在含油酵母中生产多不饱和脂肪酸的制作方法

专利名称：：在含油酵母中生产多不饱和脂肪酸的制作方法
技术领域：
：本发明属于生物
技术领域：
。更具体地讲，本发明涉及编码可用于在含油酵母中生产长链多不饱和脂肪酸(PUFAs)的酶的核酸片段的合成。
背景技术：
：很久以来就已经认识到，某些多不饱和脂肪酸，或PUFAs，是健康细胞的重要的生物学成分。例如，这样的PUFAs被认为是·“必需"脂肪酸，它不能够在哺乳动物体内从头合成，相反，必须从饮食中获得或者通过亚油酸(LA)或α-亚麻酸(ALA)的进一步去饱和及延伸产生；·细胞质膜的成分，其中，它们能够以诸如磷脂或甘油三酯的形式存在；·为正常发育所必需，特别是为婴儿脑发育和组织形成和修复所必需；和，·在哺乳动物体内起着重要作用的若干种生物学活性类二十烷酸的前体，包括前列环素，类二十烷酸，白三烯和前列腺素。在二十世纪70年代，发现格陵兰岛爱斯基摩人的心脏病的低发病率和大量摄入长链o-3PUFAs相关(Dyerberg，J.等，Amer.J.ClinNutr.28958-966(1975)；Dyerberg,J.等，Lancet2(8081)117-119(July15，1978))。更近一些的研究业已证实了ω-3PUFAs的心血管保护作用(Shimokawa，H.，WorldRevNutrDiet,88100-108(2001)；vonSchacky，C.，和Dyerberg，J.，WorldRevNutrDiet，88:90_99(2001))。另外，业已发现，某些病症对用ω-3脂肪酸治疗有反应，如在血管成形术之后的再狭窄率，炎症症状和类风湿性关节炎，哮喘，牛皮癣和湿疹。业已证实Y-亚麻酸(GLA，一种(0-6PUFA)能降低与应激相关的血压升高，并且改善算术测验的表现。业已证实GLA和二高-γ-亚麻酸(DGLA，另一种ω-ePUFA)能抑制血小板聚集，导致血管舒张，降低胆固醇含量，并且抑制血管壁平滑肌和纤维组织的增殖(Brenner等，Adv.Exp.Med.Viol.83:85_101(1976))。施用单独的或者与二十碳五烯酸(EPA，(0-3PUFA)组合的GLA或DGLA，业已表现出能减轻或防止胃肠出血，和由非甾体类抗炎药物导致的其他副作用(U.S.4，666，701)。另外，业已证实GLA和DGLA能预防或治疗子宫内膜异位和经前综合征(U.S.4，758，592)，并且治疗肌痛性脑脊髓炎和在病毒感染之后的慢性疲劳(U.S.5，116，871)。其他证据表明，PUFAs可能与钙代谢的调控有关，表明了它们可用于治疗或预防骨质疏松症和肾或尿道结石。最后，PUFAs可用于治疗癌症和糖尿病(U.S.4，826，877；Horrobin等，Am.J.Clin.Nutr.57(Suppl.)732S-737S(1993))。PUFAs通常被划分成两种主要类型(由ω-6和ω-3脂肪酸组成)，它们是分别通过必需脂肪酸，LA和ALA的去饱和和延伸产生的。尽管具有从“必需”脂肪酸的这种常见的衍生，越来越明确饮食中ω-6与ω-3的比例对维持良好的健康状态很重要。由于人类饮食习惯的改变，目前ω-6与ω-3的比例是大约101，而优选的比例是2l(Kris-Etherton,P.M.etal.,Am.J.Olin.Nutr.71(ISuppI.)179S-88S(2000)；Simopoulos,A.P.etal.,Ann.Nutr.Metab.43127-130(1999)；Krauss,R.M.etal.AHACirculation1022284-2299(2000)).ω-6脂肪酸的主要来源是含有大量LA的植物油(如玉米油、大豆油)。GLA存在于许多植物的种子，包括月见草(Oenotherabiennis)，，琉璃苣(Boragoofficinalis)和黑醋栗(Ribesnigrum)。被孢霉属(丝状真菌)的微生物、Entomophthora、腐酶属和Porphyridium(红藻)可以用于ω-6脂肪酸花生四烯酸(ARA)的商业生产。例如，用一种真菌高山被孢霉生产含ARA的油，而U.S.5，658，767(MartekCorporation)教导了生产含ARA的油的方法，包括在含有碳和氮源的培养基中培养Pythiuminsidiuosum。重要的(0-3PUFAS包括EPA和二十二碳六烯酸(DHA)，两者都存在于不同类型的鱼油和海洋浮游生物中。U.S.5，244，921(MartekCorporation)描述了用于生产含EPA的可食用油的方法，包括在发酵罐中培养异养硅藻，具体是Cyclotellasp.和Nitzschiasp。DHA可以获自冷水海洋鱼类、蛋黄部分，以及通过培养Dinophyceae纲的某些异养微藻类，具体是Crypthecodiniumsp.，如C.cohnii(U.S.5，492，938和U.S.5，407，957)。十八碳四烯酸(STA)，即EPA和DHA的一种前体，可以存在于海洋油类和植物种子中；其商业来源包括在Trichodesma和Echium属中的生产。ω-3酸的其它来源存在于亚麻籽油和胡桃油，它们均含有占绝对优势的ALA。尽管PUFAs的多种商业来源来自于天然来源，但是存在与所述生产方法相关的若干缺陷。首先，诸如鱼和植物的天然来源倾向于具有高度的不一致的油类组成。因此，从这些来源获得的油，可能需要高度纯化，以便分离或者富集一种或多种需要的PUFAs。鱼油通常具有不佳的味道和气味，这可能不能与需要的产物经济地分开，并且可导致所述产物不能被接受为食物补充物。不佳的味道和气味可以导致基于摄入高剂量的医学方案不被接受，并且可能降低患者的依从性。此外，鱼类可能积累环境污染物，并且摄入鱼油胶囊作为饮食补充物可能导致摄入不良的污染物。天然来源同样会出现可利用性的无法控制的波动(例如，由于天气，疾病，或者对于鱼类资源来说的过度捕捞)；和产生PUFAs的作物通常在经济上无法与为了食物生产而培育的杂交作物竞争。能天然产生PUFAs的某些生物(例如，Porphyridium，被孢霉)的大规模发酵同样可能是昂贵的，和/或难以以商业化规模培养。上述限制的结果是，为了达到以下目的必须进行大量的研究1.)开发便于商业化生产的PUFAs的重组资源；和2.)修饰脂肪酸生物合成途径，以便能够生产需要的PUFAs0在过去若干年中在从各种生物中分离，克隆并且操作脂肪酸去饱和酶和延伸酶基因方面取得了进展。对这些基因序列的了解，提供了在不能天然产生PUFAs的新的宿主生物中生产需要的脂肪酸和/或脂肪酸组合物的前景。以下文献披露了在酿酒酵母中的多种例子，如1.Domergue,F.，etal.(Eur.J.Biochem.269:4105_4113(2002))，其中海洋硅藻三角褐指藻来源的两种去饱和酶被克隆进酿酒酵母内，导致生成了EPA；2.BeaudoinF.,etal.(Prοc.Na11.Acad.Sci.U.S.A.97(12)6421-6426(2000))，其中利用了秀丽新杆线虫来源的基因在酿酒酵母内重构了ω-3和co-6PUFA生物合成途径；3.Dyer,J.Μ.etal.(Appl.Eniv.Microbiol.，59:224_230(2002))，其中在酿酒酵母内表达了植物脂肪酸去饱和酶(FAD2和FAD3)，导致生成了ALA；以及4.U.S.6,136,574(Knutzonetal.,AbbottLaboratories)，其中将甘蓝型油菜来源的一种去饱和酶和真菌高山被孢霉来源的两种去饱和酶克隆进酿酒酵母内，导致生成了LA、GLA、ALA禾口STA0不过，仍然需要合适的微生物系统，其中，上述类型的基因可以表达，以便提供商业化数量的一种或多种PUFAs的经济生产。另外，需要富集了特殊PUFAs，特别是EPA和DHA的油。许多微生物(包括藻类、细菌、霉菌和真菌)能够在细胞代谢的普通过程中合成油类。因此，油生产包括在合适的培养基中培养微生物以合成油，然后从发酵培养基分离微生物，并且进行处理以回收细胞内的油。已经进行了多种尝试以便通过发酵手段优化脂肪酸的生产，所述手段包括改变如使用的微生物、允许油生产的培养基和条件等参数。但是，已经证明这些努力在改进油产率或控制产生的油组合物的特征方面非常不成功。以前尚未作为PUFAs的生产平台检验的一种类型的微生物是含油酵母。这种微生物能够积累最多占它们的干细胞重量80%的油类。业已完善了用于生长具有高油含量的含油酵母的技术(例如，参见EP0005277Bl；Ratledge,C.，Prog.Ind.Microbiol.16119-206(1982))，并且可以提供与生产ω-3或ω-6PUFAs的商业化微藻发酵相比的成本优势。完整的酵母细胞可能还体现了对ω-3或《-6PUFA-富集的油进行包囊以便用于功能性食品和动物饲料添加剂的方便途径。尽管具有上述优点，含油酵母天然上是ω-6和《-3PUFAS缺陷型的，因为在这种微生物中天然产生的PUFAs局限于182脂肪酸(以及更不常见的是183脂肪酸)。因此，要解决的问题是，开发能积累富含ω-3和/或ω-6脂肪酸的油类的含油酵母。为此，必须导入去饱和酶和延伸酶，这两种酶能够在含油酵母中合成和积累ω-3和/或ω-6脂肪酸。尽管在基因工程领域已经有了进展，但是这类技术没有被开发用于含油酵母。因此，必须克服与将这些特定宿主生物用于生产PUFAs相关的问题。申请人:通过导入异源ω-3和/或ω-6生物合成途径，证明了宿主解脂耶氏酵母(YarrowiaLipolytica)中PUFAs的生产，从而解决了上述问题。具体地，在此生产了ARA(代表ω-6脂肪酸)和EPA(代表ω-3脂肪酸)，以例证本发明的技术。
发明内容本发明提供了在含油酵母宿主中表达包括ω-3/ω-6脂肪酸生物合成途径的酶，以便生产ω-3和/或ω-6脂肪酸的方法。因此，本发明提供了生产ω-3和/或ω-6脂肪酸的方法，包括a)提供包括功能性ω-3/ω-6脂肪酸生物合成途径的含油酵母；b)在可发酵碳源的存在下生长步骤(a)的酵母，从而生产ω-3或ω-6脂肪酸；并且c)任选回收ω-3或ω-6脂肪酸。在一种具体实施方案中，本发明提供生产亚油酸的方法，包括a)提供包括以下成分的含油酵母(i)编码Δ12去饱和酶多肽的基因；和(ii)油酸的内源来源；b)在合适的可发酵碳源的存在下生长步骤(a)的酵母，其中表达编码Δ12去饱和酶多肽的基因并且将油酸转化为亚油酸；并且c)任选回收步骤(b)的亚油酸。在具体实施方案中，本发明提供了通过从头生物合成或从合适的前体进行单步骤酶促反应而生产特殊ω-6脂肪酸，如亚油酸(LA)，Y-亚麻酸(GLA)，二高-Y-亚油酸(DGLA)，和花生四烯酸(ARA)的方法。类似地，本发明提供了通过单步骤酶促反应从合适的前体生产特殊ω-3脂肪酸，如α-亚油酸(ALA)，十八碳四烯酸(STA)，二十碳四烯酸(ETA)，二十碳五烯酸(EPA)，二十二碳五烯酸(DPA)和二十二碳六烯酸的方法。图1表示含油酵母内脂质积累生化机制的示意图。图2表示ω-3/ω-6脂肪酸生物合成途径。图3表示用于在解脂耶氏酵母中进行基因表达的质粒载体ρΥ5的构建。图4表示用于在解脂耶氏酵母中进行基因表达的质粒载体ΡΥ5-4和ρΥ5-13的构建。图5表示中间载体pYZM5CHPPA的构建示意图。图6表示异丝水霉Δ17去饱和酶基因和密码子优化以便在解脂耶氏酵母中表达的合成基因的DNA序列的比较。图7表示在解脂耶氏酵母中位于翻译起始密码子'ATG'周围的优选的共有序列。图8表示体外合成密码子优化的Δ17去饱和酶基因的方案。图9表示用于在解脂耶氏酵母内表达合成的密码子优化的Δ17去饱和酶基因和野生型Δ17去饱和酶基因的质粒。图IOA和IOB所示为对在分别经过野生型Δ17去饱和酶基因和合成的密码子优化的△17去饱和酶基因转化的解脂耶氏酵母内生成的脂肪酸进行气相色谱分析的结果。图11所示为中间载体ρΥ24-4的构建示意图。图12所示为中间载体PYZV16的构建示意图。图13所示为整合载体PYZM5EL6的构建示意图。图14所示为整合载体pYZV5EL6和pYZV5EL6/17的构建示意图。图15是说明由工程改造的解脂耶氏酵母生产ARA的色谱图。图16是说明由工程改造的解脂耶氏酵母生产EPA的色谱图。通过以下的详细说明和所附的序列说明能够更全面地理解本发明，这些内容构成了本发明的一部分。下列序列遵循37C.F.R.§1.821-1.825(“对含有核苷酸序列和/或氨基酸序列公开内容的专利申请的要求---序列规则”)，并符合世界知识产权组织(WIPO)标准ST.25(1998)以及EPO和PCT的序列列表要求(管理细则的规则5.2和49.5(a-bis)，以及第208节和附录C)。应用于核苷酸和氨基酸序列信息的符号和格式遵循37C.F.R.§1.822所述规则。SEQIDNO1表示高山被孢霉Δ6去饱和酶基因的DNA序列，而SEQIDNO2表示高山被孢霉Δ6去饱和酶的氨基酸序列。SEQIDNO3表示高山被孢霉Δ5去饱和酶基因的DNA序列，而SEQIDNO:4表示高山被孢霉△5去饱和酶的相应的氨基酸序列。SEQIDNO5表示异丝水霉Δ17去饱和酶基因的DNA序列，而SEQIDNO6表示异丝水霉Δ17去饱和酶的相应的氨基酸序列。SEQIDNO:7表示高山被孢霉高亲和力延伸酶基因的DNA序列，而SEQIDNO8表示高山被孢霉高亲和力延伸酶的氨基酸序列。SEQIDNO:9表示密码子优化以便在解脂耶氏酵母中表达的合成的Δ17去饱和酶基因的DNA序列。SEQIDNOs:10_31相当于11对寡核苷酸，它们共同组成了异丝水霉Δ17去饱和酶基因的完整的密码子优化的编码区(例如，分别为D17-1A，D17-1B,D17-2A，D17-2B，D17-3A,D17-3B,D17-4A，D17-4B，D17-5A，D17-5B，D17-6A，D17-6B，D17-7A，D17-7B，D17-8A，D17-8B,D17-9A,D17—9B，D17-10A，D17—10B，D17-11A和D17-11B)。SEQIDNOs:32_37分别相当于引物D17-1，D17-4R，D17-5，D17-8D，D17-8U和D17-11，用于在合成密码子优化的△17去饱和酶基因期间进行PCR扩增。SEQIDNOs:38和39分别相当于用于分离TEF启动子的引物TEF5'和TEF3'。SEQIDNOs:40和41分别相当于用于分离XPR2转录终止子的引物XPR5‘禾口XPR3'。SEQIDNOs42和43相当于引物YL21A和YL22，用于从质粒pRSP19扩增异丝水霉的野生型Δ17去饱和酶基因。SEQIDNOs:44和45分别相当于引物YL53和YL54，用于定点诱变，以便产生PYSD17M。SEQIDNO:46和47分别对应于引物KTO和KU3，被用于扩增含有耶氏酵母URA3基因的1.7kBDNA片段(SEQIDNO48；氨基酸序列如SEQIDNO49所示)。SEQIDNO:50和51分别对应于引物KI5和KI3，被用于扩增含有Impatientbalsama的接合酶基因的1.IkBDNA片段(SEQIDNO52；氨基酸序列如SEQIDNO:53所示)°SEQIDNO54和55分别对应于引物KTI5和KTI3，被用于扩增含有TEF:接合酶XPR嵌合基因的1.7kBDNA片段(SEQIDNO56；氨基酸序列如SEQIDNO:57所示)。SEQIDNO58和59分别对应于引物KH5和KH3，被用于扩增含有大肠杆菌潮霉素抗性基因的IkBDNA片段(SEQIDNO60；氨基酸序列如SEQIDNO61所示)。SEQIDNO62和63分别对应于引物KTH5和KTH3，被用于扩增含有TEF::HPT::XPR融合基因的1.6kBDNA片段(SEQIDNO64；氨基酸序列如SEQIDNO65所示)。SEQIDNO66和67分别对应于解脂耶氏酵母URA3基因中401bp的5，-序列和568bp的3’-序列，被用于将表达盒直接整合进耶氏酵母基因组的Ura位点。SEQIDNO:68_71分别对应于引物YL63、YL64、YL65和YL66，被用于定点诱变，以生成pY24-4。SEQIDNO:72和73分别对应于引物YLll和YL12，被用于扩增高山被孢霉Δ5去饱和酶。SEQIDNO:74_77分别对应于引物YL81、YL82、YL83和YL84，被用于定点诱变，以生成pYZM5CH。SEQIDNO:78和79分别对应于引物YL105和YL106，被用于定点诱变，以生成PYZM5CHPP。SEQIDNO:80和81分别对应于引物YL119和YL120，被用于定点诱变，以生成PYZM5CHPPA。SEQIDNO:82和83分别对应于引物YL121和YL122，被用于扩增解脂耶氏酵母URA3基因上游440bp的5，-非编码DNA序列(SEQIDNO84)。SEQIDNO:85和86分别对应于引物YL114和YL115，被用于定点诱变，以生成pYZV5禾口pYZV5P。SEQIDNO:87对应于适合在解脂耶氏酵母基因组内整合和表达Δ5去饱和酶基因的5.2kBDNA片段。SEQIDNO:88_91分别对应于引物YL61、YL62、YL69和YL70，被用于定点诱变，以生成pY58BH。SEQIDNO:92_95分别对应于引物YL77、YL78、YL79A和YL80A，被用于定点诱变，以生成pY54PC。SEQIDNO:96对应于适合在解脂耶氏酵母基因组内整合和同步表达Δ6去饱和酶、高山被孢霉延伸酶和高山被孢霉Δ5去饱和酶基因的8.9kBDNA片段。SEQIDNO:97_100分别对应于引物YL101、YL102、YL103和YL104，被用于定点诱变，以生成PYSD17SPC。SEQIDNO101对应于适合在解脂耶氏酵母基因组内整合和同步表达Δ6去饱和酶、高山被孢霉延伸酶、高山被孢霉Δ5去饱和酶和密码子优化的△17去饱和酶基因的10.3kBDNA片段。SEQIDNO:102_113分别对应于引物YL1、YL2、YL3、YL4、YL5、YL6、YL7、YL8、YL9、YL10、YL23和YL24，被用于构建质粒。SEQIDNO114表示异丝水霉Δ5去饱和酶基因的DNA序列，而SEQIDNO115表示异丝水霉△5去饱和酶的相应的氨基酸序列。SEQIDNO:116、117、120、121、124和125分别对应于引物YL13A、YL14A、YL19A、YL20、YL15和YL16B，用于克隆多种Δ5去饱和酶基因。SEQIDNO:118表示IsochrysisgalbanaΔ5去饱和酶基因的DNA序列，而SEQIDNO:119表示IsochrysisgalbanaΔ5去饱和酶的相应的氨基酸序列。SEQIDNO122表示ThraustochytriumaureumΔ5去饱和酶基因的DNA序列，而SEQIDNO119表示ThraustochytriumaureumΔ5去饱和酶的相应的氨基酸序列。SEQIDNO126对应于最适合在耶氏酵母种内表达的基因的密码子优化翻译起始位点。具体实施例方式根据本发明，申请人提供了在含油酵母中生产ω-3和/或ω-6脂肪酸的方法。具体地，申请人提供了生产亚油酸、Y-亚麻酸、二高-Y-亚油酸、花生四烯酸、α-亚麻酸、十八碳四烯酸、二十碳四烯酸、二十碳五烯酸、二十二碳五烯酸和二十二碳六烯酸的方法。这是通过将由赋予Δ17去饱和酶、Δ6去饱和酶、Δ5去饱和酶、Δ9去饱和酶、Δ12去饱和酶、Δ15去饱和酶、Δ4去饱和酶和延伸酶活性的基因编码的功能性ω-3/ω-6脂肪酸生物合成途径导入含油宿主酵母中以便进行重组表达而实现的。因此，本公开内容证明了可以对含油酵母进行工程改造，以便能够生产任何所需的PUFA组合物。本发明具有多种用途。通过本文所披露的方法制备的PUFAs，或它的衍生物可被用作饮食代用品，或补充物，特别是婴儿配方，用于静脉内喂饲的患者或用于预防或治疗营养不良。另外，可以将纯化的PUFAs(或它的衍生物)掺入烹饪油，脂肪，或配制的人造奶油中，以便在正常使用时，受体能接受到所需数量的饮食补充。还可将PUFAs掺入婴儿配方，营养补充物或其他食品中，并且可以用作抗炎剂或降胆固醇剂。可任选将所述组合物用于药物学用途(人或兽医)。在这种场合下，PUFAs通常是口服的，不过，可以通过能够成功地吸收它们的任何途径施用，例如，肠胃外(例如皮下，肌内或静脉内)，直肠内，阴道内或局部(例如，作为皮肤油膏或洗液)。给人或动物补充通过重组方法生产的PUFAs，可以导致水平增加的添加的PUFAs，以及它们的代谢产物。例如，用花生四烯酸(ARA)治疗，不仅能够产生水平增加的ARA，而且还能产生ARA的下游产物，如前列腺素。复杂的调控机制，可能需要组合各种PUFAs，或者添加PUFAs的不同的缀合物，以便预防，控制或克服这样的机制，以便在个体内获得理想水平的特定的PUFAs。^X在本说明书中，使用了多种术语和缩写。提供了以下定义。“开放读框〃被缩写为0RF。‘‘聚合酶链反应〃被缩写为PCR。“美国典型培养物保藏中心〃被缩写为ATCC。“多不饱和脂肪酸〃被缩写为PUFA(S)。术语"脂肪酸"表示具有各种链长的长链脂族酸(链烷酸)，从大约C12-C22(不过已知可以采用更长和更短链长的酸)。主要的链长为C16至C22。脂肪酸的结构是通过简单的符号系统"χ:γ"表示的，其中，X是在特定脂肪酸中的碳(C)原子的总数，而Y是双键的数量。一般，脂肪酸被划分成饱和的或不饱和的。术语"饱和脂肪酸"表示在它们的碳主链之间没有"双键"的脂肪酸。相反，“不饱和脂肪酸"是沿它们的碳主链具有"双键"的顺式异构体。“单不饱和脂肪酸"沿碳主链只有一个"双键"(例如，对于棕榈油酸(16:1)和油酸(18:1)来说通常位于第9和第10个碳原子之间)，而"多不饱和脂肪酸"(或"PUFAs")沿碳主链具有至少两个双键(例如，对于亚油酸(18:2)来说位于第9和第10和第12和第13个碳原子之间；对于α-亚麻酸(18:3)来说位于第9和第10，第12和第13，和第15和第16个碳原子之间)。“PUFAs"可以划分成两种主要类型(根据最靠近脂肪酸碳链的甲基末端的第一个双键的位置(η))。因此，“ω-6脂肪酸"(ω-6或η-6)的第一不饱和的双键距离该分子的ω(甲基)末端六个碳原子，并且一共还具有两个或两个以上双键，每一个随后的不饱和出现在朝向该分子羧基末端的三个额外的碳原子。相反，“ω-3脂肪酸"(ω-3或η-3)的第一不饱和的双键距离该分子的ω末端三个碳原子，并且一共还具有三个或三个以上双键，每一个随后的不饱和出现在朝向该分子羧基末端的三个额外的碳原子。在本说明书中，将利用ω-参考系统表示碳原子的编号，双键的编号，和最接近ω碳原子的双键的位置，从ω碳原子开始计数(它是用于这种目的的第1号)。在下面的表1中示出了这种命名方法，表示在标题为"简化符号"的栏目中。该表的其余部分归纳了ω-3和ω-6脂肪酸的常用名，在说明书中将要使用的缩写，以及每一种化合物的化学名称。表1多不饱和脂肪酸的侖名<table>tableseeoriginaldocumentpage11</column></row><table><table>tableseeoriginaldocumentpage12</column></row><table>术语"必需脂肪酸"表示个体为了生存必须摄入的PUFA，因为所述个体不能从头合成所述特定必需脂肪酸。例如，哺乳动物不能合成必需脂肪酸亚油酸(18:2，ω-6)。其他必需脂肪酸包括GLA(ω-6)，DGLA(ω-6)，ARA(ω-6)，EPA(ω-3)和DHA(ω-3)。术语"脂肪"表示脂类物质，它在25°C下是固体，并且通常是饱和的。术语〃油〃表示在25°C下是液体并且通常是多不饱和的脂类。PUFAs存在于某些藻类，含油酵母和丝状真菌的油中。“微生物油"或"单细胞油"是由微生物在它们的生命过程中天然产生的油类。这种油类可能包括长链PUFAs。术语〃PUFA生物合成途径酶〃表示与PUFA的生物合成相关的以下任何酶(以及编码所述酶的基因)，包括Δ4去饱和酶，Δ5去饱和酶，Δ6去饱和酶，Δ12去饱和酶，Δ15去饱和酶，Δ17去饱和酶，Δ9去饱和酶和/或延伸酶。术语"ω-3/ω-6脂肪酸生物合成途径"表示一组基因，当它们在合适的条件下表达时，编码能催化ω-3和/或ω-6脂肪酸生产的酶。通常，与ω-3/ω-6脂肪酸生物合成途径相关的基因编码某些或所有以下的酶Δ12去饱和酶，Δ6去饱和酶，延伸酶，Δ5去饱和酶，Δ17去饱和酶，Δ15去饱和酶，Δ9去饱和酶和Δ4去饱和酶。在图2中示出了典型的途径，证实了如何由普通来源生产ω-3和ω-6脂肪酸。本文所用与ω-3/ω-6脂肪酸生物合成途径相关的术语“功能性”指该途径中的所有基因或其中一部分可表达活性酶。应当理解的是，“ω-3/ω-6脂肪酸生物合成途径”或“功能性ω-3/ω-6脂肪酸生物合成途径”并不意味着该节所列的所有基因均是必需的，因为许多脂肪酸产物仅需该途径中部分基因的表达。术语"去饱和酶"表示能够对一种或多种脂肪酸去饱和以便产生单-或多不饱和脂肪酸或感兴趣的前体的多种酶复合物的多肽成分。尽管在本说明书中ω-参考系统被用于表示特殊的脂肪酸，更常见的是，利用系统从底物的羧基末端开始计数以表示去饱和酶的活性。本发明特别感兴趣的是1.)Δ17去饱和酶，它能使脂肪酸的位于从该分子的羧基末端开始计数的第17和第18个碳原子之间去饱和，并且，例如，催化ARA转化成EPA和/或DGLA转化成ETA；2.)Δ6去饱和酶，它能催化LA转化成GLA和/或ALA转化成STA；3.)Δ5去饱和酶，它能催化DGLA转化成ARA和/或ETA转化成EPA；4.)Δ4去饱和酶，它能催化DPA转化成DHA;5.)Δ12去饱和酶，它能催化油酸转化成LA；6.)Δ15去饱和酶，它能催化LA转化成ALA;和7.)Δ9去饱和酶，它能催化棕榈酸酯或盐转化成棕榈油酸(16:1)和/或硬脂酸酯或盐转化成油酸(18:1)。术语"延伸酶"表示能够延伸脂肪酸碳链，以便产生比延伸酶作用的脂肪酸底物长2个碳原子的单或多不饱和脂肪酸的多酶复合物的多肽成分。这种延伸过程是通过与脂肪酸合成酶相关的多步骤机制发生的，其中，CoA是酰基载体(Lassner等，ThePlantCell8:281-292(1996))。简单地讲，丙二酰-CoA与长链酰基-CoA缩合，以便产生CO2和β-酮酰基-CoA(其中，酰基部分业已延长了两个碳原子)。随后的反应包括还原成羟酰基-CoA，脱水形成烯酰基-CoA，并且第二次还原，以便产生延长的酰基-CoA。由延伸酶催化的反应的例子是将GLA转化成DGLA，STA转化成ETA和将EPA转化成DPA。因此，延伸酶可以具有不同的特异性(例如，C16/18延伸酶优选C16底物，C8/2(1延伸酶优选C18底物，而C2(1/22延伸酶优选C2tl底物)。术语"高亲和力延伸酶"表示它的底物特异性优选GLA的延伸酶(DGLA是延伸酶反应的产物)。在WO00/12720中披露了一种这样的延伸酶。术语"转化效率"和"底物转化百分比"表示特定的酶(例如，去饱和酶或延伸酶)可以将底物转化成产物的效率。转化效率是按照以下公式计算的([产物]/[底物+产物])^100，其中'产物'包括产生它的途径上的中间产物和所有产物。术语"含油的"表示倾向于以脂类形式储存它们的能源的生物(Weete，InFungalLipidBiochemistry,2nded.，Plenum，1980)。一般，所述微生物的细胞PUFA含量遵循S形曲线，其中，脂类的浓度增加，直到在后对数期或早期静止生长期的最大值，然后在晚期静止期和死亡期逐渐减少(YongmanitchaiandWard，Appl.Environ，Microbiol.57:419_25(1991))。术语"含油酵母"表示被分类为酵母的微生物，它们能够积累占干细胞重量至少25%的油。含油酵母的例子包括，但不局限于以下属耶氏酵母属，假丝酵母属，红酵母属，红冬孢属，隐球酵母属，丝孢酵母属和油脂酵母属。术语"可发酵的碳源"表示微生物能够代谢以便产生能量的碳源。本发明的典型的碳源包括，但不局限于单糖，寡糖，多糖，链烷，脂肪酸，脂肪酸酯，甘油单酯，甘油二酯，甘油三酯，二氧化碳，甲醇，甲醛，甲酸盐或酯以及含碳的胺。在本文中，“分离的核酸片段"是单链或双链RNA或DNA，它任选包括合成的，非天然的或改变了的核酸碱基。DNA聚合物形式的分离的多核酸片段可能由一个或多个cDNA,基因组DNA或合成DNA的片段组成。氨基酸或核苷酸序列的"主要部分"是包括多肽的一定数目的氨基酸序列或基因的核苷酸序列的部分，所述数目足够通过本领域技术人员对所述序列进行的人工评估，或通过计算机自动化的序列比较，以及使用诸如BLAST的算法的鉴定(BasicLocalAlignmentSearchTool；Altschul，S.F.，等，J.Mol.Biol.215:403_410(1993)而推测性地鉴定该多肽或基因。一般，核苷酸序列的"主要部分"包括足够的序列(例如，20-30个连续的核苷酸)，以便特异性地鉴定和/或分离包括所述序列的核酸片段。本说明书披露了编码一种或多种特定蛋白的部分或全部核苷酸序列。技术人员利用本文所提供的序列，可以将所披露序列的全部或主要部分用于本领域技术人员所公知的目的。因此，本发明包括在所附序列表中所提供的完整的序列，以及如上文所定义的这些序列的主要部分。术语"互补的"被用于表示能够彼此杂交的核苷酸碱基之间的相互关系。例如，对于DNA来说，腺嘌呤互补于胸腺嘧啶，而胞嘧啶互补于鸟嘌呤。因此，本发明还包括分离的核酸片段，它互补于在所附序列表中提供的完整序列，以及基本上类似的核酸序列。“密码子简并性"表示遗传密码的性质，它允许改变核苷酸序列，而又不影响所编码的多肽的氨基酸序列。技术人员在用核苷酸密码子表示特定氨基酸时充分理解由特定宿主细胞所表现出来的"密码子偏倚"。因此，在合成用于改善在宿主细胞中的表达的基因时，需要设计所述基因，以便它的密码子选择的频率接近宿主细胞的优选密码子选择的频率。表示DNA序列的"化学合成的"表示组成核苷酸是在体外组装的。DNA的人工化学合成，可以通过使用业已建立的方法完成；或可以利用多种商业化仪器中的一种进行自动化的化学合成。“合成基因"可以由寡核苷酸基本单位组装，它们是利用本领域技术人员所公知的方法化学合成的。将这些基本单位连接在一起并且退火，以便形成基因片段，然后酶促组装，以便构建完整的基因。因此，可以对基因进行修饰，以便根据核苷酸序列的优化优化基因表达，以便体现宿主细胞的密码子偏倚。如果密码子选择偏向宿主优选的密码子，技术人员可以理解成功的基因表达的可能性。优选密码子的确定可以根据对来自宿主细胞的基因的检查，其中，可以获得序列信息。“基因"表示能表达特定蛋白的核酸片段，包括位于编码序列前面(5'非编码序列)和后面(3'非编码序列)的调控序列。“天然基因"表示天然与它自身的调控序列一起出现的基因"嵌合基因"表示不是天然基因的任何基因，包括不是天然一起存在的调控和编码序列。因此，嵌合基因可以包括来自不同来源的调控序列和编码序列，或来自相同的来源，但是以不同于天然存在的方式排列的调控序列和编码序列。“内源基因"表示存在于生物基因组上的天然位置上的天然基因。“外源"基因表示正常情况下不存在于宿主生物中，而是通过基因转移导入所述宿主生物的基因。外源基因可以包括插入非天然生物的天然基因，或嵌合基因。“转基因"是业已通过转化方法导入所述基因组的基因。“密码子优化的基因"是具有经过设计以便模拟宿主细胞的优选的密码子选择频率的密码子选择频率的基因。“编码序列"表示编码特定氨基酸序列的DNA序列。“合适的调控序列"表示位于编码序列上游(5'非编码序列)，序列内，或下游(3‘非编码序列)的核苷酸序列，并且，它能影响相关编码序列的转录，RNA加工或稳定性，或翻译。调控序列可以包括启动子，翻译前导序列，内含子，聚腺苷酸化识别序列，RNA加工位点，效应物结合位点和茎_环结构。“启动子“表示能够控制编码序列或功能性RNA表达的DNA序列。一般，编码序列位于启动子序列的3'侧。启动子可能完全来自天然基因，或者由来自天然存在的不同启动子的不同元件组成，或者甚至包括合成的DNA片段。本领域技术人员可以理解的是，不同的启动子能够指导基因在不同的组织或细胞类型中的表达，或者在发育的不同阶段的表达，或者对不同的环境或生理学条件作出反应的表达。能导致基因在大多数细胞类型中在大多数时间表达的启动子通常被称作"组成型启动子"。还应当理解的是，由于在大多数场合下，调控序列的确切边界未能完全确定，不同长度的DNA片段可能具有相同的启动子活性。术语"3'非编码序列"或"转录终止子"表示位于编码序列下游的DNA序列。它包括聚腺苷酸化识别序列以及编码能够影响mRNA加工或基因表达的调控信号的其他序列。聚腺苷酸化信号通常以影响聚腺苷酸添加在mRNA前体的3'末端为特征。所述3'区能够影响相关编码序列的转录，RNA加工或稳定性，或翻译。“RNA转录物“表示由RNA聚合酶催化的DNA序列转录而得到的产物。当RNA转录物是所述DNA序列的完整的互补拷贝时，它被称作初级转录物，或者它可以是来自初级转录物的转录后加工的RNA序列，并且被称作成熟的RNA。"信使RNA"或"mRNA"表示没有内含子，并且能够由细胞翻译成蛋白的RNA。“cDNA"表示双链DNA，它是互补于mRNA并且由mRNA衍生的。“有义“RNA表示包括mRNA，并能够由细胞翻译成蛋白的RNA转录物。“反义"RNA表示互补于靶初级转录物或mRNA的全部或部分的RNA，并且它能抑制靶基因的表达(U.S.5，107，065；WO99/28508)。反义RNA的互补性可以是与特定基因转录物的任何部分，即，位于5'非编码序列，3'非编码序列，或编码序列互补的。“功能性RNA"表示反义RNA，核酶RNA，或不能翻译，但仍然能影响细胞加工的其他RNA。术语"可操作地连接的"表示核酸序列缔合在一个核酸片段上，以便其中一个的功能受到另一个的影响。例如，当启动子能够影响编码序列的表达时，它就是与该编码序列可操作地连接的(即，所述编码序列受所述启动子的转录控制)。编码序列能够沿有义或反义方向可操作地与调控序列连接。在本文中，术语"表达"表示来自本发明的核酸片段的有义(mRNA)或反义RNA的转录和稳定积累。表达还可以表示mRNA翻译成多肽。“转化"表示将核酸分子转入宿主生物，导致了遗传学稳定的遗传性。例如，核酸分子可以是能自主复制的质粒；或者它可以整合到宿主生物的基因组中。包括转化的核酸片段的宿主生物被称作"转基因"或"重组"或"转化过的"生物。术语"质粒"，“载体"和"盒"表示染色体外元件，它通常携带有不是细胞的中央代谢部分的基因，并且通常是环状双链DNA片段形式的。所述基因可以是自主复制的序列，基因组整合序列，噬菌体或核苷酸序列，线性或环状的单或双链DNA或RNA，可以来自任何来源，其中，多个核苷酸序列业已连接或重组成独特的结构，它能够将启动子片段和选定的基因产物的DNA序列，以及合适的3'非翻译序列导入细胞。“转化盒"表示包括外源基因，并且除了外源基因之外还具有能促进在特定宿主细胞中转化的元件的特定载体。“表达盒"表示包括外源基因，并且除了外源基因之外，还具有能够增强基因在外源宿主中表达的元件的特定载体。术语“序列分析软件“表示可用于分析核苷酸或氨基酸序列的任何计算机算法或软件程序。“序列分析软件"可以是通过商业渠道获得的或者独立开发的。典型的序列分析软件包括，但不局限于1.)GCG程序组(WisconsinPackageVersion9.0，GeneticsComputerGroup(GCG),Madison,WI)；2.)BLASTP,BLASTN,BLASTX(Altschul等，J.Mol.Biol.215403-410(1990))；3.)DNASTAR(DNASTAR,Inc.，Madison,WI)；和4.)采用了Smith-Waterman算法的FASTA程序(W.R.Pearson,Comput.MethodsGenomeRes.,[Proc.Int.Symp.](1994)，MeetingDate1992，111—20.Editor(s)=Suhai,Sandor.Plenum:NewYork,NY)。在本申请的范围内应当理解的是，在将序列分析软件用于分析时，分析的结果是基于有关程序的"预设值"的，除非另有说明。在本文中，“预设值"表示任何组的值或参数，它是在初次初始化时最初随所述软件加载的。本发明所使用的标准重组DNA和分子克隆技术是本领域众所周知的，并且披露于以下文献中Sambrook,J.，Fritsch,E.F.禾口Maniatis，Τ.，MolecularCloning:ALaboratoryManual，2nded.，ColdSpringHarborLaboratory:ColdSpringHarbor，NY(1989)(此后称作〃Maniatis");Silhavy，Τ·J.，Bennan，Μ·L和Enquist，LW.，ExperimentswithGeneFusions,ColdSpringHarborLaboratoryColdSpringHarbor,NY(1984)；以及Ausubel,F.M.等，CurrentProtocolsinMolecularBioloqy,由GreenePublishingAssoc.andffiley-Interscience(1987)出版。脂肪酸的微牛物牛物合成一般，在含油微生物中的脂类的积累是反应于存在于生长培养基中的总的碳与氮的比例引发的(图1)。当细胞耗尽了可利用的氮源时(例如，当碳与氮的比例超过大约40时)，细胞一磷酸腺苷(AMP)的消耗，导致了线粒体中AMP-依赖型异柠檬酸脱氢酶活性的终止和柠檬酸的积累，并且将柠檬酸转移到细胞质，并且随后通过ATP-柠檬酸裂解酶裂解，产生乙酰-CoA。乙酰-CoA是脂肪酸从头合成的主要基本单位。尽管任何能够有效代谢产生乙酰-CoA的化合物都可用作脂肪酸的前体，葡萄糖是这种类型反应中的主要碳源(图1)。通过糖酵解将葡萄糖转化成丙酮酸，并且然后将丙酮酸转入线粒体，在这里，它能够通过丙酮酸脱氢酶转化成乙酰_CoA(”PD”)。由于乙酰-CoA不能直接通过线粒体膜转入细胞质，乙酰-CoA上的两个碳与草酰乙酸缩合，以便产生柠檬酸(通过柠檬酸合酶催化)。柠檬酸被直接转入细胞质，在这里，它被ATP-柠檬酸酶裂解，以便再生乙酰-CoA和草酰乙酸。草酰乙酸通过转化成苹果酸重新进入三羧酸循环。丙二酰-CoA的合成是脂肪酸生物合成的第一个关键步骤，它是在细胞质中进行的。丙二酰-CoA是通过乙酰-CoA羧化酶催化由乙酰-CoA的羧化产生的。脂肪酸合成是通过多种酶脂肪酸合酶复合物(“FAS")催化的，并且通过八种二碳片段(来自乙酰-CoA的乙酰基团)的缩合进行，以便形成16-碳饱和脂肪酸棕榈酸。更具体地讲，FAS催化一系列的7个反应，该系列包括以下反应(Smith,S.FASEBJ,8(15)1248-59(1994))1.乙酰-CoA和丙二酰-CoA被转移到FAS的酰基载体肽(ACP)上。所述乙酰基团然后被转移到丙二酰基团上，形成β_酮丁酰基-ACP，并且释放C02。2.所述β-酮丁酰基-ACP发生还原(通过β_酮酰基还原酶)和脱水(通过β-羟酰基脱水酶)，以便形成反式_单不饱和的脂肪酰基。3.通过NADPH还原双键，产生比最初的基团长两个碳原子的饱和脂肪酰基。然后再生了丁酰基_基团与新的丙二酰基团缩合，并且重复所述延伸过程的能力。4.当脂肪酰基变成16个碳原子长时，硫酯酶活性水解它，释放游离的棕榈酸。棕榈酸(16:0)是长链饱和和不饱和脂肪酸(例如，硬脂酸(18:0)，棕榈油酸(16:1)和油酸(18:1))的前体，通过存在于内质网膜中的延伸酶和去饱和酶的作用产生棕榈酸。通过△9去饱和酶的作用分别将棕榈酸和硬脂酸转化成它们的不饱和衍生物，即棕榈油酸(16:1)和油酸(18:1)。三酰基甘油(脂肪酸的主要储存单位)是通过将两个分子的酰基-CoA酯化成甘油-3-磷酸产生1，2_磷酸二酰基甘油的(通常被称为磷脂酸)。然后通过磷脂酸磷酸酶除去磷酸，以便得到1，2-二酰基甘油。三酰基甘油是通过二酰基甘油-酰基转移酶的作用添加第三个脂肪酸形成的。Ω3和Ω6脂肪酸的生物合成简单地讲，将LA转化成GLA，DGLA和ARA(ω-6途径)和ALA转化成STA，ETA，EPA，DPA和DHA(ω-3途径)的代谢过程涉及通过添加碳原子延长碳链，和通过添加双键使分子去饱和(图2)。这需要存在于内质网膜中的一系列特殊去饱和和延伸酶。ω-6脂肪酸通过Δ12去饱和酶的作用将油酸转化成LA(18:2)，它是ω-6脂肪酸的第一个。按以下方法产生后续的ω-6脂肪酸1.)通过Δ6去饱和酶的活性将LA转化成GLA；2.)通过延伸酶的作用将GLA转化成DGLA；和3.)通过Δ5去饱和酶的作用将DGLA转化成ARA。ω-3脂肪酸通过Δ15去饱和酶的作用将亚油酸(LA)转化成ALA，即ω-3脂肪酸的第一个。通过一系列类似于ω-6脂肪酸的步骤产生后续的ω-3脂肪酸。具体地讲1.)通过Δ6去饱和酶的活性将ALA转化成STA；2.)通过延伸酶的活性将STA转化成ETA；和3.)通过Δ5去饱和酶的活性将ETA转化成ΕΡΑ。另外，ETA和EPA可以通过Δ17去饱和酶的活性分别由DGLA和ARA产生。还可以通过延伸酶和Δ4去饱和酶的活性进一步将EPA转化成DHA。与Ω脂肪酸牛产相关的基因很多微生物，包括藻类，细菌，霉菌和酵母都可以通过正常细胞代谢过程合成PUFAs和ω脂肪酸。进行过充分研究的是包括Schizochytriumaggregatm，破囊壶菌属的种和高山被孢菌在内的真菌。很多沟鞭藻类(Dinophyceaae)都能天然产生高浓度的PUFAs。因此，业已通过遗传学方法鉴定了与油类产生相关的多个基因，并且某些基因的DNA序列可以公开获得(非限定性例子如下面的表2所示)彪H匕πτ姊體帖PUFA炉職白句細<table>tableseeoriginaldocumentpage17</column></row><table><table>tableseeoriginaldocumentpage18</column></row><table>GenBank描述登录号AF110509,高山被孢霉Δ12脂肪酸去饱和酶mRNAAB020033AAL13300高山被孢霉Δ12脂肪酸去饱和酶GenBank描述登录号AF417244高山被孢霉ATCC16266Δ12脂肪酸去饱和酶基因AF161219鲁克氏毛霉Δ12去饱和酶mRNAX86736SpirulineplatensisΔ12去饱和酶AF240777秀丽新杆线虫Δ12去饱和酶ΑΒ007640ChlamydomonasreinhardtiiΔ12去饱禾口醇ΑΒ075526普通小球藻Δ12去饱和酶ΑΡ002063拟南芥微粒体Δ12去饱和酶NP_441622,Synechocystissp.PCC6803Δ15去饱和酶ΒΑΑ18302,ΒΑΑ02924AAL36934PerillafrutescensΔ15去饱和酶AF338466AchetadomesticusΔ93mRNAAF438199Piceaglauca去饱和酶A9(Des9)mRNAE11368AnabaenaΔ9去饱和酶Ε11367SynechocystisΔ9去饱和酶D83185PichiaangustaΔ9脂肪酸去饱和酶的DNA<table>tableseeoriginaldocumentpage20</column></row><table>另外，专利文献提供了与PUFA生产相关的很多其他基因的DNA序列(和/或与上述若干基因相关的细节以及它们的分离方法)。例如，参见u.S.5，968，809(Δ6去饱和酶)；U.S.2003/0196217Α1(Δ17去饱和酶)；U.S.5，972，664和U.S.6，075，183(Δ5去饱和酶)；WO91/13972和U.S.5,057，419(Δ9去饱和酶)；WO93/11245(Δ15去饱和酶)；WO94/11516，U.S.5，443，974和WO03/099216(Δ12去饱和酶)；WO02/090493(Δ4去饱和酶)；和WO00/12720和U.S.2002/0139974Α1(延伸酶)。上述每一份专利和专利申请都以它们的全文形式收作本文参考。正如本领域技术人员所了解的，导入用于生产特定的PUFA最终产物的宿主生物所需要的特殊功能，取决于宿主细胞(以及它的天然PUFA谱和/或去饱和酶谱)，底物的可利用性和需要的最终产物。如图2中所示出的，LA,GLA,DGLA,ARA,ALA,STA,ETA,EPA,DPA和DHA都可以在含油酵母中生产，这是通过导入以下PUFA酶功能的各种组合Δ4去饱和酶，Δ5去饱和酶，Δ6去饱和酶，Δ12去饱和酶，Δ12去饱和酶，Δ17去饱和酶，Δ9去饱和酶和/或延伸酶。根据可公开获得的文献(例如，GenBank)，专利文献，以及对具有生产PUFAs的能力的微生物进行的实验分析，本领域技术人员能够鉴定编码上述每一种酶的各种候选基因。所述序列可来自任何来源，例如，从天然来源中分离(从细菌，藻类，真菌，植物，动物等中分离)，通过半合成途径生产，或从头合成。在一些实施方案中，宿主内源基因的操作是优选的；对于其它目的，必须导入异源基因。尽管导入宿主的去饱和酶和延伸酶基因的特定来源并不重要，选择具有去饱和酶或延伸酶活性的特定多肽的考虑因素包括1.)所述多肽的底物特异性；2.)所述多肽或它的成分是否是限速酶；3.)所述去饱和酶或延伸酶是否是合成需要的PUFA所必需的；和/或4.)所述多肽所需要的辅助因子。所表达的多肽优选具有与它在宿主细胞中的部位的生物化学环境相容的参数。例如，所述多肽可能必须与宿主细胞中的其他酶竞争底物。因此，在确定特定多肽修饰PUFA在特定宿主细胞中的生产的合适性时，需要考虑Km和所述多肽比活性的分析。用于特定宿主细胞中的多肽是这样的多肽，它能在存在于预期宿主细胞中的生物化学条件下起作用，但原本可以是具有能够修饰需要的PUFA的具有去饱和酶或延伸酶活性的任何多肽。内源PUFA基因在某些情况下，需要用来生产PUFAs的宿主生物将具有编码某些PUFA生物合成途径酶的内源基因。例如，含油酵母一般可以生产18:2脂肪酸(某些具有合成18:3脂肪酸的额外能力)；因此，含油酵母一般具有天然的Δ12去饱和酶活性，并且可能也具有Δ15去饱和酶活性。因此，在某些实施方案中，天然去饱和酶的表达相对于异源(或“外源”)酶是优选的，因为1.)天然酶最适合与细胞内其它酶和蛋白相互作用；且2.)异源基因不太可能与宿主生物共有相同的密码子优先。此外，已知天然基因序列时的优势在于，易于通过定向破坏将内源基因破坏。异源PUFA基因在很多情况下，合适的去饱和酶和延伸酶不存在于选择用来生产需要的PUFA产物的宿主生物中。因此，必须导入异源基因。为了此处描述的本发明的目的，需要证明将ω-3和/或ω-6生物合成途径导入含油宿主生物的例子；因此，高山被孢霉Δ5去饱和酶、高山被孢霉Δ6去饱和酶、异丝水霉Δ17去饱和酶、和高山被孢霉延伸酶被导入解脂耶氏酵母。但是，将特定的酶(和编码这些酶的基因)导入宿主生物和产生的特定PUFAs并不是对本发明进行限制。如此处所证明的，如果需要产生ΕΡΑ，本领域技术人员将明白，来源于不同来源的许多其它基因将适于将Δ5去饱和酶、Δ6去饱和酶、Δ17去饱和酶、和延伸酶活性导入优选的微生物宿主。因此，在本发明的一个实施方案中，也可以将与高山被孢霉Δ6去饱和酶、Δ5去饱和酶和高亲和力PUFA延伸酶以及异丝水霉Δ17去饱和酶基本等同的其它DNA用于在含油酵母中生产ω-6和/或ω-3脂肪酸(如EPA)。“基本等同的”是指与选定的多肽或编码氨基酸序列的核酸序列具有至少80%、90%或95%同源性的序列。对于多肽，比较序列的长度通常为至少16个氨基酸，优选至少20个氨基酸或最优选35个氨基酸。对于核酸，比较序列通常为至少50个核苷酸，优选至少60个核苷酸，更优选至少75个核苷酸，最优选110个核苷酸。通常采用序列分析软件测量同源性，其中"序列分析软件"表示可用于分析核苷酸或氨基酸序列的任何计算机算法或软件程序。“序列分析软件"可以是通过商业渠道获得的或者独立开发的。典型的序列分析软件包括，但不局限于1.)GCG程序组(WisconsinPackageVersion9.0,GeneticsComputerGroup(GCG),Madison,WI)；2.)BLASTP,BLASTN,BLASTX(Altschul等，J.Mol.Biol.215:403_410(1990))；3.)DNASTAR(DNASTAR，Inc.,Madison,WI)；和4.)采用了Smith-Waterman算法的FASTA程序(W.R.Pearson,Comput.MethodsGenomeRes.，[Proc.Int.Symp.](1994),MeetingDate1992,111-20.Editor(s)Suhai，Sandor.Plenum=NewYork,NY)。在本申请的范围内应当理解的是，在将序列分析软件用于分析时，分析的结果是基于有关程序的"预设值"的，除非另有说明。在本文中，“预设值"表示任何组的值或参数，它是在初次初始化时最初随所述软件加载的。概言之，所述计算机软件通过给多种取代、缺失和其它修饰分配同源性程度而匹配相似的序列。此外，本领域技术人员应当理解，多肽可以具有氨基酸保守取代，其取代方式使得多肽的功能没有改变或受损。具有此处描述的去饱和酶和延伸酶活性并且具有所述保守取代的多肽包括在本发明的范围内。保守取代一般包括下列各组内的取代1.)甘氨酸和丙氨酸；2.)缬氨酸、异亮氨酸和赖氨酸；3.)天冬氨酸、谷氨酸、天冬酰胺和谷氨酰胺4.)丝氨酸和苏氨酸；5.)赖氨酸和精氨酸；和6.)苯丙氨酸和酪氨酸。也可以在保守的疏水性或亲水性基础上进行取代(KyteandDoolittle,J.Mol.Biol.157105-132(1982))，或在假定相似多肽二级结构的能力的基础上进行取代(ChouandFasman,Adv.Enzymo1.4745-148(1978))。在本发明的备选实施方案中，其它尽管不基本等同于高山被孢霉Δ6去饱和酶、Δ5去饱和酶和高亲和力PUFA延伸酶以及异丝水霉Δ17去饱和酶的DNA也可以用于此处的目的(如，用于生产0-3和/或co-6PUFAs，如ARA和ΕΡΑ)。例如，用于根据本发明的教导导入含油酵母的编码Δ6去饱和酶多肽的DNA序列可以获自具有生产GLA或STA的能力的微生物。所述微生物包括，例如，属于被孢霉属、耳霉属、腐霉属、疫霉属、青霉属、Porphyridium,Coidosporium、毛霉属、镰孢属、曲霉属、红酵母属和虫霉属的那些。在Porphyridium属内，特别感兴趣的是P.Cruentum。在被孢霉属内，特别感兴趣的是长形被孢霉、微小被孢霉、喜湿被孢霉、M.ramannianavar.angulispora和高山被孢霉。在毛霉属中，特别感兴趣的是卷枝毛霉和爪哇毛霉。或者，不与高山被孢霉Δ6去饱和酶基本等同，但可以在脂肪酸分子的羧基末端开始的第6个碳对脂肪酸分子去饱和的相关去饱和酶也可以在本发明中用作Δ6去饱和酶，假定该去饱和酶仍然可以有效将LA转化为GLA和/或将ALA转化为STA。因此，可以通过基本与此处公开的去饱和酶和延伸酶起相同作用的能力而鉴定相关的去饱和酶和延伸酶。总之，可以从多种来源分离适于此处目的的编码PUFA生物合成途径酶的基因。用于此处目的的去饱和酶的特征在于以下能力1.)使脂肪酸的位于从该分子的羧基末端开始计数的第17和第18个碳原子之间去饱和，并且，催化ARA转化成EPA和DGLA转化成ETA(Δ17去饱和酶)；2·)催化LA转化成GLA和/或ALA转化成STA(Δ6去饱和酶)；3·)催化DGLA转化成ARA和/或ETA转化成EPA(Δ5去饱和酶)；4.)催化DPA转化成DHA(Δ4去饱和酶);5·)催化油酸转化成LA(△12去饱和酶)；6.)催化LA转化成ALA(Δ15去饱和酶)；和7.)催化棕榈酸酯或盐转化成棕榈油酸和/或硬脂酸酯或盐转化成油酸。以相似的方式，用于此处目的的合适的延伸酶不限于来源于特定来源的那些；而是，用于此处目的的酶的特征在于它们具有使得脂肪酸碳链相对于延伸酶作用的底物能够延长2个碳，从而产生单或多不饱和脂肪酸的能力。对Ω脂肪酸基因进行优化以便在特定生物中表达尽管PUFA去饱和酶或延伸酶的特定来源在本发明中不是关键的，本领域技术人员将理解，异源基因将在备选的宿主以多种效率进行表达。因此，ω-3和/或ω-ePUFA生产可以通过选择特定去饱和酶或延伸酶而进行优化，所述去饱和酶或延伸酶在异源宿主中的表达水平相对于备选去饱和酶或延伸酶在感兴趣的宿主生物中的表达而言是优选的。此夕卜，可能需要根据感兴趣的特定PUFA产物组成，修饰特定PUFA生物合成途径酶的表达，以达到每一种的最佳转化效力。多种基因工程技术可以用于优化特定酶的表达。两种这样的技术包括密码子优化和基因突变，如下文所描述。例如，通过这两种方法中的任意一种产生的具有去饱和酶和/或延伸酶活性的基因可以用于本发明中合成ω-3和/或ω-6脂肪酸。密码子优化正如本领域技术人员所理解的，通常修饰在外源宿主中表达的编码特定多肽的密码子的一部分，使得修饰的多肽使用替代的宿主优选的密码子。使用宿主优选的密码子能够显著增强编码多肽的外源基因的表达。一般，可以在特定的感兴趣的宿主物种中确定宿主优选的密码子，包括检查蛋白中的密码子选择(优选大量表达的蛋白)，并且确定哪些密码子是以最高频率使用的。然后，可以使用在所述宿主物种中优选的密码子完全或部分合成具有去饱和酶或延伸酶活性的感兴趣的多肽的编码序列。也可以合成DNA的全部(或部分)，以便除去可能出现在转录的mRNA上的任何去稳定化序列或二级结构区。还可以合成所述DNA的全部(或部分)，以便改变将碱基组成改变成在需要的宿主细胞中更优选形式。对于本发明来说，需要修饰编码具有Δ17去饱和酶活性的多肽的密码子的一部分，以便增强基因在解脂耶氏酵母中的表达。修饰了天然基因(如异丝水霉△17去饱和酶)的核酸序列，以便使用宿主优选的密码子。技术人员了可以理解的是，该优化方法同样可应用于ω-3/ω-6脂肪酸生物合成途径中的其他基因(例如，参见共同未决的美国临时申请NO.60/468718，在此全文收作本文参考)。此外，对异丝水霉Δ17去饱和酶的调节仅仅是示例的。基因突变用于合成序列并且将这些序列组合在一起的方法在文献中业已完善。例如，体外诱变和选择，定点诱变，易错PCR(Melnikov等，NucleicAcidsResearch,27(4)1056-1062(February15，1999))，“基因改组〃或其他方法可用于获得天然存在的或密码子优化的去饱和酶或延伸酶基因的突变。这样使得能够生产去饱和酶或延伸酶多肽，它们分别具有，例如更长的半衰期或需要的PUFA在体内生产的更高速度。如果需要，对酶促活性重要的感兴趣多肽(即去饱和酶或延伸酶)的区可以通过常规诱变，所得到的突变多肽的表达以及确定它们的活性而确定。突变体可以包括缺失，插入或点突变，或它们的组合。典型的功能性分析始于缺失诱变，以便确定功能所需要的蛋白的N-末端和C-末端限制，然后进行内部缺失，进行插入或点突变，以便进一步确定功能所需要的区。还可以使用其他技术，如盒诱变或完全合成。例如，缺失诱变是通过使用核酸外切酶依次去掉5'或3'编码区实现的。可以获得用于这种技术的试剂盒。在缺失之后，在5'或3'缺失之后通过将包括起始或终止密码子的寡核苷酸分别连接在缺失的编码区上获得所述编码区。另外，通过各种方法将编码起始或终止密码子的寡核苷酸插入所述编码区，包括定点诱变，诱变PCR或通过连接到在现有限制位点上消化过的DNA上。内部缺失同样可以通过多种方法实现，包括使用DNA上的现有限制位点，通过使用诱变引物进行定点诱变或诱变PCR。插入是通过诸如接头_扫描诱变，定点诱变或诱变PCR的方法完成的。点突变是通过诸如定点诱变或诱变PCR的技术完成的。还可将化学诱变用于鉴定对活性重要的去饱和酶或延伸酶多肽区。表达突变的构建体，并且测定所得到的改变了的蛋白作为去饱和酶或延伸酶的能力。这种结构-功能分析，可以确定哪些区可以缺失，哪些区能够承受插入，以及哪些点突变使得突变的蛋白能够以基本上与天然的去饱和酶或天然的延伸酶相同的方式起作用。所有这样的突变蛋白及其来源于本文所述密码子优化的基因的编码核苷酸序列均属于本发明范畴。对于本发明来说，需要修饰编码具有Δ17去饱和酶活性的多肽的密码子的一部分，以便增强基因在解脂耶氏酵母中的表达。修饰了天然基因(如异丝水霉△17去饱和酶)的核酸序列，以便使用宿主优选的密码子。技术人员了可以理解的是，该优化方法同样可应用于ω-3/ω-6脂肪酸生物合成途径中的其他基因(例如，参见共同未决的美国临时申请NO.60/468718，在此全文收作本文参考)。此外，对异丝水霉Δ17去饱和酶的调节仅仅是示例的。ω-3和/或ω-6脂肪酸的微生物生产ω-3和/或ω-6脂肪酸的微生物生产与从诸如鱼或植物的天然来源中纯化相比具有若干优点。例如1.)已知与高等生物相比，很多微生物具有大大简化了的油类组成，使得对需要成分的纯化更容易；2.)微生物生产不容易出现由外部因素导致的波动，如天气和食物供应；3.)微生物生产的油基本上不会受到环境污染物的污染；4.)微生物能够以可能具有特殊用途的特定形式提供PUFAs；和，5.)微生物油类生产可以通过控制培养条件操纵，特别是通过提供用于微生物表达的酶的特定底物，或通过添加化合物或通过遗传工程手段抑制不希望的生物化学途径。除了上述优点之外，用重组微生物生产ω-3和/或ω-6脂肪酸，提供了通过在宿主中提供新的生物合成途径或通过抑制不希望的途径而改变天然存在的微生物脂肪酸特性的能力，从而提高需要的PUFAs，或它的缀合形式的水平，以及降低不需要的PUFAs的水平。例如，可以改变所生产的ω-3与ω-6脂肪酸的比例，专门生产ω-3或ω-6脂肪酸，同时消除其他ω脂肪酸的生产，或工程生产特定PUFA，而又没有其他PUFA下游或上游产物的大量积累。表汰系统,盒和载体本发明所披露的序列的密码子优化的基因和基因产物可以在异源微生物宿主细胞中生产，特别是在含油酵母(例如，解脂耶氏酵母)的细胞中生产。在重组微生物宿主中的表达，可用于生产各种PUFA途径中间产物，或用于调控业已存在于宿主中的PUFA途径，以便利用所述宿主合成迄今为止不可能的新的产物。包括能指导外源蛋白高水平表达的调控序列的微生物表达系统和表达载体是本领域技术人员所熟知的。它们都可用于构建嵌合基因，以便生产本发明密码子优化的序列的任何基因产物。然后可以通过转化将所述嵌合基因导入合适的微生物，以便提供所编码酶的高水平表达。因此，预计导入受合适启动子控制的编码PUFA生物合成途径(例如，本文所披露的Δ5去饱和酶，Δ6去饱和酶，Δ17去饱和酶，和延伸酶)的嵌合基因，会导致ω-3和/或ω-6脂肪酸产量的增加。预计，可将它用于在宿主微生物中表达本发明密码子优化的基因的各种组合。预计可以用其在宿主微生物中一起表达这些PUFA去饱和酶和延伸酶基因的多种组合。本领域技术人员显而易见的是，包括在特定表达盒内的特定基因将取决于宿主细胞，其采用天然去饱和酶和延伸酶合成PUFAs的能力、底物和所需终产物的可获得性。例如，可能需要构建的表达盒包括编码下列一种或多种酶促活性的基因Δ4去饱和酶，Δ5去饱和酶，Δ6去饱和酶，Δ12去饱和酶，Δ15去饱和酶，Δ17去饱和酶，Δ9去饱和酶和/或延伸酶这样，本发明涉及生产PUFAs的方法，包括让脂肪酸底物与本文所披露的PUFA酶接触，以便将所述底物转化成需要的脂肪酸产物。因此，可以将本文所披露的每一种PUFAs基因和相应的酶产物(如具有合适的去饱和酶或延伸酶活性的野生型、密码子优化的、合成的和/或突变的酶)直接或间接用于生产PUFAs。PUFAs的直接生产是这样进行的，将脂肪酸底物直接转化成需要的脂肪酸产物，而没有任何中间步骤或中间途径。例如，ARA生产能够在能产生或提供了DLGA的宿主细胞中进行，包括向所述细胞中添加或导入能提供Δ5去饱和酶活性的表达盒。相反，编码PUFA生物合成途径的多个基因可以组合使用，以便发生一系列反应，以便产生需要的PUFA。例如，编码延伸酶，Δ5去饱和酶，Δ17去饱和酶和Δ4去饱和酶活性的表达盒使得宿主细胞天然产生GLA，而不是产生DHA(以便通过延伸酶将GLA转化成DGLA；然后可以通过Δ5去饱和酶将DGLA转化成ARA；然后通过Δ17去饱和酶将ARA转化成ΕΡΑ，再通过延伸酶将后者转化成DPA；和通过Δ4去饱和酶将DPA转化成DHA)。在优选实施方案中，其中，宿主细胞是含油酵母，编码PUFA生物合成所必需的每一种酶的表达盒都需要导入所述生物，因为在这些生物中天然产生的PUFAs局限于18:2脂肪酸(即，LA)，并且更不常见的是18:3脂肪酸(即，ALA)。另外，可能需要底物补给。用于转化合适的宿主细胞的载体或DNA盒为本领域所公知。存在于所述构建体中的序列的具体选择取决于需要的表达产物(同上)、宿主细胞的性质以及推荐的分离转化细胞与未转化细胞的方式。不过，通常，所述载体或盒包括指导相关基因转录和翻译的序列，选择标记，和使得它能够自主复制或染色体整合的序列。合适的载体包括所述基因的5'区，它控制转录起始，和DNA片段的3'区，它控制转录终止。最优选的是，当两个控制区都来自转化过的宿主细胞的基因时是最优选的，不过，可以理解的是，所述控制区不一定来自被选择用作生产宿主的特定物种的天然基因。可用于在需要的宿主细胞中驱动去饱和酶和/或延伸酶ORFs表达的起始控制区或启动子是多种多样的，并且为本领域技术人员所熟知。实际上，能够指导这些基因在选定的宿主细胞中表达的任何启动子都适合本发明。在宿主细胞中的表达能够以瞬时或稳定的方式进行。瞬时表达可以通过诱导可操作地连接在感兴趣的基因上的可调控启动子的活性而实现。稳定表达可以通过使用可操作地与感兴趣的基因连接的组成型启动子而实现。例如，当宿主细胞是酵母时，提供能够在酵母细胞中起作用的转录和翻译区，特别是来自宿主物种的那些。例如，转录起始调控区可以从以下渠道获得1.)糖酵解途径上的基因，如醇脱氢酶，甘油醛-3-磷酸脱氢酶(参见美国专利申请号60/482263)，磷酸甘油变位酶(参见美国专利申请号60/482263)，果糖二磷酸醛缩酶(参见美国专利申请号60/519971)，磷酸葡萄糖异构酶，磷酸甘油酸激酶等；或2.)可调控的基因，如酸性磷酸酶，乳糖酶，金属硫蛋白，葡糖淀粉酶，翻译延伸因子EFl-α(TEF)蛋白(U.S.6，265，185)，核糖体蛋白S7(U.S.6，265，185)等。可以使用多种调控序列中的任意一种，这取决于是需要组成型转录还是诱导型转录，启动子在表达感兴趣的ORF方面的效率，以及构建的方便性等。通过修饰外源基因的翻译起始密码子'ATG'周围的核苷酸序列，以便它们包括有效的酵母翻译起始序列可以在酵母中获得最佳基因表达。具体地讲，可以通过定点诱变增加低效表达的基因的表达，其中，所述低效表达的基因与内源酵母基因框内融合，优选与高表达的基因融合。另外，正如本发明中在解脂耶氏酵母中所证实的，可以确定宿主中的共有翻译起始序列，并且通过工程手段将该序列结合到异源基因上，以便它们在感兴趣的宿主中实现最佳表达。终止区可源于所述基因的3'区，所述起始区是从该基因上获得的或者从不同的基因上获得的。大量终止区是已知的，并且能在多种宿主中发挥令人满意的作用(当在与产生它们的相同和不同的属和种中使用时)。终止区通常在更大程度上是根据方便性选择的，而不是因为任何特殊特性。优选的是，终止区源于酵母基因，特别是糖酵母属，裂殖酵母属，假丝酵母属，耶氏酵母属或克罗维酵母属。同样已知编码Y-干扰素和α-2干扰素的哺乳动物基因的3'_区在酵母中起作用。终止控制区还可以来自优选宿主天然具有的各种基因。终止位点可以任选是必需的；不过，如果具有，它是最优选的。正如技术人员所了解的，仅仅将基因插入克隆载体，不能确保它能够在需要的水平上成功地表达。根据对高表达速度的需要，业已通过操纵多种不同的遗传因子产生了多种特化的表达载体，这些遗传因子能控制来自宿主细胞的转录，翻译，蛋白稳定性，含氧极限，以及从宿主的分泌。更具体地讲，业已对某些分子特征进行了操作，以便控制基因表达，包括1.)相关转录启动子和终止子序列的性质；2.)克隆基因的拷贝数量以及所述基因是质粒携带的或者是整合到宿主细胞的基因组上的；3.)合成的外源蛋白的最终细胞定位；4.)宿主生物的翻译效率；和5.)克隆的基因蛋白在宿主细胞中的内在稳定性。上述每一种类型的修饰包括在本发明中，作为进一步优化密码子优化的PUFA生物合成途径酶表达的手段。微生物宿主的转化一旦获得了适合在含油酵母中表达的编码密码子优化的去饱和酶或延伸酶多肽的DNA，将它放入能够在宿主细胞中自主复制的质粒载体上，或者将它直接整合到宿主细胞的基因组上。表达盒的整合可以在宿主基因组中随机地进行，或者可以通过使用含有与宿主基因组具有足够同源性以靶定宿主基因座内的重组的区域的构建体靶定。当所述构建体被靶定于内源基因座时，转录和翻译调控区的全部或某些可以通过内源基因座提供。当两个或两个以上的基因由独立的复制载体表达时，希望每一个载体具有不同的选择方式，并且应当缺少与其他构建体的同源性，以便保持稳定表达，并且防止构建体之间的元件的重新分类。对调控区，选择方式和导入的构建体的繁殖方法的明智的选择，可以通过实验确定，以便所有导入的基因在需要的水平上表达，以便提供需要产物的合成。可以通过任何标准技术将包括感兴趣的基因的构建体导入宿主细胞。所述技术包括转化(例如，乙酸锂转化[MethodsinEnzymology，194186-187(1991)])，原生质体融合，bolistic冲击，电穿孔，显微注射，或能够将感兴趣的基因导入宿主细胞的任何其他方法。可用于含油酵母(即，解脂耶氏酵母)的更具体的技术包括美国专利号4，880，741和5，071，764和Chen，D.C.等(ApplMicrobiolBiotechnol.48(2):232_235(1997))。为了方便起见，业已通过任何方法操作以摄入DNA序列(例如，表达盒)的宿主细胞在本文中被称作"转化过的"或"重组的"。转化过的宿主具有至少一个拷贝的表达构建体，并且可以具有两个或两个以上拷贝，这取决于所述基因是整合在所述基因组上，扩增的，或者存在于具有多个拷贝的染色体外元件上。转化过的宿主细胞可以通过选择包含在导入的构建体上的标记而鉴定。另外，可以将独立的标记构建体与需要的构建体共同转化，因为很多转化技术能将很多DNA分子导入宿主细胞。通常，选择转化过的宿主在选择性培养基上生长的能力。选择性培养基可以掺入抗生素或缺少未转化的宿主生长所需要的因子，如养分或生长因子。导入的标记基因可以产生抗生素抗性，或者编码必须的生长因子或酶，以便当它在转化过的宿主中表达时能够在选择培养基上生长。当所表达的标记蛋白可以直接或间接检测时，还可以进行转化宿主的选择。所述标记蛋白可以单独表达，或者作为与另一种蛋白的融合体形式表达。标记蛋白可以通过以下方法检测1.)它的酶促活性(例如，β-半乳糖苷酶可以将底物X-gal[5-溴-4-氯-3-吲哚基一D-半乳吡喃糖苷]转化成有颜色的产物；荧光素酶可以将荧光素转化成发光产物)；或2.)它的产生光或修饰特征(例如，Aequoreavictoria的绿色荧光蛋白在用兰色光线照射时会发出荧光)。另外，例如，可将抗生素用于检测存在于感兴趣的蛋白上的标记蛋白或分子量标记。例如，能表达标记蛋白或标记的细胞可以肉眼筛选，或者通过诸如FACS的技术或使用抗生素淘选。为了选择酵母转化体，可以使用能够在酵母中起作用的任何标记。理想的是，对卡那霉素，潮霉素和氨基糖苷G418的抗性是感兴趣的，以及在缺少尿嘧啶或亮氨酸的培养基上生产的能力。在转化之后，将适合本发明的密码子优化的序列的基因产物(并且任选包括在宿主细胞中表达的其他PUFA酶)可以由所述宿主天然地或转基因地生产，或者它们可以外源提供。ω-3和/或ω-6脂肪酸在微生物中的生物合成的代谢工程对本发明基因的密码子优化的序列以及优化其他PUFA基因以便在含油酵母中表达的方法的了解，可用于操作在含油酵母中的ω-3和/或ω-6脂肪酸生物合成；特别是在解脂耶氏酵母中。这可能需要在PUFA生物合成途径上的直接的代谢工程或途径的其他操作，这些操作可以将碳贡献给PUFA生物合成途径。可用于操作生物化学途径的方法为本领域技术人员所公知。在PUFA生物合成途径内操作的情况下，可能需要增加LA的生产，以便增加ω-3和/或ω-6脂肪酸的生产。这可以通过导入和/或扩增编码八9和/或Δ12去饱和酶的基因而实现。为了使ω-6不饱和脂肪酸，如ARA的生产最大化，本领域技术人员公知，该生产在基本上不含ALA的宿主微生物中是有利的。因此，优选地，宿主是通过去除或抑制使得LA转化为ALA的Δ15或ω-3型去饱和酶活性而选择或获得的。可以通过以下方法减少或消除内源去饱和酶活性，例如1)提供用于将反义序列转录到△15去饱和酶转录产物的盒；2)通过插入、取代和/或缺失全部或部分靶基因而破坏Δ15去饱和酶基因；或3)使用天然具有或经过突变而具有低△15去饱和酶活性或无△15去饱和酶基因的宿主细胞。对不需要的去饱和酶途径的抑制也可以通过使用如U.S.4，778，630中描述的特定去饱和酶抑制剂而实现。或者，可能需要使ω-3脂肪酸的生产最大化(并且使ω-6脂肪酸的合成最小化)。因此，可以利用宿主微生物，其中利用上述任何一种方法(也参见，例如，共同未决的美国临时申请No.60/484209，在此全文引入作为参考)去除或抑制了将油酸转化为LA的Δ12去饱和酶活性。随后，可以将合适的表达盒与合适的底物(如ALA)—起导入宿主，用于转化为ALA的ω-3脂肪酸衍生物(如STA,ETA,EPA,DPA,DHA)。除了目前的PUFA生物合成途径，预期操作导致前体脂肪酸生物合成的一些其它酶促途径，可以导致特定PUFAs的总体净生物合成。这些相关途径的鉴定和途径在将来是有用的。上调需要的牛物合成涂径的技术可以将额外拷贝的去饱和酶和延伸酶基因导入宿主，以便提高ω-3和/或ω-6脂肪酸生物合成途径的产量。去饱和酶或延伸酶基因的表达还可以通过使用较强的启动子(调控型的或组成型的)而在转录水平上加强，以便导致增强了的表达，包括从mRNA或编码的蛋白上去掉/缺失去稳定化序列，或者向mRNA增加稳定化序列(U.S.4，910，141)。正如本发明所证实的，增强去饱和酶或延伸酶基因表达的另一个途径是提高所编码的mRNAs的翻译效率，包括用能在选定的宿主中优化基因表达的密码子取代天然基因上的密码子。下调不希望的生物合成途径的技术相反，可以通过基因破坏消除或通过其他方式(例如，反义mRNA)下调与ω-3和/或ω-6脂肪酸生物合成途径竞争能量或碳的生物化学途径，或干扰特定PUFA最终产物产生的天然PUFA生物合成途径酶。为了进行基因破坏，将外源DNA片段(通常是选择标记基因)插入要破坏的结构基因，以便破坏它的编码序列，并因此功能性灭活所述基因。将所述破坏盒转化入宿主细胞，导致了非通过同源重组用无功能的破坏的基因替代功能性天然基因(例如，参见=Hamilton等J.Bacteriol.1714617-4622(1989)；Balbas等Gene136:211-213(1993)；Gueldener等NucleicAcidsRes.242519-2524(1996)；和Smith等MethodsMol.Cell.Biol.5:270_277(1996))。当靶基因的序列已知时，反义是下调基因的另一种方法。为了实现这一目的，克隆了来自所需基因的核酸片段，并且可操作地与启动子连接，以便RNA的反义链能够转录。然后将该构建体导入宿主细胞，并且生产RNA的反义链。反义RNA能通过抑制编码感兴趣的蛋白的mRNA的积累，抑制基因表达。本领域技术人员可以理解的是，特殊考虑与使用反义技术相关，以便减弱特定基因的表达。例如，反义基因的适当水平的表达可能需要使用不同的嵌合基因，其中采用本领域技术人员所公知的不同的调控元件。尽管当序列已知时，定向基因破坏和反义技术提供了下调基因的有效方法，业已开发了不是基于序列的其他特异性更低的方法，例如，细胞可以暴露于UV辐射，然后筛选需要的表型。用化学试剂进行的诱变同样能有效产生突变体，并且通常使用的物质包括能影响非复制DNA的化学物质(例如，HNO2和NH2OH)，以及能影响复制DNA的试剂(例如，吖啶染料，特别是导致移码突变)。使用辐射或化学试剂产生突变体的特定方法在现有技术有大量报导。例如，参见ThomasD.BrockinBiotechnology:ATextbookofIndustrialMicrobiology,2nded.(1989)SinauerAssociates:Sunderland,MA；或Deshpande,MukundV.,App1.Biochem.Biotechnol.,36227(1992)。基因破坏的另一种非特异性方法是使用可转座元件或转座子。转座子是遗传元件，它能随机地插入DNA，但是随后可以根据序列回收，以便确定是否发生了插入。体内和体外转座转座方法是公知的。这两种方法涉及组合使用可转座元件和转座酶。当可转座元件或转座子在存在转座酶的条件下与核酸片段接触时，可转座元件能随机地插入所述核酸片段。这种技术可用于随机诱变，并且用于基因分离，因为受到破坏的基因可以根据可转座元件的序列鉴定。用于体外转座的试剂盒可以通过商业渠道获得[例如，参见1.)ThePrimerIslandTranspositionKit,可以从PerkinElmerAppliedBiosystems获得，Branchburg,NJ，基于酵母Tyl元件；2.)TheGenomePrimingSystem，可以从NewEnglandBiolabs获得，Beverly,MA，基于细菌转座子Tn7；和3.)ΕΖ:ΤΝ转座子插入系统，可以从EpicentreTechnologies获得，Madison,WI，基于Tn5细菌转座因子]。在本发明的范围内，可以通过上述另一种方法将它用于调控脂肪酸生物合成途径的表达。例如，本发明提供了将编码生物合成途径上的关键酶的基因导入含油酵母以生产ω-3和/或ω-6脂肪酸的方法。这些基因编码以下一种或多种Δ6去饱和酶，Δ5去饱和酶，Δ12去饱和酶，Δ15去饱和酶，Δ4去饱和酶，Δ17去饱和酶，Δ9去饱和酶，和PUFA延伸酶。特别适用于在含油酵母中表达这些基因，所述酵母天然不具有ω-3和/或ω-6脂肪酸生物合成途径，并且调控这些和其他PUFA生物合成基因的表达，以便使用各种方法使优选的PUFA产物的产量最大化，用于宿主生物的代谢工程。用于重组生产ω-3和/或ω-6脂肪酸的优选的微生物宿主用于生产ω脂肪酸的宿主细胞可以包括包括在大范围的温度和ρΗ值下，在多种饲料上生长的微生物宿主，所述饲料包括简单的或复杂的碳水化合物，有机酸和醇，和/或烃。但是，优选的微生物宿主是含油酵母。这些生物可天然地进行油类合成和积累，所述油包括超过大约25%的细胞干重，更优选超过大约30%的细胞干重，最优选超过大约40%的细胞干重。通常被确定为含油酵母的属包括，但不局限于耶氏酵母属，假丝酵母属，红酵母属，红冬孢属，隐球酵母属，丝孢酵母属和油脂酵母属。更具体地讲，典型的油类合成酵母包括类酵母红冬孢，斯达氏油脂酵母，产油油脂酵母，拉可夫氏假丝酵母，铁红假丝酵母，热带假丝酵母，产朊假丝酵母，茁芽丝孢酵母，皮状丝孢酵母，胶粘红酵母，禾木科红酵母，和解脂耶氏酵母(以前被划分为解脂假丝酵母)。最优选的是含油酵母解脂耶氏酵母；而在其他实施方案中，最优选的是解脂耶氏酵母菌株，被命名为ATCC#20362，ATCC#8862,ATCC#18944,ATCC#76982和/或LGAMS(7)KPapanikolaouS.，和AggelisG.,Bioresour.Technol.82(1):43_9(2002))。过去，已经用解脂耶氏酵母的多种菌株制备和生产异柠檬酸裂合酶(DD259637)；脂酶(SU1454852，W02001083773，DD279267)；多羟基链烧酸(W02001088144)；柠檬酸(RU2096461，RU2090611,DD285372,DD285370,DD275480,DD227448,PL160027)；赤藓糖醇(EP770683)；2-氧戊二酸(DD267999)；Y-癸内酯(U.S.6,451,565,FR2734843)；Y-十二内酯(EP578388)和丙酮酸(JP09252790)。PUFA牛产的发酵方法转化过的微生物宿主细胞是在能优化去饱和酶和延伸酶的活性并且产生最大的和最经济的优选PUFAs的产量的条件下生长的。一般，可以优化的培养基条件包括碳源的类型和用量，氮源的类型和用量，碳-氮的比例，氧气含量，生长温度，PH，生物量生产期的长度，油积累期的长度，以及细胞收获时间。感兴趣的微生物，如含油酵母在复杂培养基(例如，酵母提取物-蛋白胨-葡萄糖培养液(YPD))或缺少生长所必需的成分，以便强制选择需要的表达盒的特定基本培养基)(例如，YeastNitrogenBase(DIFCOLaboratories,Detroit,MI))中生长。本发明的发酵培养基必须包括合适的碳源。合适的碳源包括，但不局限于单糖(例如，葡萄糖，果糖)，二糖(例如，乳糖，蔗糖)，寡糖，多糖(例如，淀粉，纤维素或它们的混合物)，糖醇(例如，甘油)或可更新饲料的混合物(例如，干酪乳清渗透物，玉米浆，甜菜糖浆，大麦芽)。另外，碳源可以包括链烷，脂肪酸，脂肪酸酯，甘油单酯，甘油二酯，甘油三酯，磷脂，和脂肪酸的各种商业来源，包括植物油(例如，大豆油)和动物脂肪。另外，碳源可以包括一-碳源(例如，二氧化碳，甲醇，甲醛，甲酸和含碳胺)，业已证实了其转化成关键生物化学中间产物的代谢转化。因此，预计，用于本发明的碳源包括可以包括多种含碳源，并且仅仅局限于宿主生物的选择。尽管上述所有碳源及其混合物预计都适合本发明，优选的碳源是糖和/或脂肪酸。最优选的是葡萄糖和/或含有10-22个碳的脂肪酸。氮可以由无机(例如，(NH4)2SO4)或有机来源(例如，尿素或谷氨酸)提供。除了合适的碳和氮源之外，发酵培养基必须还包括合适的矿物质，盐，辅因子，缓冲液，维生素，和本领域技术人员已知的适合微生物生长，并且促进PUFA生产所需要的酶促途径的其他成分。特别关注若干金属离子(例如，Mn+2，Co+2，Zn+2，Mg+2)，它们能促进脂类和PUFAs的合成(Nakahara,T.等，Ind.Appl.SingleCellOils,D.J.KyleandR.Colin,eds.pp61-97(1992))。本发明的优选的生长培养基是常见的商业制备的培养基，如酵母MtrogenBase(DIFCOLaboratories,Detroit,MI)。其他确定的或合成的生长培养基也可以使用，并且适合特定微生物生长的培养基是微生物学或发酵科学领域的技术人员所公知的。用于发酵的合适的PH范围通常为大约pH4.0-pH8.0，其中pH5.5-pH7.O是起始生长条件的优选范围。发酵可以在需氧或厌氧条件下进行，其中，微需氧条件是优选的。通常，高水平PUFAs在含油酵母细胞中的积累，需要两个阶段的过程，因为在脂肪的生长和合成/储存之间的代谢状态必须是"平衡的"。因此，最优选的是，需要两个阶段的发酵过程在含油酵母中生产PUFAs。在该方法中，发酵的第一阶段被用于制备和积累细胞物质，并且以快速细胞生长和细胞分裂为特征。在发酵的第二阶段，优选在培养物中建立氮剥夺条件，以便促进高水平的脂类积累。这种氮剥夺的作用是降低细胞中AMP的有效浓度，以便减弱线粒体的NAD-依赖型异柠檬酸脱氢酶的活性。当出现这种情况时，将积累柠檬酸，因此在细胞质中形成了乙酰-CoA的丰富的资源，并且启动了脂肪酸合成。因此，这一阶段以细胞分裂终止，随后是脂肪酸的合成和油的积累为特征。尽管细胞通常是在大约30°C下生长的，某些研究业已在较低温度下增加了不饱和月旨肪酸的合成(Yongmanitchai和Ward，Appl.Environ.Microbiol.57:419_25(1991))。根据工艺的经济学，这种温度偏移可能在两个阶段的发酵的第一阶段之后发生，此时，业已出现了大量的微生物生长。预计，可以采用多种发酵工艺设计，其中，使用本发明的密码子优化的基因商业化生产ω脂肪酸是理想的。例如，用重组微生物宿主商业生产PUFAs，可以通过分批发酵，补料_分批发酵活连续发酵工艺生产。分批发酵工艺是封闭的系统，其中，培养基组成是在工艺开始时确定的，并且不再进行超出在工艺过程中维持PH和氧气含量需要的进一步补充。因此，在培养过程开始时，用需要的微生物接种所述培养基，并且可以在不向培养基中添加其他来源(即，碳和氮源)条件下具有生长或代谢活性。在分批发酵工艺中，该系统的代谢物和生物量组成经常地改变，直到培养终止。在典型的分批发酵工艺中，细胞从停滞阶段发展到高速生长的对数期，并最终达到静止期，在这里，生长速度减弱或终止。在不处理的条件下，静止阶段的细胞会最终死亡。标准的分批发酵工艺的变化是补料-分批发酵工艺，其中，在发酵过程中将碳源连续地添加到发酵罐中。补料-分批发酵工艺同样适用于本发明。当代谢物抑制倾向于抑制细胞代谢或希望在任何时间在培养基中具有有限数量的来源时，补料_分批工艺是有用的。测定补料-分批系统中的碳源是困难的，因此，可以根据可测定因子的变化估算，如PH，溶解氧和废气(例如，CO2)的分压。分批和补料-分批培养方法是本领域技术人员所公知的和熟悉的，并且其例子可以参见以下文献ThomasD.Brock,Biotechnology=ATextbookofIndustrialMicrobiology.2nded.,(1989)SinauerAssociates:Sunderland,MA；gJcDeshpande，MukundV.，Appl.Biochem.Biotechnol.,36:227(1992)，在此收作本文参考。利用本发明的密码子优化的基因商业化生产ω脂肪酸的方法还可以通过连续发酵工艺实现，其中，将确定成分的培养基连续添加到生物反应器中，同时取出等量的培养物体积，用于产物回收。连续培养通常将细胞保持在恒定细胞密度的对数生长期。连续或半连续培养方法能够调节会影响细胞生长或最终产物浓度的一种因素或多种因素中的任意一种。例如，一种方法可以限制碳源，并且允许所有其他参数适当地代谢。在其他系统中，可以连续地改变影响生长的多种因素，同时保持通过培养基浊度测定的细胞浓度恒定。连续系统试图保持稳态生长，因此，细胞生长速度必须与由于将培养基从培养物中排出而导致的细胞减少。调节连续培养工艺的营养成分和生长因子的方法，以及用于增加生产形成速度的技术为工业微生物学领域所熟知，并且上文提到的Brock详细披露了多种方法。PUFAs的纯化PUFAs可以作为游离脂肪酸形式出现在宿主微生物中，或者以诸如酰基甘油，磷脂，硫脂或醣脂的脂化形式出现，并且可以通过本领域所熟知的多种方法从宿主细胞中提取。酵母脂类的提取技术，品质分析和可接受性标准的一种概述是以下文献Z.Jacobs(CriticalReviewsinBiotechnology12(5/6):463_491(1992))。有关下游加工的简单概述还可以参见A.Singh和0.Ward(Adv.Appl.Microbiol.45:271_312(1997))。一般，纯化PUFAs的方法可以包括用有机溶剂萃取，超声波处理，超临界流体萃取(例如，使用二氧化碳)，皂化和物理方法，如压力，或它们的组合。特别感兴趣的是用甲醇和氯仿在存在水的条件下萃取(E.G.，Bligh&W.J.Dyer,Can.J.Biochem.Physiol.37911-917(1959))。如果需要，可以将含水层酸化，以便使带负电荷的部分质子化，并因此增加了想得到的产物向有机层中的分配。在萃取之后，可以通过在氮气流下蒸发除去有机溶齐U。当以缀合形式分离时，可以对所述产物进行酶促或化学裂解，以便释放游离的脂肪酸或感兴趣的更低复杂性的缀合物，并且然后可以进行进一步的操作，以便生产需要的最终产物。理想的是，用氢氧化钾裂解脂肪酸的缀合形式。如果需要进一步纯化，可以采用标准方法。所述方法可以包括萃取，用尿素处理，分级结晶化，HPLC，分级蒸馏，硅胶层析，高速离心或蒸馏，或这些技术的组合。对诸如酸或烯基的活性基团的保护，可以在任何步骤通过已知技术(例如，烷基化，离子化)完成。所使用的方法包括脂肪酸甲基化，以便产生甲酯。类似地，可以在任何步骤除去保护基团。理想的是，纯化含有GLA，STA,ARA,DHA和EPA的级份可以通过用尿素处理和/或分级蒸馏实现。优诜实施方案的说明本发明证明了将ω-3和/或ω-6生物合成途径导入含油酵母以生产PUFAs的可行性。为此，选择ARA(代表ω-6脂肪酸)和EPA(代表ω-3脂肪酸)作为在含油酵母-解脂耶氏酵母中生产的需要的产物。因此，ARA的合成需要将编码Δ6去饱和酶、延伸酶和Δ5去饱和酶活性的基因导入耶氏酵母，而EPA的合成需要将编码Δ6去饱和酶、延伸酶、Δ5去饱和酶和Δ17去饱和酶活性的基因导入耶氏酵母。在解脂耶氏酵母中表达来自多种生物的多种公共可获得的，具有将DGAL转化为ARA和将ETA转化为EPA的能力的Δ5去饱和酶，并且筛选其活性，以便鉴定在替代的宿主中显示最高水平活性的基因。在此基础上，选择高山被孢霉Δ5去饱和酶(SEQIDNO4)作为在含油酵母中表达的优选基因，这是基于其将底物补料试验中大约30%细胞内DGLA转化为ARA的能力而选择的。进行了其它底物补料试验，以证明由以下基因编码的酶活性高山被孢霉Δ6去饱和酶(SEQIDNO2)将LA转化为GLA，并且将ALA转化为STA(其中解脂耶氏酵母中LA至GLA的底物转化百分比为约30%)；异丝水霉Δ17去饱和酶(SEQIDNO6)将DGLA转化为ΕΤΑ，并且将ARA转化为EPA(其中解脂耶氏酵母中ARA至EPA的底物转化百分比为约23%)；高山被孢霉高亲和力PUFA延伸酶(SEQIDNO8)将GLA转化为DGLA，将STA转化为ΕΤΑ，并且将EPA转化为DPA(其中解脂耶氏酵母中GLA至DGLA的底物转化百分比为约30%)。根据异丝水霉Δ17去饱和酶更低的底物转化百分比(相对于Δ5和Δ6去饱和酶和延伸酶)，对该特定基因进行密码子优化以便增强其在耶氏酵母属中的表达。这是通过确定解脂耶氏酵母中的密码子选择和结构基因标志，指定密码子优化的△17去饱和酶基因，然后体外合成该基因，并且使其在替代的宿主中的效率增加(相对于野生型基因)而实现的。为了合成ARA或ΕΡΑ(由此证明含油宿主经过工程改造以生产ω-6和ω-3脂肪酸(即ARA和EPA)的能力)，随后制备了两种不同的DNA表达构建体1)第一种含Δ6去饱和酶、Δ5去饱和酶和高亲和力PUFA延伸酶；和2)第二种构建体含Δ6去饱和酶、Δ5去饱和酶、高亲和力PUFA延伸酶和密码子优化的Δ17去饱和酶。将两种构建体分别转化到解脂耶氏酵母中，并且整合到编码乳清苷-5'_磷酸脱羧酶的染色体URA3基因中(EC4.1.1.23)。用合适的底物补料的宿主细胞的GC分析检测到了ARA(实施例5)和EPA(实施例6)的产生。因此，这是第一次证实了含油酵母中的PUFA生物合成，从而将ω-3和/或ω-6生物合成途径导入了含油酵母中。根据此处描述的教导和结果，预计本领域技术人员将认识到通过采用含油酵母作为合成多种ω-3和/或ω-ePUFA的生产平台而建立的可行性和商业用途。实施例本发明还确定了以下实施例。应当理解的是，在这些实施方案中，尽管指明了是本发明的优选实施方案，但是，是以说明形式提供的。通过上述讨论和这些实施例，本领域技术人员可以确定本发明的实质性特征，并且，在不超出本发明的构思和范围的前提下，可以对本发明进行各种改变和改进，以便适应各种用途和条件。一般方法用于实施例中的标准重组DNA和分子克隆技术为本领域所熟知的，并且披露于以下文献中1.)Sambrook，J.，Fritsch，Ε.F.andManiatis，Τ.MolecularCloning:ALaboratoryManual；ColdSpringHarborLaboratory:ColdSpringHarbor，NY(1989)(Maniatis)；2.)Τ.J.Silhavy,Μ.L.Bennan,andL.W.Enquist,ExperimentswithGeneFusions；ColdSpringHarborLaboratory:ColdSpringHarbor，NY(1984)；禾口3.)Ausubel,F.Μ.等，CurrentProtocolsinMolecularBiology,publishedbyGreenePublishingAssoc.andWiley-interscience(1987)。适合微生物培养物维持和生长的材料和方法为本领域所公知。适合在以下实施例中使用的技术可以参见以下文献ManualofMethodsforGeneralBacteriology(PhillippGerhardt,R.G.Ε.Murray,RalphN.Costilow,EugeneW.Nester,WillisA.Wood,NoelR.KriegandG.BriggsPhilips，Eds)，AmericanSocietyforMicrobiology:Washington,D.C.(1994))；或参见ThomasD.BrockinBiotechnology:ATextbookofIndustrialMicrobiology,2nded·，SinauerAssociatesSunderland,MA(1989)。用于生长和保持微生物细胞的所有试剂，限制酶和材料都是JAAldrichChemicals(Milwaukee,WI)，DIFCOLaboratories(Detroit,MI)，GIBCO/BRL(Gaithersburg，MD)，或SigmaChemicalCompany(St.Louis,MO)获得的，除非另有说明。大肠杆菌(XLl-Blue)感受态细胞是从Stratagene公司(SanDiego,CA)购买的。大肠杆菌菌株通常是在37°C下在LuriaBertani(LB)平板上生长的。按照标准方法(Sambrook等，同上)进行一般分子克隆。寡核苷酸是由Sigma-Genosys(Spring,TX)合成的。用Stratagene'sQuickChange定点诱变试剂盒进行定点诱变，按照生产商的说明进行。当聚合酶链反应(PCR)或定点诱变与亚克隆相关时，对所述构建体进行测序，以便证实没有将误差导入所述序列。将PCR产物克隆到Promega'spGEM-T-easy载体(Madison，WI)上。DNA序列是利用染料终止技术(U.S.5，366，860;EP272，007)和载体与插入片段特异性引物的组合在ABI自动测序仪上生成的。序列编辑在SequencheHGeneCodesCorporation,AnnArbor,MI)中进行。所有序列在两个方向上均表现了至少两次的覆盖。遗传序列的比较是利用DNASTAR软件(DNAStar,Inc.)实现的。或者，遗传序列的操作是使用可以从GeneticsComputerGroupInc.(ffisconsinPackageVersion9.O,GeneticsComputerGroup(GCG)，Madison，WI)获得的程序组进行的。使用了所述GCG程序〃Pileup"，空位形成预设值为12，空位延伸预设值为4。使用了GCG〃Gap“或"Bestfit"程序，预设的空位形成罚分为50，预设的空位延伸罚分为3。除非另有说明，在所有其他场合下，都使用GCG程序的预设参数。缩写的含义如下“sec"表示秒，“min"表示分钟，“h〃表示小时，“d〃表示天，“PL"表示微升，“mL〃表示毫升，“L"表示升，丨‘μΜ〃表示微摩尔，“mM"表示毫摩尔，“M〃表示摩尔，“mmol"毫摩尔，“ymole"表示微摩尔，“g〃表示克，“Pg"表示微克，“ng"表示纳克，“U"表示单位，“bp"表示碱基对，而〃kB〃表示千碱基。解脂耶氏酵母的培养解脂耶氏酵母菌株ATCC#76982和ATCC#90812购自美国典型培养物保藏中心(Rockville,MD)0解脂耶氏酵母菌株通常在28°C条件下生长在YPD琼脂(1%酵母提取物、2%细菌用蛋白胨、2%葡萄糖、2%琼脂)上。为选择转化体，采用的是基本培养基(不含硫酸铵或氨基酸的0.17%酵母氮源(NIFC01^130仪切1^68，06廿0^，]\0)、2%葡萄糖、0.脯氨酸、pH6.1)。作为补充的腺嘌呤、亮氨酸、赖氨酸和/或尿嘧啶是被适当地加入直至终浓度0.01%。解脂耶氏酵母的脂肪酸分析为了分析脂肪酸，先通过离心收集细胞，并如Bligh，E.G.&Dyer，W.J.(Can.J.Biochem.Physiol.37911-917(1959))所述方法提取脂质。脂肪酸甲酯是通过下述方法制备的，即用甲氧基钠使脂质提取物转酯(Roughan，G.和NishidaI.ArchBiochemBiophys.276(1)38-46(1990)),并接着用装配有30_mX0·25讓(内径)HP-INNOffAX(Hewlett-Packard)柱的Hewlett-Packard6890GC对其进行分析。烘箱温度以3.5°C/分钟的速度从170°C(保持25分钟)上升至185°C。为了直接进行碱基转酯，先收获耶氏酵母培养物(3mL)，在蒸馏水中洗涤一次，并在Speed-Vac内的真空条件下干燥5-10分钟。向样品中加入甲氧基钠(100μ1，1%)，接着涡旋并振摇样品20分钟。加入3滴IMNaCl和400μ1己烷后，涡旋并离心样品。移出上层并如上所述通过GC对其进行分析。实施例1丰勾建i舌合在解H旨耶氏酵母Φ表达原基因的Jli来立构建了质粒ρΥ5,即ρΙΝΑ532(由Dr.ClaudeGaillardin馈赠，InsitutNationalAgronomics,CentredebiotechnologieAgro—Industrielle,laboratoiredeGenetiqueMoleculaireetCellularielNRA—CNRS，F—78850Thiverval-Grignon,France)行生物，用于在解脂耶氏酵母中表达异源基因，如图2所示。首先，将包括ρΙΝΑ532的ARS18序列和LEU2基因的部分消化的3598bpEcoRl片段亚克隆到pBluescript(Strategene，SanDiego,CA)的EcoRl位点上，以便制备pY2。通过PCR扩增来自解脂耶氏酵母基因组DNA的TEF启动子(MullerS.，等，Yeast，141267-1283(1998))，用TEF5'(SEQIDNO:38)禾口TEF3‘(SEQIDN0:39)作引物。PCR扩增是在50μ1的总体积中进行的，它包括IOOng耶氏酵母属基因组DNA，含有IOmMKCl的PCR缓冲液，IOmM(NH4)2S04,20mMTris-HCl(pH8.75),2mMMgSO4,0.1%TritonX-100，100μg/mLBSA(最终浓度)，200μM每一种脱氧核糖核苷三磷酸，10皮摩尔每一种引物和1μ1的PfuTurboDNA聚合酶(Stratagene，SanDiego,CA)。扩增是按以下方法进行的首先在95°C下变性3分钟，然后进行35轮以下循环95°C1分钟，56°C30秒，72°C1分钟。在72°C下进行了10分钟的最终延伸，然后在4°C下终止反应。将418的PCR产物连接到pCR-Blunt上，以便制备pIP-tef。将pIP-tef的BamHI/EcoRV片段亚克隆到pY2的BamHI/Smal位点上，以便制备ρΥ4。使用ρΙΝΑ532作模板，用XPR5'(SEQIDNO40)和XPR3'(SEQIDNO41)作弓丨物，通过PCR扩增XPR2转录终止子。PCR扩增是在50μ1的总体积中进行的，使用上述成分和条件。用SacII消化179bp的PCR产物，然后连接到pY4的SacII位点上，以便制备ρΥ5。因此，ρΥ5(参见图3和4)可用作耶氏酵母属_大肠杆菌穿梭质粒，它包括1.)耶氏酵母属自主复制序列(ARS18)；2.)ColEl质粒复制起点；3.)氨苄青霉素-抗性基因(AmpK)，用于在大肠杆菌中选择；4.)耶氏酵母属LEU2基因(E.C.4.2.1.33，编码异丙基苹果酸异构酶，用于在耶氏酵母属中选择)；5.)翻译延伸启动子(TEFP)，用于在耶氏酵母属中表达异源基因；和6.)细胞外蛋白酶基因终止子(XPR2)，用于在耶氏酵母属中表达的异源基因的转录终止。作为pY5的衍生物构建了ρΥ5_13(图4)，以便促进在解脂耶氏酵母中的亚克隆和异源基因表达。用ΡΥ5作模板，通过6轮定点诱变构建ρΥ5-13。通过用寡核苷酸YL5和YL6(SEQIDNOs106和107)进行定点诱变将SaII和ClaI位点从ρΥ5上消除，以便制备ΡΥ5-5。通过用寡核苷酸YL9和YLlO(SEQIDN0s:110和111)进行定点诱变将SaII位点导入ρΥ5-5的LEU2基因和TEF启动子之间，以便制备ρΥ5_6。用寡核苷酸YL7和YL8(SEQIDNOs108和109)将PacI位点导入ρΥ5_6的LEU2基因和ARS18之间，以便制备ρΥ5_8。使用寡核苷酸YL3和YL4(SEQIDNOs104和105)将NcoI位点导入pY5_8的TEF启动子的翻译起始密码子周围，以便制备ΡΥ5-9。使用YLl和YL2寡核苷酸(SEQIDN0s:102和103)将pY5-9的LEU2基因的NcoI位点消除，以便制备pY5_12。最后，用寡核苷酸YL61和YL62(SEQIDNOs88和89)将BsiffI位点导入ρΥ5_12的ColEl和XPR2区之间，以便制备ΡΥ5-13。为了促进亚克隆，构建了质粒ρΥ5的第二种衍生物。具体地讲，用ρΥ5作模板，通过三轮定点诱变构建了ρΥ5-4(图4)。用寡核苷酸YLl和YL2(SEQIDNOs102和103)将位于Leu2报道基因上的NcoI位点位点从pY5除去，以便制备ρΥ5_1。通过用寡核苷酸YL3和YL4(SEQIDNOs104和105)进行定点诱变将NcoI位点导入ρΥ5_1的TEF启动子和XPR2转录终止子之间，以便制备ΡΥ5-2。然后使用寡核苷酸YL23和YL24(SEQIDN0s:112和113)将PacI位点导入pY5-2的TEF启动子和XPR2转录终止子之间，以便制备pY5_4。实施例2对用干在解脂耶氏酵母内表汰的A17去饱,和_和高亲和力PUFA延伸酶基因的诜择将编码ω-3和/或ω-6生物合成途径的特异性基因导入含有已破坏的Δ12去饱和酶的解脂耶氏酵母内之前，有必要证实在耶氏酵母属中表达的异源Δ6去饱和酶、延伸酶、Δ5去饱和酶和Δ17去饱和酶基因的功能性。这是通过测定各野生型蛋白在可选宿主内的转化效率而得以实现的。具体而言，即分别表达高山被孢霉Δ5去饱和酶、高山被孢霉Δ6去饱和酶、异丝水霉Δ17去饱和酶和高山被孢霉高亲和力PUFA延伸酶，并在底物补料试验中进行活性筛选。根据这些结果，选择高山被孢霉基因与Δ6和△17去饱和酶以及高亲和力PUFA延伸酶组合。表汰质粒的构建通常是通过限制酶切消化分离野生型去饱和酶或延伸酶基因，或通过PCR扩增，并将其插入合适的载体中进行表达。各PCR扩增均在总体积为50μ1并包括PCR缓冲液的反应混合物中进行，所述PCR缓冲液含有IOng模板、IOmMKCl、IOmM(NH4)2S04、20mMTris-HCl(ρΗ8·75)、2mMMgSO4^O.1%TritonX-100U00μg/mLBSA(终浓度)、均为200μM的各种脱氧核苷三磷酸、均为IOpmole的各种引物和1μ1PfuTurboDNA聚合酶(Stratagene,SanDiego,CA)。扩增步骤如下(除非另外指明)95°C初始变性3分钟，接着进行35个循环，每个循环包括95°C1分钟、56°C30秒、72°C1分钟。最终延伸循环于72°C进行10分钟，接着于4°C终止反应。野生型高山被孢霉(登录号#AF465281)Δ6去饱和酶将包括高山被孢霉Δ6去饱和酶基因(SEQIDNO1)的1384bp的pCGR5的NcoI/NotI片段(U.S.5，968，809)插入pY5_2的NcoI/NotI位点(实施例1)上，以便制备pY54。野生型高山被孢霉(登录号#AF067654)A5去饱和酶通过以寡核苷酸YLll和YL12(SEQIDNOs:72和73)为引物、以质粒pCGR-4(U.S.6，075，183)为模板进行PCR扩增高山被孢霉Δ5去饱和酶基因(SEQIDNO:3)。PCR扩增步骤如上所述，但延伸步骤延长至1.5分钟(对循环1-35而言)。用Ncol/Notl消化1357bp的PCR产物，并与Ncol/Notl消化的pY5-13(如实施例1所述)连接生成pYMA5bp(图5)。野生型异丝水霉(ATCC#56851)Δ5去饱和酶通过PCR，用寡核苷酸YL13A和YL14(SEQIDNOs:116和117)作引物，用质粒pRSP3(W002/081668)作模板，扩增异丝水霉Δ5去饱和酶基因(SEQIDNO:114)。PCR扩增步骤如上所述，但延伸步骤延长至1.5分钟(对循环1-35而言)。用NcoI/PacI消化1.4kB的PCR产物，然后连接到NcoI/PacI-消化过的pY5_4上(图4；参见实施例1)，以便制备pYSD5。野生型IsochrysisRalbanaCCMP1323Δ5去饱和酶通过PCR，用寡核苷酸YL19A和YL20(SEQIDNOs120和121)作引物，用质粒pRIG-l(W002/081668)作模板，扩增I.galbanaΔ5去饱和酶基因(SEQIDN0:118)。PCR扩增步骤如上所述，但延伸步骤延长至1.5分钟(对循环1-35而言)。用BamHI/PacII消化1.4kB的PCR产物，然后连接到BamHI/PacII-消化过的pY5_4上(图4；参见实施例1)，以便制备PYIG5。野牛型Thraustochytriumaureum(ATCC#34304)Δ5去饱和酶通过PCR，用寡核苷酸YL15和YL16B(SEQIDNOs124和125)作引物，用质粒pRTA4(W002/081668)作模板，扩增Τ.aureumΔ5去饱和酶基因(SEQIDNO:122)。PCR扩增步骤如上所述，但延伸步骤延长至1.5分钟(对循环1-35而言)。用Ncol/Ncol消化1.4kB的PCR产物，然后连接到Ncol/Ncol-消化过的pY5_2上(图4；参见实施例1)，以便制备ΡΥΤΑ5。野牛型异丝水霉(ATCC#56851)A17去饱和酶通过PCR，用寡核苷酸YL21A(SEQIDNO42)和YL22(SEQIDNO43)作引物，由质粒pRSP19(US2003/0196217Al)扩增异丝水霉的野生型Δ17去饱和酶基因。用NcoI/PacI消化PCR产物，然后连接到NcoI/PacI-消化过的pY5_4上(图4；参见实施例1)，以便制备PYSD17。野牛型高山被孢霉(登录号#ΑΧ464731)高亲和力延伸酶将包括高山被孢霉高亲和力PUFA延伸酶基因的编码区(SEQIDNO7)的pRPB2的973bp的NotI片段(W000/12720)插入pY5的NotI位点(实施例1；图3和4)，以便制备ρΥ58。解脂耶氏酵母的转化按照Chen，D.C.等(ApplMicrobiolBiotechnol.48(2):232-235_(1997))的方法将质粒pY54，pYMA5pb,pYSD5，pYIG5，PYTA5，pYSD17和pY58分别转化到解脂耶氏酵母ATCC#76982中。简单地讲，将耶氏酵母属的亮氨酸营养缺陷型在YPD平板上划线，并且在30°C下生长大约18小时。将几个大环的细胞从平板上刮下来，并且重新悬浮在ImL的转化缓冲液中，该缓冲液包括·2.25mL的50%PEG,平均分子量3350；·0.125mL的2M乙酸锂，pH6.O；·0.125mL的2MDTT；禾口·50μg的剪切的鲑鱼精子DNA。在100μ1的重新悬浮的细胞中温育大约500ng的质粒DNA，并且在39°C下保持1小时，以15分钟的间隔进行涡旋混合。将细胞铺平板到缺少亮氨酸的基本培养基平板上，并且在30°C下保持2-3天。底物转化百分比的测定含有pY54，pYMA5pb,pYSD5,pYIG5,PYTA5,pYSD17或pY58的转化解脂耶氏酵母的单个菌落分别在3mL基本培养基(20g/L葡萄糖，1.7g/L酵母氮基质，不含氨基酸，lg/LL-脯氨酸，0.lg/LL-腺嘌呤，0.lg/LL-赖氨酸，pH6.1)中，在30°C下生长到OD6c大约为1.0。为了进行底物补料，将100μ1的细胞放在含有10μg底物的3mL基本培养基中在30°C下继代培养大约24小时。然后通过离心收集细胞，并提取脂类。脂肪酸甲酯是通过转酯制备的，随后进行GC分析(如一般方法中的描述)。底物转化百分比按以下公式测定([产物]/[底物+产物])*100)。野生型高山被孢霉△6去饱和酶的底物转化百分比高山被孢霉Δ6去饱和酶能将LA转化成GLA和/或将ALA转化成STA。含有ρΥ54的解脂耶氏酵母菌株按上述方法生长(不需要补充底物)，并且分析脂类。结果表明，具有PY54的耶氏酵母属菌株能将大约30%LA转化成GLA。高山被孢霉、异丝水霉、I.galbana和T.aureumA5去饱和酶的底物转化百分比高山被孢霉、异丝水霉、I.galbana和T.aureum的Δ5去饱和酶都将DGLA转化为ARA,并且将ETA转化为ΕΡΑ。分别从单个菌落生长含pYMA5pb，pYSD5，pYIG5或pYTA5的解脂耶氏酵母菌株，在含有10μg的ARA的基本培养基中继代培养，并且按上述方法进行脂类分析。含有pYMA5pb(高山被孢霉)的耶氏酵母菌株将大约30%的细胞内DGLA转化为ARA，含有pYSD5(异丝水霉)的耶氏酵母菌转化大约12%，含有pYIG5(I.galbana)的耶氏酵母菌转化大约7%，含有pYTA5(T.Aureum)耶氏酵母菌转化大约23%的细胞内DGLA转化为ARA。野牛型异丝水霉Δ17去饱和酶的底物转化百分比异丝水霉Δ17去饱和酶能将ARA转化成EPA和/或将DGLA转化成ΕΤΑ。含有PYSD17的解脂耶氏酵母菌株是从单菌落生长的，在含有10μg的ARA的基本培养基中继代培养，并且按上述方法进行脂类分析。ARA补料实验的结果表明具有pYSD17的耶氏酵母属菌株能将大约23%的细胞内ARA转化成EPA。里予娜胃LL·膽絲禾口±延遍白_勿规絲bK高山被孢霉高亲和力PUFA延伸酶能将GLA转化成DGLA，将STA转化成ETA和/或将EPA转化成DPA。包括pY58的解脂耶氏酵母菌株是从单菌落生长的，在含有10μg的GLA基本培养基中继代培养，并且按上述方法进行脂类分析。GLA补料实验的结果表明，具有pY58的耶氏酵母属菌株能将大约30%的细胞内GLA转化成DGLA。实施例3密码子优化△17去饱和酶基因在解脂耶氏酵母内的合成和表达基于实施例2的结果，可利用的基因是编码Δ6去饱和酶、延伸酶和Δ5去饱和酶活性的基因，因为这些基因在解脂耶氏酵母内均能够实现约30%的底物转化百分率。但异丝水霉来源的Δ17去饱和酶的最大转化效率仅为23%。因此，根据耶氏酵母属的密码子选择模式、ATG翻译起始密码子周围的共有序列和RNA稳定性的普遍规律，并基于异丝水霉DNA序列(SEQIDNO5)设计了密码子优化Δ17去饱和酶基因(Guhaniyogi，G.和J.Brewer,Gene265(1-2)11-23(2001))。除了对翻译起始位点的修饰外，还对1077bp编码区中的127bp片段(包括了117个密码子)进行了密码子优化。该密码子优化DNA序列(SEQIDNO9)与异丝水霉Δ17去饱和酶基因DNA序列(SEQIDNO:5)之间的比较如图6所示，其中粗体所示核苷酸对应于密码子优化基因中被改动的核苷酸。该密码子优化基因中的所有变更均未改变编码蛋白的氨基酸序列(SEQIDNO:6)。在解H旨耶氏酵母中测丨定优,诛调密码子诛雇在NationalCenterforBiotechnologyInformation公共数据库中发现了大约100个解脂耶氏酵母的基因。通过DNAStar的Editseq程序将包括121，167bp的这些基因的编码区翻译成相应的40，389个氨基酸，并且制成表格，以便确定由表4所示的解脂耶氏酵母密码子选择谱。标题为"No."的栏表示编码特定氨基酸的特定密码子在40，389个氨基酸的样品中出现的次数。标题为"的栏表示编码特定氨基酸的特定氨基酸的频率。用粗体字符表示的代码表示解脂耶氏酵母中优选的密码子。表3解脂耶氏酵母的密码子诜择<table>tableseeoriginaldocumentpage39</column></row><table>为了进一步优化在解脂耶氏酵母中的基因表达，检查了79个基因的'ATG'起始密码子周围的共有序列。在图7中，加下划线的ATG翻译起始密码子的第一个'A'被设为+1。分析过的基因的77%在-3号位置上出现〃A"，表明了〃A"在该位置上的强烈偏好。还存在'A'或'C'在_4，-2和-1号位置上的偏好，‘A'，‘C'或'T'在+5号位置上的偏好，以及'G'或'C'在+6号位置上的偏好。因此，用于基因在解脂耶氏酵母中优化表达的密码子优化的翻译起始位点的优选的共有序列是'MAMMATGNHS'(SEQIDNO126)，其中使用了如下的核酸简并性密码=M=A/C；S=C/G；H=A/C/T；和N=A/C/G/T。密码子优化基因的体外合成被用于合成密码子优化Δ17去饱和酶基因的方法如图8所示。首先，设计11对寡核苷酸，以延伸异丝水霉Δ17去饱和酶基因的密码子优化编码区的全长(例如D17-1A、D17-1B、D17-2A、D17-2B、D17-3A、D17-3B、D17-4A、D17-4B、D17-5A、D17-5B、D17-6A、D17-6B、D17-7A、D17-7B、D17-8A、D17-8B、D17-9A、D17-9B、D17-10A、D17-10B、D17-1IA和D17-11B,对应于SEQIDNOs:10-31)。每一对有义(A)和反义(B)寡核苷酸除5’-末端具有4bp突出端外，其它部分均互补。此外，引物D17-1A、D17-4B、D17-5A、D17-8A和D17-8B还分别导入了用于后续亚克隆的Ncol、Bglll和Sail限制位点。于371、体积为2(^1并含有50mMTris-HCl(pH7.5)、IOmMMgCl2、IOmMDTT、0.5mM亚精胺、0.5mMATP和IOUT4多核苷酸激酶的混合液中，使均为IOOng的各种寡核苷酸磷酸化。将各有义和反义寡核苷酸对混合，并在采用下列参数的热循环仪中退火95°C(2分钟)>850C(2分钟),650C(15分钟),37°C(15分钟),24°C(15分钟)和4°C(15分钟)。因此，D17-1A(SEQIDNO10)退火至D17-1B(SEQIDNO:11)可生成双链产物“D17-1AB，，。同样，D17-2A(SEQIDNO12)退火至D17-2B(SEQIDNO13)可生成双链产物“D17-2AB，，，依次类推。接着将退火双链寡核苷酸分别混合所获得的三个集合连接在一起，如下所示集合1包括D17-1AB、D17-2AB、D17-3AB和D17-4AB；集合2包括D17-5AB、D17-6AB、D17-7AB和D17-8AB；禾口集合3包括D17-9AB、D17-10AB和D17-11AB。将各退火寡核苷酸集合混合在体积为20μ1并含有IOUT4DNA连接酶的混合物中，并于16°C温育过夜。接着通过PCR扩增各连接反应的产物。具体而言，是通过以连接的“集合1”混合物(即D17-1AB、D17-2AB、D17-3AB和D17-4AB)为模板，以寡核苷酸D17-1(SEQIDNO32)和D17-4R(SEQIDNO33)为引物进行PCR，扩增密码子优化Δ17去饱和酶基因的第一个部分。该PCR扩增是在总体积为50μ1并包括PCR缓冲液的混合物中进行，其中的PCR缓冲液含有IOmMKCl、10mM(NH4)2S04、20mMTris-HCl(pH8.75)、2mMMgS04、0.1%TritonX-100、100μg/mLBSA(终浓度)、均为200μM的各种脱氧核苷三磷酸、均为lOpmole的各种引物和1μ1PfuTurboDNA聚合酶(Stratagene，SanDiego,CA)扩增步骤如下于95°C初始变性3分钟，接着进行35个循环，每个循环包括95°C1分钟、56°C30秒、72°C40秒。最终延伸循环于72°C进行10分钟，接着于4°C终止反应。将430bpPCR片段亚克隆进pGEM-Teasy载体(Promega)中，可生成pT17(1-4)。同样，通过以连接的“集合2”混合物(即D17-5AB、D17-6AB、D17-7AB和D17-8AB)为模板，以寡核苷酸D17-5(SEQIDNO:34)和D17-8D(SEQIDNO:35)为引物进行PCR，扩增密码子优化Δ17去饱和酶基因的第二个部分，并将其克隆进pGEM-T-eaSy载体中，可生成pT17(5-8)。最后，同样通过以“集合3”连接混合物(即D17-9AB、D17-10AB和D17-11AB)为模板，以寡核苷酸D17-8U(SEQIDNO36)和D17_11(SEQIDNO37)为引物进行PCR，扩增密码子优化Δ17去饱和酶基因的第三个部分，并将其克隆进pGEM-T-easy载体中，可生成pT17(9-ll)。分别用ρΤ17(1-4)、ρΤ17(5_8)和ρΤ17(9_11)转化大肠杆菌，并从氨苄青霉素抗性转化体中分离质粒DNA。纯化质粒DNA，并用合适的限制性内切核酸酶消化，以释放出ρΤ17(1-4)的420bpNcol/Bglll片段、pT17(5-8)的400bpBglll/Sall片段和pT17(9-11)的300bpSall/Notl片段。接着将这些片段组合、连接在一起作为模板，并以D17-1(SEQIDNO32)和D17-11(SEQIDNO37)为引物扩增完整的合成密码子优化Δ17去饱和酶基因。对Δ17去饱和酶基因的每一个部分均采用上述条件，在总体积为50μ1的混合物中进行PCR扩增，热循环程序如下于95°C初始变性3分钟，接着进行35个循环，每个循环包括950C1分钟、56°C30秒、72°C1.1分钟。最终延伸循环于72°C进行10分钟，接着于4°C终止反应。生成1。IkBPCR产物。含密码子优化的Δ17^mmmmmmpysdi7S的构律用Ncol/Notl消化包括完整合成Δ17去饱和酶的上述1.IkBPCR产物，并将其亚克隆进Ncol/Notl消化的pY5-13(实施例1)中，可生成pYSD17S(图9A)。为比较野生型和合成基因在耶氏酵母属内的效率，另一个“对照”是通过以YL53(SEQIDNO44)和YL54(SEQIDNO45)为引物进行定点诱变，消除pYSD17(包括所述野生型基因；如实施例2所述)中富含AT的Pacl位点，可生成pYSD17M(图9B)。用密码子优化的△17去饱和酶基因对解脂耶氏酵母的转化根据实施例2所述方法，分别将含有野生型和密码子优化△17去饱和酶的质粒转化进解脂耶氏酵母ATCC#76982中。利用该技术，获得含有下述质粒的转化体M4转化体耶氏酵母中的质粒一览表"^l[IslPYSD17野生型Δ17去饱和酶PYSD17M野生型Δ17去饱和酶，无富含AT的Pacl位点~PYSD17S密码子优化Δ17去饱和酶胃石好优麗A17拂·_細白_勿樹拉僻Δ17去饱和酶可将ARA转化为ΕΡΑ(参见图2)。野生型和密码子优化Δ17去饱和酶基因的底物转化百分率([产物]/[底物+产物]*100)是通过利用一般方法中所述方法，在含有各可选质粒构建体的解脂耶氏酵母中测定的。ARA补料试验结果显示具有对照质粒pYSD17或pYSD17M的耶氏酵母菌株可将大约23%的胞内ARA转化为EPA(图10A)，而含有pYSD17S中的密码子优化Δ17去饱和酶基因的菌株则可将大约45%的胞内ARA转化为EPA(图10B)。因此，含有密码子优化A17去饱和酶的耶氏酵母可转化比含有野生型异丝水霉基因的菌株多大约2倍的ARA。适合解脂耶氏酵母内多种(0脂肪酸牛物合成基因同步表汰的质粒的构津本实施例描述了需要合成多种表达质粒，以便构建1)适合于被整合进解脂耶氏酵母属基因组内以表达八6去饱和酶1皿4延伸酶、和A5去饱和酶(用于生产ARA)的DNA片段；和2)适合于被整合进解脂耶氏酵母属基因组内以表达A6去饱和酶、PUFA延伸酶、A5去饱和酶和A17去饱和酶(用于生产EPA)的DNA片段。质粒DY24的构建质粒pY24(图11)是用于构建适合被整合进解脂耶氏酵母基因组内的表达盒的亲本载体。pY24的构建方法如下以寡核苷酸KTO和KU3(SEQIDNOs:46和47)为引物，以耶氏酵母基因组DNA为模板，通过PCR扩增含有耶氏酵母URA3基因的1.7kBDNA片段(SEQIDNO48)。该PCR扩增是在总体积为50yl的混合物中进行，该混合物包括100ng耶氏酵母基因组DNA和含有10mMKCl、10mM(NH4)2S04、20mMTris-HCl(pH8.75)、2mMMgS04,0.1%TritonX-100、100ug/mLBSA(终浓度)、均为200uM的各种脱氧核苷三磷酸、均为lOpmole的各种引物禾口1illPfuTurboDNA聚合酶(Stratagene，SanDiego,CA)的PCR缓冲液。扩增步骤如下于95°C初始变性3分钟，接着进行35个循环，每个循环包括95°C1分钟、56°C30秒、72°C2分钟。最终延伸循环于72°C进行10分钟，接着于4°C终止反应。将该PCR产物插入pGEM-Teasy载体(Promega，Madison，WI)中，可生成pGYUM。利用寡核苷酸KI5和KI3(SEQIDNOs50和51)进行PCR,扩增含有ImpatientsbalsamaW^^BISS(^“impH8")(cloneids.pkOOOl.h8；E.I.duPontdeNemoursandCompany,Inc.，Wilmington，DE)的1.lkBDNA片段(SEQIDNO52)。该PCR扩增是利用上述组成进行，但所用模板是ids.pkOOOl.h8的10ng质粒DNA。扩增步骤如下于95°C初始变性3分钟，接着进行35个循环，每个循环包括95°C1.5分钟、56°C30秒、72°C1.2分钟。最终延伸循环于72°C进行10分钟，接着于4°C终止反应。用Notl消化该PCR产物，并接着将其插入pY5(图3)的Notl位点，可生成pY9。利用寡核苷酸KTI5和KTI3(SEQIDNOs54和55)进行PCR，扩增含有pY9的TEF::IMPH8::XPR嵌合基因的1.7kBDNA片段(SEQIDNO:56)。如上所述进行该PCR扩增，但所用模板是pGYUM的10ng质粒DNA。扩增步骤如下于95°C初始变性3分钟，接着进行35个循环，每个循环包括95°C1分钟、56°C30秒、72°C2分钟。最终延伸循环于72°C进行10分钟，接着于4°C终止反应。将该PCR产物插入PCR-Script(Stratagene)中，可生成pY9R。用pGYUM的Xhol/EcoRV片段置换pY9R的1.7kBXhol/EcoRV片段，可生成pY21.以寡核苷酸KH5和KH3(SEQIDNOs58和59)为引物，以KS65的基因组DNA为模板进行PCR，扩增含有大肠杆菌潮霉素抗性基因("HPT";Kaster,K.R.,etal.,NucleicAcidsRes.11:6895_6911(1983))的lkBDNA片段(SEQIDNO:60)。该PCR扩增是利用上述组分在总体积为50u1的混合物中进行，但所用模板是ids.pkOOOl.h8的10ng质粒DNA。扩增步骤如下于95°C初始变性3分钟，接着进行35个循环，每个循环包括95°C1分钟、56°C30秒、72°C1.2分钟。最终延伸循环于72°C进行10分钟，接着于4°C终止反应。用Notl消化该PCR产物，并接着将其插入pY5的Notl位点(图3)，可生成pTHPT_l。42以寡核苷酸KTH5和KTH3(SEQIDNOs62和63)为引物，以pTHPT_l质粒DNA为模板，如上所述扩增含有TEF::HPT::XPR融合基因的1.6kBDNA片段(SEQIDNO64)。用Bglll消化该PCR产物，并接着将其插入pY21中，可生成pY24。PY24-4的构津质粒pY24(图11)被用于构建适合被整合进解脂耶氏酵母基因组的表达盒。利用pY24质粒中解脂耶氏酵母URA3基因的401bp5，序列(SEQIDNO66)和568bp3，-序列(SEQIDNO67)将表达盒直接整合进耶氏酵母基因组的Ura位点。通过BamHI消化，首先从pY24中移出两个嵌合基因(TEF::HPT:和TEF::IMPH8::XPR)，使它们自连接生成PY24-1。通过分别利用YL63和YL64(SEQIDNOs68和69)和YL65和YL66(SEQIDNOs70和71)引物对进行定点诱变，将Pad和BsiffI位点导入pY24-l中，可生成pY24_4。将pYMA5pb的4261bpPacl/BsiWI片段(包括高山被孢霉A5去饱和酶基因；如实施例2所述)连接进pY24-4(图11)的Pacl/BsiWI位点，可生成pYZM5(图5)。通过分别利用引物对YL81和YL82(SEQIDN0s:74和75)和YL83和YL84(SEQIDN0s:76和77)进行定点诱变，将Hindlll和Clal位点导入pYZM5，可生成pYZM5CH。通过以YL105和YL106(SEQIDN0:78和79)为引物进行定点诱变，将Pmel位点导入pYZM5CH，可生成pYZM5CHPP。通过以YL119和YL120(SEQIDNO:80和81)为引物进行定点诱变，将Ascl位点导入pYZM5CHPP，可生成pYZM5CHPPA(图5)。为优化该整合载体，以YL121和YL122(SEQIDNOs82和83)为引物进行PCR，扩增解脂耶氏酵母URA3基因(SEQIDNO84)上游的440bp5，非编码DNA序列。用Ascl和BsiffI消化该PCR产物，并接着用pYZM5CHPPA的Ascl/BsiffI片段置换(图5和12)，可生成pYZM5UPA(图12)。通过利用寡核苷酸YL114和YL115(SEQIDNOs:85和86)进行定点诱变，将Asc1位点导入pYZM5UPA，可生成pYZV5。为了减小pYZV5中URA3基因的3’非编码区的大小，通过利用寡核苷酸YL114和YL115(如上所述)进行的定点诱变，将第二个Pacl位点导入该区域的中部，可生成PYZV5P。通过Pacl消化切除pYZV5P的Pacl片段，再次连接后生成pYZV16(图12)。用Ascl消化pYZV16，可释放适用于A5去饱和酶基因(“MAD5”)在解脂耶氏酵母基因组内的整合和表达的5.2kBDNA片段(SEQIDNO:87)。适合高亲和力延伸酶和△5去饱和酶的表达的整合载体的构建通过分别利用引物对YL61和YL62(SEQIDNOs88和89)和YL69和YL70(SEQIDNOs90和91)进行定点诱变，将BsiffI和Hindlll位点导入pY58(含有高山被孢霉高亲和力PUFA延伸酶的编码区；如实施例2所述)，可生成pY58BH(图13；延伸酶基因被标记为“EL”)。将pY58BH中含有TEF::EL::XPR嵌合基因的1.7kBBsiffI/Hindlll片段连接进pYZM5CHPP(构建方法如图5所示)的Bsiffl/Hindlll位点，可生成pYZM5EL(图13)。该质粒适用于高山被孢霉△5去饱和酶和高亲和力PUFA延伸酶基因在解脂耶氏酵母中的整合和同步表达。适合△6去饱和酶、高亲和力延伸酶和△5去饱和酶的表达的整合载体的构建通过分别利用引物对YL77和YL78(SEQIDNOs92和93)和YL79A和YL80A(SEQIDNOs94和95)进行的定点诱变，将Pacl和Clal位点导入pY54(含有高山被孢霉A6去饱和酶；如实施例2所述)，可生成pY54PC(图13；A6去饱和酶基因被标记为“MAD6”)。将pY54PC中含有TEF::MAD6::XPR嵌合基因的2kBClal/PaclDNA片段连接进pYZM5EL的Clal/Pacl位点，可生成pYZM5EL6(图13)。该质粒适用于高山被孢霉A6去饱和酶、A5去饱和酶和高亲和力PUFA延伸酶基因在解脂耶氏酵母基因组内的整合和同步表达。适合被整合讲入耶氏酵母基因组、适合A6去饱和酶、PUFA延伸酶和A5去饱和酶表汰的DNA片段的构津采用质粒pYZV16(构建方法如图12所示)构建含有多种表达盒的质粒。首先，将pYZV16的3.5kBBsiffl/Pacl片段与pYZM5EL6(构建方法如图13所示)的7.9kBBsiffl/Pacl片段连接，可生成pYZV5EL6(图14)。用Ascl消化pYZV5EL6，可释放适合A6去饱和酶、PUFA延伸酶和A5去饱和酶基因在解脂耶氏酵母基因组内的整合和同步表达的8.9kBDNA片段(SEQIDNO96)。适合被整合讲耶氏酵母基因组、适合A6去饱和酶、PUFA延伸酶、A5去饱和酶和A17去饱和酶表汰的DNA片段的构津如实施例3的描述，将合成的异丝水霉A17去饱和酶基因插入PY5-13的Ncol/Notl位点，可生成pYSD17S(图9A)。通过分别利用引物对YL101和YL102(SEQIDNOs97和98)和YL103和YL104(SEQIDNOs99和100)进行定点诱变，将Clal和Pmel位点导入PYSD17S中，可生成pYSD17SPC(图14)。用来源于pYSD17SPC并含有A17去饱和酶表达盒的1760bpClal/Pmel片段置换pYZV5EL6(图14)的347bpClal/Pmel片段，可生成pYZV5E6/17。用Ascl消化pYZV5E6/17，可释放适合A6去饱和酶、PUFA延伸酶、A5去饱和酶和A17去饱和酶基因在解脂耶氏酵母基因组内的整合和同步表达的10.3kBDNA片段(SEQIDN0:101)。实施例5解脂耶氏酵母转化体中w-脂肪酸的生物合成用Ascl限制性内切核酸酶消化pYZV5EL6(来自实施例4，含有A6去饱和酶、PUFA延伸酶和△5去饱和酶基因)并且根据实施例2中描述的方法转化到解脂耶氏酵母中。在缺乏亮氨酸的基本培养基中选择的52种转化体中，34种不能在也缺乏尿嘧啶的培养基上生长，表明65%的转化体含有整合到靶定的解脂耶氏酵母URA3基因座中的8.9kB的多基因表达盒。将来自单个菌落的转化体接种到缺乏亮氨酸的基本培养基中，在30°C下温育最多48小时。通过离心收集细胞，提取脂质，通过转酯制备脂肪酸甲酯，随后用Hewlett-Packard6890GC进行分析(根据一般方法中描述的方法)。GC分析表明在含有3种嵌合基因的转化体中存在花生四烯酸(ARA)(图15)，但在野生型耶氏酵母对照菌株中不存在。工程改造解脂耶氏酵母，使其生产ARA，即一种(0-6脂肪酸。实施例6解脂耶氏酵母转化体中w-脂肪酸的生物合成按照与实施例5相似的方式，用Ascl限制性内切核酸酶消化PYZV5E6/17(来自实施例4，含有A6去饱和酶、PUFA延伸酶、A5去饱和酶和A17去饱和酶基因)并且转化到解脂耶氏酵母(ATCC#76982)中。在缺乏亮氨酸的基本培养基中选择的133种转化体中，89种不能在也缺乏尿嘧啶的培养基上生长，表明67%的转化体含有整合到靶定的解脂耶氏酵母URA3基因座中的10.3kB的多基因表达盒。GC分析(根据一般方法中描述的方法)表明在含有4种嵌合基因的转化体中存在二十碳五烯酸(EPA)(图16)，但在野生型耶氏酵母对照菌株中不存在。这些数据表明经过工程改造解脂耶氏酵母，生产了EPA，即一种《-3脂肪酸。序列表<110>E.I.duPontdeNemoursandCompany,Inc.<120>在含油酵母中生产多不饱和脂肪酸<130>CL2233PCT<150>US60/468677<151>2003-05-07<160>126<170>PatentInversion3.2<210>1<211>1374<212>DNA<213>高山被孢霉AF465281<400>1atggctgctgctcccagtgtgaggacgtttactcgggccgaggttttgaatgccgaggct60ctgaatgagggcaagaaggatgccgaggcacccttcttgatgatcatcgacaacaaggtg120tacgatgtccgcgagttcgtccctgatcatcccggtggaagtgtgattctcacgcacgtt180ggcaaggacggcactgacgtctttgacacttttcaccccgaggctgcttgggagactctt240gccaacttttacgttggtgatattgacgagagcgaccgcgatatcaagaatgatgacttt300gcggccgaggtccgcaagctgcgtaccttgttccagtctcttggttactacgattcttcc360aaggcatactacgccttcaaggtctcgttcaacctctgcatctggggtttgtcgacggtc420attgtggccaagtggggccagacctcgaccctcgccaacgtgctctcggctgcgcttttg480ggtctgttctggcagcagtgcggatggttggctcacgactttttgcatcaccaggtcttc540caggaccgtttctggggtgatcttttcggcgccttcttgggaggtgtctgccagggcttc600tcgtcctcgtggtggaaggacaagcacaacactcaccacgccgcccccaacgtccacggc660gaggatcccgacattgacacccaccctctgttgacctggagtgagcatgcgttggagatg720ttctcggatgtcccagatgaggagctgacccgcatgtggtcgcgtttcatggtcctgaac780cagacctggttttacttccccattctctcgtttgcccgtctctcctggtgcctccagtcc840attctctttgtgctgcctaacggtcaggcccacaagccctcgggcgcgcgtgtgcccatc900tcgttggtcgagcagctgtcgcttgcgatgcactggacctggtacctcgccaccatgttc960ctgttcatcaaggatcccgtcaacatgctggtgtactttttggtgtcgcaggcggtgtgc1020ggaaacttgttggcgatcgtgttctcgctcaaccacaacggtatgcctgtgatctcgaag1080gaggaggcggtcgatatggatttcttcacgaagcagatcatcacgggtcgtgatgtccac1140ccgggtctatttgccaactggttcacgggtggattgaactatcagatcgagcaccacttg1200ttcccttcgatgcctcgccacaacttttcaaagatccagcctgctgtcgagaccctgtgc1260aaaaagtacaatgtccgataccacaccaccggtatgatcgagggaactgcagaggtcttt132045catcctggtggagtggacactctcctgctcggagctggccgagatgttactccggtcttt180gagatgtatcacgcgtttggggctgcagatgccattatgaagaagtactatgtcggtaca240ctggtctcgaatgagctgcccatcttcccggagccaacggtgttccacaaaaccatcaag300acgagagtcgagggctactttacggatcggaacattgatcccaagaatagaccagagatc360tggggacgatacgctcttatctttggatccttgatcgcttcctactacgcgcagctcttt420gtgcctttcgttgtcgaacgcacatggcttcaggtggtgtttgcaatcatcatgggattt480gcgtgcgcacaagtcggactcaaccctcttcatgatgcgtctcacttttcagtgacccac540aaccccactgtctggaagattctgggagccacgcacgactttttcaacggagcatcgtac600ctggtgtggatgtaccaacatatgctcggccatcacccctacaccaacattgctggagca660gatcccgacgtgtcgacgtctgagcccgatgttcgtcgtatcaagcccaaccaaaagtgg720tttgtcaacc3-C3.tC3-3.CC3.gcacatgtttgttcctttcctgtacggactgctggcgttc780aaggtgcgcattcaggacatcaacattttgtactttgtcaagaccaatgacgctattcgt840gtcaatcccatctcgacatggcacactgtgatgttctggggcggcaaggctttctttgtc900tggtatcgcctgattgttcccctgcagtatctgcccctgggcaaggtgctgctcttgttc960acggtcgcggacatggtgtcgtcttactggctggcgctgaccttccaggcgaaccacgtt1020gttgaggaagttcagtggccgttgcctgacgagaacgggatcatccaaaaggactgggca1080gctatgcaggtcgagactacgcaggattacgcacacgattcgcacctctggaccagcatc1140actggcagcttgaactaccaggctgtgcaccatctgttccccaacgtgtcgcagcaccat1200tatcccgatattctggccatcatcaagaacacctgcagcgagtacaaggttccatacctt1260gtcaaggatacgttttggcaagcatttgcttcacatttggagcacttgcgtgttcttgga1320ctccgtcccaaggaagagtag1341<210>4<211>446<212>PRT<213>高山被孢霉AF067654<400>4GlyThrAspGinGlyLysThrPheMet1HisAsnThrLys20Lys5AspAspLeuLeuAspValThr35GlyAlaGlyArgLeuAla65LeuLeu50PhePheLeuSerArg40ValLeu25HisThr10AlaGlyAlaAlaAsp70LeuAsp55AlaTrplieProGlyThrProVallieMetLysValSerAsnProliePheLysThrlieGlu85ThrArgValGluAspProGlyLys115LeuLys100AsnArgProGlulieAlaSerVal145Ser130GluArgThrTrpLeu150Tyr135Ginlie120TyrGly105TrpPro90TyrLys75GluPheArgGluArgGlyPhe60TyrGluLeuAlaAla15GlyArgValTyr30ValAspThrLeu45GluMetTyrHisAlaValValGlyGinLeuPheAla155TyrValGlyThr80ProThrValPheHis95ThrAspArgAsnlie110TyrAlaLeuliePhe125ValProPheValPhe140lielieMetGlyPhe16048AlaCysAlaGinValGlyLeuAsnProLeuHisAspAlaSerHisPhe165170175SerValThrHisAsnProThrValTrpLyslieLeuGlyAlaThrHis180185190AspPhePheAsnGlyAlaSerTyrLeuValTrpMetTyrGinHisMet195200205LeuGlyHisHisProTyrThrAsnlieAlaGlyAlaAspProAspVal210215220SerThrSerGluProAspValArgArglieLysProAsnGinLysTrp225230235240PheValAsnHislieAsnGinHisMetPheValProPheLeuTyrGly245250255LeuLeuAlaPheLysValArglieGinAsplieAsnlieLeuTyrPhe260265270ValLysThrAsnAspAlalieArgValAsnProlieSerThrTrpHis275280285ThrValMetPheTrpGlyGlyLysAlaPhePheValTrpTyrArgLeu290295300lieValProLeuGinTyrLeuProLeuGlyLysValLeuLeuLeuPhe305310315320ThrValAlaAspMetValSerSerTyrTrpLeuAlaLeuThrPheGin325330335AlaAsnHisValValGluGluValGinTrpProLeuProAspGluAsn340345350GlylielieGinLysAspTrpAlaAlaMetGinValGluThrThrGin355360365AspTyrAlaHisAspSerHisLeuTrpThrSerlieThrGlySerLeu370375380AsnTyrGinAlaValHisHisLeuPheProAsnValSerGinHisHis385390395400TyrProAsplieLeuAlalielieLysAsnThrCysSerGluTyrLys405410415ValProTyrLeuValLysAspThrPheTrpGinAlaPheAlaSerHis420425430LeuGluHisLeuArgValLeuGlyLeuArgProLysGluGlu435440445<210>5<211>1077<212>DNA<213>异丝水霉(ATCC#56851)<400>5atgactgaggataagacgaaggtcgagttcccgaacgcgtgctttgagtcgaacctcggcttcaacgcgtcggcctcggcggcgctgctcgataacgttctgctccacgcgctcgtttgcttctggggcttcttcacggtcggccacgacagcgtcaactttatcatcggctgcatcatgtggcgcgtgacgcaccgccaccaccacaagttttacccgcaccggtcggtcaaggacctcggcggtgcgtggtttgtctacttgaaggtcgacccgtgggacccgctcctccttcgccgctgggccgccttcttcgccgcgtacgcgtacggcctctactactatgcgccgctctttgtcttgcaccacaacgacgaagcgacgccgtggggcaacctctcgagcgtcgaccgctcgtacattggcacgcaccaggtccaccacttgttcgccaccaagcact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