。例如， 为了实施PCR(聚合酶链反应)法，由于HCV是RNA病毒，所以必须逆转录为DNA，由RNA 向DNA转录时，由于容易发生损失，容易引起污染，所以需要特殊的扩增设备等，而且操作 繁杂，一次不能处理大量样品，另外检查费用也高等。在其它的NAT中，例如也需要特殊的 扩增设备等，检查费用也高等。DNA探针法检测灵敏度低，直至得到结果需要约20小时(医 学与药学 31 :961-970，1994)。另外，要指出的是检测HCV基因的方法的一个大问题是样品中HCVRNA的稳定性 低，由于获取血清工序、中长期保存、冻融操作使得定量值降低等。认为这是由于HCV粒子 表面稍微受到一点伤害，血液中的RNA分解酶就起作用，容易分解HCV RNA的缘故。由于这 些原因，为了程序化使用，在其操作和保存中需要细心注意。作为检测HCV自身的方法，除了 HCV RNA以外，检测HCV抗原的方法也引人注目。作为HCV抗原检测法，就像特开平8-29427所述的那样，尝试使用对HCV核心抗原 上的表位具有特异性的单克隆抗体，对来自血清中的核心抗原进行检测。这个测定方法与 PCR法比较，虽然费用低，在短时间(约3小时)就可得到结果，但另一方面有几个实用性上 的大问题。即为了处理样品(血清)，需要进行聚乙二醇处理(4°C 1小时)、离心操作(15分 钟)、除去上清、尿素处理、碱处理(30分钟)、添加中和剂等多步骤处理工序。因此由于操 作繁杂，为了获得再现性，需要熟练度，另外由于需要约2小时的处理时间，所以一次不能
3处理大量的样品。由于有离心操作、除去上清等工序，所以自动化非常困难。另外与PCR法比较，由 于灵敏度低10 100倍，所以临床上利用性低。在(Jounal ofHepatology 23 =42-45,1995) 中，作为HCV RNA量，检测限界处于IO4 IO5拷贝/ml，在(医学与药学6 1065-1070,1996) 中，使用慢性丙型肝炎患者102例的治疗前血清的测定结果，相对于用CRT(竞争性逆转录 (competitive reverse transcription))-PCR法的阳性率100%，只不过表现出实质上与 上述DNA探针法大致同等的阳性率(67%)。因此，在灵敏度方面有很大的研究余地。专利第3176570号和专利第3171827号给出的2种HCV抗原检测法不需要上述特 开平8-29427的HCV抗原检测法中作为缺点的包括离心操作等在内的多步骤处理工序，只 通过30分钟的1 2个工序，就可以处理含有HCV的样品，另外还可以高灵敏度地对HCV抗 原进行检测。另外由于操作简化，一次可以处理大量的样品，而且再现性和精度都提高了。 另外该测定方法与NAT比较，费用低，在短时间就可得到结果。然而在临床中利用性更高的测定方法在灵敏度、特异性、再现性、操作性、短时间 化、低费用等方面必须进行不断深入研发以满足以上所有要求。在专利第3176570号和专利第3171827号给出的2种HCV抗原检测法中，虽然样 品的处理时间做到需要30分钟，但希望将时间进一步缩短。特别是现在，POCT(point of care testing)检查在推进医院经营合理化的美国 正急速扩大，即使从以日本为首的世界范围看，预测今后会采用。这是在患者身边进行检 查，对检查结果由医师立即进行判断，实施迅速处置，作为对治疗过程和直至预后的监测的 诊疗质量提高方面起到很大作用的引人注目的方法。POCT与在中央检查室进行检查相比， 可以削减样品的运输和花在设备上的费用，患者来一次医院时，接受检查和迅速的处置，可 以减轻患者负担。今后为了适应这样的要求，必须要将样品的处理时间尽可能缩短。另外，由于在HCV感染患者血液内HCV粒子自身极少，因此HCV抗原也少，希望有 更高灵敏度的检测方法。专利文献1特开平8-29427号公报专利文献2专利第3176570号专利文献3专利第3171827号专利文献4特开平8-29427号公报专利文献5专利第3176570号非专利文献1医学与药学31 =961-970,1994非专利文献2Jounal of Hepatology 23:42-45,1995非专利文献3医学与药学6 1065-1070,199
发明内容
HCV在感染患者内，病毒粒子自身极少，因此患者血中含有的HCV抗原也少。另外， 据推断很多感染者(携带者)在10 30年内向肝硬变或肝癌转移，所以早期发现和早期 治疗很重要。另外对于HCV感染者的治疗和予后的推断重要的是病态的把握，热切期盼更 有意义的HCV相关标志(抗原)的测定。而作为临床上利用性更高的测定方法，灵敏度、特 异性、再现性、短时间化、操作性(全自动化)、低费用作为课题，需要进行不断开发以满足
4所有这些要求。就是说，希望开发能够更简便而且高收率地获得血清中的HCV粒子、特别是HCV抗 原的方法，以及其高灵敏度检测和定量法。因此，本发明的目的在于提供适合通过一般的全自动测定仪器等利用可使用的温 度对健康诊断等所谓筛选用途的很多样品在更短时间(简易)内进行处理的高灵敏度HCV 抗原检测和定量法。S卩，提供与NAT同等或以上的高灵敏度，使样品中的HCV抗原在更短时间内简易 而且不用高温游离的处理方法，可适用于一般的全自动测定仪器的HCV抗原检测以及定量 法。另外，提供了特异识别HCV抗原的单克隆抗体以及产生该单克隆抗体的杂交瘤和使用 它们高灵敏度地进行检测和测定的方法。用于解决课题的手段由于在感染者血中HCV浓度(IO2 IO7拷贝/ml)极低，为了检测病毒抗原，要求 极高灵敏度。一般认为作为用于捕捉靶抗原的探针而使用抗体的代表性免疫测定法等中使 检测灵敏度提高的方法有1)使靶抗原分子数增加，2)使与靶抗原结合的探针的结合性提 高以及使探针量增加，3)减少非特异性反应，4)使用于检测的信号强度增加，通过将这些 方法组合，可以使灵敏度上升。HCV本身，到现在它的构造还不清楚，由相关黄病毒的结构和一般病毒的有关情报 可推定血中HCV粒子以其基因组RNA被核心抗原包裹，核心抗原再由锚在脂膜上的包膜抗 原(E1，E2)构成的外壳蛋白包围的状态存在。另外，有报道称血中HCV粒子以与LDL(低密 度脂蛋白)等缔合的状态存在，另外由于血中存在来自宿主的针对包膜抗原的抗体，所以 人们推测也存在HCV粒子与抗包膜抗原抗体结合的免疫复合物。另外，推测血中也许还存在来自宿主的抗HCV抗原的抗体，当检测HCV抗原时，该 抗体会与捕捉用探针或检测用探针竞争。在本申请中所谓HCV抗原只要没有特别说明，指 的是被HCV基因组RNA编码的蛋白质。即包括被认为是结构蛋白的核心抗原、El抗原、E2 抗原、或被认为是非结构蛋白的NS2、NS3、NS4、NS5抗原等。在含有HCV抗原的样品中，可看到由于HCV抗原和抗体导致的病毒粒子或免疫复 合物的形成。为了检测其中的例如HCV核心抗原，需要I)破坏HCV粒子，在使核心抗原从 HCV粒子游离出来的同时尽可能使核心抗原单分子化，II)对来自宿主的抗HCV抗原抗体进 行钝化或除去，III)使核心抗原从与抗HCV抗原抗体以外的其它血中成分的相互作用中游 离。为了除去抗HCV抗原抗体，可以通过离心操作或亲和柱操作等除去，但由于处理工序增 加，所以最好进行钝化。就是说，在确定的检测体系中使有限样品量中含有的核心抗原从HCV粒子、抗HCV 抗原抗体、其它血中成分等最大限度地游离为单分子的状态可使与探针反应的抗原分子数 增加。在本发明中，通过短时间而且简易的样品处理，使最大限度游离为单分子状态，可使 与探针的反应性变得更高。因此，本发明提供的发明之一是对样品中的HCV核心抗原只在短时间内进行简单 操作，使其成为适合使用探针检测状态的处理方法。以及为了利于样品中HCV核心抗原的 检测，通过对与捕捉用探针或检测用探针竞争的来自宿主的抗HCV核心抗原抗体在短时间 内进行简单处理，同时使其钝化的处理方法。
利用本发明，通过使用给出的处理方法，样品中存在的HCV核心抗原从病毒粒子 或免疫复合物游离，同时通过使样品中存在的抗HCV核心抗原的人抗体钝化，通过使用例 如象抗体那样的探针的免疫测定法，可以容易而且高灵敏度地进行检测。另外，本发明还提供为了自含有HCV相关抗原的样品做成适合HCV核心抗原与探 针例如与抗体形成免疫复合物的状态，通过使HCV核心抗原从病毒粒子游离，同时用使样 品中存在的抗HCV相关抗原的人抗体钝化的处理剂对样品进行处理的工序，对游离的HCV 相关抗原使用例如象抗体那样的探针的免疫测定法进行检测以及定量的方法、和检查试剂
品.ο检测使用的探针例如抗体是与HCV核心抗原特异结合的抗体，只要是表现出一定 的高亲和性的就可以，希望捕捉被处理样品中HCV核心抗原的一种探针可以识别并结合 HCV核心抗原的C端侧。这里所谓的核心抗原的C端侧指的是自HCV核心抗原的氨基酸序 列第81位至160位的序列、或其中的一部分。特别是识别HCV核心抗原的氨基酸序列编号 的 100-120、111-130、即 100-130 的抗体有用。这里所说的探针指的是免疫小鼠、大鼠、土拨鼠、兔、鸡、山羊、绵羊、牛等实验动物 后得到的多克隆抗体；从免疫的个体分离脾细胞等，通过与骨髓瘤细胞等融合得到的杂交 瘤产生的单克隆抗体；或使脾细胞、血中白血球通过EB病毒转染导致不断增殖的细胞产生 的单克隆抗体；HCV感染的人、黑猩猩等产生的单克隆抗体；从小鼠、人等的免疫球蛋白的 cDNA、染色体DNA得到的可变区基因片段、或免疫球蛋白的cDNA、染色体DNA的一部分与人 工制备的序列组合构成的可变区基因片段、使用人工基因序列构成的可变区基因片段、或 用将以它们作为材料通过基因重组手法制作的可变区基因片段与免疫球蛋白恒定区基因 片段组合而构成的重组抗体基因转化细胞而产生的重组抗体；上述可变区基因片段与例如 噬菌体的结构蛋白融合后制作的噬菌体抗体；用通过将上述可变区基因片段与其它的合适 基因片段例如myc基因的一部分等组合构成的重组抗体基因转化细胞而产生的重组抗体； 与受体等蛋白质特异结合的分子或对它进行改变得到的探针；此外通过组合化学技术制 作的探针等，只要是对HCV核心抗原表现出高特异性、亲和性的分子，都可以使用。在本申请发明中，作为上述探针之一，获得了与HCV核心抗原结合的单克隆抗体。 单克隆抗体可以象以下那样制备。例如将含有HCV核心区的融合多肽或多肽单独或与BSA、 KLH等结合后作为抗原，与各种佐剂混合后定期对BALB/c小鼠等的腹腔内或皮内进行免 疫。在血中抗体效价上升的时间点，作为加强免疫将本抗原注入到尾静脉内，无菌摘出脾 脏后，与适当的小鼠骨髓瘤细胞株进行细胞融合，得到杂交瘤。本方法可以根据Kehler与 Milstein 的方法(Nature 256 :495_497，1975)进行。将通过上述方法得到的杂交瘤细胞株在适当的培养液中进行培养，然后选择对本 抗原显示出特异反应的产生抗体的杂交瘤细胞株进行克隆。对于产生抗体的杂交瘤的克 隆，除了极限稀释法之外还可以利用软琼脂法(Eur. J. Immunol. 6 511-519,1976)等。然 后通过蛋白A等的柱层析等方法纯化产生的单克隆抗体。另外除上述单克隆抗体以外，也 可以制作作为探针使用的分子。例如，关于重组抗体在Hoogenboon的综述等中有详细记载 (Trends in Biotechnology，15 :62_70，1997)。根据本发明制备的单克隆抗体可以在HCV核心抗原的检测和定量用中作为酶联 免疫吸附测定(ELISA)、酶免疫斑点测定、放射免疫测定、基于凝集的测定、或其它熟知的免疫测定法中的检查试剂使用。另外，在检测中使用标记抗体时，作为标记化合物可以使用例 如荧光物质、化学发光物质、放射性物质、酶、染色物质等。例如，为了检测样品(血清)中来自HCV的结构蛋白，使用以夹心反应体系为原理 的方法时，要使用的诊断试剂盒包括包被于固体支持体(例如微量滴定孔的内壁)的本发 明1种或以上的单克隆抗体和与标记物质结合的1种或以上的单克隆抗体或它们的片段。 固相化于固体支持体的单克隆抗体和标记的单克隆抗体的组合任意，可以选择能够获得高 灵敏度的组合。作为可使用的固体支持体如聚苯乙烯或聚碳酸酯、聚丙烯、聚乙烯制的微量滴定 板、试管、毛细管、珠(乳胶粒子或红血球、金属化合物等)、膜(脂质体等)、滤器等。在本申请发明中使用免疫测定法对用酸化剂处理的样品的核心抗原进行了测定。 此时使用抗HCV核心抗原的单克隆抗体进行测定。就像实施例所示那样，将固相化抗体使 用2种单克隆抗体、用于检测的标记抗体使用2种单克隆抗体的检测体系与固相化抗体使 用3种单克隆抗体、用于检测的标记抗体使用2种单克隆抗体的检测体系进行比較。比较 结果表明固相化抗体使用3种单克隆抗体、用于检测的标记抗体使用2种单克隆抗体的检 测体系反应性上升。认为这是由于固相化抗体使用3种单克隆抗体产生的效果。因此，本 发明还可以提供使用单克隆抗体的HCV核心抗原的免疫测定法。表明对于固相化抗体使用 识别HCV核心抗原C末端的氨基酸编号100-120、或111-130的2种抗体相比，使用3种抗 体的反应性提高了。附图的简单说明

图1是表示对在样品处理中由于酸化剂(盐酸)浓度不同产生的效果进行研究的 结果图。使用健康人样品(normal)和5种HCV-抗原阳性样品。图2是表示对在样品处理中由于添加浓度不同的非离子型表面活性剂 (TritonXlOO)产生的效果进行研究的结果图。使用健康人样品(normalplasma)和3种 HCV-抗原阳性样品。图3是表示HCV-抗原阳性样品与本发明的样品处理后游离的核心抗原活性的测 定值以及使用现有方法在样品处理后游离的核心抗原活性的测定值的相关性的图。用于实施发明的最好方式作为本发明的样品，包括全血、血浆、血清、尿、唾液、脑脊髓液等生物学体液以及 肝组织等。使样品中存在的抗体活性失活的条件已知有碱处理、酸处理等。对血清等进行酸 处理时，一部分来自血清的蛋白质等不可逆变性，因场合不同有时会产生沉淀或白浊。因 此，样品酸处理后，在处理样品的吸液操作中，往往出现堵住等障碍，另外，测定时在捕捉靶 抗原的抗体等探针结合的担体或固相有时吸附裹入变性蛋白质等沉淀，呈假阳性。此外，有 时在这些沉淀物中裹入靶抗原，由于可与探针结合的抗原量的减少，出现灵敏度降低的问 题。本申请发明通过向酸化剂添加其它物质，可以达到防止由于酸处理引起的沉淀或 白浊等不可逆变性或防止假阳性和使灵敏度提高。其中作为酸化剂，盐酸、硫酸、乙酸、三氟乙酸、三氯乙酸等合适。特别是酸化剂浓 度在处理时浓度为0. 13N或以上至IN以下好，优选0. 5N 1N。此时加了酸化剂的样品在
7PH2. 5以下处理，而在大部分样品中都是在pH2. 0以下进行处理。作为向酸化剂添加的物质之一可考虑表面活性剂。已知多种表面活性剂具有破坏 蛋白质高级结构的作用，具有使病毒粒子膜破坏和使样品中抗靶抗原的抗体变性，以及使 不溶性蛋白质可溶化的效果。然而，在这样的表面活性剂存在下，也存在靶抗原的结构表位 被破坏，与捕捉抗原用抗体等探针的结合变弱，灵敏度降低的大的问题。另外，表面活性剂的变性作用大多是可逆的，有时通过稀释或透析将表面活性剂 浓度变稀，可将暂时变性的结构恢复。这表明存在与捕捉靶抗原的探针或检测用探针进行 竞争的来自样品的抗体，结果使得灵敏度降低。即，表面活性剂的添加具有以上所述的二面 性。表面活性剂可根据它们的结构和性质分为许多类型。离子型中有阴离子型、阳离子型、 两性离子型、非离子型表面活性剂等。在这些表面活性剂中，本发明人发现通过将酸化剂与特别是在同一分子中具有碳 数10个或10个以上的单链烷基和叔胺或季铵盐的两性离子型表面活性剂或阳离子型表面 活性剂组合，表现出沉淀物等酸处理问题、样品中抗体的可逆变性等表面活性剂处理的问 题均被消除，HCV抗原检测灵敏度大幅上升的效果，使得本发明完成。另外发现在包含酸化剂和该表面活性剂的处理剂中添加TritonXlOO等聚氧乙烯 异辛基苯基醚类或NP-40等聚氧乙烯壬基苯基醚类等非离子型表面活性剂、或添加尿素、 硫脲等蛋白质变性剂、或添加半胱氨酸、半胱胺、二甲氨基乙硫醇、二乙氨基乙硫醇或二异 丙氨基乙硫醇等还原剂更好。即本发明提供特征如下的含HCV样品的处理方法通过将含有HCV的样品用含有 (1)酸化剂，以及(2)在同一分子中具有碳数10个或10个以上的单链烷基和叔胺或季铵盐 的两性离子型表面活性剂或阳离子型表面活性剂，以及(3)蛋白质变性剂、非离子型表面 活性剂或还原剂的处理剂进行处理，使HCV抗原游离以及将与HCV抗原结合的抗体破坏。另外发现通过向(3)蛋白变性剂、非离子型表面活性剂或还原剂中添加，或取代 它们添加单糖类、二糖类、柠檬酸、或柠檬酸盐类，可增强本发明的效果。作为在同一分子中具有碳数10个或10个以上的单链烷基和叔胺或季铵盐的两 性离子型表面活性剂，N-十二烷基-N，N- 二甲基-3-铵-1-丙磺酸(N-Dodecyl-N，N-di methyl-3-ammonio-l-propanesulfonate)、N-十四烧基-N, N- 二甲基-3-铵-1-丙磺酸 (N-TetradecyI-N, N-dimethyl-3-ammonio-l-propanesulfonate)、N-十六烧基-N, N- 二 甲基-3-铵-1-丙石黄酸(N-Hexadecyl-N, N-dimethyl-3-ammonio-l-propanesulfonate)、 N-十八烧基-N, N- 二甲基-3-铵-1-丙磺酸(N-Octadecyl-N，N-dimethyl-3-ammonio-l-propanesulfonate) ^^fxSo作为在同一分子中具有碳数10个或10个以上的单链烷基和叔胺或季铵盐 的阳离子型表面活性剂，氯化癸基三甲基铵(Decyltrimethylammonium Chloride)、 氯化十二烷基三甲基铵(Dodecyltrimethylammonium Chloride)、氯化十四烷基 三甲基铵(Tetradecyltrimethylammonium Chloride)、氯化十六烷基三甲基铵 (Hexadecyltrimethylammonium Chloride)、溴化癸基三甲基铵(Decyltrimethylammonium Bromide)、、溴化十二烧基三甲基铵(Dodecyltrimethylammonium Bromide)、、溴化十四 烷基三甲基铵(Tetradecyltrimethylammonium Bromide)、溴化十六烷基三甲基铵 (Decyltrimethylammonium Bromide)、氯化月桂基口比唆鐵(Laurylpyridinium Chloride)、
8氯化十四烷基吡啶鐺(Tetradecyl pyridiniumChloride)、氯化十六烷基吡啶鐺(Cetyl pyridinium Chloride)等合适。在同一分子中具有这样的碳数10个或10个以上的单链烷基和叔胺或季铵盐的两 性离子型表面活性剂或阳离子型表面活性剂浓度优选处理时浓度为0. 或以上至15% 以下，更优选0. 5% 10%。作为在酸化剂和在同一分子中具有碳数10个或10个以上的单链烷基和叔胺或季 铵盐的两性离子型表面活性剂或阳离子型表面活性剂浓度存在下的非离子型表面活性剂， TritonXlOO等聚氧乙烯异辛基苯基醚类，以及NP-40等聚氧乙烯壬基苯基醚类、吐温80等 聚氧乙烯山梨糖醇酐烷基酯类等合适，它们的浓度，处理时浓度优选或以上至7. 5%以 下，更优选或以上至5%以下。本申请所述的百分率用重量/质量X 100%表示。作为在酸化剂和在同一分子中具有碳数10个或10个以上的单链烷基和叔胺或季 铵盐的两性离子型表面活性剂或阳离子型表面活性剂浓度存在下的蛋白质变性剂，尿素或 硫脲等合适，它们的浓度在处理时浓度优选0. 5M或以上，更优选IM或以上至4M以下，在 溶解性等没有问题的场合，例如预先向样品处理用管添加粉末尿素等场合，可以使用到IOM 之前的浓度。作为在酸化剂和在同一分子中具有碳数10个或10个以上的单链烷基和叔胺或季 铵盐的两性离子型表面活性剂或阳离子型表面活性剂浓度存在下的还原剂，半胱氨酸、半 胱胺、二甲氨基乙硫醇、二乙氨基乙硫醇、二丙氨基乙硫醇等合适，它们的浓度在处理时浓 度优选0. 25mM或以上至IOOOmM以下，更优选1. 5mM或以上至200mM以下。向酸化剂和在同一分子中具有碳数10个或10个以上的单链烷基和叔胺或季铵盐 的两性离子型表面活性剂或阳离子型表面活性剂中添加的单糖类或二糖类，麦芽糖、蔗糖、 海藻糖、甘露糖、果糖、葡萄糖、山梨糖醇、半乳糖、右旋糖合适。另外向酸化剂和在同一分 子中具有碳数10个或10个以上的单链烷基和叔胺或季铵盐的两性离子型表面活性剂或阳 离子型表面活性剂中添加的柠檬酸或柠檬酸盐类，柠檬酸、柠檬酸水合物、柠檬酸钠盐、柠 檬酸钾盐合适。作为向酸化剂添加的其它物质可以考虑尿素等蛋白质变性剂。已知尿素等蛋白质 变性剂通过削弱氢离子键，对蛋白质的高级结构具有部分破坏作用，所以可以使病毒粒子 膜破坏和使样品中抗靶抗原的抗体变性。另外还具有使例如在大肠菌表达的重组蛋白质由 不溶性级分包涵体变为可溶化等使不溶性沉淀物可溶化的效果。然而，在尿素等蛋白质变 性剂存在下，也存在靶抗原的结构表位被破坏，与捕捉抗原用抗体等探针的结合变弱，灵敏 度降低的大的问题。另外，尿素等蛋白质变性剂的变性作用往往是可逆的，有时通过稀释或透析等将 蛋白质变性剂浓度变稀，可将暂时变性的结构恢复。这表明存在与捕捉靶抗原的探针或检 测用探针进行竞争的来自样品的抗体，结果使得灵敏度降低。即，尿素等蛋白质变性剂的添 加具有以上所述的二面性。本发明人通过将酸处理和蛋白质变性剂处理组合，发现沉淀物等酸处理的问题、 样品中抗体的可逆变性等蛋白质变性剂处理的问题被消除，使得本发明的另一个发明完 成。本申请发明人通过在处理时添加IM或以上的蛋白质变性剂之一的尿素可以使酸处理导致的沉淀物形成大大减少。作为这样的蛋白质变性剂，尿素、硫脲等合适。另外蛋白 质变性剂浓度在处理时浓度优选IM或以上，更优选1. 5M或以上至8M以下。另外还发现 通过向包含酸化剂和蛋白质变性剂的处理剂中添加TritonXlOO等聚氧乙烯异辛基苯基醚 类，以及NP-40等聚氧乙烯壬基苯基醚类等非离子型表面活性剂，具有使灵敏度上升等效 果。另外也可以向包含酸化剂和蛋白质变性剂的处理剂中添加还原剂。如对上述实验进行概括，本发明提供含有HCV的样品的处理方法，其特征是通过 将含有HCV (丙型肝炎病毒)的样品用含有(1)酸化剂，以及(2)蛋白质变性剂，或在同一 分子中具有碳数10个或10个以上的单链烷基和叔胺或季铵盐的两性离子型表面活性剂或 阳离子型表面活性剂的处理剂处理，使HCV抗原游离和破坏与HCV抗原结合的抗体。另外提供特征如下的对含HCV样品的处理方法通过将含有HCV的样品用含有下 面的(1)、(2)中的至少一种或一种以上物质和(3)中的至少一种或一种以上的物质的处理 剂处理，使HCV抗原游离和破坏与HCV抗原结合的抗体。(1)、(2)、(3)的物质是(1)酸化 剂、(2)蛋白质变性剂、(3)非离子型表面活性剂或还原剂。另外，本申请发明的处理可以在 高温下进行，优选在20°C 50°C，更优选在25°C 42°C进行。显然通过使用本发明的处理方法，可以从含有具有与HCV同样构造的病毒粒子的 样品使病毒抗原游离为适合使用探针的测定方法的状态。其中所谓具有与HCV同样构造的 病毒是可形成具有这样结构的病毒粒子的病毒，所述病毒粒子由包装基因组RNA、DNA的蛋 白质和包围该蛋白的膜蛋白质与脂膜构成；或是可形成具有这样结构的病毒粒子的病毒， 所述病毒粒子由包装基因组RNA、DNA的蛋白质和包围该蛋白的脂膜构成；或是可形成具有 这样结构的病毒粒子的病毒，所述病毒粒子由内包基因组RNA、DNA的蛋白质与脂膜构成。例如，作为HCV的类似病毒，包括黄病毒类、人免疫缺陷病毒等逆病毒等。另外还 包括象具有基因组DNA的乙型肝炎病毒那样的具有基因组DNA的病毒，或虽然不带包膜蛋 白质，但具有包装基因组DNA的蛋白质的人细小病毒等。
实施例以下实施例给出了本发明的例证，但本发明的范围并不限定于这些实施例。实施例1.杂交瘤的制作法将根据专利第3171827号所述的方法制备的融合HCV核心蛋白质(Trp Cll)溶解 于6M尿素后，按照终浓度0. 2 1. Omg/mL用含有0. 15MNaCl的IOmM磷酸缓冲液(pH7. 3) 稀释，与等量的夕AH” ^混合，作为Trp Cll悬浮液。将Trp Cll浓度调整到终浓 度0. 1 0. 5mg/mL的该悬浮液注射到4 6周龄的BALB/c品系小鼠腹腔内。2周后进行 同样的免疫，再于约2周后，向尾静脉内注射将Trp Cll调整到0. Olmg/mL的生理盐水溶 液。在最后的加强免疫后第3天，在无菌条件下从该免疫动物摘出脾脏，用剪刀剪成 切片，再用筛过滤使脾脏成为一个一个细胞，用RPMI-1640培养基洗3次。在8-氮杂鸟嘌 呤存在下培养数日，将完全除去回复突变体的对数增殖期小鼠骨髓瘤细胞株SP2/0Agl4经 上述同样洗净后，就该细胞1. 8 X IO7个与脾细胞1. OX IO8个加入到50mL容量的离心管中， 并混合。于200 Xg下离心分离5分钟，除去上清，加入保温在37°C的含有50%聚乙二醇 4000 (PEG4000 ；Merck公司生产)的RPMI-1640培养基lmL，进行细胞融合。
融合细胞经离心分离(200 X g，5分钟)除去PEG4000后，使用96孔板，在含有次黄 嘌呤、氨基蝶呤和胸腺嘧啶核苷(以下省略为HAT)的RPMI-1640培养基中培养1 2周， 只使杂交瘤增殖。然后在不含有HAT的培养基中使其成长发育，约2周后对产生目的抗体 的克隆用ELISA法进行检测，得到产生具有所期望反应特异性的本发明单克隆抗体的杂交瘤。对于得到的杂交瘤，根据常规的极限稀释法，对产生目的抗体的株进行检测和 单一克隆化，将得到的杂交瘤分别命名为HC11-14、HC11-10、HC11-15、HC11-3、HCll-IU HC11-7、HC11-9、以及 HC11—21。HCl 1-14 (FERM BP—6006)、HCl 1—10 (FERM BP—6004)、 HCl 1-3 (FERM BP-6002)、HC11-11 (FERM BP-6005)、W&HC11_7(FERM BP-6003)的杂交瘤于 1997 年 7 月 4 日，HCl 1-15 (FERM BP-6782)于 1999 年 7 月 16 H, HCl 1-9 (FERM BP-08493)、 HC11-2KFERM BP-08494)的杂交瘤于2003年9月25日保藏于独立行政法人产业技术综合 研究所专利生物保藏实施例2.单克隆抗体的制作法将通过实施例2所述方法得到的杂交瘤移植到用降植烷等处理后小鼠腹腔，取得 腹水中产生的单克隆抗体。该单克隆抗体的纯化利用结合了蛋白A的琼脂糖凝胶柱分离 IgG级分。由上述8种杂交瘤产生的分别的单克隆抗体Cll-15、Cll-14、Cll-10、C11-7、 C11-9、C11-11、C11-21以及C11-3的同种型通过使用小鼠的Ig各个同种型试剂盒(Zymed 公司生产)，阐明了 Cll-10、Cll-7 是 IgG2a ；Cll-14、Cll-3、Cll-9、Cll-21、Cll-11、C11-1 是IgGl。对于得到的各种单克隆抗体，使用根据来自HCV核心区的序列每10个氨基酸 重复而合成的约20个氨基酸的肽进行表位解析。Cll-14、Cll-10、C11-7和C11-3识别 专利第 3171827 号所述的序列。Cll-9、C11-21 分别识别 2 1DvkFPGGGQIVGGVYLIi3RR4c^P 100PRGSRPSWGPTDPRHRSRNVG120的序列。即C11-9是识别HCV核心抗原氨基酸编号21-40的 序列的单克隆抗体，C11-21识别HCV核心抗原氨基酸编号100-120的序列的单克隆抗体。实施例4.样品处理条件研究(处理条件研究)1)酸化剂浓度向HCV抗原阴性样品或HCV抗原阳性样品(#19、#86、#89、#92_4、 #96) 100 μ L中添加各种盐酸浓度的水溶液50 μ L，于37°C温育10分钟，将其中的100 μ L作 为测定样品，使用以下所述的测定法进行研究。向 96 孔微量培养板(Costar High Binding Plate)加 200 μ L 的 4 μ g/mL 浓度的 抗HCV核心抗原单克隆抗体(cll-3和cll-7等量混合)，于4°C温育过夜。用含有0. 15M NaCl的IOmM磷酸缓冲液pH7. 3洗2次后，加350 μ L的含有0. 5% 酪蛋白钠的IOmM磷酸缓冲液ρΗ7. 1，温育2小时。除去封闭液后，将含有中和剂的反应缓冲 液100 μ L和各个用样品处理法得到的测定样品加到各个孔中，边搅拌，边于室温反应1小 时，用含有0. 05%吐温20的IOmM磷酸缓冲液ρΗ7. 3 (洗净液)350 μ L清洗6次，再添加辣 根过氧化物酶(HRP)标记的单克隆抗体(C11-10和C11-14等量混合)200yL，于室温反应 30分钟。用洗净液洗6次，加底物溶液(含有2mg/ml的邻苯二胺、30%过氧化氢水0. 9 μ 1/ ml的0. IM柠檬酸磷酸缓冲液ρΗ5· 0) 200 μ L，温育30分钟。加5N硫酸50yL停止酶反应，用微量培养板读数仪(二 口 f MTP32)测定
11492nm(参考波长630nm)的吸光度，结果如图1所示。另外，图1所示的盐酸浓度用将样品 (Sample)和处理剂混合后的处理时浓度表示。HCV阳性样品(#19、#86、#89、#92-4, #96)在不含有盐酸的溶液中即使于37°C温 育10分钟，也几乎检测不到核心抗原活性，从处理时的盐酸浓度0. 167N开始证实核心抗原 活性，在0. 5 0. 867N为峰。当使用硫酸替代盐酸进行研究时，几乎得到同样结果。2)在酸化剂共存下的各种表面活性剂浓度向HCV抗原阴性样品或HCV抗原阳性 样品(#110、#120、#117、#89) 100 μ L添加将各种表面活性剂溶解于1. 5Ν盐酸浓度的水溶 液后的该溶液50 μ L，于37°C温育10分钟，将其中的100 μ L作为测定样品，用上述1)中方 法进行研究(表1 表4)。就像表1 表4表示的那样，判断4例样品中的2例表现出比各个样品判定基准 高的反应性，具有表面活性剂添加效果。该结果证实如果与盐酸或硫酸这样的酸化剂一起 添加各种表面活性剂，表面活性剂可使HCV核心抗原阳性样品中的核心抗原免疫活性有很 大上升。添加效果已被证实了的是在同一分子中具有碳数10个或10个以上的单链烷基和 叔胺或季铵盐的两性离子型表面活性剂或阳离子型表面活性剂。在同一分子中具有碳数8个以下的单链烷基和叔胺或季铵盐的表面活性剂没有 观察到添加效果。另外在同一分子中具有10个碳数的单链烷基和仲胺的象MEGA-10这样 的非离子型表面活性剂效果弱。象TritonXlOO或吐温20这样的非离子型表面活性剂或 象CHAPS这样的具有类固醇骨架的表面活性剂没有表现出反应性的提高。十二烷基硫酸钠 (SDS)几乎不能确认效果，2. 5%或以上的高浓度下在与样品反应中生成白色沉淀。此外， 对N-十二烷酰基肌氨酸钠或脱氧胆酸等也进行了研究，在与酸化剂共存时，溶解性差，不 能进行研究。通过向酸化剂中添加在同一分子中具有碳数10个或10个以上的单链烷基和叔胺 或季铵盐的两性离子型表面活性剂或阳离子型表面活性剂，已经证实测定灵敏度提高。从 该酸化剂和表面活性剂的处理剂中除去酸化剂，只用有效果的表面活性剂进行处理，测定 灵敏度大大降低。由此可以认为测定灵敏度的上升是以酸化剂作为基础，通过添加表面活 性剂大大上升的结果。表 1 表4 3)酸化剂共存下的蛋白质变性剂向HCV抗原阴性样品或HCV抗原阳性样品(#86、#96、#117、#89) 100 μ L添加将蛋 白质变性剂之一的尿素溶解于1. 5Ν盐酸浓度水溶液后的该溶液50 μ L，于37°C温育10分 钟，将其中的IOOyL作为测定样品，用1)上述的方法进行研究(表5)。如果添加蛋白质变性剂之一的尿素，以仅使用酸化剂作为对照，确认上升约 1.4 2倍的样品。另外，在仅以酸化剂处理时，有时血清蛋白等变性沉淀或产生白池，往往 变成了吸液管操作障碍或沉淀物所致大的假阳性的原因。另外，认为由于这些沉淀物中裹 入目的抗原导致灵敏度降低。在处理时通过添加IM或以上尿素，判明可大大减少这样的沉 淀物，特别是在处理时通过添加1. 5M或以上至8M以下尿素，确认效果更好。尿素可溶解至 约10M，由于也存在因保存条件引起的析出等问题，所以作为溶液使用时，处理时浓度和处 理液量与样品量的比有关。表 5 4)在酸化剂和同一分子中具有碳数10个或10个以上的单链烷基和叔胺或季铵盐 的两性离子型表面活性剂或阳离子型表面活性剂共存下的非离子型表面活性剂的研究向HCV抗原阴性样品(正常血浆)或3例HCV抗原阳性样品(#120、#117、 #97) 100 μ L添加使非离子型表面活性剂Triton XlOO与含有1. ON盐酸与5. 0%溴化十二 烷基三甲基铵(略为C12TAB)的溶液混合后的溶液100 μ L，于37°C温育10分钟，将其中的 100 μ L作为测定样品，用1)所述方法进行研究(图5)。图5所示的非离子型表面活性剂Triton XlOO的浓度用处理样品时的浓度表示。 在HCV抗原阴性样品(正常血浆)中即使添加Triton X100，也几乎看不到其信号的变化， 而在HCV抗原阳性样品(#120、#117、#97)中，当处理样品时添加1 % 7. 5%的浓度时，确 认反应性提高。特别是Triton XlOO为 5%时表现出高的反应性。5)在酸化剂和同一分子中具有碳数10个或10个以上的单链烷基和叔胺或季铵盐 的两性离子型表面活性剂或阳离子型表面活性剂共存下的蛋白变性剂的研究向HCV抗原阴性样品(正常血浆)或4例HCV抗原阳性样品(#120、#118、#117、 #97) 100 μ L添加使非离子型表面活性剂Triton X100与含有1.0N盐酸与5.0% C12TAB的 溶液混合后的溶液10(^1^，于371温育10分钟，将其中的100 μ L作为测定样品，用1)所 述方法进行研究，求各个HCV抗原阳性样品的免疫活性对HCV抗原阴性样品的免疫活性的 比率(HCV抗原阳性样品的吸光度/HCV抗原阴性样品的吸光度)，如表6所示。
表6
HCV抗原阳性样品
尿素(M)正常血浆#97#117#118#1200.01.022.323.13.49.70.51.031.735.14.513.71.01.028.045.04.311.41.51.052.877.38.321.92.01.065.282.47.825.42.51.094.696.29.730.43.01.0155.8142.013.836.73.51.0232.3216.316.049.3表6所示的作为蛋白质变性剂之一的尿素(Urea)浓度用处理样品时的浓度表示。 HCV抗原阳性样品(#120、#117、#97)的免疫活性对HCV抗原阴性样品(正常血浆)的免疫 活性的比确认从添加0. 5M尿素开始显著上升，随着尿素浓度增加，至少在添加到3. 5M尿素 之前一直上升。在本次研究中，预处理液中尿素浓度达到8M的话，由于溶解性差，所以不能 进行预处理时4M或以上尿素的研究。因此，确认通过与作为蛋白质变性剂使用的试剂共存，HCV核心抗原的免疫活性上 升。当然，可以认为这些共存效果如果是尿素以外的蛋白质变性剂，也能够确认同样的效^ ο6)在酸化剂和同一分子中具有碳数10个或10个以上的单链烷基和叔胺或季铵盐 的两性离子型表面活性剂或阳离子型表面活性剂共存下的还原剂的研究向HCV抗原阴性样品(正常血浆)或3例HCV抗原阳性样品(#120、#117、 #97) 100 μ L添加含有1. ON盐酸和5. 0% C12TAB的溶液与作为还原剂的二乙氨基乙硫醇盐 酸混合后的溶液10(^1^，于371温育10分钟，将其中的100 μ L作为测定样品，用1)所述 方法进行研究(表7)。其中使用的还原剂二乙氨基乙硫醇盐酸浓度用处理样品时的浓度表示。在HCV抗 原阴性样品(正常血浆)中即使添加二乙氨基乙硫醇盐酸，也几乎看不到该样品信号的变 化，而在HCV抗原阳性样品(#120、#117、#97)中，当处理样品时从0. 25mM或以上的还原剂 浓度开始确认信号上升，特别是还原剂浓度在IOmM或以上时，确认3例样品都上升了 30% 或以上，而在#117中添加20mM还原剂时，信号增加到2倍或以上。表 7
17 NT:未试验实施例5.使用本发明处理法和现有的处理法(1)对HCV核心抗原进行检测在专利第3171827 号和青柳等人的报告中(Journal of ClinicalMicrobiology, 37 =1802-1808,1999)，表明通过用含有高浓度十二烷基硫酸钠等阴离子型表面活性剂和两 性离子型表面活性剂的处理液进行30分钟的热处理，可以高灵敏度地检测HCV核心抗原。 用该样品处理法和本发明处理法检测各个样品中的HCV核心抗原，并进行了比较。(用本发明处理法测定HCV核心抗原)将样品100 μ L 与处理液(IN HC1，7 % C12TAB，3. 5 % N-十六烷基-N，N-二甲 基-3-铵-1-丙磺酸、7% TritonXlOO,2Μ尿素、IOmM 二乙氨基乙硫醇盐酸)100 μ L混合，于 37°C进行10分钟预处理。向 96 孔微量培养板(Costar High Binding Plate)的各个孔加 200 μ L 的 4 μ g/mL 的抗HCV核心抗原单克隆抗体(cl 1-3和cl 1-7等量混合)，于4°C温育过夜。用含有0. 15M NaCl的IOmM磷酸缓冲液(pH7. 3)洗2次后，加350 μ L的含有0. 5%酪蛋白钠的IOmM磷酸 缓冲液(ΡΗ7. 1)，温育2小时。除去封闭液后，将含有中和剂的反应缓冲液IOOyL和经处理 的测定样品100 μ L加到各个孔中。边搅拌，边于室温下反应1小时，用含有0.05%吐温20的IOmM磷酸缓冲液 (ρΗ7. 3)(洗净液)350yL清洗6次，再添加辣根过氧化物酶(HRP)标记的单克隆抗体 (C11-10和C11-14等量混合)200 μ L，于室温反应30分钟。用洗净液洗6次，加底物溶 液(含有2mg/ml的邻苯二胺、30%过氧化氢水0.9 μ 1/ml的0. IM柠檬酸磷酸缓冲液 PH5. 0) 200 μ L，温育30分钟。加5N硫酸50 μ L使酶反应停止，用微量培养板读数仪(二 口 t MTP32)测定492nm(参考波长630nm)的吸光度。(用现有处理法(1)测定HCV核心抗原)将样品100 μ L 与处理液(15% SDS,2% CHAPS,0. 3% TritonX100、2M尿素)50 μ L 混合，于56°C进行30分钟处理。然后恢复到室温，作为测定样品。
向 96 孔微量培养板(Costar High Binding Plate)的各个孔加 200 μ L 的 4 μ g/mL 的抗HCV核心抗原单克隆抗体(cl 1-3和cl 1-7等量混合)于4°C温育过夜。用含有0. 15M NaCl的IOmM磷酸缓冲液(pH7. 3)洗2次后，加350 μ L的含有0. 5%酪蛋白钠的IOmM磷酸 缓冲液(ΡΗ7. 1)，温育2小时。除去封闭液后，将反应缓冲液100 μ L和经处理的测定样品 100 μ L加到各个孔中。边搅拌，边于室温反应1小时，用含有0. 05%吐温20的IOmM磷酸缓冲液(ρΗ7. 3) (洗净液)350yL清洗6次。添加HRP标记的单克隆抗体(C11-10和C11-14等量混 合)200 μ L，于室温反应30分钟。用洗净液洗6次，加底物溶液(含有2mg/ml的邻苯二胺、 30%过氧化氢水0. 9 μ 1/ml的0. IM柠檬酸磷酸缓冲液(ρΗ5· 0)) 200 μ L，温育30分钟。加 5Ν硫酸50 μ L使酶反应停止，用微量培养板读数仪(二 α f MTP32)测定492nm (参考波长 630nm)的吸光度。表8和表9给出了使用以上2种预处理法检测HCV核心抗原的结果，它们的相关 性如图3所示。就像表8和表9所示的那样，本发明处理法与现有方法比较，30例HCV-RNA 阳性样品中的反应性确认上升1. 85 6. 7倍，反应性平均上升3. 6倍。特别是在5例样 品(No. 9，11，24，25，30)中，用现有方法不能检测到，但使用本发明处理法可很容易检测到 HCV核心抗原，灵敏度更高。另外，相关系数为0.894，表现出高相关性。表8 表 9
合)200 μ L，于室温反应30分钟。用洗净液洗6次，加底物溶液(含有2mg/ml的邻苯二胺、 30%过氧化氢水0. 9μ 1/ml的0. IM柠檬酸磷酸缓冲液pH5. 0) 200 μ L，温育30分钟。加 5Ν硫酸50 μ L使酶反应停止，用微量培养板读数仪(二口 f MTP32)测定492nm(参考波长 630nm)的吸光度，与使用实施例5的本发明处理法的HCV核心抗原检测中得到的结果进行 比较(表11和表12)。当固相中添加cll-3、cll-7以及cll_21，以及作为酶标记抗体直接利用cll_14， 取代cll-10使用cl 1-9时，反应性平均上升约1.31倍，特别是No. 19反应性上升至1.65 倍(表12)。这可认为是在固相抗体中使用了 3种识别HCV核心抗原C末端氨基酸编号 100-120、以及111-130的抗体产生的效果。即与在固相中使用2种识别HCV核心抗原氨基 酸序列100-130的抗体相比，使用3种更容易捕捉核心抗原，可看到测定值上升。实施例7.单克隆抗体组合的反应性将样品100 μ L 与预处理液(IN HCl, 7% C12TAB,7% TritonXlOO, 2M 尿素、IOmM 二乙氨基乙硫醇盐酸)100 μ L混合，于37°C进行10分钟预处理。向96孔微量培养板(Costar High Binding Plate)的各个孔加200 μ L的共计 4μ g/mL的抗HCV核心抗原单克隆抗体(cll-3与cll-7 ；或cll-3、cll_7和cll_ll ；或 cll-3、cll-7和cll-21等量混合)于4°C温育过夜。用含有0. 15M NaCl的IOmM磷酸缓冲 液(PH7. 3)洗2次后，加350 μ L的含有0. 5%酪蛋白钠的IOmM磷酸缓冲液(ρΗ7. 1)，温育 2小时。除去封闭液后，将含有中和剂的反应缓冲液100 μ L和经预处理法处理的测定样品 100 μ L加到各个孔中。边搅拌，边于室温反应1小时，用含有0. 05%吐温20的IOmM磷酸缓冲液(ρΗ7. 3) (洗净液)350 μ L清洗6次。添加HRP标记的单克隆抗体(C11-9和C11-14等量混 合)200 μ L，于室温反应30分钟。用洗净液洗6次，加底物溶液(含有2mg/ml的邻苯二胺、 30%过氧化氢水0. 9μ 1/ml的0. IM柠檬酸磷酸缓冲液pH5. 0) 200 μ L，温育30分钟。加 5Ν硫酸50 μ L使酶反应停止，用微量培养板读数仪(二 α f MTP32)测定492nm (参考波长 630nm)的吸光度，研究用于固相的抗体的添加效果(表10)。通过向固相添加cl 1-3、cl 1-7以及cll-11和cll_21，HCV-RNA阳性样品的反应性 上升。认为这是在固相抗体中使用了 3种识别HCV核心抗原C末端氨基酸100-120、以及 111-130的抗体产生的效果。即与在固相中使用2种识别HCV核心抗原氨基酸序列100-130 的抗体相比，可看到使用3种更容易捕捉HCV核心抗原，测定值上升。另外表11和表12给出了通过使用在实施例6的固相中固相化了 cll-3与 cll-7(等量混合)的板和作为酶标记抗体使用的cll-14与cll-10的组合(抗体组合 1)，以及使用固相化了 cll-3、cll-7和cll-21 (等量混合)的板和作为酶标记抗体使用 的cll-14与cll-9的组合(抗体组合2)，对多数HCV-RNA阳性样品进行测定的结果。在 HCV-RNA阳性样品中抗体组合2相对于抗体组合1反应性平均上升约1. 31倍，特别是No. 19 反应性上升至1.65倍。表10
21 表11 表 12 实施例8.酸化剂必要性的研究将样品(健康人血清和3例HCV核心抗原阳性样品)100 μ L与除去酸化剂的处理 液(7% C12TAB，3. 5% N-十六烷基-N，N-二甲基-3-铵-1-丙磺酸、7% TritonX100、2M 尿 素、IOmM 二乙氨基乙硫醇盐酸)100 μ L混合，于37°C进行10分钟预处理。向96孔微量培 养板(Costar High BindingPlate)的各个孔加200 μ L的4 μ g/mL的抗HCV核心抗原单克 隆抗体(cl 1-3与cl 1-7等量混合)于4°C温育过夜。用含有0. 15M NaCl的IOmM磷酸缓冲 液(PH7. 3)洗2次后，加350 μ L的含有0. 5%酪蛋白钠的IOmM磷酸缓冲液(ρΗ7. 1)，温育 2小时。除去封闭液后，将含有中和剂的反应缓冲液100 μ L和经处理的测定样品100 μ L 加到各个孔中。边搅拌，边于室温反应1小时，用含有0.05%吐温20的IOmM磷酸缓冲液 (ρΗ7· 3)(洗净液)350 μ L清洗6次。添加HRP标记的单克隆抗体液(Cl 1-10和Cl 1-14等 量混合)200 μ L，于室温反应30分钟。用洗净液洗6次，加底物溶液(含有2mg/ml的邻苯 二胺、30%过氧化氢水0. 9μ 1/ml的0. IM柠檬酸磷酸缓冲液(pH5. 0)) 200 μ L，温育30分 钟。加5Ν硫酸50 μ L使酶反应停止，用微量培养板读数仪(二 π f MTP32)测定492nm(参 考波长630nm)的吸光度。得到的结果如表13所示。表13 由表13进一步确认各个HCV阳性样品(#110、#120、#117)在不含有盐酸的溶液中 即使于37°C温育10分钟，也几乎检测不到核心抗原活性，但自处理时的盐酸浓度0. 13N开 始证实核心抗原活性，在0. 5 1. ON确认存在非常高的核心抗原活性。实施例9.杂交瘤的制作法(2)将具有来自HCV基因型Ib核心抗原1 173号序列的重组HCV核心蛋白质 (I-C173)溶解于6M尿素后，用含有0. 15M NaCl的IOmM磷酸缓冲液(pH7. 3)稀释至终浓度 0. 2 1. Omg/mL,与等量的，八H ”卞混合。将该悬浮液注射到4 6周龄的BALB/ c品系小鼠腹腔内。每隔2周进行3次同样的免疫，再于2周后，将I-C173调整到0. Olmg/ mL的生理盐水溶液注射到尾静脉内。在最终加强免疫后第4天，在无菌条件下从该免疫动 物摘出脾脏，用剪刀剪成碎片，再用筛将脾脏制成一个一个的细胞，用RPMI-1640培养基洗 3次。在8-氮杂鸟嘌呤存在下培养数日，与上述同样将完全除去了回复突变体的对数增 殖期小鼠骨髓瘤细胞株SP2洗净后，将该细胞3. 26 X IO7个与脾细胞2. 28 X IO8个加入到 50mL容量的离心管中，并混合。于200 Xg下离心分离5分钟，除去上清，加保温在37°C的 含有50%聚乙二醇4000(PEG4000 ；Merck公司生产)的RPMI-1640培养基lmL，进行细胞 融合。融合细胞经离心分离(200 X g，5分钟)除去PEG4000后，使用96孔板，在含有HAT 的RPMI-1640培养基中培养1 2周，只使杂交瘤增殖。然后在不含有HAT的培养基中使 其成长发育，约2周后对产生目的抗体的克隆用ELISA法进行检索，得到产生具有所希望反 应特异性的本发明单克隆抗体的杂交瘤。对于得到的杂交瘤，根据常规的极限稀释法，进行产生目的抗体株的检索和单一 克隆化，将得到的杂交瘤命名为0T3，于2004年6月1日保藏于独立行政法人产业技术综合 研究所专利生物保藏中心(茨城县筑波市东1 丁目1番地1中央第6)。(FERM BP-10032)。实施例10.单克隆抗体的制作(2)将通过实施例5所述方法得到的杂交瘤移植到用降植烷处理后的小鼠腹腔，获得 腹水中产生的单克隆抗体。该单克隆抗体的纯化利用结合了蛋白A的琼脂糖凝胶柱分离 IgG级分。由上述杂交瘤产生的单克隆抗体A0T3的同种型使用小鼠的Ig各个同种型试剂 盒(Zymed公司生产)，阐明是IgG2b。对于得到的各个单克隆抗体，使用来自HCV核心区序 列合成的20个氨基酸的肽进行表位解析。A0T3特异识别1Q1RGSRPSWGPTDPRHRSRNVG12°的序 列。A0T3对于该序列比cll-21表现出更高的反应性。实施例11.样品处理条件研究(2)(处理条件研究)1)麦芽糖浓度向HCV抗原阴性样品或HCV抗原阳性样品ΙΟΟμ L中添加含有各种
24浓度麦芽糖的预处理剂(1N !1(1，3.5%(12148，3%^十六烷基-队^二甲基-3-铵-1-丙 磺酸(C16APS)、3% N-十八烷基-N，N-二甲基-3-铵-1-丙磺酸(C18APS) ,7% TritonXlOO, 3M尿素、IOmM 二乙氨基乙硫醇盐酸)100 μ L，于37°C温育10分钟，将其中的100 μ L作为测 定样品，使用以下所述的测定法进行研究。向96 孔微量培养板(Costar High Binding Plate)加 200 μ L 的 4 μ g/mL 的抗 HCV核心抗原单克隆抗体(cl 1-3，cl 1-7，A0T3,以1 2 1的比率混合)，于4°C温育过 夜。用含有0. 15M NaCl的IOmM磷酸缓冲液(pH7. 3)洗2次后，加350 μ L的含有0. 5%酪 蛋白钠的IOmM磷酸缓冲液(ρΗ7. 1)，温育2小时。除去封闭液后，将含有中和剂的反应缓冲 液100μ L和各个通过样品处理法得到的测定样品加到各个孔中，边搅拌边于室温下反应1 小时，用含有0. 05%吐温20的IOmM磷酸缓冲液(ρΗ7. 3)(洗净液)350 μ L清洗6次，再添 加过氧化物酶(HRP)标记的单克隆抗体(C11-9和C11-14等量混合)200yL，于室温下反应 30分钟。用洗净液洗6次，加底物溶液(含有2mg/ml的邻苯二胺、30%过氧化氢水0. 9 μ 1/ ml的0. IM柠檬酸磷酸缓冲液pH5. 0) 200 μ L，温育30分钟。加5N硫酸50 μ L停止酶反应， 用微量培养板读数仪(二 口 t MTP32)测定492nm(参考波长630nm)的吸光度，结果如表7 所示。另外，表7所示的麦芽糖浓度用将样品和预处理剂混合后的预处理时浓度表示。各HCV阳性样品自添加麦芽糖的预处理时浓度2. 5%开始证实存在高的核心抗原 活性，即使10%或以上也可确认。另外，这样的添加效果除了麦芽糖以外，即使蔗糖、果糖、 甘露糖、海藻糖等也可确认。2)柠檬酸浓度向HCV抗原阴性样品或HCV抗原阳性样品100 μ L添加含有各种浓度柠檬酸的预 处理剂(IN HCl, 3. 5% C12TAB,3% C16APS,3% C18APS,7% TritonX100、3M 尿素、5%麦芽 糖、20mM 二乙氨基乙硫醇盐酸)100 μ L，于37°C温育10分钟，将其中的100 μ L作为测定样 品，用上述1)中所述方法进行研究(表8)。但是，由于向预处理剂中添加了柠檬酸，预处理 后的样品液的PH有些变化，所以要将反应缓冲液100μ L的中和剂浓度进行适时变更使之 变成中性。另外，表8给出的柠檬酸浓度用样品与预处理剂混合后的预处理时浓度表示。就像表8所示的那样，各HCV阳性样品从添加柠檬酸的预处理时浓度0. 05Μ开始 证实高核心抗原活性，即使在0. 2Μ或以上也可确认。另外这样的添加效果即使使用包括柠 檬酸钠盐在内的多种柠檬酸盐类也可确认。表 14 表 15
产业上的可利用性通过本发明，可以简便、短时间使病毒抗原从HCV等病毒粒子中游离，使其为适于 抗体等作为探针检测抗原的所谓免疫测定方法的状态。另外通过本发明给出的方法，通过 对含有HCV等病毒粒子的样品进行处理，通过使用抗体等探针检测抗原的所谓免疫测定方 法，可以简便、短时间内、而且高灵敏度地对病毒抗原进行检测和定量。另外，通过本发明可 以简便、短时间使病毒抗原游离。另外，通过本发明得到的有用的单克隆抗体由于特异识别丙型肝炎患者血清中的 HCV抗原，所以可以制作使用显示丙型肝炎的样品处理法和免疫测定方法判别样品中有无 HCV等病毒的试剂盒、定量试剂盒以及诊断试剂。另外通过利用本发明得到的单克隆抗体 和使用非常简易的处理法的HCV检测以及定量方法，可以简单地、操作性好地进行丙型肝
炎的确诊。
序列表
<110>株式会社先端生命科学研究所
<120>丙型肝炎病毒的检测方法
<130>P911
<150>JP2003-367783
<151>2003-10-28
<160>2
<210>1
<211>20
<212>PRT
<213>丙型肝炎病毒
<220>
<221>
<222>(21). . (40)
<223>丙型肝炎病毒核心抗原的部分氨基酸序列
<400>1
Asp Val Lys Phe Pro Gly Gly Gly Glnlie Val Gly Gly Val Tyr Leu
1 510 15
Leu Pro Arg Arg
20<210>2<211>21<212>PRT<213>丙型肝炎病毒<220>
<221><222>(100). . (120)<223>丙型肝炎病毒核心抗原的部分氨基酸序列<400>2Pro Arg Gly Ser Arg Pro Ser Trp Gly Pro Thr Asp Pro Arg His Arg151015Ser Arg Asn Val Gly20
权利要求
杂交瘤细胞株，其为HC11 9(FERM BP 08493)、HC11 21(FERMBP 08494)或OT3(FERM BP 10032)。
2.由杂交瘤HC11-9(FERM BP-08493), HCl 1-21 (FERM BP-08494)或 0T3 (FERM BP-10032)产生的单克隆抗体。
全文摘要
本发明提供了含有HCV样品的处理方法等，其特征在于将含有HCV(丙型肝炎病毒)的样品通过用含有(1)酸化剂，以及(2)蛋白质变性剂，或在同一分子中具有碳数10个或10个以上的单链烷基和叔胺或季铵盐的两性离子型表面活性剂或阳离子型表面活性剂的处理剂处理，使HCV抗原游离和将与HCV抗原结合的抗体破坏。
文档编号C12N5/18GK101892199SQ20101000213
公开日2010年11月24日 申请日期2004年10月28日 优先权日2003年10月28日
发明者松原直子, 青柳克己, 饭田久美子 申请人:株式会社先端生命科学研究所