专利名称：一种产甜叶菊糖基转移酶ugt76g1的基因工程菌及其应用的制作方法
技术领域：
本发明涉及一种产甜叶菊糖基转移酶UGT76G1的基因工程菌及其应用，属于生物工程技术领域。
背景技术：
甜味剂是食品工业中最广泛的添加剂，按其来源分为天然甜味剂和人工合成甜味齐U。在天然甜味剂中，应用最多的是蔗糖，但蔗糖是一种高热量的甜味剂，摄入过多会导致人体肥胖、糖尿病、龋齿等疾病的发牛[1’2’3’4]。人工合成的甜味剂，如甜精(dulin，对-乙氧基苯脲)、环己氨基磺酸盐(cyclamata)，虽然可以使人们对甜味得到满足，但相继被发现有毒副作用而被禁用；糖精(saccharin，邻磺酰苯甲酰亚胺)，也因被报道有致癌作用而可能被限制使用。寻找无毒、安全、低热能、高甜度的天然甜味剂一直是科学研究的热点。甜叶菊(Stevia rebaudiana bertoni)，又名甜菊、糖草，是原产于南美巴拉圭等地的一种野生菊科草本植物，它是目前已知甜度较高的糖料植物之一 [5]。甜菊糖(Steviol glycosides)是从甜叶菊的叶、茎中提取出的一种新型天然甜味剂。它具有高甜度、低热能的特点，其甜度是蔗糖的150 300倍，热值仅为蔗糖的1/300[6]。经大量药物实验证明，甜菊糖无毒副作用，无致癌物，食用安全，经常食用可预防高血压、糖尿病、肥胖症、心脏病、龋齿等病症[7’8’9]，是一种可替代蔗糖非常理想的甜味剂。甜菊糖可广泛应用于食品、饮料、医药、日用化工、酿酒、化妆品等行业[11]，并且较应用蔗糖可节省成本60%。甜菊糖是目前世界已发现并经我国卫生部、轻工业部批准使用的最接近蔗糖口味的天然低热值甜味剂_。 是继苷蔗、甜菜糖之外第三种有开发价值和健康推崇的天然蔗糖替代品，被国际上誉为“世界第三糖源”。甜菊叶中三种最主要的糖甙成分在叶片中的含量通常为甜菊甙(stevioside， stevioside)占叶片干重 9· 1 %,莱鲍迪试 A (rebaudioside A, rebaudioside A 试)占 3. 8%，莱鲍迪甙C(rebaudioside C，RC甙)占 0. 6% [12]。市售甜菊糖一般以 stevioside 为主要成分，该组分甜度为蔗糖的200倍左右，其后味略带甘苦味。而作为甜菊糖的第二主成分，rebaudioside A甙甜度为蔗糖400倍，口味纯正，没有后苦味。因此，提高rebaudioside A甙相对含量是提高甜菊糖品质的关键步骤。目前文献报道提高rebaudioside A甙相对含量的策略有(1)培育rebaudioside A甙高含量的甜菊品种，国内已经尝试成功通过嫁接方法，获得rebaudioside A甙含量超过40%品种，但该品种不具备普适性，且品种容易退化，不适宜大面积种植[11];(幻通过纯化提高rebaudioside A 与stevioside的比 列，此法由于天然植物中rebaudioside A 甙含量低于stevioside，且二者物理性质极为相近，使得纯化工艺难度很大，得率较低。这两种方法的高成本造成目前市场上高rebaudioside A甙含量的甜菊糖价格很高，含80 % rebaudioside A甙的甜菊糖市价比一般混合型甜菊糖要高出4 5倍。另有报道，可以利用环糊精糖基转移酶修饰法改进甜菊糖的口感和味质，但是该法严重降低甜度，因此也不是最佳的解决方案。总之，目前已有的方法都不适宜推广。因此，寻求高效的生物酶法转化途径已经成为提高rebaudioside A甙相对含量的必然趋势。糖基转移酶UGT76G1作为植物糖基转移酶家族的一员，可以特异性的催化甜叶菊中的stevioside，生成rebaudioside A甙，因此有着重要的研究价值。Richman等从甜叶菊的EST中分离了 3种UGTs基因[13]，UGT85C2、UGT74G1、UGT76G1。体外活性分析表明， UGT85C2催化甜菊醇到甜菊单甙(steviolmonoside)的反应，UGT74G1主要催化甜菊双甙 (steviolbioside)的糖基化反应，产生 stevioside。而 stevioside 至Ij rebaudiosideA 试由UGT76G1 —步糖基化反应完成，见图1。Humphrey等人的实验结果也证实了此过程[14]。UGT76G1 全称为 UDP-glycosyltrebaudioside Ansferebaudioside Ase 76G1，其编码基因(Genbank code :AY345974)全长1616bp，开放读码框长度为1374bp，编码458个氨基酸。有关UGT76G1的相关研究报道非常少，UDP-糖基转移酶76G1 (UGT76G1)作为糖基转移酶家族的一员，可以选择性催化stevioside生成rebaudioside A甙，在甜菊糖生产方面具有潜在的应用价值。本专利首要目的是采用基因工程手段，将UGT76G1在Saccharomyces cerevisiae中实现表达，并该酶的催化特性进行研究。其次，考虑到Mccharomyces cerevisiae表达系统与其他表达系统相比，其适度的糖基化修饰过程更适合植物蛋白的表达[15_18]；此外UGT76G1在催化反应时需要加入UDPG 作为糖供体，而Mccharomyces cerevisiae系统可能会比大肠杆菌系统提供更多的天然糖供体而减少催化成本。基于以上考虑，将UGT76G1在&iccharomyces cerevisiae系统中实现表达，可以为利用重组菌进行全细胞催化stevioside生成rebaudioside A甙的工艺奠定基石出。UDPG是一种重要的核苷二磷酸单糖，1950年由Leloir和他的同事在研究半乳糖向葡萄糖转化过程中首次发现[19]。UDPG是高等植物中活化糖的主要形式，作为葡萄糖基供体参与蔗糖、纤维素、半纤维素、果胶质以及糖脂、糖蛋白的合成代谢。UDPG还是合成其他核苷二磷酸单糖，如尿苷二磷酸半乳糖、尿苷二磷酸葡萄糖酸、尿苷二磷酸木糖等的前体。尿苷二磷酸葡萄糖的生物合成过程如图2所示。参考文献[1]舒进珍等，中国甜菊栽培及应用技术[M]，北京中国农业出版社，1989年， 98 107.[2]徐任生主编，天然产物化学[M]，北京科学出版社，2004年，351 377.[3] Lombardo YB, Drebaudioside Ago S，Chicco A，et al. Long-term administrebaudioside Ation of a sucrose-rich diet to normal rebaudioside Ats relationship between metabolic and hormonal profiles and morphological changes in the endocrine pancreas[J] · Metabolism，1996，245 :1527 1532·[4]Ten S,and Maclaren N. Insulin resistance syndrome in children[J]. Clin Endocrinol Metab，2004，89 :2526 2539.[5]Kovylyaeva GI, Bakaleinik GA, Strobykina IYu, et al. Glycosides from Stevia rebaudiana[J]. Chemistry of Naturebaudioside Al Compounds,2007，43 (1) 81 85.[6]陈慕英，于喜水孙玉华，等.中医药信息[J]· 2001，18(3) :23.[7]JanM C · Geuns · Phytochemistry[M]，2003，64 :913 ·
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发明内容
本发明所要解决的第一个技术问题是提供一株能够表达糖基转移酶UGT76G1的工程菌。
本发明所要解决的第二个技术问题是提供上述工程菌的构建方法。本发明所要解决的第三个技术问题是提供上述工程菌的诱导表达方法。本发明所要解决的第四个技术问题是提供上述工程菌的应用。一种产甜叶菊糖基转移酶UGT76G1的基因工程菌，它是将UGT76G1编码基因插入 PYes2载体的EcoRI和BioI酶切位点之间，构建了重组质粒，再将重组质粒导入表达宿主酿酒酵母Saccharomyces cerevisiaeYPH499中得到的工程菌；其中，所述的UGT76G1编码基因为GenBank，No. GenBank :AY345974. 1，该基因序列命名为UGT。上述基因工程菌的构建方法，该方法包括如下步骤1)用限制性内切酶EcoR I和Ml I双酶切UGT基因片段和PYes2载体，连接UGT 基因片段纯化产物与载体，得到重组质粒PYes2-UGT ；2)将重组质粒PYes2_UGT转化至DH5 α感受态细胞，得到重组大肠杆菌 DH5 α -Phs2_UGT，选取阳性克隆；3)将鉴定后的阳性克隆的质粒导入酿酒酵母&iccharomyces cerevisiaeYPH499 中，得到基因工程菌YPH499-Pks2-UGT。上述基因工程菌的诱导表达方法，以半乳糖为诱导剂诱导基因工程菌产酶。上述基因工程菌的诱导表达方法，具体来说，将基因工程菌按2 5 (ν/ν) %接种量接种到碳源为20g/L葡萄糖的培养基上，培养8 16h，然后收集菌体，将菌体转移到碳源为20g/L半乳糖的培养基中诱导，诱导时间为48 60h ；所述的碳源为20g/L葡萄糖的培养基配方为6. 7g/L YNB, 20g/L葡萄糖，0. lg/L腺嘌呤，0. lg/L精氨酸，0. lg/L半胱氨酸， 0. lg/L亮氨酸，0. lg/L赖氨酸，0. lg/L苏氨酸，0. lg/L色氨酸，0. 05g/L天冬氨酸，0. 05g/L 组氨酸，0. 05g/L异亮氨酸，0. 05g/L甲硫氨酸，0. 05g/L苯丙氨酸，0. 05g/L脯氨酸，0. 05g/ L丝氨酸，0. 05g/L酪氨酸，0. 05g/L缬氨酸；所述的碳源为20g/L半乳糖的培养基配方为 6. 7g/L YNB, 20g/L半乳糖，0. lg/L腺嘌呤，0. lg/L精氨酸，0. lg/L半胱氨酸，0. lg/L亮氨酸，0. lg/L赖氨酸，0. lg/L苏氨酸，0. lg/L色氨酸，0. 05g/L天冬氨酸，0. 05g/L组氨酸， 0. 05g/L异亮氨酸，0. 05g/L甲硫氨酸，0. 05g/L苯丙氨酸，0. 05g/L脯氨酸，0. 05g/L丝氨酸， 0. 05g/L酪氨酸，0. 05g/L缬氨酸。上述基因工程菌在生产莱鲍迪甙A中的应用。即利用全细胞催化法，将甜菊甙转化为莱鲍迪甙A。具体来说，是以诱导表达后的基因工程菌为全细胞催化剂，通过加入表面活性剂改变细胞的通透性，以甜菊甙和葡萄糖为底物，添加镁离子以及调节代谢物质，反应得到莱鲍迪甙A。基因工程菌的用量按湿菌体计为2g/L ；甜菊甙的用量为lg/L ；葡萄糖的用量为 20g/L;所述的表面活性剂为普郎尼克F-68，用量为1 10g/L，优选2g/L;镁离子使用 MgCl2,用量为1 10g/L，优选6g/L。所述的调节代谢物质分别有UMP、丁二酸、乳清酸或柠檬酸，UMP用量为0. 5 3g/ L，优选1. 5g/L ；丁二酸用量为5 10g/L，优选9g/L ；乳清酸用量为为1 5g/L，优选2g/ L ；柠檬酸用量为10 20g/L，优选15g/L。所述的反应在磷酸钾缓冲液体系中完成，反应pH6. 8 7. 8，优选7. 2，反应温度 25 42°C，优选37 °C，反应时间12 96h，优选72h。
有益效果本发明在不外加昂贵UDPG的情况下，以廉价碳源葡萄糖为底物，调节酵母体内UDPG的代谢途径，全细胞催化M甙生成rebaudioside A。其中，添加UMP，最高达到115mg/L ；添加丁二酸，最高达到180mg/L ；添加乳清酸，最高达到270mg/L ；添加柠檬酸，rebaudioside A产量最高达到675mg/L ；说明添加柠檬酸等物质能够有效促进酵母体内UDPG的合成。另外，在添加柠檬酸的前提下，研究催化反应体系的PH值、反应温度以及时间，最终获得最佳反应调节为PH7. 2、反应温度37°C、反应时间72h，此条件下rebaudioside A产量高达875mg/L。
图1糖基转移酶催化甜菊醇生成rebaudioside A甙的途径。图2酵母体内的UDP-葡萄糖合成代谢途径。
具体实施例方式根据下述实施例，可以更好地理解本发明。然而，本领域的技术人员容易理解，实施例所描述的内容仅用于说明本发明，而不应当也不会限制权利要求书中所详细描述的本发明。实施例1 重组酵母菌的构建。1、糖基转移酶UGT基因的获取根据AY345974. 1基因序列，进行密码子优化，优化后的基因序列命名为UGT由南京金思瑞公司完成基因合成。根据UGT基因序列设计引物上游引物(-sense含 EcoRI)为5 ‘ -CGGAATTCAAACAATGTCTGAAAATAAGACTGAAACTACTG-3‘下游游引物(-sense含XhoI)为5 ‘ -CCGCTCGAGTTATAATGATGAAATATAAGAAACCAA-3‘所有引物由上海申能博彩公司合成。基因的PCR条件(50 μ L体系)94°C 变性 5min ；按如下参数循环30次94°C变性30S，60°C退火30s，72°C延伸^iiin ；最后72°C延伸 lOmin。2、重组工程菌 YPH499-PYes2_UGT 获得以合成的带有UGT基因的质粒为模板，用引物进行PCR扩增。将UGT基因片段纯化产物和PMD18-T Vector载体双酶切胶回收产物，用T4连接酶16°C进行UGT片段纯化产物与PMD18-T Vector的连接，将IOul的连接物产物PMD18-T-UGT热击转化至DH5 α感受态中。转化物涂布于含有含lOOug/mlAp的平板上，37°C培养过夜，筛选阳性克隆。获得正确序列的克隆载体PMD18-T-UGT。分别用EcoRI和BioI双酶切克隆载体PMD18-T-UGT和PYes2。胶回收酶切产物后进行连接反应，构建出表达载体PYes2-UGT。将鉴定后正确的阳性克隆载体PYes2-UGT与 Saccharomyces cerevisiae YPH499感受态混勻，电击法转化完毕后，加入ImL冰预冷的山梨醇溶液将菌体混勻，将菌体悬液涂布于SC-U筛选培养基平板上至于30°C培养，直至单个菌落出现。
液体培养基的配方如下
完全培养基YPD :10g/L酵母提取物，20g/L蛋白胨，20g/L葡萄糖。
选择培养基SC-U 6. 7g/L YNB，20g/L碳源(葡萄糖)，0. lg/L腺嘌呤，0. lg/L精氨酸，0. lg/L半胱氨酸，0. lg/L亮氨酸，0. lg/L赖氨酸，0. lg/L苏氨酸，0. lg/L色氨酸，0. 05g/ L天冬氨酸，0. 05g/L组氨酸，0. 05g/L异亮氨酸，0. 05g/L甲硫氨酸，0. 05g/L苯丙氨酸， 0. 05g/L脯氨酸，0. 05g/L丝氨酸，0. 05g/L酪氨酸，0. 05g/L缬氨酸，20g/L琼脂(平板)。
实施例2 重组酵母菌的诱导表达。
挑取重组工程菌的单菌落到SC-U培养基中，30°C振荡培养过夜。然后按2%接种量接种到碳源为葡萄糖(终浓度为20g/L)的新鲜培养基上，培养他，此部分为生物量的积累。然后再无菌环境中，集菌弃上清，洗菌并将菌体转移到碳源为半乳糖(终浓度为20g/L) 的新鲜的筛选培养基中诱导。诱导时间为48h。菌液于6000rpm，4°C离心lOmin，弃上清。
其中，碳源为葡萄糖的培养基配方为6.7g/L YNB，20g/L葡萄糖，0. lg/L腺嘌呤， 0. lg/L精氨酸，0. lg/L半胱氨酸，0. lg/L亮氨酸，0. lg/L赖氨酸，0. lg/L苏氨酸，0. lg/L色氨酸，0. 05g/L天冬氨酸，0. 05g/L组氨酸，0. 05g/L异亮氨酸，0. 05g/L甲硫氨酸，0. 05g/L苯丙氨酸，0. 05g/L脯氨酸，0. 05g/L丝氨酸，0. 05g/L酪氨酸，0. 05g/L缬氨酸。
其中，碳源为半乳糖的培养基配方为6.7g/L YNB，20g/L半乳糖，0. lg/L腺嘌呤， 0. lg/L精氨酸，0. lg/L半胱氨酸，0. lg/L亮氨酸，0. lg/L赖氨酸，0. lg/L苏氨酸，0. lg/L色氨酸，0. 05g/L天冬氨酸，0. 05g/L组氨酸，0. 05g/L异亮氨酸，0. 05g/L甲硫氨酸，0. 05g/L苯丙氨酸，0. 05g/L脯氨酸，0. 05g/L丝氨酸，0. 05g/L酪氨酸，0. 05g/L缬氨酸。
实施例3 酶活测定方法的确立。
取实施例2中的菌体沉淀，菌体20mg，用磷酸钾缓冲液(ρΗ7. 0)洗涤两次，洗涤后的沉淀置液氮中研磨破碎，并用磷酸钾缓冲液(PH7. 0)洗出，破碎后的菌液于12000rpm， 4°C离心15min。取上清即为粗酶液。精密称取样品，配制成1. 4ml体系，其中stevioside的终浓度为lg/L、UDP-葡萄糖为lg/L，并加入2g/L Mgcl2 ； 10mg/L BSA混勻，最后加入400 μ 1 粗酶液并加入磷酸钾缓冲液(ΡΗ7.0)至体系为1.細1，起始反应。30°C保温1 后，高温煮沸终止反应。离心，取上清作为样品。HPLC方法检测反应体系中rebaudiosideA甙含量。 实验结果表明，rebaudioside A的产量最高可到达到750mg/L，说明该重组工程菌能够表达产酶并且该酶能够催化stevioside生成rebaudioside A。
HPLC法色谱分析条件如下
色谱柱LichrospherNH2 柱 Q50mmX4. 6mm, 5 μ m)；流动相为乙睛水 (80 20 ；V V)；流速=ImL · mirT1 ；柱温:40°C ；检测波长210nm。
实施例4 建立全细胞催化反应体系。
取实施例2中的沉淀转移至用50ml小三角瓶中，建立全细胞催化反应体系。此反应体系为10ml，其中菌体20mg。底物stevioside lg/L ；20g/L的葡萄糖；MgCl2 4g/L ；通透剂普郎尼克F-685g/L ；用磷酸钾缓冲液定容至10ml，pH调节为7. 0，200rpm, 30°C，反应4 后，取样品离心，将上清样品被存在-20°C备于液相分析。通过加入葡萄糖，以此利用酵母代谢途径产生UDPG作为辅底物的方法，使得rebaudioside A的产量可到达到60mg/L。
实施例5 最佳MgCl2浓度。
取实施例2中的菌体沉淀20mg，按照实例4的方法，转移至用50ml小三角瓶中，加入终浓度为20g/L的葡萄糖，底物stevioside lg/L，Mgcl2，通透剂普郎尼克F-68 5g/L，用磷酸钾缓冲液定容至10ml，pH调至7.0。按上述方法，取六份平行样，加入的MgCl2浓度分别为 lg/L、2g/L、4g/L、6g/L、8g/L、10g/L, 30°C，200rpm,反应 48h 后，取样品离心，将上清样品被存在_20°C备于液相分析。其中MgCl2为10g/L时，rebaudioside A产量最低为20mg/ L ；MgCl2 为 lg/L 时，rebaudioside A 的产量为 45mg/L ；MgCl2 为 6g/L 时，rebaudioside A 的产量最高为82mg/L。
实施例5 最佳普郎尼克F-68浓度。
取实施例2中的菌体沉淀20mg，按照实例4的方法，转移至用50ml小三角瓶中，加入终浓度为20g/L的葡萄糖，底物stevioside lg/L,Mgcl2 6g/L，通透剂普郎尼克F-68，用磷酸钾缓冲液定容至10ml，pH调至7.0。按上述方法，取四份平行样，加入的普郎尼克F-68 浓度分别为化/1、58/1、1(^/1、158/1，301，200印111，反应4811后，取样品离心，将上清样品被存在_20°C备于液相分析。其中普郎尼克F-68为lg/L时rebaudioside A产量最低为 48mg/L ；普郎尼克F-68为15g/L时，rebaudioside A的产量为65mg/L ；普郎尼克F-68为 10g/L 时，rebaudioside A 的产量最高为 90mg/L。
实施例5 加入代谢调节物质UMP。
取实施例2中的菌体沉淀20mg，按照实例4的方法，转移至用50ml小三角瓶中，加入终浓度为20g/L的葡萄糖，底物stevioside lg/L, MgCl2 6g/L，通透剂普郎尼克 F-6810g/L，并加入UMP，用磷酸钾缓冲液定容至10ml，pH调至7. 0。取三份平行样，加入的 UMP浓度分别为0. 5g/L、l. 5g/L、3g/L，30°C，200rpm，反应48h后，取样品离心，将上清样品被存在_20°C备于液相分析。其中UMP为0. 5g/L时，rebaudioside A产量最低为56mg/L ； UMP 为 3g/L 时，rebaudioside A 的产量为 91mg/L ；UMP 为 1. 5g/L 时，rebaudioside A 的产量最高为115mg/L。
实施例6 加入代谢调节物质丁二酸。
取实施例2中的菌体沉淀20mg，按照实例4的方法，转移至用50ml小三角瓶中，加入终浓度为20g/L的葡萄糖，底物stevioside lg/L, MgCl2 6g/L，通透剂普郎尼克 F-6810g/L，并加入5. 4g/L NaOH，丁二酸，用磷酸钾缓冲液定容至10ml，pH调至7. 0。取六份平行样，加入的丁二酸浓度分别为 5g/L、6g/L、7g/L、8g/L、9g/L、10g/L，30°C，200rpm，S 应4 后，取样品离心，将上清样品被存在-20°C备于液相分析。其中丁二酸为5g/L时， rebaudioside A产量最低为 105mg/L ；丁二酸为 10g/L时，rebaudioside A的产量为 175mg/ L ；丁二酸为 9g/L 时，rebaudioside A 的产量最高为 180mg/L。
实施例7 加入代谢调节物质乳清酸。
取实施例2中的菌体沉淀20mg，按照实例4的方法，转移至用50ml小三角瓶中， 加入终浓度为20g/L的葡萄糖，底物stevioside lg/L, MgCl2 6g/L，通透剂普郎尼克F_68 10g/L，并加入乳清酸；用磷酸钾缓冲液定容至10ml，pH调至7.0。取五份平行样，加入的乳清酸浓度分别为lg/L、2g/L、3g/L、4g/L、5g/L，30°C，200rpm，反应48h后，取样品离心， 将上清样品被存在-20°C备于液相分析。其中乳清酸为5g/L时，rebaudioside A产量最低为80mg/L ；乳清酸为lg/L时，rebaudioside A的产量为203mg/L ；乳清酸为2g/L时，rebaudioside A 白勺/^ ! 270mg/L。
实施例8 加入代谢调节物质柠檬酸。
取实施例2中的菌体沉淀20mg，按照实例4的方法，转移至用50ml小三角瓶中，加入终浓度为20g/L的葡萄糖，底物stevioside lg/L，MgCl2 6g/L，通透剂普郎尼克 F-6810g/L，并加入柠檬酸；用磷酸钾缓冲液定容至10ml，pH调至7. O。取五份平行样，加入的柠檬酸浓度分别为10g/L、12g/L、15g/L、18g/L、20g/L，30 °C，200rpm,反应4 后，取样品离心，将上清样品被存在-20°C备于液相分析。其中柠檬酸为10g/L时，rebaudioside A产量最低为45%ig/L ；柠檬酸为20g/L时，rebaudioside A的产量为625mg/L ；柠檬酸为15g/ L rebaudioside A 白勺/^ ! 675mg/L。
实施例9:最佳反应PH。
取实施例2中的菌体沉淀20mg，按照实例4的方法，转移至用50ml小三角瓶中，加入终浓度为20g/L的葡萄糖，底物stevioside lg/L, MgCl2 6g/L，通透剂普郎尼克 F-6810g/L，并加入柠檬酸15g/L，用磷酸钾缓冲液定容至10ml，按上述方法共做五个平行样，其中PH分别调至6. 8、7. 0、7. 2、7. 5、7. 8。于30°C，200rpm进行催化反应，反应48h后， 取样品离心，将上清样品被存在_20°C备于液相分析。其中pH为7. 8时，rebaudioside A 的产量最低，为306mg/L ；pH为6. 8时，rebaudioside A的产量为698mg/L ；pH为7. 2时， rebaudioside A的产量达到最高，为705mg/L。
实施例10 最佳反应温度。
取实施例2中的菌体沉淀20mg，按照实例4的方法，转移至用50ml小三角瓶中，加入终浓度为20g/L的葡萄糖，底物stevioside lg/L, Mgcl2 6g/L，通透剂普郎尼克 F-6810g/L，并加入柠檬酸15g/L ；用磷酸钾缓冲液定容至10ml，pH调至7. 2。按上述方法取五份平行样分别于不同温度下进行反应，251、301、371、421，200印111，反应4 后，取样品离心，将上清样品被存在-20°C备于液相分析。其中25°C时，rebaudiosideA的产量最低为 78mg/L ；42°C时，rebaudioside A 的产量为 750mg/L ；37°C时，rebaudiosideA 的产量达到最高，为835mg/L。
实施例11 最佳反应时间。
取实施例2中的菌体沉淀20mg，按照实例4的方法，转移至用50ml小三角瓶中，加入终浓度为20g/L的葡萄糖，底物stevioside lg/L, Mgcl2 6g/L，通透剂普郎尼克 F-6810g/L,并加入柠檬酸15g/L ；用磷酸钾缓冲液定容至10ml，pH调至7. 2。于37°C， 200rpm进行催化反应，分别于反应12h、Mh、36h、48h、60h、72h、84h、96取样，样品离心，将上清样品被存在_20°C备于液相分析。其中在1 时，rebaudioside A产量最低，为178mg/ L ；48h 时，rebaudioside A 的产量为 867mg/L ；72h 时，rebaudioside A 的产量达到最高，为 875mg/L。
权利要求
1.一种产甜叶菊糖基转移酶UGT76G1的基因工程菌，其特征在于它是将UGT76G1编码基因插入Phs2载体的EcoRI和BioI酶切位点之间，构建了重组质粒，再将重组质粒导入表达宿主酿酒酵母Saccharomyces cerevisiaeYPH499中得到的工程菌；其中，所述的UGT76G1编码基因为GenBank，No. GenBank :AY345974. 1，该基因序列命名为 UGT。
2.权利要求1所述的基因工程菌的构建方法，其特征在于，该方法包括如下步骤1)用限制性内切酶EcoRI和Ml I双酶切UGT基因片段和PYes2载体，连接UGT基因片段纯化产物与载体，得到重组质粒PYes2-UGT ；2)将重组质粒PYes2_UGT转化至DH5α感受态细胞，得到重组大肠杆菌 DH5 α -Phs2_UGT，选取阳性克隆；3)将鉴定后的阳性克隆的质粒导入酿酒酵母&iccharomycescerevisiaeYPH499中， 得到基因工程菌YPH499-Phs2-UGT。
3.权利要求1所述的基因工程菌的诱导表达方法，其特征在于，以半乳糖为诱导剂诱导基因工程菌产酶。
4.根据权利要求3所述的基因工程菌的诱导表达方法，其特征在于，将基因工程菌按 2 5%接种量接种到碳源为20g/L葡萄糖的培养基上，培养8 16h，然后收集菌体，将菌体转移到碳源为20g/L半乳糖的培养基中诱导，诱导时间为48 60h ；所述的碳源为20g/ L葡萄糖的培养基配方为6. 7g/L YNB，20g/L葡萄糖，0. lg/L腺嘌呤，0. lg/L精氨酸，0. Ig/ L半胱氨酸，0. lg/L亮氨酸，0. lg/L赖氨酸，0. lg/L苏氨酸，0. lg/L色氨酸，0. 05g/L天冬氨酸，0. 05g/L组氨酸，0. 05g/L异亮氨酸，0. 05g/L甲硫氨酸，0. 05g/L苯丙氨酸，0. 05g/L脯氨酸，0. 05g/L丝氨酸，0. 05g/L酪氨酸，0. 05g/L缬氨酸；所述的碳源为20g/L半乳糖的培养基配方为6. 7g/L YNB, 20g/L半乳糖，0. lg/L腺嘌呤，0. lg/L精氨酸，0. lg/L半胱氨酸， 0. lg/L亮氨酸，0. lg/L赖氨酸，0. lg/L苏氨酸，0. lg/L色氨酸，0. 05g/L天冬氨酸，0. 05g/L 组氨酸，0. 05g/L异亮氨酸，0. 05g/L甲硫氨酸，0. 05g/L苯丙氨酸，0. 05g/L脯氨酸，0. 05g/L 丝氨酸，0. 05g/L酪氨酸，0. 05g/L缬氨酸。
5.权利要求1所述的基因工程菌在生产莱鲍迪甙A中的应用。
6.根据权利要求5所述的应用，其特征在于，利用全细胞催化法，将甜菊甙转化为莱鲍迪甙A。
7.根据权利要求6所述的应用，其特征在于，以诱导表达后的基因工程菌为全细胞催化剂，通过加入表面活性剂改变细胞的通透性，以甜菊甙和葡萄糖为底物，添加镁离子以及调节代谢物质，反应得到莱鲍迪甙A。
8.根据权利要求7所述的应用，其特征在于，基因工程菌的用量按湿菌体计为2g/L； 葡萄糖的用量为20g/L ；甜菊甙的用量为lg/L ；所述的表面活性剂为普郎尼克F-68，用量为 1 10g/L ；镁离子使用MgCl2,用量为1 10g/L。
9.根据权利要求7所述的应用，其特征在于，所述的调节代谢物质为UMP、丁二酸、乳清酸或柠檬酸，UMP用量为0. 5 3g/L，丁二酸用量为5 10g/L，乳清酸用量为1 5g/L，柠檬酸用量为10 20g/L。
10.根据权利要求7所述的应用，其特征在于，所述的反应在磷酸钾缓冲液体系中完成，反应pH6. 8 7. 8，反应温度25 42°C，反应时间1 96h。
全文摘要
本发明公开了一种产甜叶菊糖基转移酶UGT76G1的基因工程菌，它是将UGT76G1编码基因插入PYes2载体的EcoRI和XhoI酶切位点之间，构建了重组质粒，再将重组质粒导入表达宿主酿酒酵母Saccharomyces cerevisiaeYPH499中得到的工程菌；其中，所述的UGT76G1编码基因为GenBank，No.GenBankAY345974.1，该基因序列命名为UGT。本发明还公开了上述基因工程菌的构建方法及在生产莱鲍迪甙A中的应用。本发明在不外加昂贵UDPG的情况下，以廉价碳源葡萄糖为底物，调节酵母体内UDPG的代谢途径，全细胞催化St甙生成rebaudioside A。
文档编号C12R1/865GK102559528SQ201210029158
公开日2012年7月11日 申请日期2012年2月9日 优先权日2012年2月9日
发明者严明, 刘欢, 安明东, 安芳芳, 李艳, 王珊珊, 许昇, 许琳, 郝宁, 郝思清, 顾金海, 魏淼 申请人:南京工业大学