一种异吲哚类化合物及其制备方法和应用_2

文档序号:9365683阅读:来源:国知局
. 0016),设3个重复孔,同时设置不含化合物 的正常细胞对照孔,37°C,5% C02培养3天,倒置显微镜下(100X)计数合胞体的形成。 EC50(50% Effective Concentration)为抑制合胞体形成50%时的化合物浓度。
[0038] (3)根据实验结果绘制剂量反应曲线,按Reed&Muench法计算出化合物抑制病毒 的50%有效浓度(EC50),50%抑制细胞生长浓度(CC50)及抗HIV-I活性的治疗指数TI值 (Therapeutic index)为:TI = CC50/EC50〇
[0039] (4)经对C8166宿主细胞的细胞毒性检测,以及对HIV-1IIIB诱导C8166细胞病变 (CPE)的抑制试验,异吲哚类化合物(Isoindole LYS)具有较好的anti-HIV-1活性,EC50 值为 3. 24±0. 15 y g/mL,治疗指数(TI)为 61. 73 (见表 2)。
[0040] 表 2 :化合物 Isoindole LYS 活性 [0041 ]
[0042] 以上结果揭示了本发明化合物结构新颖且活性好,可作为抗艾滋药物的先导性化 合物,在制备抗艾滋药物中有良好的应用前景。
[0043] 本发明与现有技术比较,有以下优点:
[0044] 本发明开发了一种新的异吲哚类化合物,该化合物结构新颖且活性好,可作为抗 艾滋药物的先导性化合物,在制备抗艾滋药物中有良好的应用前景,同时提供了新的异吲 哚类化合物来源,丰富了异吲哚类化合物的种类。
[0045] 本发明利用液相制备柱进行异吲哚类化合物高效分离,步骤简单、效率高、直观、 重现性好、出新率高,高效液相色谱分析表明,采用该方法制备的异吲哚类新化合物纯度可 高达98%以上。 【【附图说明】】
[0046] 图1为本发明化合物(Isoindole LYS)的ES頂S图;
[0047] 图2为本发明化合物(Isoindole LYS)的核磁共振碳谱(13C NMR);
[0048] 图3为本发明化合物(Isoindole LYS)的核磁共振氢谱(1H NMR);
[0049] 图4为本发明化合物(Isoindole LYS)的HSQC图;
[0050] 图5为本发明化合物(Isoindole LYS)的HMBC图;
[0051] 图6为本发明化合物(Isoindole LYS)的COSY图;
[0052] 图 7 为本发明化合物(Isoindole LYS)的主要 HMBC(H - C)和1H-1H C0SY(-)相 关。 【【具体实施方式】】
[0053]本发明一种异吲哚类化合物,其分子式为C21H19NO5,命名为I so indo I e LYS,结构式 为:
[0054]
[0055] 本发明的制备方法如下:
[0056] a、浸膏提取:将紫堇根粗粉碎到30~40目后用有机溶剂超声提取3次,每次 IOOmin并过滤,合并提取液,旋蒸干其中的有机溶剂,得浸膏A ;
[0057] b、萃取:在浸膏A中加入2% HCl进行多次研磨,至生物碱反应较弱即所测pH值 接近中性为止,合并酸提取液,用等体积的氯仿萃取酸提取液,保留酸水层,萃取3次,合并 酸水层,用氨水碱化至pH 9-10,静置,将碱化后的酸提取液抽滤,滤液用氯仿萃取多遍直至 氯仿层无色,合并萃取物,并静置挥干氯仿,得浸膏B ;
[0058] c、硅胶柱分离:将浸膏B用1倍重量的氯仿溶解,然后用浸膏B重量0. 8~1. 2倍 的80~100目硅胶拌样,上硅胶柱层析,装柱硅胶为160~200目,用量为浸膏B重量的 5~10倍量,用体积比为1:0~1 :2的有机溶剂梯度洗脱,收集梯度洗脱液、浓缩,经TLC监 测,合并相同洗脱液部分,再将洗脱液上反相柱进一步分离,用体积浓度10~100%的甲醇 水溶液梯度洗脱,收集梯度洗脱液、浓缩,经TLC监测,合并相同80:20部分洗脱液部分;
[0059] d、高效液相色谱分离:将反相柱分离后的洗脱液以20~80%的甲醇为流动相, 流速10~16ml/min,21. 2X250mm,5iim的Zorbax PrepHT GF反相制备柱为固定相经高 效液相色谱进一步分离纯化,紫外检测器检测波长为254nm,每次进样50 y L,收集15. 2~ 16. 4min的色谱峰;
[0060] e、将目标洗脱部分经浓缩干燥后,即得异吲哚类化合物(Isoindole LYS)。
[0061] 实施例1 :
[0062] 称取塞北紫堇根14kg,粉碎到30~40目后用95 %乙醇超声提取3次,每次IOOmin 并过滤,合并提取液,回收溶剂,旋蒸干其中的乙醇,得乙醇浸膏A,乙醇浸膏用2% HCI多次 研磨,每次研磨至生物碱反应较弱为止,合并酸提取液,用等体积的氯仿萃取酸提取液,保 留酸水层,萃取3次,合并酸水层,用氨水碱化至pH为9-10,静置,将碱化后的酸提取液抽 滤,滤液用氯仿萃取多遍直至氯仿层无色,合并萃取物,回收氯仿,将萃取物置于敞口器皿 中,挥干氯仿,得氯仿浸膏B 136g ;
[0063] 将上述136g氯仿浸膏B用氯仿溶解,再以80~100目硅胶122g拌样,160~200 目硅胶IlOOg湿法装柱,上样后,首先采用纯氯仿洗脱,之后用氯仿-甲醇系统洗脱,依次用 不同比例的洗脱液(100:0,95:5,90:10,80:20, 70:30,60:40, 30:70,1:1,1:2)进行梯度洗 脱,每250mL收集一个组分,旋转蒸发回收溶剂,薄层色谱(TLC)点样监测,用改良碘化秘钾 显色,合并斑点相近的组份,得到9个部分,其中体积比为90:10的氯仿-甲醇有机溶剂溶 液的洗脱液经浓缩后重20. 2g ;
[0064] 用反相材料C-18装柱,洗脱液上反相柱,以体积浓度为10~100 %的甲醇水溶 液进行梯度洗脱,收集各部分洗脱液并浓缩,薄层色谱(TLC)点样监测,用改良碘化秘钾显 色,合并斑点相近的组份,取以体积含量20%甲醇水溶液洗脱得到的洗脱液浓缩至5ml左 右,再以20%的甲醇为流动相,流速10ml/min,利用21. 2X250mm,5 ym的Zorbax PrepHT GF反相制备柱为固定相分离纯化单体,其中紫外检测器检测波长为254nm,每次进样 50 y L,收集15. 2-15. 5min之间的色谱峰,多次累加合并后蒸干,即得所述的异吲哚类化合 物(Isoindole LYS)。
[0065] 实施例2 :
[0066] 称取塞北紫堇根10kg,粉碎到30~40目后用60 %丙酮超声提取3次,每次 lOOmin,过滤,合并提取液,回收溶剂,旋蒸干其中的丙酮,得丙酮浸膏A,丙酮浸膏A用2% HCI多次研磨,至生物碱反应较弱为止,合并酸提取液,用等体积的氯仿萃取酸液3次,保留 并合并酸水层,用氨水碱化至pH为9-10,静置,将碱化后的酸提取液抽滤,滤液用氯仿萃取 多遍直至氯仿层无色,合并萃取物,回收氯仿,将萃取物置于敞口器皿中,挥干氯仿,得氯仿 浸膏 B (100g);
[0067] 取上述总氯仿浸膏B,以80~100目硅胶120g拌样,500g的160~200目硅胶 湿法装柱,上样后,首先采用纯正己烷洗脱,之后用正己烷-甲醇系统洗脱,依次用不同比 例的洗脱液(1〇〇:〇, 95:5,90:10,80:20, 70:30,60:40, 30:70,1:1,1:2)进行梯度洗脱,每 250mL收集一个组分,旋转蒸发回收溶剂,薄层色谱(TLC)点样监测,用改良碘化秘钾显色, 合并斑点相近的组份,得到9个部分,其中体积比为80:20的正己烷-甲醇有机溶剂溶液的 洗脱液经浓缩后重16. Ig ;
[0068] 用反相材料C-18装柱,洗脱液上反相柱,以体积含量为10~100 %的甲醇水 溶液进行梯度洗脱,收集各部分洗脱液并浓缩,薄层色谱(TLC)点样监测,用改良碘化 秘钾显色,合并斑点相近的组份;取以体积含量30%甲醇水溶液洗脱得到的洗脱液浓缩 至5ml左右,再以40%的甲醇为流动相,流速12ml/min,用21. 2X250mm,5 ym的Zorbax PrepHT GF反相制备柱分离纯化单体,其中紫外检测器检测波长为254nm,每次进样50 y L, 收集15. 4-15. 7min之间的色谱峰,多次累加合并后蒸干,即得所述的异吲哚类化合物 (Isoindole LYS)〇
[0069] 实施例3 :
[0070] 称取塞北紫堇根12kg,粉碎到30~40目后用40%丙酮和60%乙醇的混合溶剂超 声提取3次,每次lOOmin,过滤,合并提取液,回收溶剂,旋蒸干其中的混合溶剂,得浸膏A, 浸膏用2% HCI多次研磨,至生物碱反应较弱为止,合并酸提取液,用等体积的氯仿萃取酸 液3次,保留并合并酸水层,用氨水碱化至pH为9-10,静置,将碱化后的酸提取液抽滤,滤液 用氯仿萃取多遍直至氯仿层无色,合并萃取物,回收氯仿,将萃取物置于敞口器皿中,挥干 氯仿,得氯仿浸膏B (12Ig);
[0071] 取上述总氯仿浸膏B,以80~100目硅胶121g拌样,850g的160~200目硅胶 湿法装柱,上样后,首先采用纯石油醚洗脱,之后用石油醚-丙酮系统洗脱,依次用不同比 例的洗脱液(1〇〇:〇, 95:5,90:10,80:20, 70:30,60:40, 30:70,1:1,1:2)进行梯度洗脱,每 250mL收集一个组分,旋转蒸发回收溶剂,薄层色谱(TLC)点样监测,用改良碘化秘钾显色, 合并斑点相近的组份,得到9个部分,其中体积比为80:20的石油醚-丙酮有机溶剂溶液的 洗脱液经浓缩后重18. 2g ;
[0072] 用反相材料C-18装柱,洗脱液上反相柱,以体积含量为10~100%的甲醇水 溶液进行梯度洗脱,收集各部分洗脱液并浓缩,薄层色谱(TLC)点样监测,用改良碘化 秘钾显色,合并斑点相近的组份;取以体积含量40%甲醇水溶液洗脱得到的洗
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