专利名称：：用于生产γ-环糊精的环糊精糖基转移酶的制作方法
技术领域：
：本发明涉及用于生产γ-环糊精的环糊精糖基转移酶(CGTase)EC24.1.19，并涉及γ-环糊精糖基转移酶的制备方法及应用。通常情况下，环糊精是由淀粉或淀粉样底物制备而得的。在这种制备过程中，CGTase被用作为催化剂，将淀粉转化为环糊精(CD)。当反应进行到热动力学平衡状态时(CD产量最大)，由于热动力学的原因，不论反应中用的CGTase为何种类型，淀粉都将主要被转化为β-CD。然而在起始阶段，即淀粉转化反应刚刚开始时，使用不同类型的转移酶会使初级阶段产物混合物在组成上有所不同。依据此起始阶段中所产生的CD主要是α-，β-，还是γ-类型的，分别将对应的CGTase划分成α-，β-，和γ-类型。这些酶适用于、并已经用于CD的工业化生产。迄今为止，只在细菌中检测到有这些酶的存在。到目前为止，α-CGTase仅在软化芽孢杆菌、嗜热脂肪芽孢杆菌、和Klebsiellaoxytoca中得到鉴定。在环状芽孢杆菌、巨大芽孢杆菌、Bacillusohbensis、微球菌、以及未精确分类的嗜碱性芽孢杆菌如芽孢杆菌38-2，17-1，1011或1-1中，都已检测到β-CGTase。有报道说，在枯草芽孢杆菌313，芽孢杆菌A1-6和芽孢杆菌290-3中具有能在初始阶段催化γ-CD形成的高活性的天然转移酶。由于环糊精的工业化生产过程中所用的CGTase总是将淀粉转化成多种环糊精的混合物，因而，人们发展出了各种方法以分离纯化环糊精(α-、β-或γ-型的)。这些方法描述如下通过色谱法，例如根据其分子量的差异(US-A-4,808,232)可从反应产物混合物中分离出特定的CD来。通常，在将淀粉以酶学方法转化成环糊精时，可在反应体系中加入只与某一特定的CD发生反应的配位剂，从而使该种CD形成不溶性的配合物。然后，可以用物理学的方法，从反应混合物体系中将其分离出来。接着再将该配合物溶解以纯化出均一的CD(参见EP0291067)。如果采用的是γ-CGTase，在反应混合物体系中加入有机溶剂，如乙醇，可使产物的组成向γ-CD的方向转移。(参见J.Ferm.Bioeng.(1990)70(3)，pp.150-154)如果要制备某一种类型的纯化CD，则在生产的每一个过程中都应对所使用的CGTase进行最优化选择，以使所形成的初始产物中该类型的CD尽可能地多。关于α-和β-CGTase特异性的现有知识已足以进行相应的环糊精的工业化生产。相比而言，没有一个已知的天然γ-CGTase的产物特异性能允许进行相应规模的γ-CD的工业化生产。因此，要制备γ-CD，建议参照CA115157165，通过添加γ-CD特异性的配位剂糖基化甘草甜，麦芽糖和一种CGTase，可将α-和/或β-环糊精酶促转化为γ-CD。制备γ-CD的另一种选择方案是通过对β-CGTase的特定氨基酸残基进行置换以增强它的γ-CD特异性，从而使该突变后的转移酶所产生的γ-CD比例增加，以便能够进行工业化规模的γ-CD的生产。已知可行的诱变方案参见DE4324650A1(相应于US-A-5,474917)，Biochemistry(1994)33(33)，pp.9929-9936，Biochemistry(1995)34(10)，pp.3368-3376，和J.Biotech.(1994)32，pp.283-288。通过对β-CGTase进行诱变所获得的这种CGTase衍生物对γ-CD的特异性增加，依据其产物类型分布的情况，理论上是适用于进行γ-CD的工业化生产的。但它的一个不足之处是引入相应的突变之后，会使酶的比活下降。根据所引入的氨基酸残基的不同，诱变后的酶对γ-CD的特异性虽然都提高了，但催化CD生成的活性只有原型转移酶的25％到59％(Biochemistry(1994)33(33)，pp.9929-9936，Biochemistry(1995)34(10)，pp.3368-3376)。本发明的目的在于提供这样的环糊精糖基转移酶(CGTase)，其在将淀粉或淀粉样底物转化为CD时，能形成更高比例的γ-CD，并且其比活不低于原型转移酶的60％。本发明的另一个目的在于提供制备所述CGTase的方法。本发明的再一个目的在于提供生产γ-CD的方法。上述的第一个目的是如下实现的使已知CGTase的第155位至195位(包括195位)区域的氨基酸序列缺失至少1个氨基酸以获得具有不同氨基酸序列的CGTase；此处所指的蛋白质序列的第1位是信号肽起始位点，这种缺失诱变增加了该蛋白的γ-CGTase活性。本发明的含义中，γ-CGTase的活性提高的含义为在使用CGTase催化淀粉或淀粉样底物所得到的产物混合物中本发明的CGTase的优选的氨基酸序列是在已知CGTase的第155位-195位氨基酸之间的区域缺失4到8个氨基酸残基，此处所指的蛋白质序列的第1位是CGTase信号肽的起始位点，这种缺失突变增加了该蛋白的γ-CGTase活性。本发明的CGTase的特别优选的氨基酸序列是在已知CGTase的第155位-195位氨基酸之间的区域缺失6个氨基酸残基，此处所指的蛋白质序列的第1位是CGTase信号肽的起始位点，这种缺失突变增加了该蛋白的γ-CGTase活性。在本申请中，其它各处提及到氨基酸位置的情况时，其第1位都是指CGTase信号肽的起始位点。此外，有几种CGTase是特别优选的，其氨基酸序列与表1中所列的CGTase序列的不同之处至少在于缺失了以粗体字母所表示的氨基酸残基，其余的氨基酸序列则与表1中所列的同源，其CGTase活性与未缺失的原型CGTase一致。本发明的CGTase的实例是经由表1所列的CGTase诱变而得，或是由其他CGTase通过在第155位到195位区域缺失特定的氨基酸残基而获得的。在此区域中缺失4到8个残基的氨基酸残基的CGTase较为优选。特别优选的是根据表1所列，在此区域中缺失了6个以粗体字母表示的氨基酸残基后所获得的CGTase。本发明的CGTase的其它实例是在序列中缺失与表1所指定的氨基酸相同的残基，而其CGTase活性仍与未经缺失的一致。进一步，本发明的CGTase实例是在转移酶序列的155位到195位区域缺失表1以粗体字母表示的氨基酸残基，其余的氨基酸序列与表1所列的微生物来源的CGTase氨基酸序列同源，这些经缺失突变的转移酶具有CGTase活性。表1β-CGTase的来源位置氨基酸序列Bacillusohbensis160-PNHSSPALETDPSYAENGAVYNDG-(SEQIDNO.1)软化芽孢杆菌165-PNHTSPADRDNPGFAENGGMYDNG-(SEQIDNO.2)芽孢杆菌1-1160-PNHSSPALETNPNYVENGAIYDNG-(SEQIDNO.3)环状芽孢杆菌#8172-PNHTSPAMETDTSFAENGRLYDNG-(SEQIDNO.4)意外的是本发明的CGTase较用来制备它们的原型CGTase而言，具有更高的γ-CD特异性，同时，突变后的酶同原型酶相比在CGTase总比活上仅有微小的降低。在转化淀粉或淀粉样底物时，本发明的CGTase所产生的CDs在产物种类分布上其γ-CD除以α-CD与β-CD之和的商值，大于经由各种未经诱变的原型CGTase所得到的产物的商值。表1举例列出了几种CGTase，说明了普遍存在于CGTase中的同源氨基酸序列区域，以及此区域中对产物特异性有影响作用的6个氨基酸残基。表1中所列的每一个氨基酸序列的第一个氨基酸的数字是标识其位置，在此，各特定CGTase序列信号肽的第一个氨基酸被记作第1位。利用周知的标准方法可以在所有的CGTase中发现相应的序列区域。例如，这可以通过计算各种序列对比的算法规则来达到。可从商业来源获得的Wisconsin序列分析软件包(GeneticComputerGroup，Madison)中的序列分析程序，即是一个适宜的计算机算法规则。通过诱变CGTase上述区域的方法，本发明的酶可用已知的标准方法从任何CGTase中制备而来，正如本申请实施例中所述。因此，通常编码某种CGTase的基因按此种方法诱变，从而得到编码本发明的CGTase的基因。因此，本发明也涉及制备编码本发明的CGTase的突变基因的方法，其中通过周知的诱变方法，使编码原型CGTase的DNA序列发生诱变，从而使得由诱变的基因所编码第155到第195位区域的氨基酸序列与由未诱变的基因编码的氨基酸序列相比，至少缺失了1个氨基酸残基。优选地，在本发明方法中，编码原型CGTase的基因的DNA序列通过已知的诱变方法诱变，从而使突变基因的DNA序列所编码的氨基酸序列与由未突变的基因的DNA编码的氨基酸序列相比，缺失了第155到195位区域中的4至8个氨基酸残基。更优选地，在本发明方法中，编码原型CGTase的基因的DNA序列通过已知的诱变方法诱变，从而使突变基因的DNA序列所编码的氨基酸序列与由未突变的基因的DNA编码的氨基酸序列相比，缺失了第155到195位区域中的6个氨基酸残基。进一步，本发明涉及制备γ-CGTase的方法，其中至少一种所述的DNA序列于某一种微生物中得到表达。所有的CGTase(原型CGTase)基因均适合制备本发明的CGTase。原型CGTase可以是所有天然CGTase，也可以是经突变获得的CGTase。例如那些产物类型分布发生改变，但其突变方式又不同于本发明的CGTase。(如DE4324650A1，对应于US-A-5,474,917)。优选的原型CGTase是那些产物类型分布已发生改变，但其诱变方式又不同于本发明的CGTase。(参见DE4324650A1)。编码原型CGTase的基因经已知方法分离出，而本发明所述的突变则是经“体内”或“体外”诱变方法引人。这些方法在本领域也是周知的。“体内”诱变方法可特定地理解为在某些微生物的染色体或附加体上已存在编码CGTase的基因，它们经诱变剂、紫外线、亚硝基胍、乙基甲基磺酸酯以非特异的方式发生突变。这些方法在如下资料中有阐述，如，MillerJ.H(1972)的“分子遗传学实验”，ColdSpringHarborLaboratory；ColdSpringHarbor，N.Y.。随后，用已知方法如Sanger等在PNAS74(1977)5463-5467中所阐述的链终止序列分析法，鉴定CGTase中至少一个编码氨基酸的密码子的缺失，这类缺失是在该CGTase的第155到195位区域中引入的。优选的突变体是按本发明在所指定区域中缺失了4至8个密码子。特别优选的突变体是缺失了6个密码子，最优选的突变体是编码如表1中粗体表示的氨基酸残基的6个密码子的缺失，或是编码其它CGTase中与这些同源的氨基酸残基的6个密码子发生缺失。按本发明的含义，“体外”诱变方法是指分离出的CGTase基因或其片段以已知的方法加以修饰，使得该基因编码的CGTase在第155到195位区域中至少一个编码氨基酸残基的密码子缺失。优选的突变体是指经修饰后在所指定区域中缺失了4至8个密码子。特别优选的突变体是缺失了6个密码子。特别是，最优选的突变体是经修饰后在所指定的区域内缺失了编码如表1中粗体表示的氨基酸残基的6个密码子，或是编码其它CGTase中与这些同源的氨基酸残基的6个密码子发生缺失。本发明因而还涉及编码本发明γ-CGTase的DNA序列。本领域所熟知的“体外”诱变方法的实例是用“PCR”技术进行特异的(生物技术BioTechniques(1992)13(3)，pp.342-346)或非特异的(生物技术BioTechniques(1989)1(1)，PP.11-15)诱变方法。也可以用合成的寡核苷酸片段以定点方式将突变引入目的基因。这一方法可按所谓的“单链法”(AusubelF.M.等(1987)，分子生物学现有技术，GreenPublishingAssociates)进行，或按“双链法”(Promega1992-1993Catalogue，150)进行，还可以按其它描述的方法，如在“遗传学年度综述”Ann.Rev.Genet.(1985)19，pp.423-462所述的方法。本发明的CGTase的主要应用领域是其在从淀粉中分离γ-CD中的应用。本发明的CGTase可根据现有的制备方法用作此目的。本发明进而还涉及利用CGTase转化淀粉制备γ-CD的方法，其中所使用的CGTase至少为权利要求1至权利要求4中所述的CGTase的一种。例如，在以下文献中对目前生产γ-CD的制备方法作了描述，其中本发明的CGTases可以用来替代这些方法中指定的CGTases—发酵和生物工程杂志(1990)70(3)，pp.190-192利用来自芽孢杆菌AL-6的生成β-和γ-CD的CGTases，在乙醇存在时制备γ-CD，结果提高了γ-CD的产量。—CA10757466描述了利用来自芽孢杆菌313的γ-CGTase制备γ-CD。—EP291,067用来自软化芽孢杆菌的CGTase制备γ-CD。γ-CD产物特异性通过加入一种配位剂，如环十六-8-内-1-酮获得。—DE4009822(相应于US-A-5,409,824)利用来自芽孢杆菌290-3的γ-CGTase生产γ-CD。与α-CD和β-CD相比较，γ-CD具有特殊的优势，使其成为一系列应用中唯一可能或最适合的CD。与由6个葡萄糖单位组成的α-CD相比较，由8个葡萄糖单位组成的γ-CD具有更大的疏水孔穴，使其可以与由于空间原因不能与α-CD配合的客体分子形成配位物。与β-CD(室温下在水中的溶解度约18.5g/L)相比较，γ-CD具有更高的可溶性(室温下约232.0g/L)，因而比β-CD更适合于水溶液中的配合反应。与β-CD和β-CD衍生物相比，γ-CD的另一个优点是其低毒性。在动物模型中，无论是口服或是静脉注射，α-CD衍生物和β-CD衍生物都比γ-CD更具有毒性。以下的实施例是对本发明的进一步说明。实施例1环状芽孢杆菌#8(DSM10559)CGTase的诱变按照熟练技术人员已知的方法，缺失CGTase结构基因中编码相应氨基酸残基的碱基三联密码，得到了来源于环状芽孢杆菌#8(参见表1；保藏在Braunschweig的DSMZ(德国微生物和细胞培养物保藏中心)，入藏号为DSM10559)的β-CGTase的155-195位氨基酸残基间的区域中的任何氨基酸残基的缺失，特别是179-184位的六个氨基酸残基METDTS(SEQIDNO.5)的缺失。为了便于诱变，来自环状芽孢杆菌#8的β-CGTase基因首先克隆人商业化的E.coli载体pUC19(BoehringerMannheim)。为达此目的，按AusubelF.M.，分子生物学通用方案，1卷；GreenePublishingAssociates&Wiley-InterscienceN.Y.所描述的方法从环状芽孢杆菌#8中分离染色体DNA，用限制性内切酶HindIII和XbaI(Boehringer，Mannheim.)酶切，分离2至5kb大小的片段，与经限制性内切酶HindIII和XbaI(Boehringer，Mannheim.)酶切的pUC19DNA在T4连接酶作用下，于16℃共孵育12小时。连接混合物用已知方法转化E.coliK12感受态细胞。转化后，从在含淀粉的指示平板上形成淀粉降解圈的E.coli细胞中分离出携带相应于环状芽孢杆菌#8的β-CGTase基因的重组质粒(Maniatis，分子克隆实验手册，冷泉港实验室(1982)N.Y.pp86-92)。利用Amersham(Braunschweig)出售的并基于Eckstein开发的方法(核酸研究，1986，14，pp9679-9698，核酸研究，1988，16pp791-802)的2.1版寡核苷酸指导的体外诱变系统，进行基因诱变，诱变完全按照Amersham诱变系统所附的方案进行。方法概括如下，详细内容可从该诱变体系的方案手册获得。克隆在pUC19中的环状芽孢杆菌#8的β-CGTase基因中编码本发明所指的CGTase第155-195位氨基酸残基间的区域的部分片段，利用商购可得的酶如限制性内切酶和T4连接酶(Boehringer，Mannheim.)，克隆入商业化的E.coli载体M13(NewEnglandBiolabs)。一条1.6kbAccI片段就是这类片段中的一个，该片段克隆人AccI切割的M13载体。根据Amersham提供的实验方案与上述的诱变系统，从接纳了重组M13载体的E.coli宿主细胞中分离出单链重组M13DNA(初始DNA)。为了精确的诱变，合成了化学精制的诱变寡核苷酸，在每种情况下都含有目的序列。这种寡核苷酸可以例如，从MWG(Ebersherg)购得。诱变寡核苷酸序列的选择应使其碱基顺序与初始DNA核苷酸序列的某一部分反向互补，该部分初始DNA位于准备缺失的环状芽孢杆菌#8的β-CGTase基因的三联密码的上游15个碱基和下游15个碱基。表2描述了所用的诱变寡核苷酸。表25’-CACACCTCTCCAGCGTTTGCCGAAAATGGC-3’(SEQIDNO.6)表2所描述的诱变寡核苷酸的使用结果产生了一个编码缺失六个氨基酸残基METDTS(序列号IDNO.5)的氨基酸片段的β-CGTase基因片段。利用T4多核苷酸激酶和ATP(Amersham)对诱变寡核苷酸5’端磷酸化。磷酸化的诱变寡核苷酸与初始DNA同源区相结合。为此，5μg的单链初始DNA与大约4pmol的磷酸化诱变寡核苷酸在70℃共同孵育3分钟，再于37℃孵育30分钟。这样以结合在初始DNA的诱变寡核苷酸作为合成起始点，以初始DNA作为合成突变DNA的模板，合成了除了缺失的核苷酸外与初始DNA互补的DNA链。合成本身是在加入了DNA聚合酶Klenow片段(Amersham)、T4DNA连接酶和核苷酸混合物，在16℃作用15小时进行的。其中的核苷酸混合物含有dATP，dGTP，dTTP和代替dCTP的硫代核苷酸dCTPS(Amersham)。残留的单链初始DNA分子从合成混合物中除去。为此，混合物用NaCl处理，并用一特异结合单链DNA的硝酸纤维素滤膜(Amersham)过滤。保留在滤过液中的双链杂合DNA通过乙醇沉降浓缩去盐。杂合DNA与NciI(Amersham)(一种识别核苷酸序列CC(G/C)GG但仅作用于天然DNA链而不切割含有核苷酸类似物dCTPS的DNA链的限制性内切酶)在合适的孵育缓冲液(Amersham)中于37℃作用90分钟。该处理只导致非诱变链(初始DNA)的断裂。初始DNA随后用从自由末端降解DNA链的核酸外切酶III在37℃处理30分钟除去。核酸外切酶热失活后(70℃，15分钟)剩下的单链诱变DNA链与DNA聚合酶I(Amersham)、T4DNA连接酶和核苷酸dATP，dCTP，dTTP及dGTP在16℃共同孵育3小时。这使诱变的单链DNA变成双链DNA。进一步用乙醇沉降纯化后，诱变的DNA转化入E.coli.K12感受态细胞中。通过转化所得5个克隆的重组DNA的相关区域的序列分析，检测诱变过程的成功。将最初为了诱变克隆入M13的DNA片段用限制性内切酶XhoI和NdeI从确证具有突变的载体中切下。随后，相应的未诱变的XhoI/NdeI的片段从表达环状芽孢杆菌#8β-CGTase的pUC19质粒中去除，用T4DNA连接酶替换上诱变的片段。实施例2芽孢杆菌1-1β-CGTase的诱变用表3所述的寡核苷酸，以类似与实施例1所描述的方法，使编码相应于CGTase167-172位的氨基酸残基LETNPN(序列号ID.No.7)(参见表1)的芽孢杆菌Bacillussp.1-1β-CGTase基因中的六个密码子缺失(见实施例8，比较2，A))。相同的缺失还被用于导入DE4324650A1所描述的该CGTase衍生物中，与野生型酶相比较，通过一个氨基酸替换(Tyr---＞Trp)(见实施例8，比较2，B))增强了其γ-CD的特异性。表35’-CATTCATCACCGGCATATGTTGAAAATGGG-3’(SEQIDNO.8)实施例3在E.coli中生产环状芽孢杆菌#8β-CGTase及其根据本发明的衍生物将实施例1所述的基于pUC19的表达质粒转化人分泌型E.coli菌株以生产环状芽孢杆菌#8β-CGTase，及其根据实施例1所述制备的衍生物。E.coliWCM105用作分泌型E.coli.菌株，该菌株是用EP338410所述的E.coliDS410制备的。因此，为了生产环状芽孢杆菌#8β-CGTase或其衍生物，将携带适当的CGTase表达质粒的E.coliWCM105细胞在含10g/l乳糖和0.1g/l氨苄青霉素的LB培养基(Maniatis，分子克隆实验手册，冷泉港实验室(1982)N.Y.)中于30℃水浴摇荡72小时(250/rpm转速)。细胞随后经5000×g离心分离除去。无细胞的培养液上清含β-CGTase或其衍生物。实施例4在E.coli.中生产芽孢杆菌1-1β-CGTase及其根据本发明的衍生物用实施例2所述的表达质粒，以类似实施例3的方法实现生产目的。实施例5利用载体结合的β-环糊精吸附纯化CGTase以特异性的和温和的方式，利用Sepharose偶联的β-CD分子亲和纯化CGTase。用3×10mlH2O和1×5ml0.1NNaOH先洗涤1g环氧基活化的Sepharose6B(Sigma)，Sepharose6B随后悬浮于2ml溶于0.1NNaOH的2.8％(W/V)的β-CD溶液，在45℃孵育20小时，同时温和摇荡。含有β-CD和Sephadex6B的偶联产物用2×5mlH2O洗涤，洗涤后的物质悬浮于2.5％(W/V)葡萄糖水溶液中，悬浮液于室温孵育1小时以饱和残余的自由偶联位点。偶联产物依次用2×5mlH2O，2×5ml0.1M硼酸盐缓冲液(pH8.0)，2×5ml0.1M乙酸盐缓冲液(pH4.0)和2×2ml20mM三乙醇胺/ClpH7.2洗涤。偶联产物用0.2ml20mM三乙醇胺/ClpH7.2(终体积约2-2.5ml)处理，于4℃保存备用。为了使CGTase特异性结合到Sepharose6B偶联的β-CD(CD-Sepharose)上，将实施例3或4获得的无细胞的含有CGTase的培养液上清用0.2mlCD-Sepharose处理，在4℃孵育1.5小时，同时温和摇荡，在这期间，酶与CD-Sepharose相结合。酶/CD-Sepharose复合物通过离心分离(4000×g，5分钟)，并用2×10ml20mM三乙醇胺/ClpH7.2洗涤。CGTase酶随后通过将复合物与2ml1％β-CD的溶液在4℃共孵育1.5小时加以洗脱。最后一次离心(5min4000×g)之后，上清中含有纯化的CGTase。在以这种方法纯化的CGTase进行定性前，溶液中所含的β-CD和用于洗脱的β-CD还有待除去。为此，用35ml20mMTris/HClpH7.2和5mMCaCl2(TC缓冲液)平衡商购的PD-10柱(SephadexG-25M；Pharmacia)。含β-CD的溶液用TC缓冲液配制成2.5ml并上柱。随后用3.5mlTC缓冲液洗脱柱。这一方法获得的洗脱液含纯化的无β-CD的CGTase。实施例6淀粉到环糊精的转化利用Eur.J.Biochem.(1990)191，pp.177-185所描述的方法测定CGTase活性。不同含量的待测CGTase溶液与在由20mMTris/HClpH7.2和5mMCaCl2组成的缓冲液中的5％可溶淀粉(Merch，Darmstadt)溶液，于45℃共同孵育一定时间。然后，加入1.5倍体积的甲醇终止反应。未反应的残留淀粉在4℃孵育1小时沉降，再离心分离除去(10分钟，12000g)。所得产物以已确定的环糊精(Sigma，Mnich)作为标准，用Nucleosil10-NH2柱(Macherey&Nagel，Duren)经HPLC测定。1个单位(1U)的定义为在所述条件下每分钟由淀粉合成1μM环糊精所需的酶量。实施例7纯化的CGTase的CGTase总比活的测定纯化的CGTase的CGTase总比活定义为单位数量蛋白质的体积活性(U/mg)。一种酶样品的CGTase体积活性(U/mg)按实施例6所述的方法确定。纯化的CGTase溶液的蛋白含量(mg/ml)用M.Bradford(“分析生化”(1976)72，pp.248ff)所述的方法确定。为此目的所需的化学试剂来自Bio-Rad。下面为环状芽孢杆菌#8、芽孢杆菌1-1和来源于它们的缺失突变(如实施例1和实施例2中所述)的CGTase总比活(比活)的测定结果酶相对活性(％)比活(U/mg)来自环状芽孢杆菌#8的野生型CGTase100106其缺失突变体7782来自芽孢杆菌1-1的野生型CGTase100120其缺失突变体6578芽孢杆菌1-1的CGTase的突变衍生物10023(TyrTrp)其缺失突变体7317实施例8利用来源于环状芽孢杆菌#8、芽孢杆菌1-1和实施例3和4所述制备的衍生物的非突变β-CGTase转化淀粉为了比较非突变CGTase和实施例3、4所述通过缺失诱变而得到的衍生物的产物范围，采用相同的酶活性转化淀粉(实施例6)。在一定时间里，按所述的方法检测产物组成。下面为所得的结果比较1环状芽孢杆菌#8</tables>比较2芽孢杆菌1-1A)</tables>B)</tables>序列表(1)一般信息(i)申请人(A)姓名电化学工业有限公司(国际)(B)街道Zielstattstrasse20(C)城市慕尼黑(D)联邦州巴伐利亚州(E)国家Germany德国(F)邮政编码81379(G)电话049-89-74844-0(H)电传049-89-74884-350(ii)发明名称用于生产γ-环糊精的环糊精糖基转移酶(iii)序列数目8(iv)计算机阅读形式(A)介质类型软盘(B)计算机类型IBMPC兼容机(C)操作系统PC-DOS/MS-DOS(D)软件PatentINRelase#1.0#1.30版(EPO)(2)SEQIDNO1的信息(i)序列特征(A)长度24个氨基酸(B)类型氨基酸(C)链性(D)拓扑线性(ii)分子类型肽(iii)假设无(v)片段类型内部片段(vi)最初来源(A)有机体Bacillusohbensis(xi)序列描述SEQIDNO1ProAsnHisSerSerProAlaLeuGluThrAspProSerTyrAlaGlu151015AsnGlyAlaValTyrAsnAspGly20(2)SEQIDNO2的信息(i)序列特征(A)长度24个氨基酸(B)类型氨基酸(C)链性(D)拓扑线性(ii)分子类型肽(iii)假设无(v)片段类型内部片段(vi)最初来源(A)有机体软化芽孢杆菌(xi)序列描述SEQIDNO2ProAsnHisThrSerProAlaAspArgAspAsnProGlyPheAlaGlu151015AsnGlyGlyMetTyrAspAsnGly20(2)SEQIDNO3的信息(i)序列特征(A)长度24个氨基酸(B)类型氨基酸(C)链性(D)拓扑线性(ii)分子类型肽(iii)假设无(v)片段类型内部片段(vi)最初来源(A)有机体芽孢杆菌1-1(xi)序列描述SEQIDNO3ProAsnHisSerSerProAlaLeuGluThrAsnProAsnTyrValGlu151015AsnGlyAlaIleTyrAspAsnGly20(2)SEQIDNO4的信息(i)序列特征(A)长度24个氨基酸(B)类型氨基酸(C)链性(D)拓扑线性(ii)分子类型肽(iii)假设无(v)片段类型内部片段(vi)最初来源(A)有机体环状芽孢杆菌#8(xi)序列描述SEQIDNO4ProAsnHisThrSerProAlaMetGluThrAspThrSerPheAlaGlu151015AsnGlyArgLeuTyrAspAsnGly20(2)SEQIDNO5的信息(i)序列特征(A)长度6个氨基酸(B)类型氨基酸(C)链性单链(D)拓扑线性(ii)分子类型肽(iii)假设无(iv)反义否(v)片段类型内部片段(xi)序列描述SEQIDNO5MetGluThrAspThrSer15(2)SEQIDNO6的信息(i)序列特征(A)长度30个碱基对(B)类型核苷酸(C)链性单链(D)拓扑线性(ii)分子类型其它核酸(A)描述/desc＝“合成”(iii)假设无(iv)反义否(viii)基因组中位置(C)单位bp(xi)序列描述SEQIDNO6CACACCTCTCCAGCGTTTGCCGAAAATGGC30(2)SEQIDNO7的信息(i)序列特征(A)长度6个氨基酸(B)类型氨基酸(C)链性单链(D)拓扑线性(ii)分子类型肽(iii)假设无(iv)反义否(v)片段类型内部片段(xi)序列描述SEQIDNO7LeuGluThrAsnProAsn15(2)SEQIDNO8的信息(i)序列特征(A)长度30个碱基对(B)类型核苷酸(C)链性单链(D)拓扑线性(ii)分子类型其它核酸(A)描述/desc＝“合成”(iii)假设无(iv)反义否(viii)基因组中位置(C)单位bp(xi)序列描述SEQIDNO8CATTCATCACCGGCATATGTTGAAAATGGG30权利要求1.一种环糊精糖基转移酶，其在将淀粉或淀粉样底物转化为环糊精时产生的γ-环糊精量在一定程度上有所提高，同时，与用于制备其的原型环糊精糖基转移酶相比较，其环糊精糖基转移酶总比活仍显示出至少60％的活性，该环糊精糖基转移酶的氨基酸序列与已知的环糊精糖基转移酶的氨基酸序列的区别在于第155位至包括第195位氨基酸在内的区域中，至少有1个氨基酸缺失，这种缺失导致蛋白的γ-环糊精糖基转移酶活性的提高，此处，蛋白质序列的第1位为环糊精糖基转移酶的信号肽的起始位点。2.如权利要求1所述的环糊精糖基转移酶，其中其蛋白质序列的第155到第195位氨基酸区域中有4至8个氨基酸残基被缺失，这样的缺失导致蛋白的γ-环糊精糖基转移酶活性的提高，此处，蛋白质序列的第1位为环糊精糖基转移酶的信号肽的起始位点。3.如权利要求1所述的环糊精糖基转移酶，其中其蛋白质序列的第155到第195位氨基酸区域中有6个氨基酸残基被缺失，这样的缺失导致蛋白的γ-环糊精糖基转移酶活性的提高，此处，蛋白质序列的第1位为环糊精糖基转移酶的信号肽的起始位点。4.如权利要求1所述的环糊精糖基转移酶，其氨基酸序列不同于表1中所列环糊精糖基转移酶的氨基酸序列之处在于至少分别缺失了表1中以粗体字母表示的氨基酸残基，而本发明的环糊精糖基转移酶的其余的氨基酸序列与表1所列的各种微生物来源的环糊精糖基转移酶氨基酸序列同源，所述序列所显示的环糊精糖基转移酶活性与未缺失的原型环糊精糖基转移酶相同。5.一种制备编码本发明的环糊精糖基转移酶的突变基因的方法，其中通过周知的诱变方法，使编码原型环糊精糖基转移酶的DNA序列发生突变，从而使得由突变基因的DNA序列所编码的第155到第195位区域的氨基酸序列与由未诱变的基因的DNA编码的氨基酸序列相比，至少缺失了1个氨基酸残基。6.如权利要求5所述的方法，其中通过周知的诱变方法，使编码原型环糊精糖基转移酶的DNA序列发生突变，从而使得由突变基因的DNA序列所编码的第155到第195位区域的氨基酸序列与由未诱变的基因的DNA编码的氨基酸序列相比，缺失了4至8个氨基酸残基。7.如权利要求5所述的方法，其中通过周知的诱变方法，使编码原型环糊精糖基转移酶的DNA序列发生突变，从而使得由突变基因的DNA序列所编码的第155到第195位区域的氨基酸序列与由未诱变的基因的DNA编码的氨基酸序列相比，缺失了6个氨基酸残基。8.一种编码如权利要求1所述的环糊精糖基转移酶的DNA序列。9.一种制备γ-环糊精糖基转移酶的方法，其中将至少一种如权利要求8所述的DNA序列在微生物中表达。10.一种利用环糊精糖基转移酶通过转化淀粉来制备γ-环糊精的方法，其中采用至少一种如权利要求1至4中所述的环糊精糖基转移酶作为环糊精糖基转移酶。全文摘要在将淀粉或淀粉样底物转化为环糊精时，本发明的环糊精糖基转移酶产生的γ-环糊精量在一定程度上有所提高，同时，与用于制备其的原型环糊精糖基转移酶相比较，其环糊精糖基转移酶总比活仍显示出至少60％的活性，这些环糊精糖基转移酶的氨基酸序列与已知的环糊精糖基转移酶的氨基酸序列的区别在于第155位至包括第195位氨基酸在内的区域中，至少有1个氨基酸缺失，这种缺失导致蛋白的γ-环糊精糖基转移酶活性的提高，此处，蛋白质序列的第1位为环糊精糖基转移酶的信号肽的起始位点。文档编号C07H21/04GK1162641SQ9710034公开日1997年10月22日申请日期1997年1月9日优先权日1996年4月18日发明者格奥尔格·E·舒尔茨,格茨·帕西格拉,安东·坎杜西奥,冈特·维希申请人:电化学工业股份有限公司(国际)