、泽泻3g、金枪鱼 提取物〇. 5g。
[0093] 金枪鱼提取物的制备方法包括：取金枪鱼粉碎，在100°C下加热5min预处理，酶解 的温度为56°C，酶解的时间为9.Oh。酶解采用Alcalase蛋白酶，蛋白酶的使用量为预处理 后的金枪鱼重量的3. 0%。
[0094]进而灭酶，灭酶的温度为94°C，灭酶的时间为lOmin。
[0095] 离心分离得到上清液，在0. 07MPa，80°C的真空条件下浓缩至固形物含量为42%， 干燥即得。
[0096] 将上述原料提取二次，第一次加12倍量水，煮沸提取1. 5小时，第二次加8倍量 水，煮沸提取1小时，合并两次提取液；将提取液过滤，温度65°C，真空度-0. 07Mpa，浓缩至 固形物30%;加入辅料、按照粉剂常规工艺即可得到粉剂成品。
[0097] 实施例19
[0098]准确称取土茯苳15g、菊苣8g、车前草10g、薏该仁18g、葛根8g、泽泻4g、金枪鱼提 取物2. 0g。
[0099] 金枪鱼提取物的制备方法包括：取金枪鱼粉碎，在80°C下加热30min预处理，酶解 的温度为54°C，酶解的时间为3.Oh。酶解采用蛋白酶，更优选的，所述蛋白酶选自酸性蛋 白酶、木瓜蛋白酶、胃蛋白酶、胰酶、水解蛋白酶、中性蛋白酶、风味蛋白酶和Alcalase蛋白 酶，所述蛋白酶的使用量为预处理后的金枪鱼重量的〇. 5% -3. 0%。
[0100] 进而灭酶，灭酶的温度为96°c，灭酶的时间为20min。
[0101] 离心分离得到上清液，在〇. 08MPa，60°C的真空条件下浓缩至固形物含量为38%， 干燥即得。
[0102] 将上述原料提取二次，第一次加12倍量水，煮沸提取1. 5小时，第二次加8倍量 水，煮沸提取1小时，合并两次提取液；将提取液过滤，温度65°C，真空度-0. 05Mpa，浓缩至 固形物20%;加入辅料、按照颗粒剂常规工艺即可得到颗粒剂成品。
[0103] 实施例20组合物
[0104] 准确称取土茯苓29g、菊苣3g、车前草3g、薏苡仁3g、泽泻lg、金枪鱼提取物5g、葛 根llg。
[0105] 金枪鱼提取物的制备方法包括：取金枪鱼粉碎，在80°C下加热5min预处理，酶解 的温度为60°C，酶解的时间为3.Oh。酶解采用酸性蛋白酶，蛋白酶的使用量为预处理后的 金枪鱼重量的0.5%。
[0106] 进而灭酶，灭酶的温度为100°C，灭酶的时间为lOmin。
[0107] 离心分离得到上清液，在0. 08MPa，60°C的真空条件下浓缩至固形物含量为45%， 干燥即得。
[0108] 将上述原料提取二次，第一次加12倍量水，煮沸提取1. 5小时，第二次加8倍量 水，煮沸提取1小时，合并两次提取液；将提取液过滤，温度65°C°C，真空度-0. 08Mpa，浓缩 至固形物20%;加入辅料、按照食品常规工艺即可得到食品。
[0109] 实施例21组合物
[0110] 准确称取土茯苓3g、菊苣16g、车前草16g、薏苡仁21g、泽泻10g、金枪鱼提取物 0.lg、葛根 3g。
[0111] 金枪鱼提取物的制备方法包括：取金枪鱼粉碎，在100°c下加热30min预处理，酶 解的温度为50°C，酶解的时间为9.Oh。酶解采用木瓜蛋白酶，蛋白酶的使用量为预处理后 的金枪鱼重量的3. 0%。
[0112] 进而灭酶，灭酶的温度为90°C，灭酶的时间为20min。
[0113] 离心分离得到上清液，在0. 03MPa，80°C的真空条件下浓缩至固形物含量为30%， 干燥即得。
[0114] 将上述原料提取二次，第一次加12倍量水，煮沸提取1. 5小时，第二次加8倍量 水，煮沸提取1小时，合并两次提取液；将提取液过滤，温度85°C，真空度-0. 03Mpa，浓缩至 固形物30%;加入辅料、按照保健品常规工艺即可得到保健品成品。
[0115] 实施例22
[0116] 取SPF级SD大鼠105只，雄性，体重200±20(g)，北京维通利华实验动物技术有 限公司提供（许可证号：SCXK(京）2012-0001)。氧嗪酸钾，济南诚汇双达化工有限公司产 品，批号：12042001，以0. 1%CMC-Na配制成浓度为0. 15g/mr混悬液，每次配制3d用量，4°C 保存备用。别嗓呤醇，Tokyo chemical industry Co. Ltd产品，批号：MYRYA_IR，以0.1% CMC-Na配制成浓度为2. 7mg/ml混悬液，每次配制3d用量，4°C保存备用。尿酸和尿素氮检 测试剂盒由德国CentronicGmbH公司提供，批号分别为UF03121HH6G和UF01121GG66G，肌 酐检测试剂盒由上海蓝怡科技有限公司提供，批号R102APA。
[0117] SD大鼠在实验环境下适应5天后，按体重随机分为正常对照组，模型组，别嘌呤 醇组，样品1(实施例18所制备的中草药与金枪鱼提取物的组合物）大剂量组、小剂量组、 样品2(实施例18制得的中草药组合物，不含金枪鱼提取物）大剂量组、小剂量组。样品 1和2灌胃剂量，根据临床剂量，以人体推荐量的5倍为其中小剂量组（0. 2ml/100g)，30倍 (1. 25ml/100g)为大剂量组。
[0118] 正常对照组每天灌胃同体积饮用水，其余每组大鼠每天上午灌胃氧嗪酸钾 1. 5g?kg4 ?cf1;模型组下午灌胃给予同体积生理盐水；别嘌呤醇组下午灌胃给予别嘌呤醇 27mg?kg4 ?cf1;样品组1大剂量组、小剂量组和样品组2大剂量组、小剂量组下午灌胃给 予稀释至同体积的不同剂量的受试样品。
[0119] 造模原理：以化学尿酸酶抑制剂氧嗪酸钾灌胃大鼠，抑制大鼠体内尿酸酶活性，使 其体内的尿酸不能分解，造成血清尿酸生成增多，以复制大鼠高尿酸血症模型。
[0120] 表1分组与服用方案
[0122] 监测大鼠体重，于实验前、给药15天取血测定尿酸、肌酐、尿素氮，测定计算血清 尿酸水平变化率。
[0123] 血清尿酸变化率=(实验后血清尿酸值-实验前血清尿酸值）/实验前血清尿酸 值X100%。
[0124] 数据采用SPSS13. 0统计软件单因素方差分析（one-wayAN0VA)统计，LSD检验 比较两组间差异，结果均以均数土标准差（7±s )表示。
[0125] 采用方差分析，先进行方差齐性检验，计算F值，F值<Fa(l5，结论：各组均数间差 异无显著性；F值彡Fa(l5,P< 0. 05,用多个实验组和一个对照组间均数的两两比较方法进 行统计；对非正态或方差不齐的数据进行适当的变量转换，待满足正态或方差齐要求后，用 转换后的数据进行统计；若变量转换后仍未达到正态或方差齐的目的，改用秩和检验进行 统计。
[0126] 受试样品剂量组与模型组比较，任一剂量组血清尿酸值降低，差异有显著性，且血 清尿素氮和血清肌酐无明显升高，即可判定该受试样品降尿酸功能动物实验结果阳性。
[0127] 由表2可知，动物体重随着饲养时间延长，逐渐增长，但在实验结束后各组动物体 重比较未见显著性差异。
[0128] 表2降尿酸保健食品对动物体重的影响（s )(单位：g)
[0130] 注：与模型组比较，*P〈0. 05
[0131] 由表2可知，动物体重随着饲养时间延长，逐渐增长，但在实验结束后各组动物体 重比较未见显著性差异。
[0132] 由表3可知，血尿酸：与正常对照组比较，模型组血清尿酸含量均显著升高 (P〈0. 001)，样品1大、小剂量组和样品2大、小剂量组与模型组比较，血清尿酸含量均显著 下降（P〈0. 01或P〈0. 001)，其中样品1小