可抑制埃博拉病毒基因复制的活性分子及其使用方法_5

文档序号:9344245阅读:来源:国知局
病毒RNA,采用ZEB0V 糖蛋白特异性的正向(forward)、反向引物和TaqMan探针来进行RT-PCR分析。将病毒基 因表达水平的绝对定量(Absolutequantification)分析同阳性或阴性对照的绝对定量分 析进行比较。细胞中的RNA被提取出来,利用VP24、VP30、VP35、VP40和聚合酶LcDNA产 物的基因特异性的引物,进行5'-RACE分析。将PCR产物的长度和筛选出来的siRNA抑制 剂的有效性进行对比。筛选出具有高保护效率的单个siRNA或siRNA鸡尾酒,用于动物模 型研究。
[0129] 例16.豚鼠模型研究
[0130] 利用豚鼠模型来研究siRNA体内抑制埃博拉感染的疗效。用RGD-PEG-HKP三重纳 米颗粒体系壳体化的SiRNA鸡尾酒可进一步在动物模型中进行试验,如动物模型。通过腹 腔注射(ip)含siRNA鸡尾酒的纳米颗粒来治疗8只豚鼠,另外8只豚鼠用不含siRNA的三 重纳米颗粒来治疗,作为对照。给药3h后,在豚鼠皮下(sc)注射ZEB0V,豚鼠可能需要适 应ZEB0V。所有豚鼠都接受了三次追加(addition)的治疗,分别在注射ZEBOV24h、48h和 96h后。在进行实验的21天,仔细监测了所有豚鼠的疾病信号和生存状态。注射ZEBOV1 天、4天、7天和18天后收集血液,通过VeroE6细胞的菌斑试验来测定病毒滴度(virus titration)。来自治疗组和对照组的三只豚鼠分别在注射ZEBOV24h、72h和120h后实施安 乐死。对豚鼠实施安乐死之前,通过心脏穿刺收集全血,用于血液学计数和血清生化分析。 收集肾、肝、脾、胰腺和肺等器官并将其匀浆化,通过VeroE6细胞的噬菌斑试验来测定病毒 滴度。
[0131] 收集肾、肝、脾、胰腺、肺、胸腺、胃、小肠、结肠、颂下唾液腺、脑、子宫和下颂淋巴结 组织并固定(fixed),用于组织病理学和免疫组织化学分析。
[0132] 例17?非人类灵长类动物研究
[0133] 非人类灵长类动物实验用来研究siRNA抑制剂抗埃博拉病毒感染中国猕猴的疗 效。研究在生物安全级别为4的实验室进行。SiRNA/RGD-PEG-HKP三重纳米颗粒体系是评 价siRNA药物活性的理想体系。
[0134] 第一组中,四只猕猴中的三只在接种ZEB0V30分钟之后,接受抗埃博拉病毒的 siRNA鸡尾酒治疗,对照动物用不含siRNA的三重纳米颗粒治疗。接受抗埃博拉的siRNA鸡 尾酒治疗的三只猕猴都接受了三次追加的治疗,分别在接种ZEBOV1天、3天和5天后,而对 照动物则用不含siRNA的三重纳米颗粒治疗。第二组中,动物每天都给予追加治疗,以探索 增加治疗的频率是否可以提高保护效果。四只猕猴中的三只在接种ZEB0V30分钟之后,接 受抗埃博拉的siRNA鸡尾酒治疗,然后接受了六次追加治疗,分别在接种ZEBOV1天、2天、 3天、4天、5天和6天后;而对照动物在相同的时间点用不含siRNA的三重纳米颗粒治疗。
[0135] 在整个研究过程中,用简单的单注射器注入栗静脉滴注生理盐水。在进行实验的 43天,仔细监测了所有动物的疾病信号和生存状态。接种ZEB0V3天、6天、10天、14天、22 天和40-43天后收集血液,利用VeroE6细胞的噬菌斑试验对收集到的猕猴血液样品进行 病毒滴度的测定。
[0136] 以下各表中列出了本申请中所涉及的核苷酸序列。
[0137] 表1列出了用于siRNA设计的埃博拉病毒基因组序列。其中,总共有21条埃博拉 病毒序列,代表了所有已公布的埃博病毒拉序列,排列出来用于设计靶向VP24、VP30、VP35、 VP40和LP基因的保守区域的siRNA。
[0138] 表 1
[0139]
[0140] 表2列出了抗埃博拉病毒蛋白24的siRNA。其中,含有钝端(x8)的25mersiRNA 或含有dtdt悬挂端(x8)的21mersiRNA,靶向埃博拉病毒序列中VP24基因的保守区域。
[0141] 表 2
[0142]
[0143] 表3列出了抗埃博拉病毒蛋白30的siRNA。其中,含有钝端(x8)的25mersiRNA 或含有dtdt悬挂端(x8)的21mersiRNA,靶向埃博拉病毒序列中VP30基因的保守区域。
[0144] 表 3
[0145]
[0146] 表4列出了抗埃博拉病毒蛋白35的siRNA。其中,含有钝端(x8)的25mersiRNA 或含有dtdt悬挂端(x8)的21mersiRNA,靶向埃博拉病毒序列中VP35基因的保守区域。
[0147] 表 4
[0148]
[0149] 表5列出了抗埃博拉病毒蛋白40的siRNA。其中,含有钝端(x8)的25mersiRNA 或含有dtdt悬挂端(x8)的21mersiRNA,靶向埃博拉病毒序列中VP40基因的保守区域。
[0150] 表 5
[0151]
[0152] 表6列出了抗埃博拉病毒L蛋白的siRNA。其中,含有钝端(x8)的25mersiRNA 或含有dtdt悬挂端(x8)的21mersiRNA,革El向埃博拉病毒序列中L聚合酶基因的保守区 域。
[0153] 表 6
[0154]
[0155] 表7列出了已经被证明有效的针对Zaire埃博拉病毒的小干扰核苷酸siRNA序 列,siRNA双链具有强大的(potent)抗埃博拉病毒活性。其中,革E1向扎伊尔埃博拉病毒的 siRNA序列已经在细胞培养模型中进行测试,以检测其抗病毒活性。正链(positive)siRNA 可用来作为体外筛选试验的阳性对照。
[0156] 表 7
[0157]
[0158] 表8列出了用于病毒RNA水平RT-PCR分析的DNA引物。其中设计和筛选用于 RT-PCR分析的引物,以检测病毒序列和测定病毒感染细胞经过治疗后病毒基因的表达水 平。
[0159] 表 8
[0160]
[0161] REFERENCES
[0162] 2.Choi JH, Croyle MA. Emerging targets and novel approaches to Ebola virusprophylaxisandtreatment.BioDrugs. 2013Dec;27 (6):565_83〇
[0163] 3.Johnson,KarlM. ;Kawaoka,Yoshihiro;Lipkin,ff.Ian;Negredo,AnaIet al. (2010)?''ProposalforarevisedtaxonomyofthefamilyFiloviridae:Classific ation,namesoftaxaandviruses,andvirusabbreviations".ArchivesofVirology 155(12):2083 - 103〇
[0164] 4.ChoiJH,CroyleMA.EmergingtargetsandnovelapproachestoEbola virusprophylaxisandtreatment.BioDrugs. 2013. 27(6):565_83〇
[0165] 5.LuJ,etal.HostIQGAP1andEbolavirusVP40interactionsfacilitate virus-likeparticleegress.JVirol. 2013Jul;87(13):7777_80〇
[0166] 6.GeisbertTff,etal.Postexposureprotectionofnon-humanprimates againstalethalEbolaviruschallengewithRNAinterference:aproof-of-concept study.Lancet. 2010. 375(9729) :1896-905〇
[0167] 7. Geisbert Tff,et al. Postexposure protection of guinea pigs against a lethal ebola virus challenge is conferred by RNA interference.J Infect Dis. 2006. 15;193(12) :165〇-7〇
[0168] 8.ThiEP,etal.Marburgvirusinfectioninnonhumanprimates:Therapeutic treatmentbylipid-encapsulatedsiRNA.SciTranslMed. 2014. 20 ;6 (250) 〇
[0169] 9.ZhuY,etal.CharacterizationoftheRNAsilencingsuppression activityoftheEbolavirusVP35proteininplantsandmammaliancells.J Virol. 2012. 86(6) : 3038-49。
[0170] 10.MateoM,etal.KnockdownofEbolavirusVP24impairsviral nucleocapsidassemblyandpreventsvirusreplication.JInfectDis. 2011. 204 Suppl3:S892-6。
[0171] 11.FabozziG,etal.Ebolavirusproteinssuppresstheeffectsofsmall interferingRNAbydirectinteractionwiththemammalianRNAinterference pathway.JVirol. 2011. 85 (6) : 2512-23。
[0172] 12.SpurgersKB,etal.Identificationofessentialfilovirion-associated hostfactorsbyserialproteomicanalysisandRNAiscreen.MolCell Proteomics. 2010. (12):2690-703〇
[0173] 13.KolokoltsovAA,etal.Identificationofnovelcellulartargetsfor therapeuticinterventionagainstEbolavirusinfectionbysiRNAscreening.Drug DevRes. 2009. 70(4) : 255-265。
[0174] 14.Pattyn,S. ;Jacob,W. ;vanderGroen,G. ;Piot,P.;Courtei1le,G. (1977)?"IsolationofMarburg-likevirusfromacaseofhaemorrhagicfeverin Zaire".Lancet309(8011): 573 - 4。
[0175] 15.Bowen,E.T.ff. ;Lloyd,G. ;Harris,ff.J. ;Platt,G.S.;Baskervi1le,A.; Vella,E.E. (1977)?''ViralhaemorrhagicfeverinsouthernSudanandnorthern Zaire.Preliminarystudiesontheaetiologicalagent".Lancet309 (8011):571 - 3〇
[0176] 16.WHO."Ebolavirusdisease'
[0177] 17.Nanbo,Asuka;ffatanabe,Shinji;Halfmann,Peter;Kawaoka,Yoshihiro(4 Feb2013)?〃Thespatio-temporaldistributiondynamicsofEbolavirusproteinsand RNAininfectedcells^.Nature,doi:10. 1038/srep01206〇
[0178] 18.Feldmann,H.K. (1993) ?"Molecularbiologyandevolutionof filoviruses".Archivesofvirology.Supplementum7:81 - 100〇
[0179] 19.Klenk,H~D;Feldmann,H(editor) (2004).EbolaandMarburg Viruses:MolecularandCellularBiology.HorizonBioscience.ISBN 978-1-904933-49-6.Taylor,D. ;Leach,R. ;Bruenn,J. (2010)."Filovirusesareancient andintegratedintomammaliangenomes".BMCEvolutionaryBiology10:193〇
[0180] 20.Belyi,V.A. ;Levine,A.J. ;Skalka,A.M. (2010)."Unexpected Inheritance:MultipleIntegrationsofAncientBornavirusandEbolavirus/ MarburgvirusSequencesinVertebrateGenomes".InBuchmeier,MichaelJ.PLoS Pathogens6(7):el001030。
[0181] 21.Taylor,D.J.etal. (2014) .^Evidencethatebolavirusesand cuevaviruseshavebeendivergingfrommarburgvirusessincetheMiocene".PeerJ 2:e556〇
[0182] 22.CaretteJE,etal.(September2011) ?"Ebolavirusentryrequiresthe cholesteroltransporterNiemann-PickCl〃.Nature477(7364):34〇-3〇
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