乳腺特异性表达水牛prl基因载体、构建及其应用的制作方法

文档序号:3585294阅读:575来源:国知局
专利名称:乳腺特异性表达水牛prl基因载体、构建及其应用的制作方法
技术领域
本发明涉及基因工程领域,尤其是涉及一种乳腺特异性表达水牛PRL基因载体、 构建及其应用。
背景技术
催乳素(prolactin,PRL)是脑垂体分泌的一种单链多肽类激素,在动物体内具有多种重要的生物学功能,目前已发现的生物学功能超过300种,其中对启动和维持泌乳具有重要意义,对乳蛋白、乳糖和乳脂等重要乳成分的合成起主要调控作用,因而PRL基因是与产奶量密切相关的基因之一。Brym等研究表明,PRL-RsaI位点对奶牛的产奶量和乳脂率具有显著影响。PRL基因缺陷性小鼠中,纯合体雌性小鼠乳腺不发育,切片结果显示,其乳腺腺泡未得到正常发育。假孕兔注射PRL,能引起乳腺腺泡分化,高尔基氏囊泡膨大,腺泡腔内出现大量的脂肪球和蛋白质胶粒。体外实验表明,PRL有促进未分化的乳腺细胞分裂的作用。而乳腺腺泡细胞的发育则需要雌二醇、孕酮与催乳素的协同作用。由此可见,催乳素 PRL基因对奶牛泌乳性能具有重要调节作用。
目前,对PRL的有关研究日益增多,开展实验需要大量PRL蛋白,例如Elisa试剂盒需要标准品;生产各类抗体过程中,也需要PRL蛋白作为抗原。然而,由于PRL仅在垂体组织中大量表达,而垂体是一个很小的内分泌腺(例如成人垂体大小约为1x1. 5x0. 5cm3,重仅约0. 5 0. 6克),从垂体中提取纯化的催乳素价格极其昂贵,远不能满足市场需求。通过原核表达方法纯化出的PRL蛋白,由于无法确保其序列空间折叠的正确性,生产的蛋白难以保证具有生理活性。市场上的PRL蛋白主要依靠细胞系表达法生产,可是生产成本依然昂贵。因此,急需发展一种可以大量获得廉价RPL蛋白的方法。
此外,2004年中国人均奶类年占有量仅18. 4公斤,在世界上排在百名之后,不及世界平均水平的1/5、亚洲平均水平的1/2。因而,现阶段急需一种可提高动物产奶量的方法,以满足市场对奶制品的需求。发明内容
本发明要解决的技术问题是提供一种乳腺特异性表达水牛PRL基因载体、构建及其应用,利用该乳腺特异性表达水牛PRL基因载体可生产转基因动物,用于生产水牛PRL蛋白并能提高转基因动物的产奶量,以满足市场对廉价RPL蛋白和奶制品的大量需求。
为解决上述技术问题本发明采用如下技术方案乳腺特异性表达水牛PRL基因载体,该载体是
载体一pMD18T-BCN-PRL/Hi s-BCNpo lyA-cmv-EGFP-SV40polyA,
或载体二pMD18T-BCN-PRL/His-BCNpolyA-EF321-EGFP-IRES-NE0-SV40polyA。
上述乳腺特异性表达水牛PRL基因载体的构建方法,主要包括以下步骤
<1>提取水牛垂体总mRNA,经反转录后,采用特异性引物进行PCR扩增得到全长水牛PRL的cDNA序列,经胶回收纯化PCR产物后,将其TA克隆插入到pMD18T载体中,得到PMD18T-PRL 载体;
<2>以步骤<1>中得到的载体为模板,用加有酶切位点和His标签的引物进行PCR 扩增,得到水牛PRL基因的CDS片段,并将其TA克隆到pMD18T载体中,得到pMD18T_PRL/ His载体;
<3> 以 pMD18T 为载体骨架,依次酶切连入 Kpnl-BCNpolyA-SacI、BamHI-PRL/ His-KpnI, SalI-NotI-BCN-BamHI, SalI-cmv-EGFP-SV40polyA-NotI 或 Sal I-EF3 21-EGFP-1 RES-NE0-SV40polyA-NotI四个片段,得到载体一或载体二。
步骤<1> 引物为上游引物 5,-AGCCTAGGACGAGAGCTTC-3,,下游引物 5,-GGGGTACC GATTTTGACATCGCTACAGAGT-3‘;
步骤<2> 引物为上游引物 5,-CGGGATCCATGCACCATCATCATCATCATCTGGTGCCACGCGG TTCTACCCCCGTCTGTCCCAAT-3,,下游引物 5,-GGGGTACCGATTTTGACATCGCTACAGAGT-3,。
上述乳腺特异性表达水牛PRL基因载体在生产转基因动物中的应用。
采用原核注射法,将载体一或载体二转移到小鼠或水牛胚胎中,得到乳腺特异性表达水牛PRL蛋白的转基因小鼠或水牛。
SalI和PvuI酶切载体一,回收片段溶于TE溶液中,线性化载体质粒经稀释后注入到小鼠的受精卵原核中,再将受精卵移植入同期发情的代孕母鼠的输卵管处,待产出子鼠, 经鉴定得到转基因小鼠。
上述转基因动物在生产水牛PRL蛋白中的应用。
本发明利用β-酪蛋白启动子启动水牛PRL基因,构建了乳腺特异性表达水牛PRL 基因载体,并采用原核注射法,将乳腺特异性表达水牛PRL基因载体转入动物基因组中,使 PRL基因仅在乳腺中表达,建立乳腺特异性表达水牛PRL蛋白的转基因动物。通过对转水牛 PRL基因小鼠的分析检测,确定小鼠乳汁中表达水牛PRL蛋白,且水牛PRL基因的表达可以显著提高乳腺中β酪蛋白以及β-1,4-半乳糖甘转移酶的表达水平。本发明既保证了在乳腺中表达PRL基因,以增加转基因动物的产奶量,又避免了全身表达PRL基因对转基因动物的严重伤害;同时乳腺中表达的PRL蛋白随乳汁排出,可在奶水中纯化得到PRL蛋白,由于生产的PRL蛋白带有His标签,可为后期提纯PRL蛋白提供便利,节约成本。因此,应用本发明可望通过转PRL水牛的制备,获得有大量廉价的的PRL蛋白,并提高水牛的产奶量和乳液中的酪蛋白水平,产生巨大的经济效益和社会效益。


图1是本发明乳腺特异性表达水牛PRL基因载体图,图中双标为 cmv-EGFP-SV40polyA 或 EF321-EGFP-IRES-NE0-SV40polyA,BCN 为 β-酪蛋白启动子,PRL 为牛催乳素⑶S,polyA为β-酪蛋白3 ‘非翻译区。
图2是本发明乳腺特异性表达水牛PRL基因载体的构建路线图。
图3是水牛PRL基因⑶S序列PCR扩增片段电泳图。
图4是本发明乳腺特异性表达水牛PRL基因载体一瞬时转染Bcap37细胞系4 后荧光检测图,图中A为常光,B为荧光。
图5是瞬时转染Bcap37细胞系后RT-PCR检测电泳图,图中3. 8kb和5. 2kb分别是由不同长度的BCN启动子构建的质粒。4
图6是FO代转PRL基因小鼠尾尖基因组DNA PCR检测电泳图,图中1为阴性对照,18道为阳性对照。
图7是转PRL基因母鼠乳汁中PRL浓度Elisa检测中的标准曲线图。
图8是乳腺特异性表达PRL基因对泌乳相关基因表达水平的QRT-PCR检测图。
具体实施方式
一、实验材料和方法
所用载体、细胞系和试剂来源pMD18T载体(购自Takara公司), PHC79-EF321-EGF P-IRES-NE0 由中国农大提供,pMD18T-BCNpolyA、pMD18T_BCN为发明人自行制备。引物合成以及序列测定由华大基因有限公司完成,Taq酶、T4DNA连接酶、内切酶、 QPT-PCR相关试剂均购自Takara公司,小提质粒以及胶回收试剂盒购自TIANGEN公司,去内毒小提质粒试剂盒购自OMEGA公司,细胞转染以及胞质内注射用外源基因胶回收试剂盒购自QIAGEN公司,细胞转染作用的Bcap37细胞系为申请人保存,体细胞克隆所用试剂均来自 Sigma公司,Western Blot所用抗体来自康为公司,牛PRL Elisa检测试剂盒购自Cusabio 公司。
所用基因组提取、总RNA提取、总蛋白提取、PCR扩增、反转录、酶切、胶回收、连接、 转化、质粒提取、脂质体转染法、显微注射法、精子介导法、Western Blot、Southe rnBlot, Elisa、QRT-PCR等实验操作步骤详见《分子克隆(第三版)》(2000年,科学出版社)或相应的试剂盒说明书。转基因小鼠的生产由广州赛业公司代理。
二、乳腺特异性表达水牛PRL基因载体的构建
如图1和图2所示,根据NCBI上公布的牛PRL的mRNA序列(NM_173953. 2)设计合成的特异性引物,上游引物5’ -AGCCTAGGACGAGAGCTTC-3,(见序列表SEQ. ID. No. 2的碱基序列),下游引物 5,-GGGGTACCGATTTTGACATCGCTACAGAGT-3,(见序列表 SEQ. ID. No. 3 的碱基序列)。从屠宰场取新鲜的水牛垂体组织,保存于液氮中运回到实验室。采用Trizol 试剂提取总RNA,电泳检测总RNA质量后进行反转录反应。取2uL反转产物为模板,用上述引物进行 PCR扩增,扩增条件:94°C,30sec ;61°C,30sec ;72°C,55sec ;共 35 个循环。1. 5% 的琼脂糖电泳检测到901bp的特异性片段(见序列表SEQ. ID. No. 1的碱基序列),将该片段进行胶回收后TA克隆到pMD18T载体中,得到pMD18T-PRL载体并进行测序。
以pMD18T-PRL载体为模板,用加有酶切位点和His标签的引物扩增得到PRL的 CDS 区。上游引物 5’ -CGGGATCCATGCACCATCATCATCATCATCTGGTGCCACGCGGTTCTACCCCCGTCTG TCCCAAT-3,(见序列表 SEQ. ID. No. 5 的碱基序列);下游引物 5,-GGGGTACCGATTTTGACATCGC TACAGAGT-3,(见序列表 SEQ. ID. No. 6 的碱基序列)。扩增条件:94 V,30sec ;61°C,30sec ; 72°C,5kec;共35个循环。1. 5%的琼脂糖电泳检测到804bp的特异性片段(见图3,见序列表SEQ. ID. No. 4的碱基序列),将该片段进行胶回收后TA克隆插入到pMD18T载体中,得到pMD18T-PRL/His载体并测序。
将事先制备的p-BCNpolyA载体和环状的pMD18T载体用McI和KpnI酶切连接,转化DH5 α菌,筛选出阳性克隆,得到pMDIST-BCNpolyA载体;将该载体与上述pMD18T-PRL/His载体用BamHI和KpnI酶切连接,转入DH5 α中筛选出阳性克隆, 得到pMD18T-PRL-BCNpolyA载体;将该载体与事先制备的p-BCN载体用BamHI和Sal酶切连接,转入DH5 α中筛选出阳性克隆,得到pMD18T-BCN-PRL-BCNpolyA载体;将该载体分别与事先制备的p-BCNcmV-EGFP-SV40pOlyA载体和经过酶切位点改造的 pEF321-EGFP-IRES-NE0-SV40polyA载体用NotI和Sal酶切连接,转入DH5 α中筛选出阳性克隆,得到供原核注射的 pMD18T-BCN-PRL/His-BCNpolyA-cmv-EGFP-SV40poIyA 载体(载体一)和可供筛选的 pMD18T-BCN-PRL/His-BCNpolyA-EF321-EGFP-IRES-NE0-SV40polyA 载体 (载体二)。
三、细胞水平上检测乳腺特异性表达水牛PRL基因载体
将pMD18T-BCN-PRL/Hi s-BCNpolyA-cmv-EGFP-SV40poIyA 载体用 Lipo2000 脂质体转染法,转染Bcap37细胞系。如图4所示,4 后观察荧光,可见绿色荧光表达,收集细胞提取总RNA和总蛋白。总RNA经反转录后,PCR方法检测PRL基因的表达情况,检测引物 上游引物 5,-ACCCCCGTCTGTCCCAAT-3,;下游引物 5,-GATTTTGACATCGCTACAGAGT-3,。扩增条件:94°C,30sec ;6rC,30sec ;72°C,55sec ;共35个循环。1. 5%的琼脂糖电泳检测证明 (如图5所示,将Bcap37细胞系分为四组,用脂质体2000分别转染这3. 81ABCN启动的PRL 载体、5. 21ABCN启动的PRL载体、EGFP-Nl载体以及空白对照(只加脂质体2000);图中A 显示,3. 81ABCN启动子与5. 21Λ启动子启动的水牛PRL两个载体RT-PCR扩增得到与相应质粒PCR扩增相同的804bp的PRL阳性片段,而EGFP-Nl以及空白对照则没有扩增得到阳性片段;图中B显示,四组细胞均可扩增得到190bp的β -action内参基因的阳性片段),BCN 可启动PRL基因在Bcap37中转录。总蛋白进行^festern Blot检测,一抗为小鼠抗6XHis 蛋白抗体,二抗为羊抗鼠抗体,检测结果呈阳性。以上结果表明,BCN启动子可在Bcap37细胞系中启动PRL/His的表达。
四、乳腺特异性表达水牛PRL蛋白转基因小鼠的生产与检测
采用去内毒素质粒提取试剂盒提取pMD18T-BCN-PRL/ His-BCNpolyA-cmv-EGFP-SV40polyA质粒,用SalI和PvuI双酶切该质粒,进行胶回收,回收片段溶于TE溶液中。线性化质粒载体稀释后注入到小鼠的受精卵原核中,将受精卵移植入同期发情的代孕母鼠的输卵管处,待产出子鼠。取产出的子鼠尾尖组织,提基因组DNA后进行PCR检测,得到8只阳性小鼠(如图6所示,2、3、7、9、10、12、14和15道)。将经鉴定得到的转基因小鼠进行EGFP荧光检测,发射光525nm,激发光488nm,添加了荧光背景滤光片425nm,曝光时间为^ec,其中4只小鼠中检测明显的绿色荧光,1只检测到微弱的绿色荧光,3只未检测绿色荧光。
将FO代转基因小鼠与野生型小鼠交配,得到Fl代转基因小鼠。提取其尾尖组织基因组DNA进行PCR检测筛选,为避免假阳性,选择两对引物进行扩增,电泳检测均为阳性的小鼠留种传代。
将哺乳期转PRL基因母鼠与仔鼠隔离4小时后,腹腔注射0. 3IU的缩宫素,IOmin 后腹腔注射速眠新麻醉小鼠,用蘸有温水的棉球轻敷乳头周围后采奶。将采集到的奶水按 1 10的体积加ddH20稀释后,4°C 5000g离心lOmin,取中间溶液层做狗8丨6111 Blot检测。 一抗为小鼠抗6XHis蛋白抗体,二抗为羊抗鼠抗体,检测结果呈阳性。由此证明,BCN启动子可在活体小鼠乳腺中启动PRL/His的表达,并在奶水中检测到PRL/His蛋白。
五、转基因小鼠奶水中水牛PRL蛋白浓度检测
将产仔第十天的母鼠与仔鼠隔离4小时后,腹腔注射0. 3IU的缩宫素,IOmin后腹腔注射速眠新麻醉小鼠,用蘸有温水的棉球轻敷乳头周围后采奶。将采集到的奶水按 1 10的体积加ddH20稀释后,4°C 5000g离心lOmin,取中间溶液层用作水牛PRL Elisa 检测。如图7所示,将标准品组数据做拟合曲线分析,y = 51091Xe(-6 1022x), R2 = 0.9991, 计算得到小鼠奶水中水牛PRL的平均浓度为56. 71ng/ml,个体最高浓度为104. 8ng/ml。
六、乳腺特异性表达PRL基因对泌乳相关基因表达的影响
提取产仔第十天的母鼠的乳腺组织总RNA,反转录后,用去离子水稀释到lOOng/μΙ左右,作为实时定量的模板。检测引物乳脂合成相关基因——乙酰辅酶A羧化酶ACACA的上游引物5’ -GAGGAGAACATCAAATACATCAG-3’,下游引物 5,-ATCCTTACAACTTCT GCTCG-3,;乳糖合成相关基因——β -1,4-半乳糖基转移酶B4galtl 的上游引物5,-CGGCATTCAAGAGACAAGA-3,,下游引物5,-CGCATCGTTTCCTTTGTA-3,; 乳蛋白相关基因——β酪蛋白CSN2的上游引物5,-TAGCACCCTTCCTTCCAC-3,,下游引物5,-GTACATTTCCAGTTTCAGTCAG-3,;PRL 的上游引物5,-GCTGCCATACCTCCTCC, 下游引物5,-GGTGACTAGGTGATACAGAGG-3,;内参基因β-actin的上游引物 5,-CATCCGTAAAGACCTCTATGC-3,,下游引物 5,-ACATCTGCTGGAAGGTGGAC-3,。扩增条件 95°C,20sec ;60°C,20sec ;72°C,30sec ;共40个循环。实验结果表明(见图8,小鼠分为四组第一组为奶水中检测到PRL蛋白,紫外灯下见绿色荧光,尾尖组织基因组检测PRL与 EGFP基因为阳性的转PRL基因小鼠;第二组为奶水中未检测到PRL蛋白,紫外灯下见绿色荧光,尾尖组织基因组检测PRL与EGFP基因为阳性的转PRL基因小鼠;第三组为奶水中未检测到PRL蛋白,紫外灯下未见绿色荧光,尾尖组织基因组检测PRL与EGFP基因为阳性的转PRL基因小鼠;第四组为非转基因小鼠。取以上四组泌乳第10天母鼠乳腺,QRT-PCR检测 ACACA、B4galtl、CSN2、PRL基因的表达水平,结果显示PRL基因表达的小鼠乳腺中B4galtl 和CSN2基因的表达水平较其他组显著提高,其中CSN2基因的表达水平极显著提高),与对照组相比,水牛PRL基因的表达显著提高了乳糖合成相关基因和乳蛋白中β酪蛋白基因的表达水平,而对乳脂相关基因的表达无显著影响。
权利要求
1.一种乳腺特异性表达水牛PRL基因载体,其特征在于该载体是载体一 pMDIST-BCN-PRL/Hi s-BCNpo IyA-Cmv-EGFP-SV4OpolyA,或载体二 pMD18T-BCN-raL/His-BCNpolyA-EF32l-EGFP-IRES-NE0-SV40polyA。
2.根据权利要求1所述乳腺特异性表达水牛PRL基因载体的构建方法,其特征在于主要包括以下步骤<1>提取水牛垂体总mRNA,经反转录后,采用特异性引物进行PCR扩增得到全长水牛PRL的cDNA序列,经胶回收纯化PCR产物后,将其TA克隆插入到pMD18T载体中,得到 PMD18T-PRL 载体;<2>以步骤<1>中得到的载体为模板,用加有酶切位点和His标签的引物进行PCR扩增,得到水牛PRL基因的CDS片段,并将其TA克隆到pMD18T载体中,得到pMD18T_PRL/His 载体;<3> 以 pMD18T 为载体骨架,依次酶切连入 Kpnl-BCNpolyA-SacI、BamHI-raL/His-KpnI、 SalI-NotI-BCN-BamHI、SalI-cmv-EGFP-SV40polyA-NotI 或 SalI-EF321-EGFP-IRES-NE0_S V40polyA-NotI四个片段,得到所述载体一或载体二。
3.根据权利要求2所述乳腺特异性表达水牛PRL基因载体的构建方法,其特征在于 步骤<1>所述引物为上游引物5,-AGCCTAGGACGAGAGCTTC-3,,下游引物5,-GGGGTACCGATT TTGACATCGCTACAGAGT-3 ‘;步骤 <2> 所述引物为上游引物 5,-CGGGATCCATGCACCATCATCATCATCATCTGGTGCCACGCGG TTCTACCCCCGTCTGTCCCAAT-3,,下游引物 5,-GGGGTACCGATTTTGACATCGCTACAGAGT-3,。
4.根据权利要求1所述乳腺特异性表达水牛PRL基因载体在生产转基因动物中的应用。
5.根据权利要求4所述的应用,其特征在于采用原核注射法,将所述载体一或载体二转移到小鼠或水牛胚胎中,得到乳腺特异性表达水牛PRL蛋白的转基因小鼠或水牛。
6.根据权利要求5所述的应用,其特征在于Aall和PvuI酶切所述载体一,回收片段溶于TE溶液中,线性化载体质粒经稀释后注入到小鼠的受精卵原核中,再将受精卵移植入同期发情的代孕母鼠的输卵管处,待产出子鼠,经鉴定得到所述转基因小鼠。
7.根据权利要求4所述转基因动物在生产水牛PRL蛋白中的应用。
全文摘要
本发明公开了一种乳腺特异性表达水牛PRL基因载体、构建及其应用,利用β-酪蛋白启动子启动水牛PRL基因,构建了乳腺特异性表达水牛PRL基因载体,并将该载体转入动物基因组中获得乳腺特异性表达水牛PRL蛋白的转基因动物,其乳汁特异性表达水牛PRL蛋白,且水牛PRL基因的表达可以显著提高乳腺中β酪蛋白以及β-1,4-半乳糖甘转移酶的表达水平。因此,应用本发明可望通过转PRL水牛的制备,获得有大量廉价的的PRL蛋白,并提高水牛的产奶量和乳液中的酪蛋白水平,产生巨大的经济效益和社会效益。
文档编号C07K14/575GK102492722SQ20111040087
公开日2012年6月13日 申请日期2011年12月6日 优先权日2011年12月6日
发明者任艳萍, 刘庆友, 李湘萍, 石德顺, 陆凤花 申请人:广西大学
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